April 24th, 2018
Bu çalışmada, akut, kronik ve multigenerational bir bioassay turkuaz killifish Nothobranchius furzeritek ve kombine stresler etkilerini çalışmaya açıklar. Bu iletişim kuralı hayat-Tarih özellikleri (ölüm, büyüme, verimlilik, ağırlık) ve kritik termal maksimum çalışma için tasarlanmıştır.
Bu deneyin genel amacı, toksik maddelerin turkuaz killifish Nothobranchius furzeri üzerindeki etkilerini incelemektir. Bu yöntem, stresörlerin önemli yaşam öyküsü özellikleri üzerindeki uzun vadeli etkileri, olgunlaşma süresi, büyüme veya doğurganlık gibi ekotoksikoloji alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu deneyin temel avantajı, çok hızlı bir yaşam döngüsüne sahip bir omurgalı kullanmamızdır, bu da zaman ve maliyet açısından verimli deneylerle sonuçlanır.
Bu killifish, stres faktörlerinin uzun vadeli ve çok kuşaklı etkilerinin etkisini incelemek için ideal modellerdir. Sonuç olarak, toksik maddelerin çevresel etkilerinin daha iyi anlaşılmasına katkıda bulunacaklardır. Bu yöntem, toksik maddelerin ve sıcaklığın birleşik etkileri hakkında yeni bilgiler sağlayabilse de, UV radyasyonu, gıda yoksunluğu ve PH değişiklikleri gibi diğer stres faktörlerine de uygulanabilir.
Killifish ile çalışmak zordur, çünkü ekotoksikolojide yeni bir model sistemdir ve birçok kirleticiye karşı hassasiyetleri hala bilinmemektedir. Bu deneysel yöntem fikrini, killifish'in olağanüstü kısa ömrünü ve rafta yıllarca saklanabilecek uykuda yumurta üretme kapasitelerini ilk öğrendiğimizde geliştirdik. Bu yöntemin görsel olarak gösterilmesi, deneyin türü ve bireylerin ele alınması sonuçları değiştirebileceğinden kritik öneme sahiptir.
Başlamak için, D3 aşamasında altın gözlerin varlığıyla tanınabilen gona ışını hayvanat bahçesini veya GRZ yumurtalarını seçin. Ve bunları iki litrelik plastik bir tanka nazikçe aktarmak için yumuşak bir cımbız kullanın. Kuluçka ortamının bir santimetresini 12 santigrat derecede ekleyin ve su sıcaklığının kademeli olarak oda sıcaklığına ayarlanmasına izin verin.
24 saat sonra, yavruları konsantre bir dozda taze yumurtadan çıkmış artemia nauplii ile besleyin ve balık ortamı ekleyerek su derinliğini beş santimetreye çıkarın. Yumurtadan çıktıktan 48 saat sonra, sağlıklı, yüzer larvaları, metin protokolünde açıklandığı gibi maruz kalma ortamı ve toksik madde konsantrasyonları olan ayrı kaplara aktarın. Her sabah ve akşam, balıkları ölüm, stres ve hastalık açısından kontrol edin ve metin protokolüne göre LC50 değerlerini hesaplayın.
Tek tek kapları doğru maruz kalma ortamıyla doldurarak kronik bir maruz kalma denemesi yapın ve kavanozu havalandırmak için bir hava tüpü ekleyin. Deneyin geri kalanı için balıkları kavanozlara aktarın. Kuluçkadan veya DPH'den iki ila 23 gün sonra, balık artemia nauplii'yi günde iki kez ad libitum ile besleyin.
Daha sonra, 37 DPH'ye kadar doğranmış chironomus larvaları ile takviye ettikten sonra, balıkları her gün günde iki kez ad libitum beslemek için donmuş chironomus larvalarını kullanın. Büyümeyi belirlemek için, balıkları rezervuardan ortamla doldurulmuş bir Petri kabına aktararak vücut büyüklüğünü haftalık olarak ölçün. Sabit bir yükseklikte balığın dört ila beş boyut kalibre edilmiş sırt görünümü resimlerini çekin.
Ve bunları dijital olarak analiz etmek için uzamsal bir ölçüm programı kullanın. 15 DPH'den itibaren, olgunlaşmayı belirlemek için erkek balığın renklenmesini görsel olarak inceleyin. Evlilik renklenmesinin ilk belirtileri için yüzgeçleri kontrol edin ve yumruk renginin göründüğü günü erkek olgunlaşma süresi için bir vekil olarak kullanın.
30 DPH'den itibaren, her tedavide olgun erkek ve dişi çift için bir litrelik bir yumurtlama tankı kurarak, erkeğin akvaryumundan maruz kalma ortamını kullanarak doğurganlığı kontrol edin ve yumurtlama substratı ile destekleyin. Hem erkeği hem de dişiyi yumurtlama tankına aktarın. Ve yumurtlama kaplarının etrafındaki insan aktivitesini veya rahatsızlığı en aza indirirken, iki saat boyunca yumurtlamalarına izin verin.
Daha sonra, yumurtlama substratındaki yumurtaları döndürecek olan suyu gereksiz yere karıştırmadan, balıkları nazikçe orijinal barınma kaplarına geri aktarın. Yumurtlama substratını 500 mikrometrelik bir ağ üzerine dökerek yumurtaları süzün. Yumurtaları sayın ve Petri kaplarındaki nemli turba yosununa aktarmak için bir pipet kullanın.
Ölü yumurtaları günlük olarak çıkarın. Bir hafta sonra, Petri kabını kapatmak için sızdırmazlık filmi kullanın. Ve D3 fazına hemen geçiş için 28 santigrat derecede, 14 ila 10 aydınlıktan karanlığa bir döngüyle sıcaklık kontrollü bir inkübatörde saklayın.
Uzun süreli koruma için, yumurtaları 17 santigrat derecede sabit karanlıkta saklayın, bunun üzerine yumurtalar uyku fazına girer ve birkaç yıl boyunca canlı kalır. Uyuyan yumurtalardan balık toplamak için, yumurtaları D3 fazına geçmelerine izin vermek için yaklaşık üç hafta boyunca 28 santigrat dereceye ve 14 ila 10 aydınlıktan koyuya bir döngüye aktarın. Yetişkin balıkların kritik termal maksimumunu veya CT max'ını ölçmek için, dakikada 0,33 santigrat derece sabit bir oranda ısıtılan, sürekli dolaşan bir su banyosu ile başlayın.
Her bir balık için birkaç litrelik akvaryum ekleyin. Su, balığın deneysel yetiştirme sıcaklığına ulaştığında, balığı akvaryuma ekleyerek parkura başlayın. CT max banyosunun bir litrelik akvaryumundaki sıcaklığı her beş dakikada bir izlemek için dijital bir termometre kullanın.
Balık dorsal ventral dik pozisyonunu koruyamadığında veya yoğun bir şekilde seğirmeye başladığında, kritik maksimum sıcaklık olan bir litrelik akvaryumdaki sıcaklığı ölçün. Ardından, balığı geri kazanım için deneysel yuvasına geri aktarın. Bu grafikte gösterildiği gibi, enfurzeri'nin farklı bakır konsantrasyonlarına akut maruziyeti, artan toksik madde konsantrasyonu ile mortalitede bir artışa neden olmuştur.
LC50 değerleri zamanla azalır, yani azalan konsantrasyonlarla, kopyaların %50'si ölmeden önce daha fazla zaman geçer. Kronik maruziyet tahlilinde, su bazlı bakır kullanılarak, test edilen en yüksek konsantrasyonda yetiştirildiğinde üç hafta sonra ölçülen balıkların uzunluğu daha kısadır. Su bazlı klorpirifos veya CPH kullanılarak yapılan bu deneyde, 28 santigrat derecede yükseltildiğinde, balıklar en yüksek CPF konsantrasyonuna maruz kaldıklarında daha az yumurta üretti, ancak 30 santigrat derecede, kontrol balıkları her iki CPF konsantrasyonuna maruz kalan balıklardan daha fazla yumurta üretti, bu da CPF kombinasyonunun ve sıcaklıktaki artışın doğurganlığı her bir stres etkeninden daha fazla etkilediğini gösterir.
Burada bildirilen, 28 ve 30 santigrat derecede CPF'ye maruz kalan enfurzeri erkeklerinde ilk renklenme belirtilerinin ortaya çıktığı ortalama yaştır. Bir litre CPF'ye dört mikrograma maruz kaldıktan sonra, erkek balığın olgunlaşması kontrol balığına göre %18 daha uzun sürdü. 24 veya 28 santigrat derecede yetiştirilen balıkların CT max'ının ölçülmesi ve kirletici 3, 4-DCA'ya maruz kalmanın düzensiz yüzme, artan operküler hareket ve dorsoventral olarak dik pozisyonda kalma yeteneğinin kaybı, balıklar 24 santigrat derecede yükseltildiğinde daha düşük bir sıcaklıkta meydana geldi.
Bir kez ustalaştıktan sonra, doğurganlık üzerindeki etkileri de dahil olmak üzere bu protokol iki ay içinde ölçülebilir. Tüm üreme dönemi ve hatta bir sonraki nesil üzerindeki etkileri ölçmek için protokol uzatılabilir, ancak yine de altı ay içinde gerçekleştirilebilir.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Bu çalışma, Turquoise killifish, Nothobranchius furzeri üzerinde stres faktörlerinin etkilerini araştırmak için bir biyoassay sunar. Ölüm oranı, büyüme ve doğurganlık gibi yaşam öyküsü özelliklerine odaklanır ve ekotoksikoloji hakkında bilgiler sağlar.
The turquoise killifish model enables rapid assessment of toxicant effects on vertebrate life-history traits, supporting early-stage target validation and mechanistic de-risking in environmental health research. Its short life cycle and dormant egg storage allow cost-efficient, scalable screening for predictive confidence in compound safety profiling. This approach aids portfolio triage by identifying biological risks associated with environmental exposures prior to downstream development.
The method integrates into the discovery continuum from hypothesis testing to lead identification by providing quantitative, vertebrate-based readouts of stressor impact on conserved biological processes.