-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Yenidoğan fare beyin Striatal hücrelerdeki genetik manipülasyon için stereotaksik cerrahi
Yenidoğan fare beyin Striatal hücrelerdeki genetik manipülasyon için stereotaksik cerrahi
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Stereotaxic Surgery for Genetic Manipulation in Striatal Cells of Neonatal Mouse Brains

Yenidoğan fare beyin Striatal hücrelerdeki genetik manipülasyon için stereotaksik cerrahi

Full Text
16,283 Views
09:44 min
July 10, 2018

DOI: 10.3791/57270-v

Shih-Yun Chen1, Hsiao-Ying Kuo1, Fu-Chin Liu1,2

1Institute of Neuroscience,National Yang-Ming University, 2Brain Research Center,National Yang-Ming University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article outlines a stereotaxic surgery protocol for microinjecting reagents into the striatum of neonatal mouse brains using a homemade head-fixed device. This technique is particularly beneficial for genetic manipulation of neuronal cells within specific brain regions during neonatal development.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Genetic Manipulation
  • Developmental Biology

Background

  • Stereotaxic surgery is a critical method for targeting specific brain regions.
  • Neonatal brain development is vital for understanding genetic influences on neurodevelopment.
  • Creating a homemade device makes this method more accessible and cost-effective.

Purpose of Study

  • To develop a straightforward protocol for genetic manipulation in neonatal mice.
  • To enhance precision in microinjections using a homemade device.
  • To enable the study of neurodevelopmental processes at pivotal stages.

Methods Used

  • The primary method involves stereotaxic surgery within a controlled environment.
  • This study uses neonatal mice as a biological model for observing early genetic modifications.
  • The protocol includes detailed steps for anesthetizing pups and positioning them accurately for injections.
  • It emphasizes careful handling of surgical instruments to prevent complications during the procedure.

Main Results

  • Successful microinjections resulted in widespread expression of GFP and tdTomato in striatal cells, indicating effective genetic manipulation.
  • Results suggest a successful implementation of Cre loxP mediated recombination within the targeted brain regions.
  • The study supports the potential for subsequent research on genetic impacts during postnatal brain development.

Conclusions

  • This study demonstrates a feasible approach for conducting targeted genetic injections during early brain development.
  • The method is accessible and can be adapted for various experimental needs in neuroscience.
  • It underscores the importance of precise methodologies in understanding neuronal mechanisms and developmental biology.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using a homemade device for surgeries?
A homemade device can be more cost-effective and customizable, allowing for greater accessibility and flexibility in experimental designs.
How is the neonatal pup prepared for injection?
The pup is anesthetized using hypothermia before being positioned in a head tray secured to the stereotaxic apparatus.
What types of outcomes can be measured after the procedure?
Key outcomes include gene expression patterns and potential alterations in neurodevelopment as observed through imaging and molecular assays.
Can this method be adapted for other types of injections?
Yes, the protocol can be modified for different reagents or therapeutic agents, depending on the experimental goals.
What are some limitations of this technique?
Challenges include ensuring accurate targeting during injections and the potential for variability in response based on handling and surgical precision.
How does this method facilitate studying genetic influences in development?
By allowing for precise genetic modifications in specific brain regions, researchers can investigate the roles of targeted genes in neurodevelopment.

Biz yenidoğan fare beyni striatum microinjecting reaktifler için ev yapımı bir baş-sabit aygıt ile bir protokol stereotaksik cerrahi açıklamak. Bu teknik, yenidoğan fare beyni, özel bölgelerin nöronal hücrelerin genetik manipülasyon sağlar.

Bu yöntem, doğum sonrası gelişim gibi genetik ve nöro gelişimdeki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu tekniğin temel avantajı, ev yapımı cihazla basit bir teknik olmasıdır. Bu yöntemin görsel olarak gösterilmesi çok önemlidir, çünkü beyne hedefli enjeksiyonlar yapmak ayrıntılara tam dikkat gerektirir.

Başlamak için, yenidoğan yavrularını stereotaksik bir aparatta kullanmak için bir tutucu yapın. İlk önce baş tepsisini yapın. Yenidoğan yavrusunun başı için bir açıklık yapmak için 1,5 mililitrelik bir santrifüj tüpünün tabanının yaklaşık 1 / 5'ini kesin.

Ardından, stereotaksik aparatın kaidesine uyan boş bir pipet ucu kutusu seçin. Ardından, başlık tepsisini uç kutusunun tabanına sabitlemek için sıcak tutkal kullanın. Ardından, kafası sabitken yavrunun gövdesini destekleyebileceği kutuya bir doku gömme kaseti yapıştırın.

Şimdi enjeksiyon için 30 gauge paslanmaz çelik iğneler hazırlayın. İlk olarak, bir cam şişede üç gün boyunca kloroformda bekleterek önceden temizleyin. Üç gün sonra, iğneleri dikkatlice çıkarın ve 20 dakika boyunca mutlak etanol ile ve 50 rpm çalkalama ile yıkayın.

Daha sonra, yıkama başına 10 dakika boyunca% 70 etanol içinde üç kez, ayrıca çalkalama ile yıkayın. Yıkadıktan sonra iğneleri kurumaya bırakın ve kullanılana kadar oda sıcaklığında temiz bir kutuda saklayın. Mikroenjeksiyon düzeneği için, PE10 borusunu 26 gauge 10 mikrolitrelik bir şırıngaya köprülemek için beş santimetrelik bir PE20 polietilen boru segmenti kullanın.

Bağlantıyı siyanoakrilat ile sabitleyin. Ardından, yeni 30 gauge enjeksiyon iğnesini PE10 tüpünün diğer ucuna monte edin. Şimdi 10 mikrolitrelik mikroenjeksiyon şırıngasını yükleyin.

Pistonu çıkarın ve borudaki havayı çıkarmak için tertibatı otoklavlanmış damıtılmış su ile geri yüklemek için 25 gauge başka bir şırınga kullanın. Ardından pistonu mikrolitre şırıngaya geri yerleştirin ve pistonu namluda sadece iki mikrolitre damıtılmış su kalana ve daha az olmayana kadar itin. Ardından, mikrolitre şırıngayı mikro akışlı şırınga pompasına dikkatlice monte edin.

Daha sonra, deneysel virüs sıvılarında küçük miktarlarda filtrelenmiş %0.1 Hızlı Yeşil boyayı bir parça parafilm üzerine pipetleyin. Şimdi, enjeksiyon iğnesi ile boru arasında bir hava kabarcığı görünene kadar şırıngaya az miktarda hava aspire edin. Ardından, mikroenjeksiyon tüpündeki sıvıların akışını test etmek için 0,7 mikrolitre filtrelenmiş Fast Green solüsyonu yükleyin.

Akış iyiyse, ikinci bir hava kabarcığı yapmak için küçük bir hacim daha hava aspire edin ve ardından enjeksiyon solüsyonunu mikroenjeksiyon tüpüne yükleyerek takip edin. Mikroenjeksiyon iğnesini stereotaksik cihaza takın ve sabitleyin ve yenidoğan farelerin mikroenjeksiyonuna devam edin. Ameliyata hazırlanırken, stereotaksik aleti %70 etanol ile iyice silin ve cerrahi aletleri %70 etanol ile sterilize edin.

Daha sonra hipotermi kullanarak bir yenidoğanı uyuşturun. Yavruyu bir lateks eldivenin içine yerleştirin ve beş dakika boyunca boynuna kadar kırılmış buza batırın. Ardından, pedal refleksi olmadığından emin olmak için yavrunun ayaklarını forseps ile sıkıştırın.

Ardından, yavruyu eldivenle birlikte baş tepsisine yerleştirin ve hipotermi anestezisini sürdürmek için lateks manşonun etrafına biraz kırılmış buz koyun. Ardından yavrunun kafasını %70 etanol ile ovalayın ve lambda dönüm noktasını bulun. Bir işaretleyici ile işaretleyin.

Ardından iğne ucunu lambdaya doğrultun ve ön/arka ve medial/lateral koordinatları sıfıra ayarlayın. Daha sonra, bir beyin atlasına danışarak, enjeksiyon kolunu hedef bölgeye hareket ettirin. Örneğin, P2 yavrularının striatumu lambdanın 2.4 milimetre önünde, orta hattın her iki tarafında 1.0 milimetre ve ventralde 1.7 milimetredir.

Ardından, bir kalem kullanarak Hızlı Yeşil boyanın PE10 tüpü üzerindeki konumunu işaretleyin. Daha sonra, iğne ucu kafatasının yüzeyine temas edene kadar iğneyi deriden ve kafatasından yavaşça nüfuz etmeye başlayın. Sırt/ventral koordinatı sıfır olarak ayarlayın.

Ardından iğneyi yavaşça hedef bölgeye indirin. Yerleştirildikten sonra, parankimin normal şekline dönmesine izin vermek için bir dakika bekleyin. Daha sonra mikroenjeksiyon programını dakikada 100 nanolitre hızında çalıştırın.

Enjeksiyon sırasında, Hızlı Yeşil boyanın PE borudaki hareketini izleyin. İğne ucu kafatasının yüzeyine temas edene kadar iğneyi deriden ve kafatasından yavaşça nüfuz ettirmek çok önemlidir. Enjeksiyon sırasında, Hızlı Yeşil boyanın PE boruda hareket etmesini izlemek zorunludur.

Enjeksiyon tamamlandıktan sonra, bir dakika bekleyin ve ardından iğneyi yavaşça nüfuz edilen DV derinliğinin 1 / 2'sine getirin. Ardından, iğneyi yavrunun kafasından yavaşça çekmeye devam etmeden önce 30 saniye daha bekleyin. Enjeksiyonun tamamlanmasından sonra, iğneyi yavaşça nüfuz edilen DV derinliğinin 1 / 2'sine getirmeden önce bir dakika beklemek önemlidir.

Ardından, iğneyi yavrunun kafasından yavaşça çekmeden önce 30 saniye daha bekleyin. Hedeflenen tüm bölgelere enjekte edildikten sonra, yavruyu 33 santigrat derecelik bir inkübatörde 20 dakika ısıtın. Sternal yaslanma kendini kazanana kadar yavruyu her beş dakikada bir kontrol edin.

Daha sonra yavruyu barajına geri koyun. GFP ile kaynaşmış Cre DNA rekombinaz eksprese eden 200 nanolitre virüs, Ai14 farelerinin P2 striatumuna enjekte edildi. Bu fareler, bir loxP yan durdurma kasetinin Cre aracılı silinmesi üzerine tdTomato raportör genini ifade etti.

Beyinler, GFP ve tdTomato'nun immün boyaması için P14'te toplandı. Striatum boyunca birçok AAV transdüksiyonlu GFP pozitif hücre mevcuttu, bu da striatal hücrelerin AAV EGFP Cre virüsleri tarafından geniş bir enfeksiyona uğradığını gösteriyordu. TdTomato'nun benzer geniş ekspresyonu striatumda da bulundu.

Yüksek büyütmede mikroskobik incelemede, açıkça tüm GFP pozitif striatal hücrelerin tdTomato raportör genini birlikte eksprese ettiği bulundu. Ayrıca, globus pallidus'taki muhtemelen akson terminallerinde, substantia nigra pars reticulata'da, striatonigral ve striatopallidal projeksiyon nöronlarının hedef bölgelerinde tdTomato sinyalleri tespit edildi. Birlikte, bu sonuçlar, yenidoğan striatal nöronlarında Cre aktivitesinin AAV aracılı ekspresyonu ile indüklenen başarılı bir Cre loxP aracılı DNA rekombinasyonunu göstermektedir.

Bir kez ustalaştıktan sonra, bu teknik uygun şekilde yapılırsa bilateral striatal enjeksiyon için 30 dakika içinde yapılabilir. Bu prosedürü denerken, bunun sabır ve dikkat gerektiren hassas bir yenidoğan beyin ameliyatı olduğunu hatırlamak önemlidir. Bu prosedürden, doğum sonrası gelişim sırasındaki olgunlaşmayı analiz etmek için optogenetik ve kemogenetik gibi diğer yöntemler de uygulanabilir.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Neuroscience sayı: 137 stereotaksik cerrahi striatum yenidoğan fareler mikroenjeksiyon AAV Cre loxP gen manipülasyon

Related Videos

Yetişkin Rat spesifik Beyin Alanlarının eksitotoksik Lezyon için Stereotaksik Cerrahi

12:45

Yetişkin Rat spesifik Beyin Alanlarının eksitotoksik Lezyon için Stereotaksik Cerrahi

Related Videos

36.4K Views

Tarafından Embriyonik ve Erişkin Nöral Kök Hücre Genişletme In Utero Elektroporasyon veya Viral Stereotaksik Enjeksiyon

19:45

Tarafından Embriyonik ve Erişkin Nöral Kök Hücre Genişletme In Utero Elektroporasyon veya Viral Stereotaksik Enjeksiyon

Related Videos

17.5K Views

Bir fare modelinde stabil genetik modifikasyon için virüslerin stereotaksik enjeksiyonu

04:12

Bir fare modelinde stabil genetik modifikasyon için virüslerin stereotaksik enjeksiyonu

Related Videos

282 Views

SB Aracılı Transpozisyon Kullanılarak Glioblastoma İndüksiyonu: SB Plazmidinin Yenidoğan Fare Beynine Transpozon Aracılı Entegrasyonu Kullanılarak Yeni Fare Modeli Oluşturmak İçin Bir Teknik

05:11

SB Aracılı Transpozisyon Kullanılarak Glioblastoma İndüksiyonu: SB Plazmidinin Yenidoğan Fare Beynine Transpozon Aracılı Entegrasyonu Kullanılarak Yeni Fare Modeli Oluşturmak İçin Bir Teknik

Related Videos

2.5K Views

Bir Fare Yavrusu Striatumunda Gen Manipülasyonu için Viral Bir Vektörün Stereotaktik Mikroenjeksiyonu

04:15

Bir Fare Yavrusu Striatumunda Gen Manipülasyonu için Viral Bir Vektörün Stereotaktik Mikroenjeksiyonu

Related Videos

501 Views

Fare beyninde hedeflenen nöronal gen düzenlemesi için stereotaksik viral enjeksiyon

04:17

Fare beyninde hedeflenen nöronal gen düzenlemesi için stereotaksik viral enjeksiyon

Related Videos

766 Views

İnsan Kaynaklı İnternöron Öncü Hücrelerinin Fare Yavrusu Hipokampusuna Nakli

02:26

İnsan Kaynaklı İnternöron Öncü Hücrelerinin Fare Yavrusu Hipokampusuna Nakli

Related Videos

332 Views

Nöral Analizi Yetişkin Fare V-SVZ'una Hücre istikrarlı ve verimli Genetik Modifikasyon Kök Hücre Özerk ve Non-özerk Etkileri

08:48

Nöral Analizi Yetişkin Fare V-SVZ'una Hücre istikrarlı ve verimli Genetik Modifikasyon Kök Hücre Özerk ve Non-özerk Etkileri

Related Videos

9.7K Views

Korteks, Hippocampus-, Thalamus-, Hypothalamus-, Lateral Septal Nucleus- ve Striatum özgü In Utero C57BL / 6 Fare Elektroporasyon

06:00

Korteks, Hippocampus-, Thalamus-, Hypothalamus-, Lateral Septal Nucleus- ve Striatum özgü In Utero C57BL / 6 Fare Elektroporasyon

Related Videos

28.9K Views

Koku Duyu Nöronlar lentivirüs aracılı Genetik Manipülasyon ve Görselleştirme In vivo

11:34

Koku Duyu Nöronlar lentivirüs aracılı Genetik Manipülasyon ve Görselleştirme In vivo

Related Videos

16.1K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code