Name: İnsan dişi üreme yolu dendritik hücreler yalıtım Phenotypical ve fonksiyonel çalışmaları için (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-03-13T15:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 32 s
Description: Öğrenin, insan dişi üreme yolundan dendritik hücre izolasyonu ve fenotipik-fonksiyonel analiz yöntemini. Bu teknik, yüzey belirteçlerini koruyarak hızlı izolasyon sağlar ve immünoloji araştırmaları için uygundur.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

NIH tarafından desteklenen çalışma AI102838 ve AI117739 (CRW) verir. Richard Rossoll teknik yardım için teşekkür ederiz. Akış sitometrik analiz DartLab, Dartmouthsupported (P30CA023108-37) tarafından ve (P30GM103415-15) paylaşılan kaynak gerçekleştirilmiştir.

İnsan denekler içeren çalışmalar Helsinki Bildirgesi içinde ifade edilen ilkelere göre yapılmıştır. Çalışmalar Dartmouth kolej Kurumsal değerlendirme Komitesi ve komite için koruma, insan denekler (CPHS) tarafından kabul edildi. Yazılı Onam hysterectomies Dartmouth Hitchcock Tıp Merkezi (Lübnan, NH) geçiren HIV-negatif kadın ameliyattan önce elde edildi. Eğitimli patologlar EM, CX ve ECX, patolojik lezyonlar içermez ve patoloji sitelerden uzak doku örnekleri seçilir. Kan örnekleri Dartmouth Hitchcock Tıp Merkezi işe gönüllü sağlıklı bağışçılardan elde edilmiştir. Kan Bağış anonim. Ameliyathane taze izole EM, CX ve ECX dokulardan patoloji yalıtım ve sınıflandırma önceki bizim laboratuvar ayrı, steril polipropilen borular içinde transfer etmek için transfer.
1. Enzimatik sindirim dokuların
Not: biyolojik Emanet dolabı iş ve steril malzemeler kullanabilirsiniz.
<ol><li>Değiştirilmiş bir Hank'in dengeli tuz çözüm (1 x HBSS fenol red, 100 U/mL penisilin-streptomisin, 0.35 g/L NaHCO3ve 20 mM HEPES ile kullanarak HBSS) hazırlayın.</li>
	<li>Enzimatik kokteyl hazırlamak (değiştirilmiş HBSS, 450 U/mL collagenase IV, %0.01 [wt/vol] deoksiribonükleaz ben ve 2 mg/mL D-glikoz). Çözüm bir steril 0,22 µm filtreden geçmek. İdeal olarak, sindirim enzim kullanımı gününde hazırlamak, ancak depolama için-20 ° C'de dondurulmuş olması. Tekrarlanan dondurma ve çözme döngüleri kaçının.</li>
	<li>Değiştirilmiş HBSS ve 100 x 15 mm2 Petri kabına yerde dokuyla durulayın. Doku mevcut miktarına göre Petri kabına boyutu ve kullanılan enzim kokteyl hacmi ayarlayın (bkz. Adım 1.4.2 aşağıda). Not: Dokulara bağlı olarak 1-10 g arasında değişen patoloji, elde edilen cerrahi örnek boyutu değişir.</li>
	<li>Fiziksel işlem tek kullanımlık neşter ve Forseps ile:<ol>
<li>Sindirim enzim kokteyl yaklaşık 3 mL kesme iken kurutma önlemek için doku ekleyin.</li>
		<li>Forseps doku stabilize etmek ve sindirim enzim kokteyl maruz doku yüzey alanını artırmak için bir neşter ile bin dereden su getirmek için kullanın. Doku küçük parçalara (< 2 mm bir tarafta) kes. Tüm doku parçaları (5 mL/g doku) karşılamak için yeterli sindirim enzim kokteyl ekleyin. Kapağı üzerinde Petri kabına yerleştirin.</li>
		<li>%5 CO2 yaklaşık 80 rpm 45 dk. rotator hız iyice sindirim enzim kokteyl dökülmesini veya baloncuklar üreten olmadan karışımları olduğunu sağlamak için bir rotator 37 ° C'de kuluçkaya.</li>
		<li>Doku hazırlık ile ters bir ışık mikroskobu ile 4 X ve 10 X hedefleri görselleştirin. Not: sindirim sonra küçük doku parçaları ve bir karma hücre süspansiyon görünür epitel bezleri de dahil olmak üzere mevcut olmalıdır ( şekil 1A' ya bakınız).</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. fiziksel ayırma tek hücre
<ol><li>Steril bir ortamda, gergin 250 µm mesh sahibi ile 150 x 15 mm2 Petri kabına yerleştirin. Mesh yaklaşık 0.5 cm Petri kabına yüzeyi üzerinde olduğundan emin olun.</li>
	<li>Mesh ile değiştirilmiş HBSS 2 mL ıslak ve sindirilmiş doku mesh üzerine aktarın.</li>
	<li>10 mL şırınga dalgıç düz yüzeyini kullanarak, nazikçe ama sıkıca, sindirilmiş kıyılmış doku mesh ile eziyet. Dikkat: çok agresif taşlama, mesh zarar ve hücre ölüm artırmak. Bu adımı epitel hücreleri ve stromal hücreler (bağışıklık hücreleri de dahil olmak üzere) bağ dokusu ve mukus ayrı.</li>
	<li>Doku parçaları iyice dağınık sonra mesh ve tutucu yükseltmesine 2-3 cm yukarıda Petri kabına ve durulama 3 mL ile değiştirilen ek hücreleri kurtarmak için HBSS.</li>
	<li>Hücre süspansiyon toplamak. 20 µm mesh sahibi ile bir Petri kabına ve ıslak değiştirilmiş HBSS 2 mL ile yerleştirin. Hücre süspansiyon tutan mesh mesh dökün 2-3 cm yukarıda Petri kabına ve durulama ile değiştirilmiş HBSS 6 mL. Not: Bu adımı kafes geçmek tek hücrelerden üst korunur epitel sayfaları ayrı olacak. Akış yoluyla bağışıklık hücreleri ve stromal fibroblastlar içeren bir karma hücre askıya alınmasıdır.</li>
	<li>Karma hücre süspansiyon ve 10 dk. aspiratı sıvı 500 x g, santrifüj toplamak ve Pelet yoğunluk gradient Santrifüjü için değiştirilmiş HBSS 4 ml resuspend.</li>
	<li>Karma hücre süspansiyon üzerinde 3 mL polysucrose çözüm ve 30 dk için 500 x g de oda sıcaklığında santrifüj fren yok ile katman. Beyaz bant polysucrose çözüm tepesinden toplamak ve PBS ile yıkayın. Not: Bu kesir bağışıklık hücreleri zengindir ve bazı stromal fibroblastlar içeren zenginleştirilmiş karma hücre askıya alınmasıdır.</li>
</ol>3. ölü hücre kaldırma
Not: ölü hücreleri (> %20) büyük bir yüzdesi yoğunluk gradient Santrifüjü sonra zenginleştirilmiş karma hücre süspansiyon varsa, manyetik boncuklar ile ölü hücre kaldırma önerilir. Ölü hücreleri olumlu manyetik boncuk seçim süreci ile girişime neden olabilir beri kaldırılması gerekir.
<ol><li>Bir hemasitometre 10 X amacı ile hafif bir mikroskop kullanarak hücreleri saymak. Spin aşağı zenginleştirilmiş karma hücre süspansiyon (500 x g, 10 min, 4 ° C) tüm hücrelerde. Tamamen Aspire edin ve süpernatant atın. Ölü hücre kaldırma boncuk başına 1 x 107 toplam hücreleri (canlı ve ölü), üreticinin yönergelerine göre 100 µL ekleyin. 15 dakika oda sıcaklığında kuluçkaya.</li>
	<li>30 µm filtre manyetik sütunun üstüne yerleştirin, hücre süspansiyon uygulamak ve manyetik sütunu boyunca düşmeye boncuk etiketli hücreleri sağlar.</li>
	<li>Ölü hücre kaldırma arabellek sütununda önerilen (3 mL) yıkayın. Canlı hücreleri içeren aracılığıyla akış-toplamak. Ölü hücre çıkarıldıktan sonra hücre Kurtarma aralığı şekil 1Badımında sunulur. Not: Bu hücreler phenotypical çalışmalar (Bölüm 5) Boyama Akış Sitometresi gerçekleştirmek için kullanılabilir veya DC yalıtım (Bölüm 4) ile devam edin.</li>
</ol>4. DC arıtma olumlu manyetik boncuk seçime göre
<ol><li>Ölü hücre kaldırma (Adım 3.2), spin hücreleri aşağı, süpernatant kaldırmak ve 1 x 107 hücreleri (PBS, % 0.5 ısı inaktive insan AB serumu (HS), 2 mM EDTA) başına 80 µL manyetik seçimi arabellek hücre Pelet resuspend.</li>
	<li>DC nüfus pozitif seçim için üreticinin yönergelerini (20 µL manyetik boncuklar başına 1 x 107 hücreleri) göre CD1a veya CD14 manyetik boncuklar ekleyin. 4° c de 15 dakika kuluçkaya
</li>
	<li>Manyetik seçimi arabellek hücrelerle yıkama, spin aşağı ve arabellek tamamen kaldırın. En az 500 µL manyetik seçimi arabelleği hücrelerde resuspend.</li>
	<li>Mıknatıs için sütun ekleyin ve 30 µm filtre üst kısmında kalan herhangi bir hücre kümeleri korumak için sütun ekleyin. Filtre ve sütun olarak tavsiye manyetik seçimi arabelleği ile yıkayın.</li>
	<li>Hücre süspansiyon sütun için geçerlidir. 3 kez manyetik seçimi arabellek ile yıkayın.</li>
	<li>Sütun bir 15 mL tüp transfer manyetik seçimi arabellek 5 mL ekleyin ve pistonu sütun Seçili hücrelerden serbest bırakmak için geçerlidir.</li>
	<li>Saflık artırmak için yeni bir sütun kullanarak kurtarılan hücrelerle adımları 4.4-4,6 yineleyin. Manyetik boncuk seçimden sonra hücre Kurtarma aralığı şekil 1 ciçinde sunulur.</li>
</ol>5. hücre saflık değerlendirilmesi: Akış Sitometresi ve mikroskopi
<ol><li>Antikor: Akış Sitometresi için boyama<ol>
<li>1 x 100 µL 106 hücrelerde resuspend % 20 içeren PBS, ısı-Fc reseptörü engellemek ve buz üzerinde 10 min için kuluçkaya HS inaktive olur.</li>
		<li>İstenen fluorescently antikorlar ve ölü hücreleri tanımlanması için reaktif etiketli ekleyin (örneğin, Bölüm 6.5 bakın). Floresans eksi bir (FMO) denetimleri kapıları kurmak ve tek leke denetimleri için tazminat hazırlamak için tazminat boncuk kullanmak için ayarlayın. Antikorların kullanılan örnek Tablo 1' de verilmiştir. Işıktan korunan 4 ° C'de 20 dk için kuluçkaya.</li>
		<li>Manyetik seçimi arabelleğinin 2 mL hücrelerle yıkayın. Not: EDTA varlığı akış sitometrik çözümlemesi için topaklanma hücre oluşumunu önlemek önemlidir. Spin aşağı ve süpernatant atın.</li>
		<li>Hücreleri % 2 paraformaldehyde çözüm tüp başına 100 µL ekleyerek düzeltmek.</li>
		<li>Örneklerinde bir Akış Sitometresi10,11tarafından analiz.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Sütun (örneğin, cytospin) spin ve Morfoloji analiz etmek için boyama Giemsa kullanın:<ol>
<li>Manyetik seçimi arabelleği 200 µL hücrelerde resuspend.</li>
		<li>Bir spin sütun ve 5 min için spin yük. Tamamen kurumasını slayt izin.</li>
		<li>Slayt Slayt deiyonize su ile %100 metanol 2 dk. durulama için daldırma tarafından tamir ve kuru hava sağlar.</li>
		<li>Bir standart Wrights-Giemsa boyama gerçekleştirmek. Eozin hücrelerle kapak ve 10 dakikadır kuluçkaya, deiyonize su ile yıkayın ve kurumaya bırakın. Wrights Geimsa leke hücrelerle kapak, 1 dk. için kuluçkaya, deiyonize suyla durulayın ve kuru hava.</li>
		<li>Hazırlıklar bir ters mikroskopla (şekil 2A, 40 X hedef) inceleyin.</li>
	</ol>
</li>
</ol>6. allojeneik stimülasyon tahlil DC hücre işlevi değerlendirmek için
<ol><li>Dondurulmuş periferik kan mononükleer hücreler (PBMCs) çözme<ol>
<li>Hücre kültür medya % 10 ile sıcak HS ile 37 ° c</li>
		<li>PBMCs kadar donmuş hücre medya az miktarda cryotube içinde kalır 37 ° C su banyosu cryotube koyarak çözülme. Steril bir ortamda 10 mL % 10 ile Önceden ısıtılmış hücre kültür ortamının cryotube içeriğini aktarmak HS 15mL tüp içinde.</li>
		<li>Santrifüj kapasitesi ~ 500 x g 7 dakika süreyle medyayı çıkarın, pelet dağıtmak, PBMCs 10 ml %10 HS ve santrifüj ile hücre kültür ortamının resuspend hücreleri.</li>
		<li>Yıkama adım üçüncü kez tekrarlayın. Hücreleri saymak.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Saf T-hücre seçimi:<ol>
<li>Bir negatif seçim manyetik antikor hücre seçimi kiti üreticinin protokole göre saf T-hücreleri belirlemek için kullanın.</li>
		<li>Yalıtım sonra CD45RA ve CCR7 antikorları kullanarak saflık denetleyin. Not: > %99 saf T-hücreleri tipik Saflık derecesi var.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Saf T-Hücre proliferasyonu boya boyama:<ol>
<li>Hücre çoğalması boya, boya ışığa maruz kalma korumak, 2 x çözümünün 600 µL hazırlayın.</li>
		<li>Saf T-hücreleri 2 yıkama x PBS ile. 500 µL PBS hücrelerde resuspend.</li>
		<li>Yavaşça vortexing Biyogüvenlik kabini, hücrelerde nükleer silahların yayılmasına karşı boya 500 µL saf T-hücreleri ekleyin.</li>
		<li>37° c de 10 dakika için hücreleri kuluçkaya
</li>
		<li>5 mL % 10 ile hücre kültür medya ekleyerek hücre etiketleme durdurmak hücrelere HS. Işıktan korunan 5 min için buz üzerinde kuluçkaya.</li>
		<li>Senaryo Özeti santrifüj kapasitesi ~ 500 x g 7 dk, medya Aspire edin ve 4 ° C % 10 ile hücre kültür ortamının hücrelerde resuspend HS. İki kez daha 3 yıkar toplam için yineleyin. Bir aliquot önce son Santrifüjü saymak için hücre al. Not: Normal olarak, % 5 ve ilk PBMC hücre sayısı % 15 arasında son saf T-hücre sayı aralığı olacaktır.</li>
		<li>Hücre kültür medya % 10 ile hücrelerle resuspend istenen hücre konsantrasyonu, HS.</li>
	</ol>
</li>
	<li>DC allojeneik saf T hücreli ortak kültür:<ol>
<li>01: 15'de izole DCs ve saf T-hücreleri bir 96-şey, yuvarlak alt plaka, plaka T-hücreleri DC'lere oranı. DCs aralıkları arasında 3000 ve 5000 hücre/iyi için en uygun numarası sağlamak.</li>
		<li>Plaka santrifüj kapasitesi ~ 500 x g hücreleri iyi merkezinde yer alan olduğundan emin olmak 3 dakika. Hücre hücre iletişim yapılmasına uygun sinyal için önemlidir.</li>
		<li>37 ° C'de için 6 gün kuluçkaya. Nükleer silahların yayılmasına karşı mikroskobu (şekil 3A) ile gerçekleştiği sırada wells görünür hücreleri, küme izlemek.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Akış Sitometresi nükleer silahların yayılmasına karşı değerlendirmek için boyama:<ol>
<li>6 gün sonra hücreleri Akış Sitometresi tarafından incelenebilir. Akış Sitometresi için ortak kültür leke.</li>
		<li>Sarı canlılığı boya PBS (maksimum emisyon 572 nm) 2 x çözeltisi hazırlamak. Not: PBS kullanmadan serum önemli, serum proteinler boya ile müdahale).</li>
		<li>Senaryo Özeti ile plaka santrifüj kapasitesi ~ 500 x g 5 min için.</li>
		<li>100 µL süpernatant ile kaldırın. Not: Bu noktada toplamak ve süpernatant çözünür faktörler ayrı analiz için saklayın.</li>
		<li>Hücreleri iki kez PBS ile yıkayın: PBS 150 µL/kuyu eklemek, santrifüj kapasitesi ~ 500 x g 5 min için bir pipet ile süpernatant ile 150 µL kaldırın. Her kuyuya kalan süpernatant ile 50 µL olduğundan emin olun.</li>
		<li>2 x canlılığı boya 50 µL her şey için ekleyin. Oda sıcaklığında ışıktan korunan 10 min için kuluçkaya.</li>
		<li>Kuluçka sırasında istenen antikor işaretleri ana karışımı hazırlayın. Örneğin: CD3 APC/Cy7, CD4 PE, CD8 FITC, vb
</li>
		<li>Her şey için antikor karışımı ekleyin. Oda sıcaklığında ışıktan korunan 10 min için kuluçkaya.</li>
		<li>Hücreler 2 yıkama x PBS + %2 HS: PBS + %2 150 µL/iyi eklemek HS. Santrifüj kapasitesi ~ 500 x g 5 dk. 150 kaldırmak µL süpernatant bir pipet ile için.</li>
		<li>Hücreleri 100 µL/de %2 para-formaldehit ekleyerek düzeltmek. Gerekirse: Polipropilen Akış Sitometresi tüpler için hücreleri ve medya aktarma. Tüpler 4 ° C'de muhafaza ve akış sitometrik çözümlemesi kadar gelen ışık, korumalı.</li>
		<li>Akış Sitometresi tüplerde okunur.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Wira, C. R., Rodriguez-Garcia, M., Patel, M. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+sex+hormones+in+immune+protection+of+the+female+reproductive+tract%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">The role of sex hormones in immune protection of the female reproductive tract.</a> Nat Rev Immunol. 15 (4), 217-230 (2015).</li>
<li>Banchereau, J., Steinman, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dendritic+cells+and+the+control+of+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Dendritic cells and the control of immunity.</a> Nature. 392 (6673), 245-252 (1998).</li>
<li>Schlitzer, A., McGovern, N., Ginhoux, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dendritic+cells+and+monocyte-derived+cells%3A+Two+complementary+and+integrated+functional+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Semin+Cell+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Dendritic cells and monocyte-derived cells: Two complementary and integrated functional systems.</a> Semin Cell Dev Biol. 41, 9-22 (2015).</li>
<li>Tagliani, E., Erlebacher, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dendritic+cell+function+at+the+maternal-fetal+interface%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Rev+Clin+Immunol%22%5BJournal%5D)">Dendritic cell function at the maternal-fetal interface.</a> Expert Rev Clin Immunol. 7 (5), 593-602 (2011).</li>
<li>Kaldensjo, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+intraepithelial+and+stromal+Langerin+and+CCR5+positive+cells+in+the+human+endometrium%3A+potential+targets+for+HIV+infection%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Detection of intraepithelial and stromal Langerin and CCR5 positive cells in the human endometrium: potential targets for HIV infection.</a> PLoS One. 6 (6), e21344(2011).</li>
<li>Schulke, L., Manconi, F., Markham, R., Fraser, I. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endometrial+dendritic+cell+populations+during+the+normal+menstrual+cycle%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Reprod%22%5BJournal%5D)">Endometrial dendritic cell populations during the normal menstrual cycle.</a> Hum Reprod. 23 (7), 1574-1580 (2008).</li>
<li>Ballweber, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vaginal+langerhans+cells+nonproductively+transporting+HIV-1+mediate+infection+of+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">Vaginal langerhans cells nonproductively transporting HIV-1 mediate infection of T cells.</a> J Virol. 85 (24), 13443-13447 (2011).</li>
<li>Hladik, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Initial+events+in+establishing+vaginal+entry+and+infection+by+human+immunodeficiency+virus+type-1%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">Initial events in establishing vaginal entry and infection by human immunodeficiency virus type-1.</a> Immunity. 26 (2), 257-270 (2007).</li>
<li>Duluc, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+diversity+of+human+vaginal+APC+subsets+in+directing+T-cell+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Mucosal+Immunol%22%5BJournal%5D)">Functional diversity of human vaginal APC subsets in directing T-cell responses.</a> Mucosal Immunol. 6 (3), 626-638 (2013).</li>
<li>Herzenberg, L. A., Tung, J., Moore, W. A., Parks, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interpreting+flow+cytometry+data%3A+a+guide+for+the+perplexed%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Immunol%22%5BJournal%5D)">Interpreting flow cytometry data: a guide for the perplexed.</a> Nat Immunol. 7 (7), 681-685 (2006).</li>
<li>Juno, J. A., Boily-Larouche, G., Lajoie, J., Fowke, K. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collection%2C+isolation%2C+and+flow+cytometric+analysis+of+human+endocervical+samples%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Collection, isolation, and flow cytometric analysis of human endocervical samples.</a> J Vis Exp. (89), (2014).</li>
<li>Givan, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flow+cytometric+analysis+of+leukocytes+in+the+human+female+reproductive+tract%3A+comparison+of+fallopian+tube%2C+uterus%2C+cervix%2C+and+vagina%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Reprod+Immunol%22%5BJournal%5D)">Flow cytometric analysis of leukocytes in the human female reproductive tract: comparison of fallopian tube, uterus, cervix, and vagina.</a> Am J Reprod Immunol. 38 (5), 350-359 (1997).</li>
<li>Rodriguez-Garcia, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dendritic+cells+from+the+human+female+reproductive+tract+rapidly+capture+and+respond+to+HIV%5BTitle%5D)+AND+%22Mucosal+Immunol%22%5BJournal%5D)">Dendritic cells from the human female reproductive tract rapidly capture and respond to HIV.</a> Mucosal Immunol. 10 (2), 531-544 (2017).</li>
<li>Rodriguez-Garcia, M., Barr, F. D., Crist, S. G., Fahey, J. V., Wira, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phenotype+and+susceptibility+to+HIV+infection+of+CD4%2B+Th17+cells+in+the+human+female+reproductive+tract%5BTitle%5D)+AND+%22Mucosal+Immunol%22%5BJournal%5D)">Phenotype and susceptibility to HIV infection of CD4+ Th17 cells in the human female reproductive tract.</a> Mucosal Immunol. 7 (6), 1375-1385 (2014).</li>
<li>Shen, Z., Rodriguez-Garcia, M., Ochsenbauer, C., Wira, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+immune+cells+and+infection+by+HIV+in+human+ovarian+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Reprod+Immunol%22%5BJournal%5D)">Characterization of immune cells and infection by HIV in human ovarian tissues.</a> Am J Reprod Immunol. , (2017).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa yoktur

Mukozal DCs şiddetle doku3girdiğinizde hangi onların fenotip ve işlev değişiklikleri doku çevre tarafından etkilenmiş bir nadir hücre nüfus vardır. Kan türetilmiş DCs çok kullanışlı bir model vardır, onlar tamamen dokularda bulunan DC nüfus çeşitliliği temsil etmemektedir. Bu nedenle, Mukozal DCs benzersiz özellikleri anlamak için birincil hücre dokuları yalıtım gereklidir. Yalıtım DC'lerin FRT farklı anatomik sitelerden DC işlevi vitro çalışma ve DC alt kümeleri ve anatomik mekanlar aras...

FRT implantasyon ve gebelik1izin verirken patojenlere karşı korumanın çift işlevi vardır. Bunu yapmak için FRT, görünen benzersiz histolojik, immünolojik ve fonksiyonel özellikleri1her anatomik bölge ile bölümlere.
DCs Mukozal yüzeyler mevcut mikroplar akciğer, gut ve genital sistem ile ulaşın ve olası patojenler2için immün gözetim sağlayın olun. DCs saf T-hücreleri Başbakan ve adaptif bağışıklık yanıtı3tetiklemek için benzersiz yeteneği var. DCs FRT içinde de sperm ve başarılı gebelik4izin vermek için gelişmekte olan fetus bulunanlar gibi yabancı antijenleri tolere uzmanlaşmıştır. Bu nedenle, DC fenotip ve işlev konumuna bağlı olarak farklı olacaktır. Öyle ki onların numarası, fenotip ve işlevleri3bulundukları doku çevre tarafından değiştirilir DCs şiddetle doku çevre tarafından etkilenmiştir bilinir. Bu nedenle, bulaşıcı hastalıklar, gebelik ve FRT Kanserinde FRT DCs oynadığı rol, ikamet DCs türetilmiş DC modelleri FRT dokularda bulunan düzenleyici karmaşıklığı gidermek yetersiz kan beri incelenecektir anlamalısın.
İnsan dokusu karakterizasyonu ikamet DCs zorlu hücre içinde Mukozal doku mevcut düşük sayı ve insan doku örnekleri alınırken zorluk nedeniyle. DCs kullanarak doku içinde hücre konumu hakkında bilgilendirir ama fonksiyonel çalışmalar önler ve analiz edilebilir hücre işaretleyicileri tanımlama sayısı sınırlı immünhistokimya5,6, FRT incelenmiştir hemen. Ayrıca, tek hücre izolasyon protokolleri akış sitometrik analizi için gelişmiş7,8,9olmuştur. Bu protokollerin bazıları, geçiş hücreleri izole etmek için DCs göçmen kapasitesi avantajlarından yararlanın. Bu yöntemler genellikle gece incubations ve aktif DCs yelpazesi gerektirir ancak DCs çalışmada kararlı duruma için izin vermez.
Burada, histerektomi örnekler kullanarak, biz optimize DCs FRT, endometrium (EM), farklı anatomik sitelerden yalıtmak için bir protokol endocerviks (CX) ve ectocervix (ECX), phenotypical ve fonksiyonel analiz sağlar. Proteolitik Enzimatik sindirim protokolünü kullanarak, biz hemen sonra doku sindirim olmadan hücre aktivasyonu hücre izolasyon ve akım sitometrik karakterizasyonu için devam edebilirsiniz. Çok renkli Akış Sitometresi kullanarak ve fonksiyonel çalışmalar hücre düşük numaraları için adapte, biz tanımlamak ve DCs FRT. farklı sitelerdeki nadir kümelerine karakterize

<table><tbody><tr><td>Hank'in Dengeli Tuz Çözeltisi (HBSS)</td><td>Hidroklon</td><td>SH30015.03</td><td></td></tr><tr><td>Penisilin-streptomisin</td><td>Hiklon</td><td>SV30010</td><td></td></tr><tr><td>HEPES (1M)</td><td>Hidroksilon</td><td>15630-080</td><td></td></tr><tr><td>Kollajenaz IV</td><td>Sigma</td><td>C5138</td><td></td></tr><tr><td>Deoksiribonükleaz I</td><td>Worthington Biyokimyasal</td><td>LS002140</td><td></td></tr><tr><td>D-glikoz</td><td>Sigma Aldritch</td><td>50-99-7</td><td></td></tr><tr><td>0.22 um Stericup 500 mL&nbsp filtre</td><td>Millipore</td><td>SCGPU05RE</td><td></td></tr><tr><td>100mm x 15mm polistiren petri kabı</td><td>Fisherbrand</td><td>FB0875712</td><td></td></tr><tr><td>150mm x 15mm polistiren petri kabı</td><td>Fisherbrand</td><td>FB0875714</td><td></td></tr><tr><td>150mm x 25mm polistiren çanak</td><td>Corning</td><td>430599</td><td>İşlenmiş hücre kültürü kabı</td></tr><tr><td>Isotemp İnkübatör</td><td>Fisher Scientific</td><td>FICO3500TABB</td><td>%5.0 CO2</td></tr><tr><td>American Rotator V</td><td>American DADE</td><td>R4140</td><td></td></tr><tr><td>250 um naylon örgü</td><td>Sefar</td><td>03-250/50</td><td></td></tr><tr><td>20 um naylon örgü</td><td>Sefar</td><td>03-20/14</td><td></td></tr><tr><td>Beckman GS-6R Santrifüj</td><td>Beckman</td><td>358702</td><td></td></tr><tr><td>Gentamisin ile X-VIVO 15 L-Gln, Fenol Kırmızısı, 1 L</td><td>Lonza</td><td>04-418Q</td><td></td></tr><tr><td>İnsan AB Serum Vadisi</td><td>Biyomedikal</td><td>HP1022</td><td></td></tr><tr><td>Histopaque-1077</td><td>Sigma Aldritch</td><td>10771</td><td></td></tr><tr><td>Fosfat Tampon Çözeltisi (PBS)</td><td>Ulusal Teşhis</td><td>CL-253</td><td>pH 7.4</td></tr><tr><td>Ölü Hücre Temizleme Kiti</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-090-101</td><td></td></tr><tr><td>Ön ayırma filtresi (30um)</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-041-407</td><td></td></tr><tr><td>LS sütunu</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-410</td><td></td></tr><tr><td>Quadro MACS Ayırıcı</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-090-976</td><td></td></tr><tr><td>MACS çok ayaklı</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-042-303</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>USB</td><td>15694</td><td></td></tr><tr><td>CD1a Mikro boncuklar, insan</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-051-001</td><td></td></tr><tr><td>CD14 Mikro boncuklar, insan</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-050-201</td><td></td></tr><tr><td>eFluor 670 hücre proliferasyon boyası</td><td>eBiosciences</td><td>65-0840-85</td><td></td></tr><tr><td>96 kuyu yuvarlak alt plaka</td><td>Falcon</td><td>9/8/2866</td><td></td></tr><tr><td>Zombi sarı canlılık boyası</td><td>Biolegend</td><td>423104</td><td></td></tr><tr><td>CD3 APC / Cy7, anti-insan</td><td>Tonbo Biosciences</td><td>25-0038-T100</td><td></td></tr><tr><td>CD4 PE, insan karşıtı</td><td>eBiosciences</td><td>12-0048-42</td><td></td></tr><tr><td>CD8a FITC, insan karşıtı</td><td>Tonbo Biosciences</td><td>35-0086-T100</td><td></td></tr><tr><td>Gallios Akış Sitometresi</td><td>Beckman Coulter Yaşam Bilimleri</td><td>B43618</td><td>10 renkli, VBR</td></tr><tr><td>MACSquant Analizörü 10</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-096-343</td><td>8 renkli, VBR</td></tr></tbody></table>

İnsan dişi üreme yolu dendritik hücreler yalıtım phenotypical ve fonksiyonel çalışmaları için

Isolation of Dendritic Cells from the Human Female Reproductive Tract for Phenotypical and Functional Studies

İnsan dendritik hücreler (DC) içinde Mukozal doku ikamet karakterizasyonu örnekleri alınırken zorluk nedeniyle zordur ve DCs az sayıda doku mevcut. Fenotip ve DCs işlevinin değiştirilmiş doku çevre tarafından henüz, doku ikamet DC nüfus analiz etmek, kan DCs eksik olarak elde edilen bu yana DCs karmaşıklığı dokularda yansıtmak için gerekli olduğu. Burada phenotypical ve fonksiyonel analiz sağlayan histerektomi örnekler kullanarak insan kadın üreme yolu (FRT) DCs yalıtmak için bir iletişim kuralı mevcut. Tek bir hücre hücre süspansiyon, pozitif manyetik boncuk seçime göre takip karışık üretmek için doku sindirim protokol oluşur. Bizim doku sindirim Protokolü phenotypical ve fonksiyonel analizde DC'lerin gecede kuluçka veya hücre etkinleştirme olmadan kararlı duruma sağlayan yüzey işaretleyicileri, ayırmak değil. Bu iletişim kuralı yalıtım diğer bağışıklık hücre tiplerinin veya diğer dokularda DC'lerin izolasyon için adapte edilebilir.

Şekil 1A' gösterildiği gibi aşağıdaki doku sindirim, epitel sayfaları ve bezleri serbest bırakılması görülebilir; Enzimatik sindirim başarıyla tamamlandığını belirten pozitif bir denetimdir. DCs doku gram başına kurtarıldı ve toplam hücrelerin sayısını da şekil 1B ve şekil 1 c, sırasıyla gösterilir. Bağışıklık hücreleri stromal hücre yoğunluğu Santrifüjü12,<sup clas...

Biz burada yalıtmak ve phenotypical ve fonksiyonel özellikleri değerlendirilmesi için insan kadın üreme sistemi içinde farklı anatomik bölmeleri dendritik hücrelerden arındırmak için bir yöntem açıklanmaktadır. Bu yöntem diğer bağışıklık hücreleri veya diğer Mukozal doku dendritik hücrelerden yalıtmak için adapte edilebilir.

İnsan dişi üreme yolu dendritik hücreler yalıtım Phenotypical ve fonksiyonel çalışmaları için

The characterization of the human dendritic cells (DCs) resident in mucosal tissues is challenging due to the difficulty in obtaining samples, and the low ...

Bu prosedürün genel amacı, fenotipik ve fonksiyonel özelliklerini değerlendirmek için insan dişi üreme sistemindeki farklı anatomik bölmelerden dendritik hücreleri izole etmektir. Bu yöntem, belirli alt kümelerin anatomik bölümlere ayrılması ve fonksiyonel özellikleri gibi kadın genital sistemindeki dokuda yerleşik dendritik hücrelerle ilgili temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu tekniğin ana avantajı, doku sindirim protokolümüzün yüzey belirteçlerini parçalamamasıdır, bu da dendritik hücrelerin gece boyunca inkübasyon veya hücre aktivasyonu olmadan anında izole edilmesine izin verir.Bu yöntem, dendritik hücreleri insan dişi üreme sisteminden izole etmek için optimize edilmiş olsa da, diğer bağışıklık hücrelerini veya dendritik hücreleri diğer dokulardan izole etmek için de uyarlanabilir. Prosedürü gösteren, laboratuvarımızdaki teknisyenler Fiona Barr ve Jared Fortier olacak. Dokuyu modifiye HBSS ile durulayarak bu işleme başlayın.Dokuyu 100 x 15 milimetre karelik bir Petri kabına yerleştirin ve dokunun kurumasını önlemek için yaklaşık üç mililitre bir sindirim enzimi kokteyli ekleyin. Dokuyu stabilize etmek için forseps kullanırken, sindirim enzimi kokteyline maruz kalan dokunun yüzey alanını artırmak için bir neşter ile kıyın. Dokuyu küçük parçalar halinde kesin.Tüm doku parçalarını kaplayacak kadar sindirim enzimi kokteyli ekleyin ve kapağı Petri kabının üzerine yerleştirin. 37 santigrat derecede% 5 karbondioksit ile yaklaşık 80 rpm'de 45 dakika inkübe edin. Döndürücü hızının sindirim enzimi kokteylini dökülmeden veya kabarcık oluşturmadan iyice karıştırdığından emin olun.45 dakika sonra, doku hazırlığını 4X ve 10X objektiflerle ters çevrilmiş bir ışık mikroskobu ile görselleştirin. Başarılı bir enzimatik sindirim, bu temsili resimde gösterildiği gibi epitel tabakalarını ve bezlerini serbest bırakmalıdır. Tek hücrelerin ayrılmasını steril bir ortamda gerçekleştirin.İlk olarak, 150 x 15 milimetre karelik bir Petri kabına tutuculu 250 mikrometrelik gergin bir ağ yerleştirin ve ağın Petri kabının yüzeyinden yaklaşık 0,5 santimetre yukarıda olduğundan emin olun. Daha sonra, ağı iki mililitre modifiye HBSS ile ıslatın ve sindirilmiş dokuyu ağ üzerine aktarın. 10 mililitrelik bir şırınga pistonunun düz yüzeyini kullanarak, sindirilmiş kıyılmış dokuyu ağ boyunca nazikçe ama sıkıca öğütün.Doku parçaları iyice dağıldıktan sonra, ağı ve tutucuyu Petri kabının iki ila üç santimetre üzerine yükseltin ve ek hücreleri geri kazanmak için üç mililitre modifiye HBSS ile durulayın. Hücre süspansiyonunu 50 mililitrelik konik bir tüpe aktarın. Yeni bir Petri kabının yaklaşık iki ila üç santimetre üzerine tutuculu 20 mikrometrelik bir ağ yerleştirin ve iki mililitre modifiye HBSS ile ıslatın.Hücre süspansiyonunu ağdan geçirin ve altı mililitre modifiye HBSS ile durulayın. Karışık hücre süspansiyonunu toplayın ve 10 dakika boyunca 500 kez g'de santrifüjleyin. Sıvıyı aspire edin ve peleti dört mililitre modifiye HBSS içinde yeniden süspanse edin.Yoğunluk gradyanlı santrifüjleme için karışık hücre süspansiyonunu üç mililitre poliskaroz çözeltisi üzerine katmanlayın. Oda sıcaklığında 500 kez g'de 30 dakika boyunca frensiz santrifüjleyin. Beyaz bandı polisakaroz çözeltisinin üstünden toplayın ve PBS ile yıkayın.Zenginleştirilmiş karışık hücre süspansiyonu toplandıktan sonra, 10X objektifli bir ışık mikroskobu üzerinde bir hemositometre kullanarak hücreleri sayın. Hücre süspansiyonundaki tüm hücreleri 10 dakika boyunca döndürün. Süpernatanı tamamen aspire edin ve atın.Daha sonra ölü hücre temizleme boncukları ekleyin ve oda sıcaklığında 15 dakika inkübe edin. 15 dakika sonra, kalan doku kalıntılarını veya hücre agregalarını korumak için kolonun üstüne 30 mikrometrelik bir filtre yerleştirin. Filtreyi ve sütunu ölü hücre temizleme tamponu ile durulayın.Ardından, hücre süspansiyonunu uygulayın ve boncuk etiketli hücrelerin manyetik sütundan akmasına izin verin. Sütunu üç mililitre ölü hücre temizleme tamponu ile dört kez durulayın. Canlı hücreleri içeren akışı toplayın.Ölü hücrelerin uzaklaştırılmasının ardından hücreleri döndürün. Süpernatanı çıkarın ve hücre peletini manyetik seçim tamponunda, bir kere 10 ila yedi hücrede 80 mikrolitre tampon olarak yeniden süspanse edin. Dendritik hücre popülasyonlarının pozitif seçimi için, CD1a veya CD14 manyetik boncuklar ekleyin ve 15 dakika boyunca dört santigrat derecede inkübe edin.Hücreleri manyetik seçim tamponu ile yıkayın, döndürün, tamponu tamamen çıkarın ve hücreleri en az 500 mikrolitre manyetik seçim tamponunda yeniden süspanse edin. Sütunu mıknatısa takın ve kalan doku kalıntılarını veya hücre agregalarını korumak için sütunun üstüne 30 mikrometrelik bir filtre ekleyin. Filtreyi ve sütunu manyetik seçim tamponu ile durulayın.Hücre askıya alma işlemini sütuna uygulayın. Üç mililitre manyetik seçim tamponu ile üç kez durulayın. Sütunu 15 mililitrelik bir tüpe aktarın.Beş mililitre manyetik seçim tamponu ekleyin ve seçilen hücreleri sütundan serbest bırakmak için pistonu uygulayın. Saflığı artırmak için, yeni bir sütun kullanarak saflaştırma adımlarını geri kazanılan hücrelerle tekrarlayın. Daha sonra, metin protokolünde açıklandığı gibi akış sitometrisi ve mikroskopi ile hücre saflığını değerlendirin.Bu teste başlamadan önce, naif T hücreleri, ticari olarak temin edilebilen bir kit kullanılarak periferik kan mononükleer hücrelerinden izole edilir. Saf T hücrelerini PBS ile iki kez yıkayın. Hücreleri 500 mikrolitre PBS'de yeniden süspanse edin.Protokolün geri kalanı karanlıkta gerçekleştirilir. Biyogüvenlik kabinindeki hücreleri nazikçe girdaplarken, hücrelere 500 mikrolitre 2X hücre proliferasyon boyası çözeltisi ekleyin. Hücreleri 37 santigrat derecede 10 dakika inkübe edin.% 10 insan AB serumu ile hücrelere beş mililitre hücre kültürü ortamı ekleyerek hücre etiketlemesini durdurun. Işıktan koruyarak beş dakika buz üzerinde inkübe edin. Hücreleri yedi dakika boyunca yaklaşık 500 kez g'de santrifüjleyin.Ortamı aspire edin ve hücreleri% 10 insan AB serumu ile beş mililitre hücre kültürü ortamında yeniden süspanse edin. Son santrifüjlemeden önce, saymak için bir dizi hücre alın. Üçüncü yıkamadan sonra, hücreleri hücre kültürü ortamında% 10 insan AB serumu ile istenen hücre konsantrasyonunda yeniden süspanse edin.Dendritik hücre allojenik naif T hücresi ko-kültürünü başlatmak için, izole edilmiş dendritik hücreleri ve naif T hücrelerini, dendritik hücrelerin T hücrelerine bir ila 15 oranında 96 oyuklu, yuvarlak tabanlı bir plakada kaplayın. Hücrelerin kuyu ortasına yerleştirildiğinden emin olmak için plakayı üç dakika boyunca yaklaşık 500 kez g'de santrifüjleyin. Altı gün boyunca 37 santigrat derecede inkübe edin.Hücreleri mikroskopi ile izleyin. Altı gün sonra, metin protokolünde açıklandığı gibi akış sitometrisi ile hücre proliferasyonunu değerlendirin. Bu grafik, her bir dişi üreme sistemi bölmesinde, endometriyumda, endoservikste ve ektoservikste doku işleme ve ölü hücre çıkarılmasından sonra geri kazanılan toplam canlı hücre sayısı aralığını gösterir.Manyetik boncuk izolasyonundan sonra doku gramı başına geri kazanılan canlı dendritik hücrelerin sayısı daha sonra gösterilmiştir. İzole edilen hücrelerin dendritik morfolojisi, Giemsa boyamasını takiben mikroskopi ile belirlendi. Boncuk izolasyonu öncesi ve sonrası fenotipik belirteçlerin ekspresyonu akım sitometrisi ile belirlendi.CD1a-pozitif ve CD14-pozitif boncuk izolasyonundan sonra, saflık% 85 ile% 92 arasında değişmiştir Dendritik hücre işlevselliğini değerlendirmek için bir allojenik stimülasyon testi yapıldı. Proliferasyon sırasında T hücresi kümesi oluşumu, proliferasyon boya boyaması ile doğrulandı. Proliferasyon daha sonra akış sitometrisi ile ölçüldü.Burada, karışık hücre süspansiyonundaki farklı dendritik hücreleri tanımlamak için geçit stratejisi gösterilmektedir. Çok renkli çizimlerdeki her geçitli nüfus bir sonraki panelde gösterilir. Geçit stratejisini takiben, spesifik dendritik hücre alt kümeleri tanımlanır.Doku dendritik hücreleri nadir popülasyonlar olduğu için düşük hücre sayıları beklenir. Bir kez ustalaştıktan sonra, dokulardan dendritik hücre izolasyonu, uygun şekilde yapılırsa dört ila beş saat içinde yapılabilir. Bu videoyu izledikten sonra, tek bir karışık hücre süspansiyonu oluşturmak için dokuların enzimatik olarak nasıl sindirileceğini ve işleneceğini ve daha fazla karakterizasyon için dendritik hücrelerin manyetik boncuk seçimini nasıl gerçekleştireceğinizi iyi anlamalısınız.

isolation-dendritic-cells-from-human-female-reproductive-tract-for

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Fare akciğer dendritik hücreler yüksek oranda saflaştırılmış açıklanmıştır. Özgül ağırlık, geleneksel dendritik hücre alt izolasyon verilir.

Fare Akciğer Dendritik Hücrelerinin İzolasyonu

Burada, fare intestinal dendritik hücrelerinin (DC'ler) ve makrofajların hızlı izolasyonu için bir metodolojiyi detaylandırıyoruz. İntestinal DC'lerin ve makrofajların fenotipik karakterizasyonu çok renkli akış sitometrik analiz kullanılarak gerçekleştirilirken, fonksiyonel çalışmalar için yüksek saflıkta popülasyonlar elde etmek amacıyla manyetik boncuk zenginleştirmesi ve ardından hücre ayıklama yöntemi kullanılır.

Fare Barsak ayrı dendritik hücreler ve makrofajlar İzolasyonu ve Karakterizasyonu

Fare genital lenfosit yalıtmak için verimli bir şekilde tarif edilmiştir. Bu yöntem verimli izolasyonu sağlamak için enzim sindirim ve Percoll degrade ayrılık yararlanır. Bu teknik, diğer tür kullanım için de...

Fare Genital Sistemlerinin Mukozanin gelen Lenfosit İzolasyonu

Bu protokol, antijen yoğunluğuna tek bir hücre süspansiyonu santrifüj ve ilgi hücre popülasyonlarının son olarak manyetik ve / veya FACS ayıklama, ardından doku enzimatik sindirimi farklı adımları ile insan timus hücreleri sunan izole etmek için bir yöntem göstermektedir.

İnsan Thymus ile myeloid dendritik hücreleri ve epitel hücreleri İzolasyonu

Farklı dendritik hücre alt kümeleri, lenfoid organlarda nadir popülasyonlar olarak bulunur ve bu nedenle immünolojik deneyler için yeterli sayıda ve saflıkta izole edilmesi zordur. Burada, fare splenik dendritik hücrelerinin şu anda bilinen tüm ana alt kümelerinin izolasyonu için yüksek verimli, yüksek verimli bir yöntem açıklıyoruz.

Fare Dendritik Hücre Alt Grupları İzolasyonunda bir Verimli ve Yüksek Verim Yöntem

Bu çalışma, in vitro dendritik hücreler (DC'ler) elde etmek için iki farklı insan monosit izolasyonu yöntemini karşılaştırmaktadır. Monositler yapışma ile seçilir veya manyetik ayırma ile negatif olarak zenginleştirilir. Monosit verimi ve canlılığı ile MDDC canlılığı, proliferasyonu ve CD11c/CD14 yüzey marker ekspresyonu her iki yöntem arasında karşılaştırılacaktır.

Görüntüleme Sitometrisi ile İnsan Monosit türetilmiş dendritik hücrelerle Karakterizasyonu: İki Monosit İzolasyon Protokoller Arasında Bir Karşılaştırma

Burada, intraepitelyal gama delta T hücrelerinin analizi için insan endoservikal intraepitelyal lenfositlerini elde etmek için bir izolasyon yöntemini açıklıyoruz. Bu protokol, endoservikal gama delta T hücrelerinin manyetik boncuklar veya hücre sınıflandırması ile saflaştırılması için genişletilebilir.

İnsan Endoservikal Gamma Delta T Hücreleri İzolasyon ve Akım Sitometrisi Analizi

Monosit kaynaklı DC (MoDC) tehlike ilişkili molekülleri küçük miktarlarda hissi olabilir ve bu nedenle kolayca astarlanmalıdır. MoDC yalıtım kan ve tümörleri ve onların harekete geçirmek bağışıklık kompleksleri ile onların erken harekete geçirmek önlemek için düşünülmesi gereken önemli önlemler vurgulayarak süre için detaylı bir protokol sağlar.

Yalıtım Protokolü fare monosit kaynaklı dendritik hücreler ve onların sonraki Vitro harekete geçirmek ile tümör bağışıklık kompleksleri

Bu iletişim kuralı bir yöntem için birincil insan decidual hücreleri çeşitli uygulamalar (Yani immunocytochemistry, Akış Sitometresi, vb) için kullanılan terim placentae fetal membranlar toplanan yalıtım gösterir hedefleyen farklı hücre popülasyonlarının gebelik komplikasyonları olarak rol çalışmak için.

Dönem Placentae Fetal membranlar birincil insan Decidual hücre izolasyon

Burada, geliştirmek ve tolerogenic dendritik hücreler (TolDCs) karakterize ve onların immunotherapeutic yardımcı programı değerlendirmek için bir protokol mevcut.

Geliştirme ve işlevsel fare Tolerogenic dendritik hücrelerin karakterizasyonu

Burada, Echinococcus granulosus'tan in vitro kültür koşullarını, izolasyonu ve hücre dışı veziküllerin (EV'ler) artan oluşumunu açıklıyoruz. Küçük EV'ler, dinamik ışık saçılımı ve transmisyon elektron mikroskobu ile karakterize edildi. Kemik iliği kaynaklı dendritik hücrelerin tutulumu ve fenotipik modülasyonları, konfokal mikroskopi ve akış sitometrisi kullanılarak incelendi.

Echinococcus granulosus'tan Küçük Hücre Dışı Veziküllerin İzolasyonu ve Dendritik Hücre Alımı

Öğrenin, insan dişi üreme yolundan dendritik hücre izolasyonu ve fenotipik-fonksiyonel analiz yöntemini. Bu teknik, yüzey belirteçlerini koruyarak hızlı izolasyon sağlar ve immünoloji araştırmaları için uygundur.

İnsan dişi üreme yolu dendritik hücreler yalıtım Phenotypical ve fonksiyonel çalışmaları için

Daha fazla video keşfet