Name: Uzun kodlamayan RNA, RNA hedefleri tanımlamak için RNA Pull-down yordamı (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-04-10T14:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 36 s
Description: Keşfedin uzun kodlamayan RNA'ların RNA hedeflerini belirlemek için RNA pull-down yöntemini. Bu teknik, hücre kültürleri ve doku örneklerinde Neat1 ve Malat1 gibi lncRNA etkileşimlerini incelemek için kullanılır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Bu eser Aix-Marseille Üniversitesi ve CNRS tarafından desteklenen ve Pfizer laboratuvarlar bir hibe tarafından finanse.

Tüm yordamları Avrupa Ekonomik Topluluğu ile sıkı uygun bakım ve laboratuvar hayvanlarının (86/609/EEC ve 2010/63/UE) ve bir lisans altında kullanımı için verilen ö. Becquet (Préfecture des Bouches-du-Rhône, yetkilendirme No 13-002) yapıldı.
1. sonda tasarım
<ol><li>
Faiz lncRNA birincil dizisini kullanarak, "RNAstructure Web sunucusu"5ikincil yapısı oluşturmak. Not: Bu sitede farklı algoritmaları kullanılabilir. Sonda tasarımlar için en iyi sonuçları vermek üç tahmin araçları: "Kat" (en düşük fiyat serbest enerji yapısı), "MaxExpect" (son derece olası baz çifti) ve "Probnot" (muhtemel baz çifti pseudoknots de dahil olmak üzere). Bu üç analizleri gerçekleştirilen ve karşılaştırıldığında. Viyana RNA websuite7gibi diğer web sunucuları da kullanılabilir.<ol>
<li>İç baz eşleşmesi düşük bir olasılık görüntüleyen ve anti-anlamda Oligonükleotid probları bu bölgeler için güçlü bir ilgi ile 25 üslerinin tasarım bölgeleri seçin. Not: Bu sondalar GC içeriğini 40 ile % 60 arasında oluşan. Bir hizalama arama aracı (patlama) kullanarak, seçili Anti-anlamda Oligonükleotid probları seçilen hücre sisteminde ifade diğer RNA nükleotit dizilerinde tanıyor musunuz emin olun.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Ayrıca ben de benzeşme faiz lncRNA için ne de diğer RNA serileri için faiz genom görüntüleyen bir non-spesifik DNA Oligonükleotid sonda 25 üslerinin tasarımı.</li>
	<li>Probları biotin ile 3'-sonunda sipariş. Not: steric engel azaltmak için Oligonükleotid ve Biotin arasındaki mesafe triethyleneglycerol rondela ile arttırılması gerekir. Bir en iyi sonuç için ve açılan sonuçlarını özgüllük değerlendirmek için bu tasarım için 3 farklı Anti-anlamda Oligonükleotid probları tavsiye edilir ve daha sonra onların verimliliği deneysel olarak karşılaştırmak için.</li>
</ol>2. cross-linking
<ol><li>
Kültürlü hücre cross-linking
	<ol>
<li>Kültür GH4C1 sommatolactotroph hipofiz hücreleri Ham'ın F10 orta % 15 at serum ve % 2 fetal buzağı serum ile desteklenmiştir. İzdiham 78.5 cm2 kültür tabak içinde kadar hücreleri büyümek. Bu yaklaşık 1 x 107 hücrelere karşılık gelir.</li>
		<li>Hücre kültür orta Konfluent GH4C1 78.5 cm2 kültür tabağı kaldırmak, durulama 1 fosfat orta hacmi x ile serum fizyolojik (PBS) arabelleğe alınmış</li>
		<li>PBS (10 mL) 78.5 cm2 yemekler için; %1 paraformaldehyde çözeltilerine ile hücreleri tamir Bu çözüm %4 paraformaldehyde hisse senedi eriyik--dan taze hazırlanmalıdır. Ajitasyon (RT) oda sıcaklığında 10 dakika altında çapraz. Dikkat: Paraformaldehyde (PFA) toksik ve dikkatli bir şekilde ele alınması gerekir.</li>
		<li>Glisin 1.25 M (10 mL paraformaldehyde çözeltisi başına 1 mL); 1/10 hacmi ekleyerek paraformaldehyde eylem gidermek 5 dk RT. az tahrik</li>
		<li>Medya tarafından aspirasyon ve durulama iki (5 dk) 1 X PBS orta hacmi ile atmak.</li>
		<li>PBS 1'e karşılık gelen bir birim eklemek/medya, toplamak hücreleri hücre kazıyıcı ve sonra aktarmak için bir santrifüj tüpü hacmi 10.</li>
		<li>5 min için 4 ° C'de 510 g de spin.</li>
		<li>Mümkün olduğu kadar süpernatant kaldırın.</li>
		<li>Süresiz olarak-80 ° C'de gerektiği gibi granül depolamak</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Doku Cross-linking
	<ol>
<li>5 mg taze elde edilen fare hipofiz dokusunun PBS (yaklaşık 10 x cilt dokusunun) içinde seyreltilmiş %1 paraformaldehyde bir çözüm koymak, RT, 10 min için kışkırtmak</li>
		<li>Paraformaldehyde eylemi bir 1,25 M glisin çözüm (10 mL paraformaldehyde çözeltisi başına 1 mL) ekleyerek gidermek ve 5 dk RT. az tahrik</li>
		<li>Medya tarafından aspirasyon atın ve PBS (yaklaşık 10 doku hacmi x) ile iki kez durulayın. Mümkün olduğu kadar süpernatant kaldırın.</li>
		<li>Çapraz bağlı doku-80 ° C'de süresiz olarak depolamak</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. hücre veya doku lizis
<ol><li>Lizis arabellek (50 mM Tris-HCl pH 7,0, 10 mM EDTA, 200 U/mL RNAse inhibitörü çözeltisi ve proteaz inhibitörü 5 µL/mL bir kokteyl ile tamamlanan % 1 SDS) hazırlayın.</li>
	<li>Önceki çözdürme olmadan lysed örneklerini almak için hücre topakları veya bu arabelleği (yaklaşık 1 mL başına hücre Pelet veya doku 100 mg) ile çapraz bağlı doku yeniden askıya. 1 x 107 hücrelerinden elde edilen bir hücre Pelet artış yaklaşık 20 mg protein içeren bir lysed örnek ver. Not: kullanılan doku bağlı olarak, bir adım mekanik bozulma eklenmesi gerekir. Bu durumda, bu ek adımı sırasında örneklerin Isıtma önlemek önemlidir.</li>
</ol>4. sonication
<ol><li>
Sonication koşullardan en iyi duruma getirme
	<ol>
<li>Program 30 s ON 2-5 serisi ile sonicator ve 30 s OFF.</li>
		<li>Seyreltilmiş lysed örnekleri (seyreltme faktörü ½ veya protein yaklaşık 10 veya 5 mg için karşılık gelen ¼) sonication koşullara en iyi duruma getirmek için sınamaları gerçekleştirin. Yer lysed 4 ° C su banyosu örneklerinde seyreltilmiş ve sonication seri başlatmak.</li>
		<li>RNA'ların bir RNA arıtma kiti ile veya bir RNA izolasyon reaktif (örneğin, Trizol) ile arındırmak.</li>
		<li>% 1'özel Jel Elektroforez TBE tampon üzerinde saf RNA bütünlük yük, RNA parçaları uzunluğunu denetleyin. Bu uzunluk 200 ve 800 bp mesafe. Not: Anti-anlamda Oligonükleotid probları verimliliği RNA parça boyutuna bağlı olarak değişebilir. O zaman sonication farklı koşullar altında probları verimliliğini kontrol etmek için tavsiye edilir.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Lysed örnekleri sonication
	<ol>
<li>4 ° c (-den sonra adım 3.2 elde edilen) proteinlerin 20 mg karşılık gelen yer lysed örnekleri banyo su ve 4.1 adımda en iyi duruma getirilmiş gibi sonication seri başlatmak.</li>
		<li>Hemen sonication, santrifüj, 12.000 g 4 ° C'de 5 dakika sonra Supernatants yeni santrifüj tüpler aktarın. Not: homojenliği emin olmak için çoğaltma supernatants getirilebilir havuza alınmış ve bu adımda yeniden dağıtılabilir.</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. RNA aşağı açılır
<ol><li>
Gün 1 – hibridizasyon adım
	<ol>
<li>Hibridizasyon arabelleği (50 mM Tris-HCl pH 7,0, 750 mM NaCl, 1 mM EDTA, % 1 SDS, Formamide eklendi altercations % 15) 2 cilt eklemek sonication adımdan sonra toplanan supernatants için. Girdap.</li>
		<li>Bir santrifüj tüpü (giriş örnekleri) her örneğinin 20 µL aktarın ve -20 ° C'de depolayın</li>
		<li>100 pmol biotinylated Oligonükleotid problar (özel ya da non-spesifik; bkz. Tablo 1), her örnek için ekleyin. 4-6 h altında orta ajitasyon RT. tüp rotator üzerinde kuluçkaya</li>
		<li>Manyetik streptavidin boncuk 50 µL 200 U/mL RNAse inhibitörü çözeltisi ve proteaz inhibitörü 5 µL/mL bir kokteyl ile desteklenmiş ekleyin.</li>
		<li>Gecede altında orta ajitasyon RT. tüp rotator üzerinde kuluçkaya</li>
	</ol>
</li>
	<li>
2. gün-RNA izolasyon adım
	<ol>
<li>Hücre lysate boncuk ayrı süpernatant atmak ve boncuk 900 µL yıkama arabelleği ile yıkamak için manyetik desteğini kullanın (SDS % 0.5, SSC 2 x). Tekrar 5 kere 5 dk ajitasyon RT. rotator üzerinde serpiştirilmiş</li>
		<li>Son yıkama sonra son bir kez dikkatle boşaltmak ve Proteinease K arabelleği (10 mM Tris-HCl pH 7,0, 100 mM NaCl, 1 mM EDTA, % 0.5 SDS) 95 µL ekleyin ve 5 µL İndinavir-k (20 mg/mL) örnekleri.</li>
		<li>Buz üzerinde giriş örnekleri (20 μL) çözülme ve Proteinease K arabelleği 75 µL ve 5 µL İndinavir-k (20 mg/mL) ekleyin.</li>
		<li>Tüm örnekleri ile İndinavir K 50 ° c sonra 10 min 95 ° C'de 45 dk için kuluçkaya</li>
		<li>Örnek 3 dakika buzda boncuk RNA'ların manyetik desteğiyle ayıran önce sakin ol. Süpernatant tutmak ve boncuk atın.</li>
		<li>RNA'ların DNA sindirim adımı içermelidir bir RNA arıtma kiti ile arındırmak. RNA'ların-80 ° C'de depolayın</li>
		<li>Ters transkripsiyon qPCR (RT-qPCR) belirli primerler (Tablo 1) kullanılarak qPCR tarafından izlenen bir RT kit kullanarak gerçekleştirin.</li>
		<li>Her belirli Neat1 sondalar (Tablo 1) ile elde edilen iki RNA havuzlarına karşılık gelen iki DNA kitaplığı oluşturun. Sıralama yeni nesil sıralama sistem üzerinde gerçekleştir.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Chu, C., Qu, K., Zhong, F. L., Artandi, S. E., Chang, H. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genomic+maps+of+long+noncoding+RNA+occupancy+reveal+principles+of+RNA-chromatin+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell%22%5BJournal%5D)">Genomic maps of long noncoding RNA occupancy reveal principles of RNA-chromatin interactions.</a> Mol Cell. , 667-678 (2011).</li>
<li>Chu, C., Quinn, J., Chang, H. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chromatin+isolation+by+RNA+purification+%28ChIRP%29%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Chromatin isolation by RNA purification (ChIRP).</a> J Vis Exp. , e3912(2012).</li>
<li>Simon, M. D., Wang, C. I., Kharchenko, P. V., West, J. A., Chapman, B. A., Alekseyenko, A. A., Borowsky, M. L., Kuroda, M. I., Kingston, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+genomic+binding+sites+of+a+noncoding+RNA%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">The genomic binding sites of a noncoding RNA.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. , 20497-20502 (2011).</li>
<li>Simon, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Capture+hybridization+analysis+of+RNA+targets+%28CHART%29%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Protoc+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Capture hybridization analysis of RNA targets (CHART).</a> Curr Protoc Mol Biol. , Unit 21.25 (2013).</li>
<li>Reuter, J. S., Mathews, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNAstructure%3A+software+for+RNA+secondary+structure+prediction+and+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">RNAstructure: software for RNA secondary structure prediction and analysis.</a> BMC Bioinformatics. 11, 129(2010).</li>
<li>Sun, X., Haider Ali, M. S. S., Moran, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+interactions+of+long+non-coding+RNAs+and+heterogeneous+nuclear+ribonucleoproteins+in+regulating+cellular+functions%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+J%22%5BJournal%5D)">The role of interactions of long non-coding RNAs and heterogeneous nuclear ribonucleoproteins in regulating cellular functions.</a> Biochem J. , 2925-2935 (2017).</li>
<li>Gruber, A. R., Lorenz, R., Bernhart, S. H., Neuböck, R., Hofacker, I. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Vienna+RNA+websuite%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">The Vienna RNA websuite.</a> Nucleic Acids Res. , W70-W74 (2008).</li>
<li>Tollervey, J. R., Curk, T., Rogelj, B., Briese, M., Cereda, M., Kayikci, M., König, J., Hortobágyi, T., Nishimura, A. L., Zupunski, V., Patani, R., Chandran, S., Rot, G., Zupan, B., Shaw, C. E., Ule, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterizing+the+RNA+targets+and+position-dependent+splicing+regulation+by+TDP-43%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Characterizing the RNA targets and position-dependent splicing regulation by TDP-43.</a> Nat Neurosci. , 452-458 (2011).</li>
<li>Riva, P., Ratti, A., Venturin, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+long+non-coding+RNAs+in+neurodegenerative+diseases%3A+novel+mechanisms+of+pathogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Alzheimer+Res%22%5BJournal%5D)">The long non-coding RNAs in neurodegenerative diseases: novel mechanisms of pathogenesis.</a> Curr Alzheimer Res. (27338628), (2016).</li>
<li>Barry, G., Briggs, J. A., Hwang, D. W., Nayler, S. P., Fortuna, P. R., Jonkhout, N., Dachet, F., Maag, J. L., Mestdagh, P., Singh, E. M., Avesson, L., Kaczorowski, D. C., Ozturk, E., Jones, N. C., Vetter, I., Arriola-Martinez, L., Hu, J., Franco, G. R., Warn, V. M., Gong, A., Dinger, M. E., Rigo, F., Lipovich, L., Morris, M. J., O'Brien, T. J., Lee, D. S., Loeb, J. A., Blackshaw, S., Mattick, J. S., Wolvetang, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+long+non-coding+RNA+NEAT1+is+responsive+to+neuronal+activity+and+is+associated+with+hyperexcitability+states%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">The long non-coding RNA NEAT1 is responsive to neuronal activity and is associated with hyperexcitability states.</a> Sci Rep. , 40127(2017).</li>
<li>Adriaens, C., Standaert, L., Barra, J., Latil, M., Verfaillie, A., Kalev, P., Boeckx, B., Wijnhoven, P. W., Radaelli, E., Vermi, W., Leucci, E., Lapouge, G., Beck, B., van den Oord, J., Nakagawa, S., Hirose, T., Sablina, A. A., Lambrechts, D., Aerts, S., Blanpain, C., Marine, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((p53+induces+formation+of+NEAT1+lncRNA-containing+paraspeckles+that+modulate+replication+stress+response+and+chemosensitivity%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Med%22%5BJournal%5D)">p53 induces formation of NEAT1 lncRNA-containing paraspeckles that modulate replication stress response and chemosensitivity.</a> Nat Med. , (2016).</li>
<li>Fang, J., Qiao, F., Tu, J., Xu, J., Ding, F., Liu, Y., Akuo, B. A., Hu, J., Shao, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+expression+of+long+non-coding+RNA+NEAT1+indicates+poor+prognosis+of+human+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Oncotarget%22%5BJournal%5D)">High expression of long non-coding RNA NEAT1 indicates poor prognosis of human cancer.</a> Oncotarget. , (2017).</li>
<li>Torres, M., Becquet, D., Blanchard, M. P., Guillen, S., Boyer, B., Moreno, M., Franc, J. L., François-Bellan, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circadian+RNA+expression+elicited+by+3%27-UTR+IRAlu-paraspeckle+associated+elements%5BTitle%5D)+AND+%22Elife%22%5BJournal%5D)">Circadian RNA expression elicited by 3'-UTR IRAlu-paraspeckle associated elements.</a> Elife. , (2016).</li>
<li>Fox, A. H., Lamond, A. I. Paraspeckles. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. , Available from:
 <a target="_blank" href="http://cshperspectives.cshlp.org/content/2/7/a000687.long">http://cshperspectives.cshlp.org/content/2/7/a000687.long</a> (2010).</li>
<li>Chen, L. L., DeCerbo, J. N., Carmichael, G. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alu+element-mediated+gene+silencing%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">Alu element-mediated gene silencing.</a> EMBO J. , 1694-1705 (2008).</li>
<li>Tripathi, V., Ellis, J. D., Shen, Z., Song, D. Y., Pan, Q., Watt, A. T., Freier, S. M., Bennett, C. F., Sharma, A., Bubulya, P. A., Blencowe, B. J., Prasanth, S. G., Prasanth, K. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+nuclear-retained+noncoding+RNA+MALAT1+regulates+alternative+splicing+by+modulating+SR+splicing+factor+phosphorylation%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell%22%5BJournal%5D)">The nuclear-retained noncoding RNA MALAT1 regulates alternative splicing by modulating SR splicing factor phosphorylation.</a> Mol Cell. , 925-938 (2010).</li>
<li>Engreitz, J. M., Sirokman, K., McDonel, P., Shishkin, A. A., Surka, C., Russell, P., Grossman, S. R., Chow, A. Y., Guttman, M., Lander, E. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA-RNA+Interactions+Enable+Specific+Targeting+of+Noncoding+RNAs+to+Nascent+Pre-mRNAs+and+Chromatin+Sites%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">RNA-RNA Interactions Enable Specific Targeting of Noncoding RNAs to Nascent Pre-mRNAs and Chromatin Sites.</a> Cell. , 188-199 (2014).</li>
<li>Nakagawa, S., Ip, J. Y., Shioi, G., Tripathi, V., Zong, X., Hirose, T., Prasanth, K. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Malat1+is+not+an+essential+component+of+nuclear+speckles+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22RNA%22%5BJournal%5D)">Malat1 is not an essential component of nuclear speckles in mice.</a> RNA. , (2012).</li>
<li>Zhang, B., Arun, G., Mao, Y. S., Lazar, Z., Hung, G., Bhattacharjee, G., Xiao, X., Booth, C. J., Wu, J., Zhang, C., Spector, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+lncRNA+Malat1+is+dispensable+for+mouse+development+but+its+transcription+plays+a+cis-regulatory+role+in+the+adult%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Rep%22%5BJournal%5D)">The lncRNA Malat1 is dispensable for mouse development but its transcription plays a cis-regulatory role in the adult.</a> Cell Rep. , 111-123 (2012).</li>
<li>Trapnell, C., Roberts, A., Goff, L., Pertea, G., Kim, D., Kelley, D. R., Pimentel, H., Salzberg, S. L., Rinn, J. L., Pachter, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+gene+and+transcript+expression+analysis+of+RNA-seq+experiments+with+TopHat+and+Cufflinks%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Differential gene and transcript expression analysis of RNA-seq experiments with TopHat and Cufflinks.</a> Nat Protoc. , 562-578 (2012).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Büyük bir alan araştırma uzun kodlamayan RNA'ların (lncRNAs) sayısı ve çeşitliliği temsil ve rolleri hala keşfedilmeyi çoğu. Çoğu bu lncRNAs nükleer bir Yerelleştirme ve bunlar arasında bazı transkripsiyon veya posttranscriptional mekanizmalar yoluyla gen ifadesinin yasal yollar karıştığı. Bu alanda geçerli sorunlardan biri bu lncRNAs RNA'ların çoğu işlemedeki alaka anlamaktır. Bu amaçla, lncRNAs tarafından hedef RNA'ların tespit edilmesi gerekiyor. Önceki çalışmalarda lncRNAs Derneği Kromatin ile üzerinde duruldu esinlenerek, RNA'ların bir lncRNA ile ilişkili kimliği sağlar bir yordam geliştirdik. Esas olarak iki önemli adım üzerinde bağımlı RNA aşağı açılır adlı bu protokol başarıdır, yani Anti-anlamda DNA Oligonükleotid probları tasarımını var özellikle ve sadece ilgi lncRNA ve doku koşullarına melezlemek veya Tüm moleküler ortakları arasında ağ bütünlüğünü korumak zorunda hücre fiksasyon.
Daha önce bir lncRNA ile birlikte, ilişkili Kromatin dizileri (cıvıltı1,2, grafik3,4) yalıtmak için yordamları sağlanan protokoller yayınlandı. Bu protokoller farklı stratejiler Anti-anlamda DNA biotinylated Oligonükleotid probları tasarım istihdam edildi. Cıvıltı yordamda yazarlar DNA biotinylated Oligonükleotid probları lncRNA ilgi tüm uzunluğu tüm gereksiz ve non-spesifik problar1,2dışlanması sonra kapsayan bir havuz kullanılır. GRAFİK protokolündeki yazarlar hibridizasyon için daha erişilebilir lncRNA bölgelerinde tespit ve bu bölgelerde hedef yakalama oligonucleotides tasarlanmış. Bu bölgeler temelinde kendi RNase H duyarlılık seçildi. Gerçekten de, RNA'ların RNA-DNA bağlama sitelerdeki hidrolize için RNAse H özelliğini kullanarak, lncRNA erişilebilir sitelere melezlemek oligonucleotides RNA-DNA melez üretmek ve lncRNA enzimatik bölünme için yol. Yazarlar bu aday yakalama oligonucleotides üçü seçili ve onları bir kokteyl3,4' te kullanılan.
Yordamı grafik protokolünde kullanılan anti-anlamda DNA biotinylated Oligonükleotid probları yapıldı yakın tasarım yapardık ama istenen lncRNA hibridizasyon kullanılabilir bölgelerinde onların RNAse H duyarlılık temelinde, seçili değil ama Biyoinformatik modelleme lncRNA ikincil yapılara sahip tarafından belirlenen iç baz eşleşmesi onların düşük olasılık göre. Farklı ikincil yapılar farklı algoritmaları kullanarak tahmin ve seçilecek sondalar o lncRNA en büyük sayısı tahmin ikincil yapılar olarak kullanılabilir sıralarını melezlemek olmalıdır fark gerekir. Aynı sonuçları üç tasarlanmış bir kokteyl, belirli probları veya tek bir sonda kullanarak tek tek elde edilmiştir. Bu iki ayrı, belirli problar kullanımı ve bu iki problar için ortak olan bu olumlu sonuçlar dikkate istenir. Son olarak, bu nedenle bir en iyi sonuç için yöntem geliştirilmesi başında önerilir ve 3 farklı Anti-anlamda Oligonükleotid tasarlamak için aşağı açılır, sonuçlarını özgüllük değerlendirmek muktedir probları ve sonra karşılaştırmak için özellikle sonda verimliliği hücre lysate hazırlık tarafından değişmiş olabilir beri deneysel olarak onların verimliliği. Yine de, lncRNA biz kullanılan yapısı daha ucuz fayans Oligonükleotid probları2takımlık üzerinde temel kaldı ve bu yöntemi göre daha az zaman alıcı ikincil modellenmesi Biyoinformatik dayalı soruşturma tasarım prosedürü RNAse H duyarlılık4üzerinde.
Bir negatif kontrol negatif yakalama Oligonükleotid anlamda DNA biotinylated Oligonükleotid probları gibi kullanarak aynı zamanda gerçekleştirilmesi gereken veya Oligonükleotid probları veya karşı ilgisiz bir RNA yönetmen oligonucleotides karıştırılmış. Doğal antianlamlı transkript lncRNAs varlığı nedeniyle anlamda Oligonükleotid sonda kullanımı bazen yetersiz olabilir. Negatif denetim için seçilmiş Oligonükleotid sonda ne olursa olsun, bilinen bir RNA ile melez değil patlamanın kontrol etmek ve bu Oligonükleotid hala un ek açıklama eklenen bir lncRNA melezlemek akılda tutmak için gereklidir.
Bu RNA açılan deneylerde kullanılan hücre lysates 10 elde edilmiştir6 -107 hücreler kültürlü hücrelerle ve 1-10 mg doku ile çalışırken çalışırken. Hücre lysates hazırlanması optimize edilmiş olması gereken iki ana adımları ile kullanılan doku veya hücre tipine göre adapte gerekiyor: Yani, cross-linking adım lncRNA ve moleküler ortakları arasında Kovalent bağlar oluşumunu sağlayan ve viskozite Kromatin parçalama tarafından azaltır sonication adım.
Cross-linking adım tüm moleküler ortakları arasında bir ağ oluşumu inducing tarafından tüm RNA hedefler için lncRNA kapalı kalmasını sağlamak için amaçtır. Yararlanılabilmesi için retiküle. lncRNA ve ortakları arasında Kovalent bağlar oluşturacak bir paraformaldehyde tedavi adım sağlar GRAFİK iletişim kuralında nükleer lncRNA ile paraformaldehyde ile ilk tedavi gerçekleştirmek için çalışan bütün lysate hücre ve bir saniye önerildi tedavi izole nükleik kesir3,4. Hücrelerdeki lncRNA erişilebilirlik azaltarak, bu ek adım sondalar, verimliliğini muhtemelen azalma gözlendi. Bu nedenle, hücre dikkate alarak adapte olmak paraformaldehyde tarafından Şebekeleşme derecesine sahiptir veya doku türü kullanıldığında, yerelleştirme tasarlanmış probları etkinlik ve faiz lncRNA.
Hücreleri lysing, süre Kromatin lysate içinde yayınlanır ve viskozite artırır; Kromatin örnekleri akışkanlık ve dolayısıyla Oligonükleotid erişilebilirliğini kolaylaştırmak için sonication tarafından parçalamak için gerekli faiz lncRNA için probları, sonra nedir. Ancak, sonication da faiz lncRNA ile çıkarılan RNA'ları parçalayıp. Böyle bir şekilde verimli bir şekilde lysate viskozite azaltır iken, bu da bir uzunluğu ile elde RNA'ın parçaları sağlayan sonication süresini en aza indirmek önemli 200-800 bp. sonication zaman-ecek var olmak yüksek not arasında oluşan, sonra nedir hem miktar hem de doku veya kullanılan kültürlü hücre türüne bağlıdır.
Sonuç olarak, burada açıklanan yordam 2-3 gün içinde istenen lncRNA RNA hedeflerini yakalama sağlar. RT-qPCR ile birleştiğinde, bu yöntemler tarafından istenen lncRNA bir aday yaklaşım olarak bir ilişki ve düzenleme, bir mRNA arıyor izin verir. Genom geniş yaklaşım için RNA açılan deneyler yüksek üretilen iş RNA-sıralama istenen lncRNA ile ilişkili tüm RNA'ların alınmasını sağlayan tarafından analiz edilebilir. Seçilen her türlü analitik strateji, RNA açılan yordam tarafından lncRNAs RNA regülasyonu yeni önemli bilgi sağlamalıdır.

Burada açıklanan yöntemi genel amacı uzun kodlamayan RNA (lncRNA) RNA moleküler ortakları belirlemektir. LncRNA tanımlanmış okuma çerçeve olmadan 200'den fazla nükleotit dizilerinin karşılık gelir. Bazıları gen ifade düzenlemesi, transkripsiyon düzeyinde, hem de RNA co - ve çoğu olgunlaşma farklı adımlar dahil olmak için göstermiştir. İkinci durumda, moleküler lncRNA, belirlenecek olan RNA'ların ortağız. RNA'ların doğrudan ilişkili olan ya da dolaylı olarak bir lncRNA ilgi ile kimlik etkinleştirme yöntemi daha sonra geliştirmek için gerekli olacaktır.
Kromatin yalıtım RNA arıtma (cıvıltı)1,2 ve yakalama hibridizasyon analizi, RNA hedefler (grafik)3,4, tarafından izin yüksek üretilen iş keşfi olarak daha önce yayınlanan yöntemleri, RNA bağlı proteinler ve genomik bağlama sitelerin belirli bir lncRNA. Bu iki yöntem, faiz lncRNA ilk biotinylated tamamlayıcı oligonucleotides melezleşmiştir ve karmaşık sonra streptavidin boncuklar kullanılarak izole. Bu iki teknik arasındaki temel fark lncRNAs hedef probları için tasarım ilgilidir. Cıvıltı, strateji RNA balık tarafından lncRNA tüm uzunluğu döşemek için kısa Tamamlayıcı DNA Oligonükleotid probları bir havuz tasarımı oluşuyordu, ilham. Buna karşılık, GRAFİKTE, site hibridizasyon için mevcut soruşturma için lncRNAs bir RNase H eşleme tahlil yazarlar uyarlanmış.
Burada önerilen tasarım Anti-anlamda DNA biotinylated Oligonükleotid iç düşük bir olasılık görüntülemek bölgeler için güçlü bir yakınlık ile seçmek için lncRNA ikincil yapı5 / Biyoinformatik modelleme probları probları kullanır yordamı baz çifti. Bu yordam döşeme Oligonükleotid probları2 takımlık üzerinde dayalı olanlar daha ucuz ve daha az zaman alıcı RNAse H duyarlılık4üzerinde dayalı olanlar daha olmanın avantajı vardır.
Kanıt lncRNAs6tarafından çoğu gen düzenlemesi için büyüyen bir vücut gibi bir lncRNA hedefler RNA'ların yakalama etkinleştirme bir yaklaşım geliştirmek çok yararlıdır. Ayrıca, çoğu uygulama için kullanılabilir olması için yaklaşım hem kültürlü hücre ve doku özleri optimize edildi.

<table><tbody><tr><td>Bioruptor Plus</td><td>Diagenode</td><td>B01020001</td><td>Sonicator</td></tr><tr><td>Dynabeads My One</td><td>Thermo-Fisher</td><td>65001</td><td>Manyetik streptavidin boncuklar</td></tr><tr><td>Formamid</td><td>Thermo-Fisher</td><td>15515-026</td><td></td></tr><tr><td>Jel elektroforez aparatı</td><td>Advance</td><td>Mupid-One</td><td>Jel elektroforez aparatı</td></tr><tr><td>Proteinaz K</td><td>Sigma</td><td>P2308</td><td></td></tr><tr><td>RNA XS saflaştırma kiti</td><td>Macherey-Nagel</td><td>740902</td><td>RNA saflaştırma kiti</td></tr><tr><td>RNAseOUT</td><td>Thermo-Fisher</td><td>10777-019</td><td>RNAse inhibitörü</td></tr><tr><td>Trizol</td><td>Thermo-Fisher</td><td>15596018</td><td>RNA saflaştırma</td></tr><tr><td>Tüpü Döndürücü</td><td>Stuart</td><td>SB2</td><td>Eppendorf tüp döndürücü</td></tr><tr><td>RNA'dan DNA'ya</td><td>Thermo-Fisher</td><td>4387405</td><td>Ters transkripsiyon kiti</td></tr><tr><td>iTaq Universal SYBR Green Supermix</td><td>BioRad</td><td>1725124</td><td>qPCR reaktifi</td></tr><tr><td>Uygulamalı 7500 Hızlı</td><td>Thermo-Fisher</td><td>4351107</td><td>qPCR cihazı</td></tr><tr><td>Illumina TruSeq Örgülü mRNA Numune Hazırlama kiti</td><td>Illumina</td><td>20020594</td><td>DNA kütüphanesi yapım kiti</td></tr><tr><td>Illumina NextSeq 500</td><td>Illumina</td><td>SY-415-1002</td><td>NGS sistemi</td></tr></tbody></table>

uzun kodlamayan rna, rna hedefleri tanımlamak için rna pull-down yordamı

RNA Pull-down Procedure to Identify RNA Targets of a Long Non-coding RNA

Uzun bir tanımlanmış okuma çerçeve olmadan 200'den fazla nükleotit dizilerinin olan RNA (lncRNA), kodlamayan düzenleyici kodlamayan RNA'ın ailesine ait. Her ne kadar biyolojik işlevleri büyük ölçüde bilinmeyen kalır, bu lncRNAs sayısı giderek artmıştır ve bu şimdi insanlar 10.000'den fazla tür transkript olabilir tahmin edilmektedir. Bunlardan bazıları transkripsiyon düzeyi, fakat aynı zamanda RNA co - ve çoğu olgunlaşma farklı adımları gerçekleşecek önemli yasal yollar gen ifadesinin yer olduğu bilinmektedir. İkinci durumda, tespit edilmesi lncRNA tarafından hedef RNA'ların var. Bu neden kimlik RNA'ların doğrudan ilişkili olan ya da dolaylı olarak bir lncRNA ilgi ile sağlayan bir yöntem geliştirmek yararlıdır nedenidir.
Bir lncRNA ile birlikte, ilişkili Kromatin dizileri izolasyon sağlar daha önce yayımlanmış iletişim kuralları tarafından ilham kaynağı oldu, bu iletişim kuralını ilişkili RNA'ların yalıtım izin vermek için uyarlanmıştır. Biz iki adım bu protokolünün etkinliği için kritik belirlenir. İlk belirli DNA Anti-anlamda Oligonükleotid probları faiz lncRNA için melezlemek mümkün tasarımıdır. Bu amaçla, lncRNA ikincil yapı Biyoinformatik tarafından tahmin edilmiştir ve anti-anlamda Oligonükleotid probları iç baz eşleşmesi düşük bir olasılık görüntülemek bölgeler için güçlü bir yakınlık ile tasarlanmıştır. İkinci önemli adım yordam doku veya tüm moleküler ortakları arasında ağ korumak için olan kültürlü hücreleri sabitleştirici koşulları kullanır. Yüksek işlem hacmi RNA sıralama ile birleştiğinde, bu RNA açılan iletişim kuralı bir lncRNA ilgi tüm RNA interactome sağlayabilir.

Birkaç son çalışmalar göstermiştir lncRNAs hemen hemen her önemli biyolojik süreç içinde önemli bir rol oynamak ve bu rolün hem transkripsiyon ve çoğu düzeylerinde meydana gelen gen ifadesinin denetimi yoluyla elde edilir Bu ikinci durumda RNA'ların lncRNAs6hedefi olabilir gösterilen.
LncRNA nükleer zenginleştirilmiş bol transkript 1 (Neat1) içinde farklı neuropathologies da demans, amyotrofik lateral skleroz veya epilepsi8,9,10karıştığı ve aynı zamanda misregulated farklı kanser11,12'.
Bu lncRNA da bilinir yapısal bileşeni belirli nükleer organları, paraspeckles olarak ve çoğu sirkadiyen gen ifade13yönetmelikte dahil olmak. Her hücre çekirdeğinde bulunan ve sadece birkaç RNA bağlayıcı protein (RBP)14, ama aynı zamanda etrafında onların oluşumu için gerekli olan Neat1, etrafında oluşan Paraspeckles gerçekten de15 çekirdeği içinde RNA hedefler korumak mümkün olduğu bilinmektedir . Paraspeckles oluşumu farklı bileşenleri Derneği elde edilir. Bu oluşumun sirkadiyen bir ritmik desen RNA hedef13ritmik bir nükleer tutma sürüş görüntülemek için gösterildi. RNA hedeflerini paraspeckles göre nükleer tutma RBP için bağlama aracılığıyla veya doğrudan RNA/RNA Derneği aracılığıyla ortaya çıkabilir, ama belirlenecek RNA'ların paraspeckles tarafından hedeflenen ölçüde vardı. Hedef RNA tanımlamak için doğrudan veya dolaylı olarak Neat1 tarafından yalıtım ve kültürlü hücreler de ( şekil 1 bir grafik için bkz: doku örnekleri olduğu gibi bütün Neat1 RNA hedefleri tanımlaması sağlayan bir RNA açılan protokol tasarlanmıştır sunum tekniği).
Protokol bir başka bir lncRNA metastaz ilişkili akciğer adenokarsinom transkript 1 (Malat1) RNA hedefleri tanımlaması da başarıyla uygulandı. Malat1 ile birlikte birkaç RNA faktörler Uçbirleştirme nükleer speckles bulunan son derece korunmuş ve ifade lncRNA var. Malat1 birkaç yeni doğmakta olan pre-mRNA16,17ve yapıştırma yönetmelikte yer olduğu bilinmektedir.
Özel (SO) ve non-spesifik Oligonükleotid (NSO) sondalar burada açıklanan soruşturma tasarım stratejisini kullanarak oluşturulan. Bu strateji iç Bankası eşleştirme düşük bir olasılık olarak tahmin lncRNA ikincil yapı tarafından görüntülemek bölgeleri seçimi ve bu bölgeler için güçlü bir ilgi ile belirli probları tasarım dayanmaktadır. Bu Biyoinformatik tahminler, tahmin edilen ikincil yapı, Neat1 bir dizi resmi temsilcisi bir sonucu olarak (nukleotid 1.480-2000) ile birlikte iki probları Şekil 2' de verilen bu yüzden tasarlanmış konumunu.
Tasarlanmış probları kültürlü GH4C1 hücreleri ve hipofiz doku özleri (Tablo 1) için fare Neat1 için Neat1 veya Malat1 sıçan için yönetildi. Neat1 veya Malat1 göreli zenginleştirme için belirsiz ve belirli probları giriş örnekleri göre hesaplanır. Şekil 3 için açılan Neat1 sıçan GH4C1 hipofiz hücre kültürünü (şekil 3A) içinde belirli probları verimliliğini gösterir ve fare hipofiz doku (şekil 3B) ayıklar. Sonda tasarım Protokolü (böylece Malat1 için probları yönetmen) belirli Oligonükleotid oluşturmak için kullanırken, bir süre başka yeterince verimli değildi ve verimli sonda elde edildi (şekil 4A) atılır.
Sonra bir RNA RT-qPCR deneyleri, bazı RNA'ların belirli astar (Tablo 1) ile değerlendirildi ve ardından açılan yordamı GH4C1 özler Neat1 veya Malat1 ile ilişkili olduğu gösterildi. GH4C1 hücre özler Neat1 ile ilişkili RNA'ların da hipofiz doku özler Neat1 ile ilişkilendirilmesi gösterilmiştir. Gerçekten de, Neat1 RNA aşağı açılır sonra Malat1 Neat1 tarafından GH4C1 hücre kültürünü ve hipofiz fare doku özleri (şekil 5A) hedef tespit edildi. Malat1 RNA aşağı açılır (şekil 4B) GH4C1 hücrelerdeki belirli bir sonda ile yapılır sonra karşılıklı, Neat1 önemli ölçüde zenginleştirilmiş. İki lncRNAs arasında yakın bir ilişki vurgulayarak, bu sonuçlar Neat1 ve varyasyonları Neat1 RNA ifade18', görüntülemek Malat1 nakavt fareler tarafından önerilen Malat1 potansiyel co-regulatory rolü ile tutarlı 19. iki ana hipofiz hormonları, büyüme hormonu (Gh) (şekil 5B) ve prolaktin (Prl) (şekil 5C) Tutanaklar önemli ölçüde Neat1 RNA aşağı açılır GH4C1 hücreleri ve hipofiz belirli probları ile zenginleştirilmiş özler, olası bir düzenleme Neat1 tarafından iki hormon, düşündüren. Kullanılan iki belirli problar karşılaştırırken, onların verimliliği kabul RNA hedef bağlı olarak (ve şekil 5C5B anlamaya) değişebilir ortaya çıktı. Bu sonuçlar bu sadece açılan lncRNA zenginlik içinde en iyi verimlilik, aynı zamanda en iyi verimlilik RNA hedeflerini zenginleştirme görüntüleme seçmek için birkaç belirli probları tasarlama gerekliliği vurgulayın.
RNA açılan yöntemi Ayrıca faiz13lncRNA RNA hedefleri kapsamlı listesini elde etmek için RNA yüksek üretilen iş sıralama tarafından izlenebilir. RNA-seq analizi yukarıda açıklanan iki belirli problar kullanarak Neat1 RNA açılan gerçekleştirmesinden sonra GH4C1 hipofiz hücreleri üzerinde. RNA açılan NSO ile inşaat kütüphanelerin izin için yeterli olduğu sonra RNA düzeyini yeniden elde etmek, bir negatif kontrol bir NSO kullanarak da RNA-seq analize tabi unutulmamalıdır. Bu durum önceki deneyim13' te böyle değildi. Belirli sonda kullanımı analiz sonra zanaat/kol düğmeleri kullanarak oluşturulan kitaplıkları boru hattı20 ve yalnızca transkript kilobaz başına parçasının değerlerle milyon eşlenen okur (FPKM) 1 dikkate alınmıştır daha yüksek. Listeleri elde Neat1 için yönettiği iki belirli problar ile (Tablo 1) sonuçları özgüllük değerlendirmek için çaprazdı. 4,268 gen GH4C1 hücreleri13' te ifade tutanakları % 28 temsil paraspeckles ile ilişkili bulunmuştur. QPCR analizi (Şekil 5A-C) kullanılarak elde edilen sonuçlar ile tutarlı, Gh, Prl ve Malat1 transkript Neat1 ile ilişkili bulunmuştur. RNA açılan yöntemi bu nedenle lncRNAs ve RNA hedeflerine arasındaki etkileşimi keşfetmek için verimli bir araç olarak kanıtlanmıştır.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57379/57379fig1v2.jpg"> Şekil 1: RNA grafik gösterimini çekin prosedürü. İlk gününde, hücreleri veya doku paraformaldehyde ile çapraz bağlı, lysed ve biotinylated belirli probları ekleyerek gerçekleştirilen hibridizasyon adım önce sonicated. Manyetik streptavidin boncuk sonra belirli malzeme hücre lysate geri kalanından ayırmak için eklenmiştir. İkinci gün, boncuk bir mıknatıs tarafından izole ve birkaç kez yıkanmış. Bir de-çapraz adım saflaştırılmış ve RT-qPCR veya RNA-seq analiz için kullanılan RNA'lar kurtarılması izin. <a href="/files/ftp_upload/57379/57379fig1v2large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57379/57379fig2.jpg"> Şekil 2: ikincil yapı olarak tahmin Biyoinformatik kaynak (RNAstructure webserver; en düşük serbest enerji yapısı) tarafından Neat1 dizisinin (nükleotit 1.480-2000). Yapısı baz eşleşmesi olasılık derecesine göre renklidir. İki oligonucleotides problar (SO1 ve SO2) kırmızı Neat1 RNA yapısı konumlandırılır. <a href="/files/ftp_upload/57379/57379fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57379/57379fig3.jpg"> Şekil 3: Neat1 zenginleştirme giriş karşı doğrulanmasını qPCR. Neat1 RNA sonra giriş karşı Neat1 zenginleştirme qPCR doğrulama iki farklı belirli problar (SO1-rn ve SO2-rn GH4C1 hücreleri ve SO1-mm ve SO2-mm hipofiz doku için) bir belirsiz karşılaştırıldığında tarafından aşağı çekin bir (GH4C1 hücreler için NSO-rn ve NSO-mm için Hipofiz bez) GH4C1 fare hücreleri(a)ve fare hipofiz doku (B) ayıklar. 3-10 deneylerde elde edilen ortalama ± SEM sonuçlarıdır. <a href="/files/ftp_upload/57379/57379fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57379/57379fig5.jpg">
Şekil 4: aşağı çekin Malat1 RNA sonra giriş karşı Malat1 ve Neat1 zenginleştirme doğrulanmasını qPCR. Malat1 qPCR doğrulama(a)ve Neat1 (B) zenginleştirme giriş karşı Malat1 RNA sonra iki farklı belirli problar (SO3-rn ve SO4-rn) spesifik olmayan karşılaştırıldığında tarafından aşağı çekin bir (NSO-rn) GH4C1 fare hücrelerinde. 3 deneylerde elde edilen ortalama ± SEM sonuçlarıdır. <a href="/files/ftp_upload/57379/57379fig5large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57379/57379fig4.jpg"> Şekil 5: Malat1, Gh, Prl zenginleştirme Neat1 RNA aşağı çekin sonra giriş karşı doğrulanmasını qPCR. Malat1 qPCR doğrulama(a)aşağı çekin non-spesifik bir GH4C1 fare hücrelerinde karşılaştırıldığında farklı belirli probları kullanarak Gh (B), Neat1 RNA sonra giriş karşı Prl (C) zenginleştirme ve fare hipofiz doku ayıklar. 3-8 deneylerde elde edilen ortalama ± SEM sonuçlarıdır. <a href="/files/ftp_upload/57379/57379fig4large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>SONDA ADLARI</td>
			<td colspan="2">Dizileri</td>
		</tr>
<tr>
<td>NSO-Rn</td>
			<td colspan="2">TAAAATACCATTTGATGTTTGAAATTAT</td>
		</tr>
<tr>
<td>SO1-Rn</td>
			<td colspan="2">CTCCACCATCATCAATCCTCTGGAC</td>
		</tr>
<tr>
<td>SO2-Rn</td>
			<td colspan="2">GCCTTCCCACATTTAAAAACACAAC</td>
		</tr>
<tr>
<td>SO3-Rn</td>
			<td colspan="2">AACTCGTGGCTCAAGTGAGGTGACA</td>
		</tr>
<tr>
<td>SO4-Rn</td>
			<td colspan="2">AAGACTCTCAGGCTCCTGCTCATTC</td>
		</tr>
<tr>
<td>NSO-mm</td>
			<td colspan="2">GTTTGTGGTTTAACAGTGGGAAGGC</td>
		</tr>
<tr>
<td>SO1-mm</td>
			<td colspan="2">GCCTTCCCACTGTTAAACCACAAAC</td>
		</tr>
<tr>
<td>SO2-mm</td>
			<td colspan="2">CTCACCCGCACCCCGACTCCTTCAA</td>
		</tr>
<tr>
<td>qPCR ASTAR:</td>
			<td colspan="2"></td>
		</tr>
<tr>
<td>Rattus norvegicus</td>
			<td colspan="2"></td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">Neat1</td>
			<td colspan="2">AAGGCACGAGTTAGCCGCAAAT</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="2">TGTGCACAGTCAGACCTGTCATTC</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">Malat1</td>
			<td colspan="2">GAAGGCGTGTACTGCTATGCTGTT</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="2">TCTCCTGAGGTGACTGTGAACCAA</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">GH1</td>
			<td colspan="2">CCGCGTCTATGAGAAACTGAAGGA</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="2">GGTTTGCTTGAGGATCTGCCCAAT</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">PRL</td>
			<td colspan="2">TGAACCTGATCCTCAGTTTGGT</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="2">AGCTGCTTGTTTTGTTCCTCAA</td>
		</tr>
<tr>
<td>Mus musculus</td>
			<td colspan="2"></td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">Neat1</td>
			<td colspan="2">TGGGCCCTGGGTCATCTTACTAGATA</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="2">CACAGCTGTTCCAATGAGCGATCT</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">GH1</td>
			<td colspan="2">CTCGGACCGTGTCTATGAGAAACTGA</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="2">TTTGCTTGAGGATCTGCCCAACAC</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">PRL</td>
			<td colspan="2">TGAACCTGATCCTCAGTTTGGT</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="2">AGCTGCTTGTTTTGTTCCTCAA</td>
		</tr>
</tbody></table>Tablo 1: DNA Oligonükleotid probları ve qPCR astar dizileri

Bu RNA açılan yöntem uzun kodlamayan RNA (lncRNA) RNA hedeflerini belirleme sağlar. Ev yapımı, tasarlanmış Anti-anlamda DNA Oligonükleotid probları bu lncRNA uygun bir şekilde sabit doku veya hücre için belirli hibridizasyon dayanarak, verimli bir şekilde lncRNA ait tüm RNA hedefleri yakalama sağlar.

Uzun kodlamayan RNA, RNA hedefleri tanımlamak için RNA Pull-down yordamı

Long non-coding RNA (lncRNA), which are sequences of more than 200 nucleotides without a defined reading frame, belong to the regulatory non-coding ...

Bu prosedürün genel amacı, kültürlenmiş hücrelerde veya dokuda, ilgilenilen uzun kodlamayan bir RNA'nın RNA moleküler ortaklarını tanımlamaktır. Bu yöntem, uzun kodlamayan RNA'lar tarafından RNA regülasyonu hakkında yeni önemli bilgiler sağlayarak, uzun kodlamayan bir RNA'nın biyolojik işlevlerinin deşifre edilmesine yardımcı olabilir. Bu yöntemin ana avantajı, çoğu uygulama için kullanılabilir olmasıdır, çünkü ilk olarak birkaç uzun kodlamayan RNA için ve ikincisi hem kültürlenmiş hücreler hem de doku ekstraktları için optimize edilmiştir.Yöntemimiz, önceki iki yöntemin, RNA Saflaştırmaları ile Kromatin İzolasyonu anlamına gelen ChIRP ve RNA Hedeflerinin Yakalama Hibridizasyon Analizi olan CHART'ın karışımına dayanmaktadır. Yöntemimizin özgüllüğü, oligonükleotid problarının, kodlamayan uzun bir RNA'nın ikincil bir yapısının biyoinformatik modellemesi kullanılarak tasarlanmış olması ve amacının RNA hedeflerini tanımlamak olmasıdır. Prosedürü göstermek için ekibimden iki teknisyen, Benedicte Boyer ve Severine Guillen olacak.GH4C1 hücrelerini metin protokolüne göre kültürledikten sonra, ortamı bir hücre kültürü plakasından çıkarın ve hücreleri durulamak için bir hacim PBS kullanın. Hücreleri sabitlemek için PBS'ye 10 mililitre %1 PFA ekleyin. Daha sonra, hücreleri oda sıcaklığında 10 dakika boyunca çalkalama altında çapraz bağlayın.1 mililitre 1.25 molar glisin ekleyerek PFA etkisini söndürün ve numuneyi oda sıcaklığında beş dakika çalkalayın. Ardından, çözeltiyi aspirasyon yoluyla atın ve plakayı her biri beş dakika boyunca iki kez durulamak için 10 mililitre PBS kullanın. Daha sonra, bir mililitre PBS ekleyin, hücreleri toplamak için bir hücre kazıyıcı kullanın ve bunları bir santrifüj tüpüne aktarın.Numuneyi beş dakika boyunca 510 g ve dört santigrat derecede döndürün. Ardından, mümkün olduğu kadar çok süpernatanı çıkarın ve peletleri süresiz olarak eksi 80 santigrat derecede saklayın. Doku çapraz bağlamasını gerçekleştirmek için, beş miligram yeni elde edilmiş fare hipofiz bezi dokusunu PBS'de 10X hacimde %1'lik bir PFA'ya daldırın ve numuneyi oda sıcaklığında 10 dakika çalkalayın.0.05 mililitre 1.25 molar glisin çözeltisi ekleyerek PFA'yı söndürün ve dokuyu oda sıcaklığında beş dakika çalkalayın. Ortamı aspire edin ve dokuyu iki kez durulamak için 0,5 mililitre PBS kullanın. Mümkün olduğu kadar çok süpernatanı çıkardıktan sonra, çapraz bağlı dokuyu süresiz olarak eksi 80 santigrat derecede saklayın.Lizis tamponunu hazırlayın, ardından numuneleri önceden çözdürmeden parçalamak için. Numuneleri 100 miligram hücre peleti veya dokusu başına yaklaşık bir mililitre olarak yeniden süspanse etmek için tamponu kullanın. Parçalanmış örnekleri dört santigrat derece su banyosuna yerleştirin ve metin protokolüne göre optimize edilmiş sonikasyon serisini başlatın.Sonikasyondan hemen sonra, numuneleri beş dakika boyunca 12.000 g ve dört santigrat derecede santrifüjleyin. Ardından, süpernatanları yeni tüplere aktarın. Sonikasyon serisi, diğer parçalanmış RNA'ları elde etmeden DNA'dan viskoziteyi azaltacak kadar verimli olacak şekilde optimize edilmelidir.Sonikasyonlu numuneler üzerinde hibridizasyon yapmak için, tüplere ve girdaba iki hacim hibridizasyon tamponu ekleyin. Her numuneden 20 mikrolitreyi santrifüj tüplerine aktarın ve eksi 20 santigrat derecede saklayın. Her numuneye 100 pikomol biyotinile oligonükleotid probu ekleyin.Daha sonra, numuneleri oda sıcaklığında bir tüp döndürücü üzerinde orta derecede çalkalama altında dört ila altı saat inkübe edin. İnkübasyondan sonra, numunelere mililitre başına 200 birim RNaz inhibitör çözeltisi ve mililitre başına 5 mikrolitre proteaz inhibitör kokteyli ile desteklenmiş 50 mikrolitre manyetik streptavidin boncuk ekleyin. Tüpleri, gece boyunca tüp döndürücü üzerinde orta derecede çalkalama altında oda sıcaklığında inkübe edin.Ertesi gün, tüpleri manyetik bir destek üzerine yerleştirerek RNA izolasyonunu gerçekleştirin ve süpernatanı atın. Daha sonra, boncuklara 900 mikrolitre yıkama tamponu ekleyin ve tüpleri beş dakika boyunca oda sıcaklığında bir döndürücüye yerleştirin. Ardından, numuneleri mıknatısın üzerine yerleştirin, tamponu atın ve yıkamayı beş kez tekrarlayın.Son yıkamayı çıkardıktan sonra, numuneye 95 mikrolitre Proteinaz K tamponu ve mililitre proteinaz-K başına beş mikrolitre 20 miligram ekleyin. Daha sonra, buz üzerinde giriş örneklerini çözün ve 75 mikrolitre Proteinaz K tamponu ve beş mikrolitre proteinaz-K ekleyin. Numuneleri 50 santigrat derecede 45 dakika, ardından 95 santigrat derecede 10 dakika inkübe edin.Numuneleri buz üzerinde üç dakika soğutun, ardından mıknatısın üzerine yerleştirin ve RNA'ları içeren süpernatanı toplayın ve boncukları atın. RNA'ları saflaştırmak için bir RNA saflaştırma kiti kullanın. Son olarak, RNA'ları eksi 80 santigrat derecede saklayın ve RT ve qPCR gerçekleştirin ve metin protokolüne göre DNA kütüphaneleri oluşturun.Burada gösterilen lncRNA ikincil yapısının biyoinformatik modellemesine dayanarak, problar iki lncRNA'ya, GH4C1 kültürlenmiş hücreler için sıçan Neat1 veya Malat1'e ve hipofiz dokusu ekstraktları için fare Neat1'e karşı tasarlanmıştır. Neat1 veya Malat1'in nispi zenginleşmesi, girdi örneklerine göre spesifik olmayan ve spesifik problar için hesaplandı. Bu şekil, sıçan GH4C1 hipofiz hücre hattında ve fare hipofiz dokusu ekstraktlarında Neat1'i aşağı çekmek için spesifik probların verimliliğini göstermektedir.Spesifik oligonükleotidler veya SO probları için protokol Malat1'e yönlendirildiğinde, atılan bir verimsiz prob ile birlikte bir verimli prob üretildi. RNA pull-down'ları ve RT qPCR'yi takiben, GH4C1 hücre ekstraktlarında Neat1 ile ilişkili RNA'lar, hipofiz dokusu ekstraktlarında da Neat1 ile ilişkilendirildi. Gerçekten de, Neat1 RNA'nın aşağı çekilmesinden sonra, Malat1'in hem GH4C1 hücre hattında hem de hipofiz fare dokusu ekstraktlarında Neat1 tarafından hedeflendiği bulundu.Ek olarak, Neat1, GH4C1 hücrelerinde prob ile bir Malat1 RNA aşağı çekme işlemi gerçekleştirildikten sonra önemli ölçüde zenginleştirildi. İki lncRNA arasında tanımlanan yakın ilişki, Neat1 RNA ekspresyonunda varyasyonlar gösteren Malat1 nakavt fareleri tarafından önerilen Neat1 ve Malat1'in potansiyel ortak düzenleyici rolü ile tutarlıdır. Bir kez ustalaştıktan sonra, bu teknik, istenen uzun kodlamayan bir RNA'nın RNA hedeflerinin iki veya üç gün içinde yakalanmasını sağlar.Biyoinformatik yaklaşımla, birkaç anti-sens prob tasarlamak ve daha sonra verimliliklerini deneysel olarak karşılaştırmak önemlidir, çünkü prob verimliliği hücre lizat preparatları tarafından değiştirilebilir. Bu prosedürü takiben, ilgilenilen uzun kodlamayan bir RNA'nın tüm RNA etkileşimini sağlamak için yüksek verimli RNA dizilimi gerçekleştirilebilir. Bu videoyu izledikten sonra, ikincil yapısının biyoinformatik modellemesi ile belirlenen uzun kodlamayan RNA'nın mevcut bölgelerine hibritleşen verimli, spesifik problar kullanarak uzun kodlamayan bir RNA'nın RNA ortaklarını nasıl yakalayacağınızı iyi anlamış olmalısınız.

rna-pull-down-procedure-to-identify-rna-targets-long-non-coding

Research

JoVE Journal

Genetics

Genetik

Pre-mRNA geçici doğası nedeniyle, izole etmek ve incelemek için zor...

İnsan pre-mRNA üzerinde Haritalama Ribonucleoproteins Hızlı Yüksek verim için Yöntemi (RNPs)

RIP-Chip aracılığıyla RNA ilişkili kompleksleri izole ve tanımlamak için adım protokolü bir adım.

RIP-Chip kullanarak Hücre Ekstraktlarının gelen mRNA mikroRNA&#39;lar ve ribonükleoprotein Kompleksi Protein Bileşenlerinin İzolasyonu ve Tanımlama için Yöntemi

3' çevrilmemiş bölgelerdeki fonksiyonel elementlerin ışıldayan tanımlaması (3'UTR'ler) (3'LIFE), miRNA'lar veya diğer düzenleyici faktörler tarafından 3'UTR'lerdeki fonksiyonel düzenlemeyi tanımlamak için kullanılan bir tekniktir. Bu protokol, fonksiyonel baskılama için yüzlerce varsayılan etkileşimi taramak için 96 oyuklu transfeksiyon ve lusiferaz tahlilleri gibi yüksek verimli metodolojiyi kullanır.

3&#39;LIFE Test kullanma Yüksek throughput miRNA Hedefleri tespiti

Bir RNA açılan protokolü RNA bağlayıcı proteinlere (RBPS) ve kodlama yapmayan ve kodlama RNA arasındaki etkileşimin saptanması için optimize edilmiştir. androjen reseptörü (AR) için bir RNA fragmanı primer kahverengi adipositlerin lystate onun RBP almak için nasıl kullanılacağını göstermek için bir örnek olarak kullanılmıştır.

RNA bağlama proteinlerinin tespiti ile<em&gt; İn Vitro</emAdiposit Kültür&gt; RNA pull-down

Bu el yazması, ökaryotik hücrelerde oluşan seçilmiş akraba RNP'leri spesifik bir oligonükleotid yönelimli zenginleştirme yoluyla izole etmek için bir yaklaşımı açıklar. Bu yaklaşımın uygulanabilirliğini, DHX9/RNA helikaz A'dan oluşan retroviral 5' çevrilmemiş bölgeye bağlı bir akraba RNP'yi izole ederek gösteriyoruz.

Oligonükleotid yönelik elüsyon kullanılarak Hücreler Aynı Kökenli RNA-protein kompleksleri izolasyonu

RNA-protein etkileşimleri birçok hücresel sürecin merkezinde yer alır. Burada, spesifik RNA'yı izole etmek ve onunla ilişkili yeni proteinleri tanımlamak için in vivo bir yöntemi açıklıyoruz. Bu, RNA'ların hücrede nasıl düzenlendiğine yeni bir ışık tutabilir.

Rapid Metodoloji tarafından Roman RNA Bağlayıcı Proteinler İzolasyon

Biz RNA bağlanıcı proteinler tanımlamak ve kendi RNA bağlayıcı bölgeleri UV-aracılı photocrosslinking ve kütle spektrometresi kullanılarak canlı hücrelerdeki eşlemek için bir protokol tanımlamak.

Kütle spektrometresi tabanlı kimlik RNA-bağlama bölgelerinin için numune hazırlama

Bu rapor hücresel miRNAs mRNA hedefleri doğrulamak için hızlı ve güvenilir bir yöntem açıklanır. Sentetik biotinylated miRNA kilitli nükleik asit LNA tabanlı yakalamaya taklit eden yöntemi kullanır mRNA hedef. Daha sonra manyetik boncuklar streptavidin kaplı açılan için istihdam edilmektedir hedef mRNA qPCR polimeraz zincir reaksiyonu tarafından miktar için.

Biotin tabanlı açılan tahlil için Doğrula mRNA hedefleri hücresel miRNAs

Endogenously kurulan mRNA-protein kompleksleri kurtarılması için bir tandem RNA izolasyon yordam (seyahat) açıklanmıştır. Özellikle, çapraz vivo içindeRNA-protein kompleksleri vardır, poliadenile RNA'ların özleri ile oligo(dT) boncuk etkilenmezsiniz ve belirli mRNA'ların değiştirilmiş RNA antianlamlı oligonucleotides ile yakalanır. MRNA'ların için bağlı proteinler immunoblot analizi ile tespit edilir.

Ökaryotik mRNA-Protein kompleksleri kurtarmak için bir Tandem oligonükleotid tabanlı RNA izolasyon yordamı

Burada, insan hücrelerinden toplam protein ekstraktını, biyotinile RNA ile kaplanmış streptavidin boncuklarını ve kütle spektrometri analizini kullanarak, spesifik RNA dizilerinin protein interaktörlerini ortaya çıkarmak, ölçmek ve doğrulamak için optimize edilmiş bir in vitro yöntem sunuyoruz.

Kısa Biyotinile RNA Kullanan RNA Bağlayıcı Proteinlerin Optimize Edilmiş Kantitatif Aşağı Çekme Analizi

Keşfedin uzun kodlamayan RNA'ların RNA hedeflerini belirlemek için RNA pull-down yöntemini. Bu teknik, hücre kültürleri ve doku örneklerinde Neat1 ve Malat1 gibi lncRNA etkileşimlerini incelemek için kullanılır.

Uzun kodlamayan RNA, RNA hedefleri tanımlamak için RNA Pull-down yordamı

Daha fazla video keşfet