Name: Lignification Dynamics ile tıklatın kimya tesislerinde görselleştirme: Çift etiketleme BLISS olduğunu! (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-01-26T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 40 s
Description: Keşfedin bitki dokularında lignifikasyon dinamiklerini çift etiketleme BLISS yöntemiyle. Biyoortogonal tıklama kimyası kullanarak yeni sentezlenen lignini mevcut ligninden ayırt edin ve hücre duvarlarında lokalizasyon haritaları oluşturun.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Biz araştırma Federasyon FRABio ve TisBio görüntüleme platformu için borçlu bulunmaktadır (Univ. Lille, CNRS, FR 3688, FRABio, BiochimieStructurale et Fonctionnelle des buluntu Biomoléculaires) bu ulaşmak için elverişli teknik ortamı sağlamak için iş.

Not: Sıvı ve katı ½ MS medya ek tablo 1' de açıklandığı gibi önceden hazırlanmış olması gerekir.
1. bitki kültürü
<ol><li>
2 aylık Keten bitki kültürü
	<ol>
<li>Plastik tencere Çömlekçilik kompost kullanarak keten (Linum usitatissimum L.) tohumları ekmek.</li>
		<li>Büyümek büyüme odalarında bir photoperiod 16 h/8 h ile 22 ° C'de keten/gündüz.</li>
		<li>1 ay sonra dikey destek bitkilerle donatmak ve 2 aylık onlar kadar büyür.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Kültür 2 haftalık keten fidan
	<ol>
<li>12 keten tohumu bir parça peynir bez sarın ve bir paket yapmak için bir lastik bant ile düzeltmek. Not: sonraki adımlar laminar akış duman başlık altında steril koşullarda yerine getirir.</li>
		<li>Tohum paket bir daha önce autoclaved 250 mL cam şişe yerleştirin.</li>
		<li>% 70 70 mL ekleyin alkol şişe ve yavaşça 1 dakika karıştırın.</li>
		<li>Dikkatli bir şekilde şişeye paket bırakarak decantation tarafından alkol çıkarın.</li>
		<li>100 mL % 2 sodyum hipoklorit ekleyin ve 10 dakika hafifçe karıştırın.</li>
		<li>Sodyum hipoklorit çözüm şişede paket bırakarak decantation çıkarın.</li>
		<li>Adımları 1.2.5-1.2.6 tekrarlayın.</li>
		<li>100 mL steril ultrasaf su ekleyin ve 1 dakika karıştırın.</li>
		<li>1.2.8 3 kez, her durulama (5, 10 ve 15 dk) durulama süre artan adımları yineleyin.</li>
		<li>Katı ½ MS orta sıcak, bir steril bitki kültür kutuda 2 cm yüksekliğinde dök ve katılaşma kadar aşağı soğumaya bırakın.</li>
		<li>Kibar bir şekilde her tohum steril forseps kullanarak katı medyada yer.</li>
		<li>Steril kutusunu kapatın.</li>
		<li>Kutuyu bir büyüme odası ile bir photoperiod 16 h/8 h 22 ° C'de transfer gündüz/gece ve 2 hafta boyunca keten fidan büyümeye.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. metabolik kimyasal gazetecilere birleşmesiyle
Not: Üç modeller aşağıda sunulmuştur: i) metabolik etiketleme kök kesit, II) bütün kaynaklanıyor ve III) bitki fidesi. Her iletişim kuralı için bir biyolojik REPLICATE sunulur ve miktarları gerekli biyolojik çoğaltır sayıya adapte edilebilir. Monolignol çözümler deneme önce Tablo 2 ' de açıklandığı gibi yapılır stok çözümlerinden hazırlanır. Hisse senedi çözümleri-20 ° C'de birkaç ay saklanabilir HAZ: GALK veya H:G oranlarını tüm özel yapım deneysel tasarımlar uyacak şekilde ayarlanabilir.
<ol><li>2 aylık keten kök kesit içine kimyasal muhabir birleşme
	<ol>
<li>GALK 10 µM ve HAZ 10 µM sıvı steril ½ MS orta içeren bir 300 µL kimyasal muhabir çözüm hazırlamak.</li>
		<li>Girdap HAZ/GALK çözüm ve bir micropipette 48-şey plakalı bir kuyu aktarmak.</li>
		<li>10 µM g ve H 10 µM sıvı steril ½ MS orta içeren 300 µL negatif kontrol çözümü hazırlayın.</li>
		<li>Girdap H/G çözüm ve aynı 48-şey plaka ikinci bir kuyu için transfer.</li>
		<li>Yeni jilet kullanarak toprak seviyesinden 10 cm 2 aylık Keten bitki kök kesmek.</li>
		<li>İnce 50 serbest enine kesit jilet (yaklaşık 150-250 µm kalınlığında) kullanarak kök hazırlamak.</li>
		<li>Hemen izle cam sıvı steril ½ MS orta kesit yerleştirin.</li>
		<li>Kontrol edin ve bozulmamış tüm kesit seçin ve rasgele 10 tanesi de HAZile dolu, dağıtmak /GALK çözüm.</li>
		<li>Adımı yineleyin 2.1.8 de dolu için h/G çözüm (olarak negatif kontrol).</li>
		<li>Bir de (floresan temel confocal mikroskobu görüntülerin sonraki veri işleme sırasında ayarlamak için arka plan denetimi) olarak ½ MS orta 300 µL ile dolu üçüncü için 2.1.8 arasındaki adımları yineleyin.</li>
		<li>Sürekli bir büyüme odası 20 h için 20 ° C'de ışıkta plaka kuluçkaya.</li>
		<li>Her iyi bir micropipette ile monolignol çözüm kaldırın.</li>
		<li>Her şey için 500 µL ½ MS orta ekleyin, 10 dakikadır hafifçe karıştırın ve bu çözüm bir micropipette ile durulama kaldırın. 4 kez tekrarlayın ve hemen etiketleme BLISS (Bölüm 3) devam edin.</li>
	</ol></li>
	<li>2 aylık keten bütün kaynaklanıyor içine kimyasal muhabir birleşme
	<ol>
<li>GALK 10 µM ve HAZ 10 µM sıvı steril ½ MS orta içeren bir 5 mL kimyasal muhabir çözüm hazırlamak.</li>
		<li>Girdap HAZ/GALK çözüm ve transfer için bir 20 cm yüksek cam test tüp bir pipet ile.</li>
		<li>10 µM g ve H 10 µM sıvı steril ½ MS orta içeren 5 mL negatif kontrol çözümü hazırlayın.</li>
		<li>Girdap H/G çözüm ve transfer için bir 20 cm yüksek cam test tüp.</li>
		<li>(Floresan temel confocal mikroskobu görüntülerin sonraki veri işleme sırasında ayarlamak için arka plan denetimi) olarak ½ MS orta 5 mL içeren üçüncü bir cam test tüpü hazırlayın.</li>
		<li>Yeni jilet kullanarak toprak seviyesinden 10 cm 2 aylık Keten bitki kök kesmek. Kök sistemi ve kök alt kısmı atın ve bitki kök üst kısmındaki sonraki adıma geçin.</li>
		<li>HAZiçeren tüp içinde bütün kesilmiş kök Bankası sokmak /GALK çözüm. Kök kuluçka çözüm kurumasını önlemek için hemen kök sistemi kaldırıldıktan sonra yerleştirin. Not: küçük/büyük bitkiler ve/veya diğer türler için yöntem uygulanırsa, monolignol çözümleri hacmi büyüklüğüne göre ayarlanması gerekir / yaş bitki ve onun kök çapı.</li>
		<li>Kök düz tutmak için dikey bir destek ekleyin.</li>
		<li>Cam tüp çözüm buharlaşma önlemek için parafilm ile kapatın.</li>
		<li>Hile negatif kontrol örneği için adımları 2.2.6-2.2.9 tekrar /G çözüm.</li>
		<li>Adımları 2.2.6-2.2.9 ½ MS orta içeren floresan arka plan denetimi örneğini için yineleyin.</li>
		<li>Her kök sürekli ışık neon ışık kullanarak 20 h için kuluçkaya.</li>
		<li>Metabolik şirketleşme 20 h sonra HAZinkübe kök kaldırmak /GALK çözüm ve ½ MS orta ile durulayın.</li>
		<li>Kesip alt jilet kullanarak kök 1 cm atmak ve 1 cm yüksek silindir kalan kök tabanından hazır olun.</li>
		<li>Dikkatle 20 serbest enine kesit (yaklaşık 150-250 µm kalınlığında) üzerinden bu silindir hazırlamak ve hemen izle ½ MS orta ile dolu bir bardak koyun.</li>
		<li>½ MS orta 500 µL 48-şey plaka bir kuyuda koymak.</li>
		<li>Kontrol edin ve bozulmamış tüm kesit seçin ve rasgele 10 tanesi ½ MS çözümü ile dolu iyi dağıtmak.</li>
		<li>2.2.13-2.2.17 H/G çözüm ile inkübe negatif kontrol kök için adımları yineleyin.</li>
		<li>Adımları 2.2.13-2.2.17 floresan arka plan denetimi kök için ½ MS orta ile inkübe yineleyin.</li>
		<li>Dikkatli bir şekilde çözüm her iyi bir micropipette ile çıkarın.</li>
		<li>Her şey için 500 µL ½ MS orta ekleyin, 10 dakikadır hafifçe karıştırın ve bu çözüm bir micropipette ile durulama kaldırın. 4 kez tekrarlayın ve hemen etiketleme BLISS (Bölüm 3) devam edin.</li>
	</ol></li>
	<li>2 haftalık keten fidan içine kimyasal muhabir birleşme Not: Aşağıdaki adımları tüm steril koşullar altında yapılmaktadır.<ol>
<li>GALK 10 µM ve HAZ 10 µM sıvı steril ½ MS orta içeren bir 2 mL kimyasal muhabir çözüm hazırlamak.</li>
		<li>Girdap HAZ/GALK çözüm ve transfer için bir 20 cm yüksekliğindeki cam test tüp bir pipet ile.</li>
		<li>10 µM g ve H 10 µM sıvı steril ½ MS orta içeren 2 mL negatif kontrol çözümü hazırlayın.</li>
		<li>Girdap H/G çözüm ve transfer için bir 20 cm yüksekliğindeki cam test tüp.</li>
		<li>(Floresan temel confocal mikroskobu görüntülerin sonraki veri işleme sırasında ayarlamak için arka plan denetimi) olarak ½ MS orta 2 mL içeren üçüncü bir 20 cm yüksek cam test tüpü hazırlayın.</li>
		<li>İnce uzun bir çift cımbız kullanarak katı ½ MS ortamından bir 2 haftalık keten fide kaldırmak (Bölüm 1.2. yukarıda).</li>
		<li>Yavaşça fide HAZiçeren tüp transferi /GALK çözüm, kökleri çözümde daldırılır sağlanması.</li>
		<li>Cam tüp buharlaşma önlemek için plastik bir kap ile kapatın.</li>
		<li>H ile negatif kontrol tüp için adımları 2.3.6-2.3.8 tekrar / G çözüm.</li>
		<li>Adımları 2.3.6-2.3.8 ½ MS orta içeren floresan arka plan denetimi tüp için yineleyin.</li>
		<li>Sürekli ışık 20 ° C'de 20 h için büyüme odasında her fide kuluçkaya</li>
		<li>İnce HAZinkübe fide kaldırmak /GALK çözüm ve ½ MS orta ile durulayın.</li>
		<li>İnce 20 serbest kesit (kalın approximatively 150-250 µm) hypocotyl, hazır olun.</li>
		<li>½ MS orta 500 µL 48-şey plaka bir kuyuda koymak.</li>
		<li>Kontrol edin ve bozulmamış tüm kesit seçin ve rasgele 10 tanesi ½ MS çözümü ile dolu iyi dağıtmak.</li>
		<li>2.3.12-2.3.15 H/G çözüm ile inkübe negatif kontrol fide için adımları yineleyin.</li>
		<li>Adımları 2.3.12-2.3.15 floresan arka plan denetimi fide için ½ MS orta ile inkübe yineleyin.</li>
		<li>Dikkatli bir şekilde çözüm her iyi bir micropipette ile çıkarın.</li>
		<li>Her şey için 500 µL ½ MS orta ekleyin, 10 dakikadır hafifçe karıştırın ve bu çözüm bir micropipette ile durulama kaldırın. 4 kez tekrarlayın ve hemen etiketleme BLISS (Bölüm 3) devam edin.</li>
	</ol></li>
</ol>3. çift floresan bitki kesit örnekleri SPAAC ve CuAAC tarafından etiketlerine göre
Not: Protokolü etiketleme BLISS tüm 3 deneysel modeller (Bölüm 2) için aynıdır.
<ol><li>
Zorlanma terfi azid ALKİN Cycloaddition (SPAAC) etiketleme
	<ol>
<li>1 mL DBCO-PEG4-5 5 mikron içeren bir SPAAC çözeltisi hazırlamak/6-carboxyrhodamine 110 sıvı steril ½ MS orta. Girdap çözüm ve karanlıkta tut.</li>
		<li>Son yıkama sonrası adımları [2.1.13, 2.2.21 veya 2.3.19 bağlı olarak seçilen deneysel tasarım], metabolik kuruluş protokolünün ½ MS orta kaldırın ve SPAAC çözüm iyi bir micropipette ile başına 300 µL ekleyin.</li>
		<li>Işık 48-şey plaka kaplama alüminyum folyo ile veya bir kutuya yerleştirerek kalkan.</li>
		<li>Hafifçe plaka üzerinde karanlık ortam sıcaklığında 1 h için mekanik bir shaker karıştırın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Bakır katalize azid ALKİN Cycloaddition (CuAAC) etiketleme
	<ol>
<li>Her şey 4 kez adım 2.1.13 açıklandığı gibi karanlıkta plaka tutarken yıkayın.</li>
		<li>1 mL 2.5 mM sodyum askorbat, 0,5 mM CuSO4 ve 5-TAMRA-PEG35 mikron içeren bir CuAAC çözeltisi hazırlamak-azid sıvı steril ½ MS orta. Girdap çözüm ve karanlıkta tut. Not: Bu CuAAC çözüm kullanmadan önce taze hazırlanmalıdır ve birkaç gün 4 ° C'de depolanan</li>
		<li>½ MS orta her kuyuya kaldırın ve doğrudan 300 µL iyi bir micropipette kullanarak başına CuAAC çözüm ekleyin.</li>
		<li>Hafifçe plaka üzerinde karanlık ortam sıcaklığında 1 h için mekanik bir shaker karıştırın.</li>
		<li>Bir micropipette kullanarak CuAAC çözüm kaldırın.</li>
		<li>Bir micropipette kullanarak, ½ MS 500 µL ekleyin, 10 min için karanlık ilave edin sonra bu yıkama çözüm kaldırın. İki kez tekrarlayın.</li>
		<li>7:3 MeOH/su solüsyonu 500 µL ekleyin, 1 h için karanlık ilave edin sonra çözüm kaldırma Dikkat: Metanol ciltle temas veya inhalasyon tarafından toksik ve bir insan kanserojen atanır. Onun kullanımı kimyasal duman davlumbaz ve eldiven gerektirir.</li>
		<li>½ MS 500 µL ekleyin, 10 min için karanlık ilave edin sonra çözümü kaldırın. 4 kere tekrar edin.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. mikroskop örnekleri montajı slaytlar
<ol><li>Montaj orta cam mikroskop Slayttaki yer 5 bırakır.</li>
	<li>Dikkatle her HAZdepozito /GALKtagged kesiti slayt üzerinde.</li>
	<li>Tırnak cilası slaydın iki karşı taraflarda uygulanır.</li>
	<li>Bir coverslip slaytla kapsar. Hava kabarcıklarını önlemek dikkatli olun.</li>
	<li>Aşırı montaj orta bir kağıt havlu kullanarak kaldırın.</li>
	<li>Tırnak cilası her 4 tarafında örnekle kapatın. Oda sıcaklığında (yaklaşık 30 dakika) kuru vernik çivi ver.</li>
	<li>4.1-4,6 negatif kontrol H/G kesit için yineleyin.</li>
	<li>4.1-4,6 floresan arka plan denetimi kesit için yineleyin.</li>
	<li>4 ° C'de slaytları gözlem confocal mikroskop altında kadar karanlıkta depolama. Not: Hazırlanan slaytlar hazırlık kalitesine bağlı olarak birkaç ay birkaç hafta saklanır. Yeni bir gözlem depolama sonra yapılacak ise, örnekleri kurumuş olduğunu değil emin olun.</li>
</ol>5. resim alma tarafından Confocal Floresans mikroskobu
<ol><li>Üreticinin yönergelerine göre doğru düzende confocal mikroskobu sisteminin tüm gerekli birimler açın.</li>
	<li>Maksimal sayısal diyafram ile istediğiniz hedefi seçin ve uyarma ve emisyon dalga boylarında uyarlanmış (örneğin, obj 60 x, N.A. 1.2. Autofluorescence kanal: λex 405 nm, λem 450 nm /25; SPAAC HAZ kanal: λex 488 nm, λem 525 nm /25; CuAAC GALK kanal: λex 561 nm, λem 595 nm /25; Sıralı modu).</li>
	<li>Yazılım (12 veya 16 gerekli, bit piksel boyutunu Nyquist kriteri için uyarlanmış) Albümdeki nesil için istenen parametrelerini seçin.</li>
	<li>HAZ/GALK slayt mikroskop sahnesinde yerini ve objektif mercek altında örnek konumlandırın.</li>
	<li>Gözlemlemek ve bitki dokusunun istediğiniz bölgesini bulun.</li>
	<li>
Yüksek kaliteli iki kat etiketli HAZ/G confocal görüntülerini eldeALK örnek.
	<ol>
<li>En floresan uçağa z ekseni seçin.</li>
		<li>Kazanç, ayarlamak en iyi sinyal dağıtım her kanal (autofluorescence, HAZ ve GALK) için tüm gri düzeyi aralığı boyunca elde etmek için uzaklık ve lazer güç. Aynı parametreleri aşağıdaki satın almalar için uygulanması gerekir.</li>
		<li>Seçili resmin edinimi başlatın ve dosyayı kaydedin. Örnek ilgili her alanı için yineleyin. Not: 3D Z-yığın rekonstrüksiyonlar Ayrıca gerekirse elde edilebilir.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Aynı ayarları kullanarak, yalnızca autofluorescence düzeyi (2 bölümde açıklandığı gibi floresan arka plan denetimi) belirlemek için ½ MS inkübe etiketsiz örnek görüntüleri elde etmek.</li>
	<li>Aynı ayarları kullanarak, yerel monolignols belirsiz fluorophore yapışma örnek belirlemek için H/G ile inkübe negatif kontrol örnekleri için görüntüleri elde etmek.</li>
	<li>Veri tedavi çıkarma arka plan autofluorescence sinyalleri H/G negatif kontrol görüntüleri ve HAZ/GALK görüntüleri elde edilen görüntülere uygulanır.</li>
</ol>

<ol><li>Grammel, M., Hang, H. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemical+reporters+for+biological+discovery%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Chem+Biol%22%5BJournal%5D)">Chemical reporters for biological discovery.</a> Nat Chem Biol. 9 (8), 475-484 (2013).</li>
<li>Prescher, J. A., Bertozzi, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemistry+in+living+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Chem+Biol%22%5BJournal%5D)">Chemistry in living systems.</a> Nat Chem Biol. 1 (1), 13-21 (2005).</li>
<li>Sletten, E. M., Bertozzi, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioorthogonal+chemistry%3A+fishing+for+selectivity+in+a+sea+of+functionality%5BTitle%5D)+AND+%22Ange+Chemie+%28Int+Ed.+Engl%29%22%5BJournal%5D)">Bioorthogonal chemistry: fishing for selectivity in a sea of functionality.</a> Ange Chemie (Int Ed. Engl). 48 (38), 6974-6998 (2009).</li>
<li>Chang, P. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabolic+labeling+of+sialic+acids+in+living+animals+with+alkynyl+sugars%5BTitle%5D)+AND+%22Ange+Chemie+%28Int+Ed.+Engl%29%22%5BJournal%5D)">Metabolic labeling of sialic acids in living animals with alkynyl sugars.</a> Ange Chemie (Int Ed. Engl). 48 (22), 4030-4033 (2009).</li>
<li>Gilormini, P. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+sequential+bioorthogonal+dual+strategy%3A+ManNAl+and+SiaNAl+as+distinct+tools+to+unravel+sialic+acid+metabolic+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Commun%22%5BJournal%5D)">A sequential bioorthogonal dual strategy: ManNAl and SiaNAl as distinct tools to unravel sialic acid metabolic pathways.</a> Chem. Commun. 52 (11), 2318-2321 (2016).</li>
<li>Mbua, N. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Abnormal+accumulation+and+recycling+of+glycoproteins+visualized+in+Niemann-Pick+type+C+cells+using+the+chemical+reporter+strategy%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Abnormal accumulation and recycling of glycoproteins visualized in Niemann-Pick type C cells using the chemical reporter strategy.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 110 (25), 10207-10212 (2013).</li>
<li>Anderson, C. T., Wallace, I. S., Somerville, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabolic+click-labeling+with+a+fucose+analog+reveals+pectin+delivery%2C+architecture%2C+and+dynamics+in+Arabidopsis+cell+walls%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Metabolic click-labeling with a fucose analog reveals pectin delivery, architecture, and dynamics in Arabidopsis cell walls.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (4), 1329-1334 (2012).</li>
<li>Tobimatsu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+click+chemistry+strategy+for+visualization+of+plant+cell+wall+lignification%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Commun%22%5BJournal%5D)">A click chemistry strategy for visualization of plant cell wall lignification.</a> Chem. Commun. 50 (82), 12262-12265 (2014).</li>
<li>Bukowski, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+clickable+designer+monolignol+for+interrogation+of+lignification+in+plant+cell+walls%5BTitle%5D)+AND+%22Bioconjugate+Chem%22%5BJournal%5D)">Development of a clickable designer monolignol for interrogation of lignification in plant cell walls.</a> Bioconjugate Chem. 25 (12), 2189-2196 (2014).</li>
<li>Pandey, J. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+versatile+click-compatible+monolignol+probe+to+study+lignin+deposition+in+plant+cell+walls%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+ONE%22%5BJournal%5D)">A versatile click-compatible monolignol probe to study lignin deposition in plant cell walls.</a> PLOS ONE. 10 (4), e0121334(2015).</li>
<li>Pandey, J. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Investigating+biochemical+and+developmental+dependencies+of+lignification+with+a+click-compatible+monolignol+analog+in+Arabidopsis+thaliana+stems%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Plant+Sci%22%5BJournal%5D)">Investigating biochemical and developmental dependencies of lignification with a click-compatible monolignol analog in Arabidopsis thaliana stems.</a> Front Plant Sci. 7, (2016).</li>
<li>Zhu, Y., Wu, J., Chen, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabolic+labeling+and+imaging+of+N-linked+glycans+in+Arabidopsis+thaliana%5BTitle%5D)+AND+%22Ange+Chemie+%28Int+Ed.+Engl%29%22%5BJournal%5D)">Metabolic labeling and imaging of N-linked glycans in Arabidopsis thaliana.</a> Ange Chemie (Int Ed. Engl). 55 (32), 9301-9305 (2016).</li>
<li>Boerjan, W., Ralph, J., Baucher, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lignin+biosynthesis%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Plant+Biol%22%5BJournal%5D)">Lignin biosynthesis.</a> Annu Rev Plant Biol. 54, 519-546 (2003).</li>
<li>Weng, J. -K., Chapple, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+origin+and+evolution+of+lignin+biosynthesis%5BTitle%5D)+AND+%22New+Phytol%22%5BJournal%5D)">The origin and evolution of lignin biosynthesis.</a> New Phytol. 187 (2), 273-285 (2010).</li>
<li>Mottiar, Y., Vanholme, R., Boerjan, W., Ralph, J., Mansfield, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Designer+lignins%3A+harnessing+the+plasticity+of+lignification%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Designer lignins: harnessing the plasticity of lignification.</a> Curr Opin Biotechnol. 37, 190-200 (2016).</li>
<li>Rinaldi, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Paving+the+way+for+lignin+valorisation%3A+recent+advances+in+bioengineering%2C+biorefining+and+catalysis%5BTitle%5D)+AND+%22Ange+Chemie+%28Int+Ed%29%22%5BJournal%5D)">Paving the way for lignin valorisation: recent advances in bioengineering, biorefining and catalysis.</a> Ange Chemie (Int Ed). 55 (29), 8164-8215 (2016).</li>
<li>Wratil, P. R., Horstkorte, R., Reutter, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabolic+glycoengineering+with+N-acyl+side+chain+modified+mannosamines%5BTitle%5D)+AND+%22Ange+Chemie+%28Int+Ed.+Engl%29%22%5BJournal%5D)">Metabolic glycoengineering with N-acyl side chain modified mannosamines.</a> Ange Chemie (Int Ed. Engl). 55 (33), 9482-9512 (2016).</li>
<li>Feng, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bifunctional+unnatural+sialic+acids+for+dual+metabolic+labeling+of+cell-surface+sialylated+glycans%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Chem+Soc%22%5BJournal%5D)">Bifunctional unnatural sialic acids for dual metabolic labeling of cell-surface sialylated glycans.</a> J Am Chem Soc. 135 (25), 9244-9247 (2013).</li>
<li>Dumont, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plant+cell+wall+imaging+by+metabolic+click-mediated+labelling+of+rhamnogalacturonan+II+using+azido+3-deoxy-+d+-+manno+-oct-2-ulosonic+acid%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+J%22%5BJournal%5D)">Plant cell wall imaging by metabolic click-mediated labelling of rhamnogalacturonan II using azido 3-deoxy- d - manno -oct-2-ulosonic acid.</a> Plant J. 85 (3), 437-447 (2016).</li>
<li>Niederwieser, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two-color+glycan+labeling+of+live+cells+by+a+combination+of+Diels-Alder+and+click+chemistry%5BTitle%5D)+AND+%22Ange+Chemie+Int+Ed%22%5BJournal%5D)">Two-color glycan labeling of live cells by a combination of Diels-Alder and click chemistry.</a> Ange Chemie Int Ed. 52 (15), 4265-4268 (2013).</li>
<li>Späte, A. -K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exploring+the+potential+of+norbornene-modified+mannosamine+derivatives+for+metabolic+glycoengineering%5BTitle%5D)+AND+%22Chem+Bio+Chem%22%5BJournal%5D)">Exploring the potential of norbornene-modified mannosamine derivatives for metabolic glycoengineering.</a> Chem Bio Chem. 17 (14), 1374-1383 (2016).</li>
<li>Späte, A. -K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+Labeling+of+metabolically+engineered+cell-surface+glycoconjugates+with+a+carbamate-linked+cyclopropene+reporter%5BTitle%5D)+AND+%22Bioconjugate+Chem%22%5BJournal%5D)">Rapid Labeling of metabolically engineered cell-surface glycoconjugates with a carbamate-linked cyclopropene reporter.</a> Bioconjugate Chem. 25 (1), 147-154 (2014).</li>
<li>Lion, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((BLISS%3A+a+bioorthogonal+dual-labeling+strategy+to+unravel+lignification+dynamics+in+plants%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Chem+Biol%22%5BJournal%5D)">BLISS: a bioorthogonal dual-labeling strategy to unravel lignification dynamics in plants.</a> Cell Chem Biol. 24 (3), 326-338 (2017).</li>
<li>del Río, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+characterization+of+guaiacyl-rich+lignins+in+flax+%28Linum+usitatissimum%29+fibers+and+shives%5BTitle%5D)+AND+%22J+Agric+Food+Chemist%22%5BJournal%5D)">Structural characterization of guaiacyl-rich lignins in flax (Linum usitatissimum) fibers and shives.</a> J Agric Food Chemist. 59 (20), 11088-11099 (2011).</li>
<li>Huis, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Natural+hypolignification+is+associated+with+extensive+oligolignol+accumulation+in+flax+stems%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Natural hypolignification is associated with extensive oligolignol accumulation in flax stems.</a> Plant Physiol. 158 (4), 1893-1915 (2012).</li>
<li>Chantreau, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ectopic+lignification+in+the+flax+lignified+bast+fiber1+mutant+stem+is+associated+with+tissue-specific+modifications+in+gene+expression+and+cell+wall+composition%5BTitle%5D)+AND+%22The+Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">Ectopic lignification in the flax lignified bast fiber1 mutant stem is associated with tissue-specific modifications in gene expression and cell wall composition.</a> The Plant Cell. 26 (11), 4462-4482 (2014).</li>
<li>Terashima, N., Ko, C., Matsushita, Y., Westermark, U. <a target="_blank" href="https://www.degruyter.com/view/j/hfsg.2016.70.issue-9/hf-2015-0224/hf-2015-0224.xml">Monolignol glucosides as intermediate compounds in lignin biosynthesis. Revisiting the cell wall lignification and new 13C-tracer experiments with Ginkgo biloba and Magnolia liliiflora.</a> Holzforschung. 70 (9), 801-810 (2016).</li>
<li>Noel, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Probing+the+CMP-sialic+acid+donor+specificity+of+two+human+%CE%B2-d-galactoside+sialyltransferases+%28ST3Gal+I+and+ST6Gal+I%29+selectively+acting+on+O-+and+N-glycosylproteins%5BTitle%5D)+AND+%22Chembiochem%3A+Eur+J+Chem+Biol%22%5BJournal%5D)">Probing the CMP-sialic acid donor specificity of two human β-d-galactoside sialyltransferases (ST3Gal I and ST6Gal I) selectively acting on O- and N-glycosylproteins.</a> Chembiochem: Eur J Chem Biol. , (2017).</li>
</ol>

Yazarlar onlar rakip hiçbir mali çıkarları var bildirin.

Daha önce belirtildiği gibi bu raporda sunulan çift etiketleme BLISS bir SPAAC/CuAAC kombinasyon vivo içinde12,23ilk örneklerinden biri protokoldür. Her adım iyice optimize edilmiş ve onaylanmış ve içinde iki etiketleme reaksiyonlar sırayla gerçekleştirilen kimya tıklatın sipariş saygı çok önemlidir (yani, SPAAC ilk, takip CuAAC tarafından). Tüm çapraz denetimleri BLISS Protokolü uygulanan23 olduğunda etiketleme her adım belirli olduğunu gösterdi: SPAAC adım taşıyan ilk yüksek chemoselective yol HAZ azid işlevleri tarafından etiketlerine göre cyclooctyne functionalized fluorophore hızlı kinetiği ile [3 + 2] cycloaddition reaksiyonu yoluyla. HAZ birimleri etiketlendikten sonra triazole bağlantılar tarafından tepki ile azid fluor 545 probe oluşturmak için GALK terminal alkynes aktivasyonu katalize copper(I) gerektiren CuAAC adım yapılabilir. Buna karşılık, ters sırada (yani, CuAAC ilk, takip SPAAC tarafından) GALK ve HAZ birimine yol açar gibi kullanılmamalıdır fluorophore ligasyonu ile birlikte buz dansında yarışmaktadır ve dramatik bir sinyal kaybı indükler çapraz-bağlantı . Non-spesifik boyama önlemek için ara çamaşır adımlar gerekliliğini vurgulamak önemlidir.
Biz bizim yöntem çeşitli biyolojik deney tasarımları için uygulanabilir olduğunu göstermiştir. İletişim kuralı etiketleme BLISS ilk serbest kesit önceden kesilmiş ve tıklayın hazır monolignols ile inkübe keten kaynaklanıyor (yaklaşık 150-250 µm kalınlığında) uygulandı. Bu tasarım gibi (kuluçka birimleri azaltılır) kimyasal muhabir gerekli miktarda en aza indirilmesi ve istatistiksel çoğaltır üretimini kolaylaştırmak avantajı olmasına rağmen bu kesinlikle bahsetmişken, bir vivo içinde sistem değil ve bazı durumlarda, değil gerçek spatio-temporal lignification dynamics tüm yönleriyle yansıtabilir. Bir ikinci deneysel tasarım, bu nedenle daha önce çam ve gingko27' deki radiolabeled monolignols birleşmesiyle çalışmak için kullanılan bir yöntem BLISS protokole uyarlanmış. Bu yaklaşımda, kökler ve kök bitki fiziksel olarak ayrılır ve tüm kök tabanı ne 'çiçek vazo' yaklaşım lakaplı içinde monolignol çözümünde inkübe. Sapları istediğiniz (kuluçka) zaman ayrıldıktan sonra kesit kesim ve gerçekleştirilen BLISS Protokolü vardır. Bu değiştirilmiş monolignols yaşayan kök taşınır ve lignin polimerler hücre duvarları içinde büyüyen dahil edilmiştir (i) olduğunu ve yerelleştirme modeli esas kesit için özdeş (II) olduğunu göstermek bize izin yaklaşım. Bu tür bir deney bir gerçek yaşam tesisinde gerçekleştirilen hak vardır / canlı hücre uzun deneyler ve daha ayrıntılı çalışmalar izin yaklaşım, ama kimyasal muhabir büyük miktarda gerektirir. Son olarak, BLISS protokolü de Keten bitki Fidan, bir gerçek yaşam içinde kimyasal gazetecilere kadar kök nakli önce kökleri absorbe olması gerekir bitki modeli temsil eden ile kullanıldı. Bu model uygulamada, yaşam tesislerinde gerçekleştirilen açık avantajı ise genç fidan sınırlıdır ve lignification dynamics büyük tesislerinde pratik nedenlerle (uzun bir kuluçka süresi, yükseltilmiş soruşturma için gerçekten uygun değildir ««kimyasal gazetecilere miktarı). Yine de, bu üç deney tasarımları tamamlayıcı niteliktedir ve tüm kendi artıları ve eksileri ile ilgili pratik yönleri ve biyolojik soru cevap türüne bağlı olarak biyolojik önemi var.
Keten lignification dinamiklerini incelemek için geliştirilen, bizim protokol son derece uyarlanabilir, sadece biyolojik deney tasarımı açısından aynı zamanda diğer uygulama açısından bitki tür ve organ/doku. Örneğin, BLISS kolayca Arabidopsis ya da daha fazla çalışmalar çeşitli genler için knock-out veya knock-down mutantlar ile mükellef bulunmaktadır Populus cins için transfer edilebilir. Prensip olarak, bizim yaklaşım ile çift etiketleme çalışmaları da diğer biomolecules için bitki hücre duvarı polimerler - tüm üç ana monolignols veya metabolik onların öncüleri olarak çeşitli de dahil olmak üzere iki ayrı değiştirilmiş öncüleri kullanarak uzatılabilir polisakkarit matris oluşturan bol. Kuruluşundan bu yana, bioorthogonal kimya gerçekten de esas olarak glukanlardir/polisakkaritler metabolik oligosakkarit mühendislik (MOE)4,5,17,28üzerinden araştırmak için geliştirilmiştir, Ama şaşırtıcı olmuştur sadece biyoloji bitki için çok az uygulamaları defa7,8,9,10,11,12. Tepkiler uyumluluk açısından, lignin ve çalışma gerçekten her iki kimyasal gazetecilere aynı retiküle polimer dahil edilmiştir gibi çözmek için karışık bir vaka oldu. Etiketlenmemiş HAZ- olasılığıGALK kullandığında oluşumu GALK ve HAZ birimleri 3D içinde kayma yakınlığı nedeniyle üstesinden gelmek için büyük bir sorun oldu. lignin23, iki kimyasal gazetecilere değil dahil edilmiştir Eğer biyopolimer aynı tür veya verilen herhangi bir hücreyi aynı kayma bölgesi olmayabilir bir sınırlama yapısını.
Daha geniş bir kapsamda BLISS metodoloji aslında iki farklı kimyasal gazetecilere taşıyan bir azid ve terminal ALKİN etiketi, sırasıyla kullanarak bakteriyel veya hayvan modellerinde herhangi bir iki renkli floresan görüntüleme çalışma için uygulanabilir.

Son iki yılda, kimyasal muhabir strateji dynamics ve sigara-genetik olarak kodlanmış biomolecules fonksiyonlarını araştırmak için güçlü iki aşamalı metodoloji ortaya çıkmıştır. 1 , 2 , 3 bu strateji küçük modülasyon- kimyasal muhabir -ilgiyle biomolecule sentetik bir analog ilk canlı organizma ve sonra kimyasal bir sonda metabolize (örn., bir fluorophore floresan için confocal mikroskobu görüntüleme) kovalent anonim muhabiri bioorthogonal tıklayın kimya yoluyla bağlanır. Sonda hızla ve özellikle tepki gerekir herhangi bir biomolecules yaşam sistemde, inert olurken tanıtılan kimyasal değişiklik ile. Birçok yönden, bu yöntem çok özel tıklayın kimya d böylece metabolitleri veya önceden ulaşılmaz biomacromolecules izlemek için fırsat sağlayan kullanımı ile ortak bioconjugation teknikleri ile ilgili sınırlamalar üstesinden gelir yaşayan sistemler4,5,6.
Bakteri ve hayvan hücrelerinde güçlü Bu yöntem hızlı büyüyen popülerlik rağmen şaşırtıcı derecede az ve çok7arasında,8,9,10kullanımı bitki Biyoloji açıklayan raporlar, 11,12. Bu strateji lignin, gezegendeki en yaygın biyopolimer biri ve lignocellulosic biyokütle önemli bir bileşeni oluşumu eğitim tesislerinde uygulama özellikle ilgilenmişlerdir. 13 , 14 lignin geliştirme ve hayat daha yüksek bitkilerin önemli bir yapısal ve koruyucu rol oynar Bakalit bir polimerdir.
Genellikle üç 4-hydroxyphenylpropanoid moieties oluşmaktadır: H (p- hydroxyphenyl), G (guaiacyl) ve S (syringyl) birimler sırasıyla üç türetilmiş olan 'monolignols' (p- coumaryl, coniferyl ve sinapyl alkoller) (şekil 1) hücrenin sitoplazmada phenylpropanoid yolu üzerinden sentezledim. Hücre duvarı ihraç edilmekte, monolignols okside peroxidases veya laccases sonra onlar kimyasal radikal kaplin tepkiler lignin polimerler için polimerize geçmesi radikaller için bir işlemi olarak lignification. 15 , 16 lignins güçlü birçok bitki kaynaklı sanayi valorization etkisi rağmen ürünler, bilimsel topluluk hala vardır lignification düzenleyen karmaşık mekanizmaları deşifre etmek için gitmek için uzun bir yol.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56947/56947fig1.jpg"> Şekil 1: bitki hücreleri lignification işleminde. Monolignols uzarlar fenilalanin sitozol içinde gelen vardır. Hücre duvarı ihraç edilmekte, monolignols okside peroxidases veya laccases sonra onlar kimyasal radikal kaplin tepkiler lignin polimerler için polimerize geçmesi radikaller için bir işlemi olarak lignification. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56947/56947fig1large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
Bioorthogonal reaksiyonlar kullanım için glycan analiz raporları çeşitli olmakla birlikte,2,3,17 biomolecules diğer türleri için kendi uygulama örnekleri daha az. Bioorthogonal kimya lignin bioimaging amaçlar için kullanımı ancak son zamanlarda Tobimatsu ve ark. tarafından öncülük 8 ' Arabidopsis thaliana nereye G birimleri, böylece kavram kanıtı gösteren8,9 formları lignin polimer alkol vekilleri coniferyl birleşme hakkında bilgi sağlamak için bu kimyasal muhabir stratejileri bu bağlamda geçerlidir. CuAAC kullanımı da farklı coniferyl alkol türev kullanarak bir kaç ay sonra Bukowski ve arktarafından betimlenir. 9 lignin ancak, ayrıca H ve S birimleri içerir ve lignification işlemi daha derin bir anlayış nasıl tüm monolignols polimer dahil edilmiştir hakkında daha fazla bilgi gerektirir ve ne faktörler kompozisyonunu kontrol edebilirsiniz. Bu alandaki yeni gelişmeler şu anda birden fazla kimyasal gazetecilere aynı anda yaşayan sistemler içinde izlemek için etkili yöntemler geliştirilmesi bağlıdır. Glukanlardir üzerinde bir kaç makale son yıllarda18,19',zemin koydu olsa bile20,21,22, yaklaşımlar etiketleme çift kalır içinde büyük bir meydan okuma bioorthogonal Kimya. Bir tekrarlanabilir tek etiketleme tıklayın Protokolü geliştirmek zor, o zaman çift karşılıklı iki tandem optimizasyonu gerektirir yaklaşımlar etiketleme ise iki ayrı kimyasal gazetecilere uyumlu bioorthogonal reaksiyonlar daha da zor. Bu yönü öncülük birkaç örnekler zorlanma terfi azid-ALKİN cycloaddition (SPAAC) ve alkene-tetrazine ters elektronik talep Diels-Alder (DAInv) reaksiyonları glukanlardir hayvan hücrelerinde çalışırdım. Ancak, biz DAinv tepki bioorthogonality (oluşan elektron-fakirlerle tepki verebilir yerine konan cinnamyl türü-elektron zengini monomerleri lignin ve yapısal özellikleri sayesinde bu uygulamada garanti değil olduğunu düşündüm Hava Dienes DAinv tepkileri kullanılan tetrazine sondalar gibi) ve bu belirsiz etiketleme oluşturabilir. Ayrıca, erişim, hem de için hantal ve böylece olasılığını yükseltmek lipofilik sentetik zor olan kimyasal kolları DAInv tepki gerektirir bu birleşme, taşıma ve/veya kimyasal yerelleştirilmesini oranı muhabir vivo içinde etkilenip etkilenmedikleri sınanmamıştır. Biz ikinci yönü özellikle lignification çalışmak için bir tıklama kimya yaklaşım söz konusu olduğunda ilgili olarak kabul olarak, farklı yönde seçti ve bir Bioorthogonal tüp ligasyonu Imaging sıralı strateji (mutluluk) kullanılarak geliştirilmiş bir Strain-Promoted azid ALKİN Cycloaddition (SPAAC) ve bakır katalizörlük azid ALKİN Cycloaddition (CuAAC) içinde vivo. 23
Bu iki tepkiler gerçekten iki ana bioorthogonal'ı tıklatın bugüne kadar kullanılan reaksiyonlar ve lignin ve birkaç örnek daha özellikle bu Imaging Yayınlandı son zamanlarda vardır. 8 , 9 çift etiketleme stratejimiz sağlar bir azid yan bir monolignol muhabiri ve terminal ALKİN diğer i) biyolojik ilgili yapıların doğru tepkisizdir ve II) çok küçük boyutlu (Şekil 2 iki kimyasal işleme ). Sonuç olarak, sentetik modifikasyonlardan altında eğitim biomolecule fizikokimyasal özellikleri üzerinde etkisi böylece taşıma açısından doğal olmayan ve doğal monolignol yüzeyler arasındaki olası tutarsızlıkları azaltmak küçültülür ve metabolization gore metabolik birleşme adım sırasında. SPAAC ve CuAAC ile birlikte ilk bakışta çok sezgisel görünüyor, bizim bilgi yapıları glukanlardir dışında bu strateji ve ilk uygulamasını kullanarak ikili işaretleme sadece ikinci örneği olsa da. 12 , 23
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56947/56947fig2.jpg"> Şekil 2: BLISS strateji etiketleme ikili. Kimyasal gazetecilere HAZ ve GALK yerel H ve G monolignols tagged analogları vardır. Onlar ilk eksojen (Adım 1) besleme tarafından hücre duvarları büyüyen lignin polimerler dahil edilmiştir. Cyclooctyne - ve azid-floresan problar o zaman sırayla bakmaksızın anonim gazetecilere bioorthogonal tarafından functionalized kimya tıklatın: SPAAC reaksiyon (Adım 2) HAZ birimlerinin çok özel ve bir CuAAC reaksiyon (tarafından takip edilir 3. adım) GALK birimleri (Adım 3), belirli böylece her iki gazeteci belirli yerelleştirme izin bağımsız olarak aynı örnek. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56947/56947fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
Biz öncelikle tasarlanmış ve azid öğesini monolignol muhabir HAZ (vekil p- coumaryl alkol) ve lignin H birimleri habercisi doğrulanmış ve BLISS çift etiketleme stratejisi içinde kullanılan ile tandem tasarladı daha önce ALKİN öğesini GALK,9 (vekil coniferyl alkol) ve lignin G birimleri habercisi bildirdi. Geliştirilen ve keten içinde test tekrarlanabilir bu protokol için bir ekonomik açıdan önemli bitki türleri, HAZ ve GALK çift metabolik birleşme lignin içine ilk sıralı SPAAC/CuAAC önce elde edilir etiketleme. Burada, tagged HAZ birimleri ilk özellikle yolu ile etiketlenmiş GALK CuAAC-aracılı ligasyonu ikinci bir floresan inceleyebilirsek tarafından takip bir cyclooctyne functionalized fluorophore SPAAC ligasyonu etiketlenir birimleri. Bu yöntem lignification süreçleri bitki hücre duvarları içinde dinamikleri araştırmak için kullanılan ve kesitler, fidan farklı bitki türlerinin yanı sıra kaynaklanıyor yaşayan durdurması için uygulanan vivo içinde olabilir.

<table><tbody><tr><td>(E)-4-(3-(2-(2-(2-azidoetoksi)etoksi)etoksi)prop-1-en-1-il)fenol (<güçlü>HAZ)</td><td></td><td></td><td>Lion'da olduğu gibi sentezlenir et al. Cell Chem. Biol. 2017, 24, 3, 326-338</td></tr><tr><td>(E)-4-hidroksi-3-proparjilinoksisinnamil alkol (<güçlü>GALK</güçlü>)</td><td></td><td></td><td>Lion et al. Cell Chem. Biol. 2017, 24, 3, 326-338</td></tr><tr><td>2% sodyum hipoklorit</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>20 cm yüksekliğinde cam tüp</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>250 mL Schott cam şişe</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>48 kuyulu Plaka</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>5/6-TAMRA-PEG3-Azide</td><td>Jena Bioscience</td><td>CLK-AZ109-1</td><td></td></tr><tr><td>Alüminyum folyo</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tülbent</td><td></td><td></td><td></td>Kil</tr><tr><td>içeren</td><td></td><td></td><td></td>kompost</tr><tr><td>Koniferil alkol (<güçlü > G < / güçlü >)</td> <td>Sigma Aldrich</td><td>MFCD00002922</td><td></td></tr><tr><td>Bakır (II) sülfat pentahidrat</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>DBCO-PEG4-5 / 6-Karboksirodamin 110</td><td>Jena Biyobilim</td><td>CLK-A127-1</td><td></td></tr><tr><td>Milli-Q Ultra saf su</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Eppendorf 1,5 mL</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>EtOH</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Keten tohumu (L. usitatissimum L.)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fluoromount-G ve ticaret; Slayt Montaj Ortamı Elektron</td><td>Mikroskobu Bilimleri</td><td>17984-25</td><td></td></tr><tr><td>Cam lamel</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cam mikroskop slaytı</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Büyüme odası</td><td>CLF-Bitki İklimleri</td><td></td><td>2 haftalık bitki kültürü için</td></tr><tr><td>Büyüme odası</td><td>Angelantoni Yaşam Bilimleri</td><td></td><td>2 aylık bitki kültürü</td></tr><tr><td>için Eflatun bitki kültür kutusu</td><td></td><td></td><td>2 haftalık fide kültürü için</td></tr><tr><td>Metanol</td><td></td><td></td><td>Toksik (SGH02, SGH06, SGH08), kaputun altında eldivenlerle çalışın</td></tr><tr><td>Mikropipet</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Oje</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nikon A1R konfokal mikroskop</td><td>Nikon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Orbital çalkalayıcı</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Parafilm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>p-Kumaril alkol (<güçlü>H</güçlü>)</td><td>Karbosynth</td><td>FC145653</td><td></td></tr><tr><td>Plastik kapak</td> Plastik pipet <td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plastik kap</td><td></td><td></td><td>2 aylık bitki kültürü için</td></tr><tr><td>Jiletli</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>bıçak Lastik bant</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sodyum Askorbat</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Steril kelepçe</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dikey destek</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vorteks</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>< güçlü > Sıvı ve katı için reaktifler &frak12; MS orta</güçlü></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>KH2PO4</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>KNO3</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>NH4NO3</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>MgSO4.7H2O</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>CaCl 2.2H2O</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>MnSO4. H2O</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ZnSO4.7H2O</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>H3BO3</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>KI</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Na2MoO4.2H2O</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>CuSO4.5H2O</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>CoCl2.6H2O</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Na2EDTA.2H2O</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>FeSO4.7H2O</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tiamin.HCl</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Piridoksin.HCl</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Glisin</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nikotinik asit</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Miyo-inositol</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sakkaroz</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>MES hidrat</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Agar</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

lignification dynamics ile tıklatın kimya tesislerinde görselleştirme: Çift etiketleme bliss olduğunu!

Visualizing Lignification Dynamics in Plants with Click Chemistry: Dual Labeling is BLISS!

Lignin gezegendeki en yaygın biyopolimer ve lignocellulosic biyokütle önemli bir bileşeni biridir. Bu fenolik polimer geliştirme ve hayat daha yüksek bitkilerin önemli bir yapısal ve koruyucu rol oynar. Her ne kadar kuvvetle lignification süreçleri içinde vivo düzenleyen karmaşık mekanizmalar endüstriyel valorization birçok bitki elde edilen ürünlerin etkisi, bilimsel topluluk hala onları deşifre etmek için gitmek için uzun bir yol var. Basit bir üç adım akışında aktif bölgeleri bitki dokuların lignifying bioimaging çalışmaları burada sunulan çift etiketleme iletişim kuralı sağlar. İlk adım iki bağımsız kimyasal gazetecilere, lignin H ve G birimleri ortaya çıkmasına iki yerli monolignols vekilleri metabolik birleşmesiyle oluşur. Lignin polimerler büyüyen içine birleşme sonra her muhabir sonra özellikle kendi floresan sonda bioorthogonal SPAAC/CuAAC tıklayın reaksiyonlar sıralı kombinasyonu ile taşır. Lignin autofluorescence ile birlikte, bu yaklaşım ve lignin bitki hücre duvarları içinde üç renkli yerelleştirme haritaların üretimi confocal floresan mikroskopi tarafından yol açar ve etkin durumunda kesin mekansal bilgi sağlar lignification makine bitki doku, hücre ve farklı hücre duvarı katmanları ölçekte.

Sentetik monolignol analogları ve bioorthogonal ilgili sunulan BLISS protokolünü kullanarak kimya tıklatın, yaşayan bitkiler lignification sürecinde dinamikleri görselleştirmek mümkündür. (Histochemical boyama, immunolocalization veya autofluorescence gibi), bu 'çift tıklayın' protokolü sadece görselleştirme lignin için kurulan teknikleri aksine metabolik birleşme sırasında üretilen lignin de novo hedefler adım ve confocal Floresans mikroskobu (şekil 3) üç kanallı hücresel görüntüleme ile örnek önceden varolan lignin dan ayırır. H AZ-birimleri DBCO-PEG4-5 uyarma ve emisyon dalga boylarında kullanarak algılanır/6-özellikle azid fonksiyonları tıklandığında carboxyrhodamine 110 dahil HAZ molekülleri SPAAC adım (λex sırasında 501 nm /λem 526 nm, yeşil kanal), oysa GALK-birimleri aynı şekilde özel olarak G anonim terminal ALKİN Etiketler tıklandığında azidefluor 545 inceleyebilirsek karakteristik dalga boylarında, tespit ALK CuAAC adımı (λex 546 nm /λem 565 nm, kırmızı kanal); Üçüncü kanal 405 kendi içsel autofluorescence kullanarak algılanır önceden varolan lignin karşılık gelen nm (mavi kanal). Bu yaklaşım üç renkli yerelleştirme haritalar ve lignin varlığı kesin mekansal bilgi sağlar bitki hücre duvarları içinde ya da aktif lignification makine yokluğu nesil bir organ (şekil 3A farklı dokular arasında açar. ), farklı hücre tipleri aynı doku (şekil 3B-C) ve (şekil 3D) aynı hücrenin farklı duvar katmanları arasında. Başka bir deyişle, bu metodoloji bize vurgulayın ve özellikle 'etkin' lignification siteleri (HAZ ve GALK kanalları) yerelleştirmek onları nerede lignin bir önceki kuruldu bölgelerdeki ayırt sağlar bitki gelişiminin (autofluorescence kanal) aşamasında. Buna ek olarak, teknik duyarlılığını autofluorescence için karşılaştırıldığında önemli ölçüde geliştirilmiş ve çok daha küçük miktarda taze sentezlenmiş lignin olabilir (şekil 3B) algıladı.
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56947/56947fig3.jpg"> Şekil 3: keten kaynaklanıyor anonim monolignol kimyasal gazetecilere Imaging. (A)bir el yapımı enine bölümünü keten bir kök yeniden oluşturulan resmi yarısı. (B) xylem ayırt ilk katmanları Close-up. Paneli yaptı: lignin autofluorescence (mavi, 405 nm), Orta paneli: birleştirilmiş lignin autofluorescence (mavi) ve HAZ floresan (yeşil, 526 nm) kanallar, doğru kapı aynası: birleştirilmiş lignin autofluorescence (mavi) ve GALK floresan (kırmızı, 565 nm) kanalları. Ok autofluorescence ile karşılaştırıldığında BLISS artan duyarlılık gösteren cambium ilk etiketli hücre duvarından gösterir. (C) etiketleme farklı hücre farklı katmanları aynı hücre duvarı etiketleme değişimler gösteren ikincil xylem hücreleri üzerinde ikincil xylem ve (D) yakın çekim. Paneli yaptı: birleştirilmiş lignin autofluorescence (mavi) ve HAZ floresan (yeşil, 526 nm) kanallar, Orta paneli: birleştirilmiş lignin autofluorescence (mavi) ve GALK floresan (kırmızı, 565 nm) kanallar, sağ Panel: birleştirilmiş lignin autofluorescence (mavi), HAZ (yeşil) ve GALK (kırmızı) floresan kanalları. HAZ ve GALK co yerelleştirme sarı renk ile tasvir edilir. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56947/56947fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
Burada sunulan BLISS yöntemi veya daha önce Tobimatsu vd tarafından Yayınlanan tek etiketleme yordamlar gibi kimyasal muhabir stratejileri 8 bu nedenle IMMUNO - veya histochemical uygulanması çok kolay olurken boyama gibi daha önce erişilebilir yöntemlerine göre çok ince bir çalışma izin verebilirsiniz. Örneğin, şekil 4 göstermektedir HAZsinyal yoğunluğu /GALK birleşmesiyle keten ikincil xylem fiber tracheids/damarlarının (FT) cambium gelen ilk birkaç hücre duvarları içinde çok yüksek ama büyük hücrelerde giderek azalır. Bu profil bu autofluorescence karşısında ve en çok o lignification çok hızlı bir şekilde cambium gelen ilk 2-3 FT hücre katmanlarında ulaşıldığında gösterir. Buna ek olarak, daha sonraki aşamaları için lignification olarak HAZonların gelişimi devam etmek için ray (R) hücreleri görünür /GALK birleşme olduğunu çok daha sürekli cambium ilik için hücre duvarlarında. Bu hücre türleri farklı biyolojik rolleri ile ilişkili farklılıklar kendi gelişim programında beri FT ve R hücre türleri tezat lignification dinamikleri, görüntüler şaşırtıcı değil. FTs olgun ve hızlı bir şekilde ölmek gerçekten uzun tüpler, kalın lignified duvarlı R dar satırlarının hücreleri ise bu mekanik destek ve su ve mineraller, dikey taşıma önemli rol oynarlar bırakarak ölü boş hücreler xylem oluşturmak ışınları olgun ve fonksiyonel durumlarında kalın lignified duvarlar kalmadan hayattasın.
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56947/56947fig4.jpg"> Şekil 4: hücre özgü monolignol muhabir birleşme keten xylem. Keten bir kök serbest bir kesitin parçası Bright-alan confocal mikroskobu görünümünü(a). Pembe (ray parankimi hücreleri, R) ve sarı (fiber tracheid hücreleri, FT) okları gösterir vektörler ilik doğru cambial bölgeden yayılan ve lignin autofluorescence 405, taranan nm (B), HAZ Floresans 526, nm (C) ve G ALK Floresan, 565 nm (D). İkincil xylem (E) görünümü. Paneli yaptı: birleştirilmiş lignin autofluorescence (mavi), HAZ (yeşil) ve GALK (kırmızı) floresan kanalları. HAZ ve GALK co yerelleştirme sarı renk ile tasvir edilir. Doğru kapı aynası: keten kök ikincil xylem yapısındaki şematik gösterimi. V, gemi; FT, fiber tracheid; R, ray parankimi hücre. Bu rakam aslan ve ark. değiştirildi 23 <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56947/56947fig4large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
Buna ek olarak, iki farklı kimyasal gazeteciler için H - ve G-birimleri BLISS protokolündeki iki bioorthogonal reaksiyonlar ile karşılık gelen kullanımı daha fazla nicel sonuçları elde sağlar. BLISS ek anlayışlar birleşme oranları çeşitli koşullarda monolignol kontrolünü sağlayabilir ve zor lignification işleminin deşifre için katkıda bulunabileceğini gibi stratejileri etiketleme multiplexed. Lignins H, G ve S monolignols, göreli yüzdelerini gerçekten çok tür, doku, yaş veya bitki çevre koşullarına göre değişken ise, bu kompozisyon düzenleyen karmaşık mekanizmaları hala tamamen anlaşılır. Çift etiketleme teknolojisi lignin kompozisyon düzenleyen parametrelerden bazıları soruşturma güçlü bir şekilde temsil eder. Örneğin, HAZdeğişen: GBLISS ileALK oranı bize lignin kompozisyon ikincil xylem dokularda monolignol durumu hücre duvarları içinde yerine üzerine doğrudan bağlı olduğunu göstermek için izin peroksidaz/Lakkaz özgüllük (şekil 5).
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56947/56947fig5.jpg"> Şekil 5: farklı yüzde oranları ile keten kök bölümlerini HAZ ve GALKkuluçka etkisi. HAZ: GALK% oranları rakamlar her sütun verilmiştir. Top: HAZ ve GALK kanalları birleştirilir. Alt: HAZ ve GALK farklı % oranları için ortalama Floresans yoğunluğunu gösteren çubuk grafikler. Değerleri gri düzeyleri ± SD ölçek ortalama Floresans şiddeti ortalaması olarak ifade edilen çubuk 100 µm. = bu rakam aslan ve ark. değiştirildi 23 <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56947/56947fig5large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
Keten, tekstil, lüks evrak ya da çevre dostu kompozit malzemeler üretimi için kullanılan lif için (BF) büyüyor. Onların endüstriyel valorization önemli bir yönünü lignin bir son derece kalın S2/G ikincil katman19,24tarafından karakterize onların hücre duvarları içinde çok az düzeyde içermesidir. BLISS lignification dynamics farklılıklar aynı hücre duvarı farklı katmanları arasında vurgulayabilirsiniz. Şekil 6A HAZ ve GALK muhabir birleşme hücre köşe ve ancak tüm lif orta lamel/birincil hücre duvarı ile sınırlı olduğunu göstermektedir. Hypolignified durumlarına moleküler ortamı için uygun olmamasından ortaya çıkar ortaya lignification monolignol kimyasal gazetecilere exogenously olduğunda bile kalın bast fiber ikincil hücre duvar katmanını içinde toplam yokluğunda verilen enzimatik aracılı oksidasyon ve monolignols birleşmesiyle büyüyen polimer zinciri içine ve sadece monolignol biyosentezi genlerin transkripsiyon düzenlenmesi nedeniyle daha önce olmadığına25bildirdi. Bu gözlem de o keten peroksidaz gen up-lignified lif26sahip keten kimyasal lbf1 mutant dış kök dokularda düzenlenmiştir de gerçeği ile ilişkilendirir.
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56947/56947fig6.jpg"> Şekil 6: BLISS hücre duvarı altyapı veya katman özel farklılıkları vurgulamaktadır. (A)sol kapı aynası: keten kök bölümüne alan parlak görüntü. Daire bir lif paket gösterir. Doğru kapı aynası: lif üzerinde yakın. Birleştirilmiş HAZ ve GALK kanalları (ve alan parlak olmayan) o lignification hücrenin köşeler için sınırlı olduğunu gösteren (<img alt="Equation" src="/files/ftp_upload/56947/56947eq1.jpg">) ve orta lamel/birincil hücre duvarına bir lif. BF, bast fiber; Par, parankimi hücre; M, orta lamel; P, birincil hücre duvarı; S1, ikincil hücre duvarı ilk katman; İkincil hücre duvarı S2/G, ikincil katman/jelatinimsi tabakası. (B) 2D dilim ve 3D confocal z-yığın zum keten kök endodermis bölgesinin inşası. Casparian Şerit (<img alt="Equation" src="/files/ftp_upload/56947/56947eq1.jpg">) sadece autofluorescence görüntüler ve HAZ veya GALKdahil değil. İlişkili fluorogram GALK/HAZ Anti-korelasyon gösterir: yüksek yeşil Floresans düşük kırmızı sinyal (korteks) ve tersi (endodermis) ilişkili. Pericycle (P), Endodermis (E), Cortex (C). <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56947/56947fig6large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
Son olarak, bu iki renkli metodoloji da değerli bilgiler hücre duvarı ayarlamış 'lignification durumu' üzerinde çeşitli gelişim aşamalarında ve kök dışındaki bitki organlarında sağlayabilir. Örneğin, keten kökleri endodermis Radyal ve enine hücre duvarları Casparian grupta varlığını geliştirme erken aşamalarında karakterizedir. Hidrofobik biyopolimer, suberin ve/veya lignin, yapılan grup su ve solutes apoplast ile pasif girmesini kök tarafından alınan önler ve böylece katkıda bir symplastic yol ile plazma zarı geçmek güçleri Seçici alımını kapasiteleri bitki kökleri. Keten köklerine uygulanan, bizim strateji endodermal hücreleri de olduğu gibi Casparian band (6B rakamyok) nerede parçalar Radyal duvarların teğet duvarlar HAZ ve GALK dahil edilmiştir gösterdi. Ancak, Toplam Devamsızlık Casparian bandında monolignol muhabir şirketleşme hala sitenin daha fazla biyopolimer yükünün olmakla birlikte diğer duvarlar bu gelişme bu aşamada olgun olduğunu gösterir. Z-yığın yeniden oluşturulan 3B Görünümü açıkça Casparian band ışık getiriyor. İlginçtir, endodermis için bitişik bazı kortikal hücrelerinin duvarları da kanıtladı HAZ tercihen bütünleştiren (böylece lignin/suberin keten kök kortekste varlığını gösteren) değil GALKama. Co yerelleştirme analiz HAZ ve GALK, bu iki bitişik hücre türü hücre özel duvar yapısı/enzimatik makine varlığını önermek arasında anti-bir korelasyon gösterdi.
Ek tablo 1: hazırlık katı ½ MS orta <a href="http://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56947/renamed_f17ea.xls">Bu dosyayı indirmek için buraya tıklayınız.</a>
Ek tablo 2: kimyasal muhabir hisse senedi çözümleri hazırlanması <a href="http://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56947/Table_2_-_Preparation_of_chemical_reporter_stock_solutions.xls">Bu dosyayı indirmek için buraya tıklayınız.</a>

BLISS, lignification dinamikleri, eğitim için bir çift etiketleme iletişim kuralı geliştirilmiştir. Sentetik monolignol kullanarak gazetecilere ve SPAAC ve CuAAC bioorthogonal sıralı bir arada tepkiler, bu metodoloji açıyor lignins planta içindeBiyogenez düzenleyen faktörler derinlemesine analiz için yolu tıklatın.

Lignification Dynamics ile tıklatın kimya tesislerinde görselleştirme: Çift etiketleme BLISS olduğunu!

Lignin is one of the most prevalent biopolymers on the planet and a major component of lignocellulosic biomass. This phenolic polymer plays a vital ...

Bu ikili etiketleme metodolojisinin genel amacı, bitki dokularının aktif olarak odunlaştırıcı bölgelerini gözlemlemektir. Bu iş akışında, kimyasal raporlayıcı stratejisi, biyo-ortogonal tıklama kimyası reaksiyonlarının sıralı bir kombinasyonunda iki farklı kimyasal raporlayıcı kullanılarak uygulanır. Bu yöntem, bitkiler ve duvarlar içindeki ligninin mekansal veya zamansal oluşumunu hangi faktörlerin düzenlediğini belirlemek gibi bitki biyolojisi alanındaki temel soruların deşifre edilmesine yardımcı olabilir.Bu tekniğin ana avantajı, yalnızca metabolik Birleştirme sırasında üretilen lignini hedef almasıdır. Onu, numunede önceden var olan herhangi bir ligninden ayırır. Başlangıçta bu yöntemi odunlaşma bayraklarını incelemek için geliştirmiş olsak da, arabidopsis, kavak veya lignin üreten diğer herhangi bir bitki gibi diğer türlerle birlikte kullanılabilir.Bu tekniği sunmak için, kimya ve biyoloji arasındaki arayüzde çalışan ve bu tekniği odunlaşma dinamiklerini incelemek için kullanan bir doktora öğrencisi olan Clemence Simon'a sahibiz. İlk olarak, on mikromüller alkin etiketli G raportör içeren 300 mikrolitrelik bir kimyasal raportör solüsyonu hazırlayın. Ve on mikromüller azid etiketli H raportör ve sıvı steril 1/2 MS ortam.Çözeltiyi vorteksleyin ve bir transfer pipeti ile 48 oyuklu bir plakanın bir kuyucuğuna aktarın. On mikromüller G ve on mikromüller H ve sıvı steril 1/2 MS ortam içeren 300 mikrolitrelik bir negatif kontrol çözeltisi hazırlayın. Çözeltiyi girdaplayın ve aynı 48 oyuklu plakanın ikinci bir kuyusuna aktarın.Temiz bir tıraş bıçağı kullanarak, iki aylık bir keten bitkisinin sapını toprak seviyesinden on santimetre yükseklikte kesin. Tıraş bıçağını kullanarak sapın 50 serbest el enine kesitini özenle hazırlayın ve bunları hemen 1/2 MS'lik bir ortama yerleştirin. Daha sonra, sağlam, tüm kesitleri seçin ve dokuya zarar vermemeye dikkat ederek kimyasal raportör solüsyonu ile doldurulmuş kuyuya rastgele on tane dağıtın.Kesitler sağlam ve temiz bir şekilde kesilmeli ve kesit düz olmalıdır. Dokuları sağlam tutmak için sabit bir elinize ve keskin bir tıraş bıçağına ihtiyacınız var. Önceden pratik yapmanız tavsiye edilir.Negatif kontrol çözeltisinde on sağlam kesit dağıttıktan sonra, plakayı 20 saat boyunca 20 santigrat derecede bir büyüme odasında sürekli ışıkta inkübe edin. Ertesi gün, her bir kuyucuktaki monolignal çözeltiyi bir mikropipet ile çıkarın. Her kuyucuğa 500 mikrolitre 1/2 MS orta ekleyin ve on dakika boyunca hafifçe karıştırın.Ardından, durulama solüsyonunu bir mikropipet ile çıkarın. Bir mililitre suş destekli azid-alkin siklo ekleme çözeltisi hazırlayın. Beş mikromüller siklookten etiketli floresan boya ve sıvı steril 1/2 MS ortam içerir.Ardından, çözeltiyi girdaplayın. Metabolik birleştirme protokolünün son yıkama adımlarından sonra, 1/2 MS ortamını çıkarın ve bir mikropipet ile her bir oyuğa 300 mikrolitre SPAAC çözeltisi ekleyin. 48 oyuklu plakayı bir kutuya yerleştirerek ışıktan koruyun.Ardından, plakayı ortam sıcaklığında karanlıkta bir saat boyunca mekanik bir çalkalayıcı üzerinde hafifçe karıştırın. Bunu takiben, plakayı karanlıkta tutarken, daha önce tarif edildiği gibi her bir kuyuyu 1/2 MS ortamı ile dört kez yıkayın. Sodyum askorbat, bakır sülfat ve azid etiketli floresan boya ve sıvı steril 1/2 MS ortamı içeren bir mililitre bakır katalizli azid alkin siklo ekleme çözeltisi hazırlayın.Sonra çözeltiyi girdaplayın. 1/2 MS ortamını çıkardıktan sonra, plakayı bir kutuya yerleştirin ve bir mikropipet ile her bir oyuğa 300 mikrolitre CuAAC çözeltisi ekleyin. Plakayı, ortam sıcaklığında karanlıkta bir saat boyunca mekanik bir çalkalayıcı üzerinde hafifçe karıştırın.Plakayı mekanik çalkalayıcıdan çıkarın ve CuAAC çözeltisini bir mikropipet ile her bir kuyucuktan çıkarın. Ardından, 500 mikrolitre 1/2 MS ortam ekleyin ve plakayı karanlıkta on dakika boyunca mekanik çalkalayıcı üzerinde karıştırın. 1/2 MS ortam ile iki kez daha yıkadıktan sonra, her kuyucuğa 500 mikrolitre 7: 3 metanol ve su çözeltisi ekleyin.Plakayı karanlıkta bir saat boyunca mekanik çalkalayıcı üzerinde karıştırın. Ardından, çözeltiyi kuyulardan çıkarın. Daha sonra, her bir kuyucuğa 500 mikrolitre 1/2 MS orta ekleyin ve karanlıkta on dakika karıştırın.Bu yıkamayı dört kez tekrarladıktan sonra, kesitleri 1/2 MS ortamında, ışıktan korunarak saklayın. Bir cam mikroskop lamı üzerine beş damla montaj ortamı yerleştirin. Ardından, kimyasal raportör etiketli her bir kesiti slayta dikkatlice yerleştirin.Slaytın iki zıt tarafına oje sürün. Hava kabarcıklarını önlemek için sürgünü bir kapak kaymasıyla, örtün. Ardından, bir kağıt havlu kullanarak fazla montaj ortamını çıkarın.Bunu takiben, numuneyi dört taraftan da oje ile kapatın. Tırnak cilası kuruduktan sonra, slaytları konfokal mikroskop altında gözlemlenene kadar karanlıkta dört santigrat derecede saklayın. Bitki bölümleri kuruduğunda gevrekleşme eğilimindedir.Bunları her zaman solüsyon içinde tuttuğunuzdan ve kapak fişlerini her taraftan oje ile kapattığınızdan emin olun. Montajı yapılan kızakların raf ömrünü arttırır. Numune slaytını objektif merceğin altındaki mikroskop sahnesine yerleştirin.Bitki dokusunun istenen bölgesini belirlemek için numuneyi gözlemleyin ve döndürün. Ardından, Z eksenindeki en floresan düzlemi seçin. Her kanal için tüm gri seviye aralığı boyunca optimum sinyal dağılımını elde etmek için kazancı, ofseti ve lazer gücünü ayarlayın.Son olarak, yüksek kaliteli konfokal görüntüler elde edin. BLISS, bitki hücre duvarları içindeki ligninin üç renkli lokalizasyon haritasını sağlar, yalnızca metabolik dahil etme sırasında in novo'da üretilen lignini hedefler ve bunu numunede önceden var olan ligninden ayırır. Bir organın farklı dokuları içinde, bir dokunun farklı hücre tipleri içinde veya bir hücrenin farklı duvar katmanları veya alt yapıları içindeki aktif lignifikasyon bölgelerini vurgular.Alkin etiketli G ve azid etiketli H raportör birleştirme profilleri, kambiyumdan keten ikincil ksilem içindeki öze kadar olan birleşme profilleri, gelişim sırasında lif tracheidlerinde maksimum lignifikasyona hızla ulaşıldığını, ırk hücrelerinin ise yaşamlarının çok daha sonraki aşamalarında lignin içermeye devam ettiğini göstermektedir. Kimyasal raportör oranının değiştirilmesi, ikincil ksilem dokularındaki lignin bileşiminin doğrudan hücre duvarları içindeki monolignal mevcudiyetine bağlı olduğunu göstermektedir. Lignin polimerizasyonu sırasında peroksidaz veya lakkaz özgüllüğü yerine.Kimyasal raportör katılımı, bazılarının hücre köşeleri ve orta lamel birincil hücre duvarı ile sınırlıdır, ancak tüm sak lifleri ile sınırlı değildir. Keten köklerinde, kimyasal raportörler, kaspariyen bandın bulunmadığı endodermal hücrelerin duvarlarına dahil edilir. Doku mimarisinin daha iyi görselleştirilmesi için 3D Z yığını rekonstrüksiyonları da oluşturulabilir.Bu görseli takiben kapsamlı bir veri işleme de gerçekleştirilebilir. Tüm önlemler alındığında, farklı numuneler arasında bir numune okuyarak nispi karşılaştırma yaparak sabit sonuçlar elde etmek mümkündür. Farklı alanların aktif liderliğinin lokalizasyonuna ek olarak da yapılabilir.Bu yöntem, hücre duvarını inceleyen benim gibi bitki biyologları için harika bir araçtır. Ustalaştıktan sonra, birkaç saat içinde yapılabilir. Çok hassastır ve bir dizi farklı in vitro in vivo deneysel model sistemine uygulanabilir.Kimyasal raportör stratejisini lignine uygulamak, kimyasal biyologların lignifikasyon dinamiklerini keşfetmesinin ve birçok açıdan hala keşfedilmemiş bir bölge oluşturan bu polimerizasyon sürecini neyin kontrol ettiğini bulmasının yolunu açar.

visualizing-lignification-dynamics-plants-with-click-chemistry-dual

Research

JoVE Journal

Chemistry

Kimya

Etiket lignin bitki hücre duvarlarında görselleştirme ve farklı dokuları, numune veya türlerin lignification karşılaştırılması sağladığını konfokal Raman mikroskobu dayalı bir yöntem sunulmaktadır.

Etiket- In situ</emBitki Hücre Duvarlar Lignification> Görüntüleme

Bu videoda, özel bitki hücrelerinde bulunan lignini boyamak için Wiesner boyama tekniğini açıklıyoruz. Bu boyama tekniği, Arabidopsis thaliana saplarındaki odunlaşmış hücre duvarlarını görselleştirmeye yardımcı olur ve farklı hücre tiplerinin hücre duvarlarındaki odunlaşmanın miktarını belirlemeye yardımcı olur.

Lignini Görselleştirmek için Wiesner Boyama: Arabidopsis thaliana'nın Gövdelerinde Bulunan Lignin Birikintilerini Boyama Tekniği

Bitki hücre duvarı bileşimi doku tipleri arasında farklılık gösterir ve lignin, selüloz, hemiselülozlar ve pektin içerebilir. Hücre tipi düzeyindeki farklılıkları görselleştirmek için çeşitli boyama teknikleri geliştirilmiştir. Bu makale, yaygın olarak kullanılan hücre duvarı boyama tekniklerinin bir derlemesidir.

Histokimyasal boyama<em&gt; Arabidopsis thaliana</em&gt; Ortaöğretim Hücre Duvar Elemanları

Bu protokol, bitki hücre duvarlarındaki lignin, selüloz ve hemiselülozun Raman görüntüleme ve çok değişkenli analizi kullanılarak görselleştirilmesi için genel bir yöntem sunmayı amaçlamaktadır.

Bitki Hücresi Duvarında Lignin, Selüloz ve Hemiselülozu Görselleştirmek için Raman Görüntüleme ve Çok Değişkenli Analizin Birleştirilmesi

Bu protokolü nasıl görüntü yaşamak ve sürgün apikal sürgen confocal mikroskobu tarama lazer kullanarak farklı bitki türü üzerinden analiz sunuyor.

Sürgün apikal sürgen farklı bitki türü üzerinden confocal canlı görüntüleme

Bu protokol, förster rezonans enerji transferini (FRET) rhodamine bazlı floresan problar ve lignin polimeri arasında doğrudan kalın bitki bölümlerinde değerlendirmek için spektral ve floresan ömür ölçümlerini birleştiren orijinal bir kurulum tanımlamaktadır.

Floresan Problar ve Lignin Bitki Kesitlerinde Doğal Otofloresan Dayalı SFLIM Ile Etkileşimlerinin Ölçülmesi

Mevcut protokol, Plasmodiophora brassicae tarafından indüklenen safra kesesi histolojik gözlemi için optimize edilmiş bir yöntemi tanımlamaktadır. Hipokotillerin vibratom kesitleri, hastalığın ilerlemesi sırasında transkripsiyon faktörlerinin ve fitohormonların tutulumunu incelemek için floresan görüntülemeden önce temizlenir. Bu protokol, reçine gömme sınırlamalarının üstesinden gelerek floresan proteinlerinin planta görselleştirmesini sağlar.

Gen İfadesindeki Değişiklikleri ve Plasmodiophora brassicae'ye Fizyolojik Yanıtları Görselleştirmek için Temizleme ve Floresan Mikroskopisinin Birleştirilmesi

Bu makale, canlı yosun dokusunun 3 boyutlu hücre duvarı dinamiklerini görüntülemek için ayrıntılı bir protokol sunarak, ggb mutantlarında hücre duvarlarının ayrılmasının görselleştirilmesine ve uzun bir süre boyunca gelişim sırasında vahşi tipte hücre duvarı desenlerinin kalınlaştırılmasına izin vermektedir.

Moss Physcomitrium patens'te Calcofluor Kullanarak Hücre Duvarı Dinamiğinin 3-D Hızlandırılmış Görüntülenmesi

Burada, rutin mikroskopi ekipmanı kullanarak hücre içi sialillenmiş N-glikoproteinlerin biyogörüntülemesine izin veren metabolik oligosakkarit mühendisliği, tıklama kimyası ve genleşme mikroskobunu birleştiren basit bir protokol öneriyoruz.

Click Kimyası ve Genleşme Mikroskobu ile Hücre İçi Sialilasyonun Görselleştirilmesi

Protein yapı ve dinamikleri protein yapı ve fonksiyon arasındaki ilişkiyi anlamak için anahtardır. Yüksek çözünürlüklü kütle spektrometrisi ile birlikte hidrojen alış veriş proteinlerin konformasyonel dinamiklerini incelemek ve temas arayüzler ve allosterik etkileri de dahil olmak üzere protein-ligand ve protein-protein etkileşimleri, karakterize için çok yönlü bir yöntemdir.

Hidrojen Değişim Kütle Spektrometre Kullanarak Protein Dinamiği Analizi

Keşfedin bitki dokularında lignifikasyon dinamiklerini çift etiketleme BLISS yöntemiyle. Biyoortogonal tıklama kimyası kullanarak yeni sentezlenen lignini mevcut ligninden ayırt edin ve hücre duvarlarında lokalizasyon haritaları oluşturun.

Lignification Dynamics ile tıklatın kimya tesislerinde görselleştirme: Çift etiketleme BLISS olduğunu!

Daha fazla video keşfet