Name: Fare ve insan elde edilen birincil Gastrik epitel Monolayer kültür yenilenme çalışmaları için (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-07T13:30:00.000+00:00
Duration: 11 min 48 s
Description: Keşfedin fare ve insan kaynaklı primer gastrik epitel monolayer kültürü ile yara iyileşme deneylerinde hücre göçü ve rejenerasyon mekanizmalarını. Bu yöntem gastroenteroloji araştırmaları için uygundur.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu eser NIH (NIDDK) 5 desteklenmiştir R01 DK083402-07 (YZ) verin.

Kirlenmesini önlemek için iletişim kuralı bütünüyle bir steril doku kültürü başlık içinde gerçekleştirin. İnsan fundic doku kol gastrektomi onaylı Cincinnati Üniversitesi IRB protokolüne göre geçiren hastaların toplanan (IRB protokol numarası: 2015-4869). Tüm fare çalışmaları Cincinnati Üniversitesi Kurumsal hayvan bakımı ve kullanımı Komitesi (IACUC) bir Amerikan Derneği değerlendirme ve Akreditasyon, laboratuvar hayvan bakım (AAALAC) tesis tutar tarafından kabul edildi.
1. insan kaynaklı 3D mide Fundic Organoids kurulması
Not: Bu protokol araştırma daha önce yayınlanan bu laboratuvar8' üzerine kuruludur.
<ol><li>% 50 Wnt klimalı ve %20 R-spondin şartına medya oluşan 3D organoid ortam hazırlamak.<ol>
<li>Wnt klimalı ortam hazırlamak, Wnt büyüme orta L hücrelerde kültür (Dulbecco kartal orta (DMEM), % 10 fetal sığır serum (FBS), % 1'değişiklik ' ın penisilin/streptomisin) 7 gün boyunca orta hasat ve 0,22 µm filtre kullanarak filtre uygulama.</li>
		<li>R-spondin klimalı ortam hazırlamak. Değiştirilmiş HEK-293T R-spondin secreting hücre R-spondin büyüme orta hattı büyümek (Dulbecco kartal orta (DMEM), % 10 fetal sığır serum (FBS), % 1'değişiklik ' ın penisilin/streptomisin). 2 h sonra eki orta bu hücrelerden OPTIMEM büyüme için orta, % 1 değiştirin penisilin/streptomisin. Hücreleri 7 gün boyunca kültür. O zaman R-spondin klimalı ortam hasat ve 0,22 µm filtre kullanarak filtre uygulama. Not: Bu protokol daha önce yayımlanmış ve daha ayrıntılı bir iletişim kuralı için 6,7,8' e bakın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Büyüme faktörü azaltılmış, fenol red ücretsiz membran matris için 16 h 4 ° C'de buz çözme Buz gibi Ca2 +/Mg2 +dokusunda toplamak-DBPS büyük bir plastik kap içinde ücretsiz. Buz üzerinde başlangıç adım 1.4 kadar saklayın. Not: Doku kol gastrektomi geçiren hastaların toplanır.</li>
	<li>Forseps kullanarak, 100 mL Ca2 +/Mg2 +içeren steril bir ölçek şiddetle doku yıkama-Dulbecco'nın fosfat tamponlu tuz (DPBS) ücretsiz. Yıkama için yaklaşık 30 s veya enkaz ve kan kaldırıldı kadar. Daha sonra steril gazlı bez kullanarak, uzak epitel müköz katmandan silin.</li>
	<li>Büyük forseps kullanarak, sıkıca kas katmanı doku ve gücü ile kavramak, uzakta büyük eğri Kan durdurucu sargı forseps kullanarak epitel kazımak. Steril, polistren petri kabına alıntı epitel parçaları toplamak.</li>
	<li>Epitel doku doku sindirim optimize etmek için jilet kullanarak yaklaşık 2.0 x 2.0 mm2 boyutlu parçaları kıyma. Doku parçaları ile Ca2 +/Mg2 + yıkama-antibiyotik ile desteklenmiş DBPS ücretsiz (Ca2 +/Mg2 + -DPBS, %1 penisilin/streptomisin, 0.25 mg/mL Amfoterisin B ücretsiz 10 mg/mL gentamisin, 50 mg/mL sefaloridin), kadar yıkama kan ücretsizdir. Birden fazla yıkamak gerekiyorsa gerçekleştirin. Yıkama yıkama steril bir gazlı bez ile atık kabı dikkatle süzerek atmak.</li>
	<li>Toplamak bir 125 mL cam alt şişe ile 25 mm heyecan bar ve Önceden ısıtılmış kuluçka medya yuvarlak içine parçaları yıkanmış (2 mM L-glutamin, % 1 ile desteklenmiş Bazal medya penisilin/streptomisin, 10 mM HEPES tampon, 1 mg/mL Collagenase Type 1, 2 mg/mL hücre kültürü «««sınıf) sığır Serum albümin. Yuvarlak alt balon lastik septa ile kapatın.</li>
	<li>20 G spinal iğne septa yerleştirin ve bir oksijen tankı kauçuk hosing ile bağlayın. Herhangi bir kirletici maddeleri filtre uygulamak için filtre oluşturmak için tüp içine doku kağıt yerleştirin. Düşük oksijen çıkım açın. 10-15 çıkış iğneler septa rüptürü önlemek için septa yerleştirin.</li>
	<li>Set kelepçeler kullanılarak bir yüzük standına güvenli ve 37 ° C 30-45 dk için bir heyecan plaka için kalibre bir su banyosu yerleştirebilirsiniz. Sonra doku 15dk için kuluçka kuluçka medya ve görsel olarak Disosiye bezleri için onay 50 µL kaldırın. Bezleri yoğun değildir ya da dokudan ayrılmış değil, bir ek 5-10dk için bırakın.</li>
	<li>Hemen kuluçka, ekleyin 50 mL Önceden ısıtılmış DMEM/F12 kuluçka ortamına steril serolojik pipet kullanarak veya doğrudan kuluçka karışım içine dökme tarafından.</li>
	<li>Bezi karışımı steril bir gazlı bez ile dört 50 mL konik tüpler içine filtre. Filtrate buz ayıklanan bezleri konik tüp altına yerleşmek izin vermek 15 dakika tutun. Değil kapatılan bezleri rahatsız kaldırmak ve üstlerden süpernatant serolojik pipet kullanarak 40 mL atmak dikkatli olun. Kalan 10 mL antibiyotiklerle takıma DPBS 10 ml resuspend.</li>
	<li>Karışım 5 mL hücre kültür testi tüpler içine eşit dağıt. 65 x g 4 ° c de 5 dk santrifüj kapasitesi ve dikkatli bir pipet kullanarak süpernatant kaldırın. Bezi Pelet çözdürülen membran matris bir pipet ya da 200 µL geniş pipet ucu kullanarak resuspend. Mix kadar homojen. Not: Buz üzerinde bu adımı gerçekleştirmek için ve karıştırma sırasında polimerizasyon membran matris önlemek için önemlidir. Ayrıca, bezi yoğunluğu 50 µL için örnekleme tarafından kontrol edin önemlidir. ~ %70 confluency en uygun yoğunluğudur.</li>
	<li>Daha sonra geniş uçlu pipet kullanarak membran matrisinin 50 µL bezlerinde plaka. Kaplama sırasında herhangi bir kabarcıklar üreten kaçının.</li>
	<li>Membran matris polimerize, 10-15 dk 37 ° C'de için kuluçkaya izin vermek için Bir 12-şey kültür tabağına kaplama, 1 mL hFGO medya ekleyerek (Gelişmiş Dulbecco'nın değiştirilmiş kartal orta/F12 orta takıma 2 mM L-glutamin, %1 penisilin/streptomisin, 0.25 mg/mL Amfoterisin B ile 10 mg/mL gentamisin, 50 mg/mL sefaloridin, 10 mM HEPES Tampon, 1 mM n-Acteylcystine, 1 x N2, 1 x B27, % 50 Wnt şartına orta, % 20'r-spondin-şartına orta 100 ng/mL ile desteklenmiş kemik morfogenetik protein inhibitörü, 1 nM gastrin, 50 ng/mL Epidermal büyüme faktörü, 200 ng/mL Fibroblast büyüme faktörü 10, 10 mM Nikotinamid ve 10 µM Y-27632 ROCK inhibitörü) iyi başına. Yoksa bir 12-şey kültür plaka kullanarak eklemek yeterli medya membran matris kabarcık daldırın.</li>
	<li>Bir % 5 CO2 oksijen hücre kültür kuluçka 37 ° C'de hücreler kültür. Medya her 4-5 gün değiştirin.</li>
</ol>2. fare kaynaklı 3D mide Fundic Organoids kurulması
Not: Bu protokol önceden yayınlanmış 6oldu. Membran matris buz çözme ve tüm reaktifler başlamadan hazır olun.
<ol><li>Araştırma kuruluşu tarafından onaylanmış bir araştırma gerçekleştirildiği yöntemiyle fareler kurban. Mide fare kaldırmak ve göre daha önce yayımlanmış protokolleri 6incelemek. 20 mL buz soğuk Ca2 +/Mg2 +yıkama-DBPS ücretsiz. Not: C57BL/6 fare, 8-10 hafta, yaşlı fundic mide organoid kültürler için kullanılır. Fareler karbondioksit mide kaldırma önce el ile servikal çıkığı ardından Solunduğunda euthanized.</li>
	<li>Mide kas katmandan şerit ve görünür herhangi bir kan damarları daha önce 6yayınlandı.</li>
	<li>Fundus test ve steril bir jilet kullanarak forestomach ayrı. Kesme fundus parçalara yaklaşık 2.0 x 2.0 mm. kullanma forseps, küçük Cerrahi makas kullanarak bir 15 mL konik tüp EDTA kuluçka arabellek içeren parçaları toplamak (Ca2 +/Mg2 +-DPBS, 5 mM EDTA ücretsiz) ve 4 ° c 2 h ile için kuluçkaya nazik ajitasyon.</li>
	<li>Steril bir Hood, konik tüp bırakın ve yaklaşık 5 dakika süreyle buz parçaları bir pipet parçaları el değmemiş bırakarak mümkün olduğu kadar kuluçka arabellek kaldırmak için kullanın. 5 mL arabellek sallayarak ekleyin (D-Sorbitol, 1,47 g Sükroz 100 ml Ca2 +/Mg2 +1 g-DPBS ücretsiz) ve 2 dk. izin yönelik büyük parçaları yerleşmek ve 1000 p pipet kullanarak acele ile yerleşmek için henüz küçük parçaları kaldırmak el ile bir güçle sallamak en üst katmanda.</li>
	<li>65 x g de 4 ° C'de 5 min için kaldırılan parçaları spin.</li>
	<li>Hava kabarcıkları kaçınırken süpernatant kaldırmak, membran matrisinde resuspend ve homojen gelene kadar karıştırın.</li>
	<li>Membran matris şey başına 50 µL at plaka ve sonra 20 dakika 37 ° C'de kuluçkaya için geniş uç pipet kullanın.</li>
	<li>Yeterli mFGO büyüme ortamı ekleyin (Gelişmiş Dulbecco'nın modifiye kartal orta/F12 orta takıma 2 mM L-glutamin, %1 penisilin/streptomisin, 10 mM ile HEPES tampon, 1mM n-Acteylcystine, 1 x N2, 1 x B27, % 50 orta, Wnt şartına % 20 R-spondin-klimalı 100 ng/mL kemik morfogenetik protein inhibitörü, 10 nM gastrin, 50ng/mL Epidermal büyüme faktörü, 10 ng/mL Fibroblast büyüme faktörü 10 ve 10 µM Y-27632 ROCK inhibitörü ile desteklenmiş orta) kabarcık daldırın için.</li>
	<li>37 ° c, % 5 CO2 oksijen hücre kültür kuluçka hücreler kültür. Medya her 4-5 gün değiştirin.</li>
</ol>3. kollajen kaplama 2D Transfer için
Not: aksi belirtilmedikçe steril doku kültürü mahallede tüm yordamları gerçekleştirin. 3D organoids için monolayer aktarmadan önce 24 h kaplama kollajen başlar. Sıçan kuyruğu kollajen buz üzerinde tutun ve ışıktan korumalı. Kolajen kaplı levha 2 hafta kadar iyidir. Kaplamalı plakalar hemen kullanmıyorsanız, parafilm ve store gerekinceye kadar 4 ° C'de plaka sarın.
<ol><li>Sıçan kuyruğu kollajen 50 µg/ML 20 mM Asetik asit kullanarak sulandırmak.</li>
	<li>Yeterince seyreltilmiş kollajen ile pınarı yüzeyini kapsar. Standart bir 12-şey plaka bir kuyuda kollajen yaklaşık 1 mL ile kat. Gece, oda sıcaklığında bir steril başlıklı bırakın.</li>
	<li>İki kez ile 1 mL Ca2 +/Mg2 +yıkama-DPBS iyi ücretsiz ve steril başlıklı oda sıcaklığında 2 h için açığa bırakın.</li>
</ol>4. membran matris kaplama 2D Transfer için
Not: aksi belirtilmedikçe steril doku kültürü mahallede tüm yordamları gerçekleştirin. 3D organoids için monolayer aktarmadan önce 2 h kaplama membran matris başlar. Membran matris buz üzerinde tutun. Kaplamalı plakalar hemen kullanılacak olan ve uzun süre saklanamaz.
<ol><li>1:10, 15 mL konik tüp bir hücre kültür sınıf su ile membran matrisinde seyreltik oranı. Buzda sulandırmak.</li>
	<li>Bir pipet kullanarak standart bir 12-şey plaka her şey için 100 µL seyreltilmiş membran matris ekleyin. Bir hücre kazıyıcı kullanarak, hatta bir kat için kuyu boyunca seyreltilmiş membran matris eşit dağıt.</li>
	<li>1s için 37 ° C'de kuluçkaya.</li>
	<li>Bir pipet kullanarak kalan su kaldırmak ve 3D organoids aktarmadan önce oda sıcaklığında 1 h için kuru.</li>
</ol>5. 2D Gastrik epitel hücre Monolayers 3D m/hFGOs ve aktarımı
<ol><li>3D fare veya insan-FGOs 6-7 gün boyunca kültürlü kaynaklı sonra 3D organoids aktarımı için 2D monolayer başlar. Not: gerekli bir monolayer her şey için 300 olduğu gibi organoids veya tek hücre 300 organoids türetilmiş kullanmak için önerilir. Sağlam bir kültürde bu 150 organoid/iyi bir 12 iyi kültür tabak içinde yaklaşık almak için bekleniyor.</li>
	<li>Tabak aktarmadan önce kaplanır emin olun. Not: Membran kaplı matris plakaları bir yarı saydam jel katman var, ancak, kolajen kaplı levha kaplama açık belirtisi yoktur.</li>
	<li>Doğrudan 1 mL steril Ca2 +/Mg2 +pipetting tarafından 3D membran matris kabarcık plaka çıkarmak-DBPS ücretsiz kabarcık Merkezi.</li>
	<li>Bir pipet kullanarak, membran matris ve organoid karışımı hücre kültür testi tüpler içine toplamak. 2 membran matris baloncuklar tüp başına oranında toplamak. 40 g ve 4 ° c x 5 dk santrifüj</li>
	<li>Vakum sistemiyle süpernatant kaldırmak ve mümkün olduğunca fazla membran matris. Ca2 +/Mg2 +4 mL resuspend-DBPS ücretsiz, süpernatant kaldırmak ve 2 - 3 kez tekrarlayın. Bütün organoid Aktarım Protokolü için 5.10 adıma geçin. Adım 5,7 tek hücre süspansiyon protokolü için devam ediyor.</li>
	<li>Hücre dekolmanı çözümü 37 ° c önceden sıcak ve her test tüpü 1 mL ekleyin. Tüpler ters çevirme ya da yukarı ve aşağı bir pipet ile pipetting karışımı yavaşça. 37 ° C'de 10 dakika için kuluçkaya</li>
	<li>Ca2 +/Mg2 +2 mL ekleyin-DBPS doğrudan her tüp için ücretsiz.</li>
	<li>26 G iğne kullanın ve karışım 2 - 3 kez şırınga. Görsel için tek hücreleri denetleyin. Hala varsa organoids veya hücre kümeleri 1-2 kez daha şırınga.</li>
	<li>4 ° C'de 5 min için 40 x g, santrifüj Pelet 2D FGO medyada resuspend (2D fare FGO büyüme orta: gelişmiş Dulbecco'nın değiştirilmiş kartal orta/F12 orta Fetal buzağı Serum, 10 mM 2 mM L-glutamin, 10 mM penisilin/streptomisin, % 10 takıma HEPES tampon, 1 x N2, 1 x B27, 10 nM gastrin, 50 ng/mL Epidermal büyüme faktörü, 1 µM TGF-β inhibitörü ve 10 µM Y-27632 ROCK inhibitörü ile desteklenmiştir. 2D insan FGO büyüme orta: Gelişmiş Dulbecco'nın değiştirilmiş kartal orta/F12 orta 2 mM L-glutamin, %1 penisilin/streptomisin, 10 mM ile % 10 HEPES tampon, takıma Fetal buzağı Serum, 10 mM Nikotinamid, 1 x N2, 1 x B27, sefaloridin, 50 ng/mL Epidermal büyüme 50 mg/mL ile desteklenmiş 1 µM TGF-β önleyici) faktör ve 10 µM Y-27632 ROCK inhibitörü.</li>
	<li>Levha kaplamalı plakalar üzerinde resuspension. Tabak 37 ° C'de kuluçkaya Medya sarı dönüşürse ortamı her 4 gün veya daha önce değiştirin. Monolayer yaklaşık 4 gün form olarak gerektirir.</li>
</ol>6. yara tahlil 2D Gastrik epitel hücre Monolayers kullanarak sıfırdan
<ol><li>Kültür % 100 confluency ulaşmıştır jilet kullanarak, monolayer kaşı.</li>
	<li>15 dakika oda sıcaklığında % 3.7 formaldehit kullanarak monolayers saptamak. %0,5 non-iyonik deterjan/PBS için oda sıcaklığında 20 dk ile permeabilize.</li>
	<li>Sonraki monolayers oda sıcaklığında 1 h için % 2 eşek serum ile blok ve 1: 1000 seyreltme h+, K+ile kuluçkaya-ATPaz birincil antikor gecede 4 ° C'de yıkama %0,1 non-iyonik deterjan/PBS ile ve eşek 1: 100 seyreltme ile kuluçkaya Anti-fare 488 ikincil antikor ve 10μg/mL Höchst hücre çekirdeği, oda sıcaklığında 1 h için leke.</li>
	<li>2D insan kaynaklı mide monolayer kültürlerde yüzey müköz çukur hücreleri tanımlamak için 20 μg /mL Ulex europaeus (UEAI) FITC eşleniği olan hücreleri leke. Confocal mikroskop üzerinde görüntü monolayers.</li>
	<li>Her kaç h. çizik monolayer kalitesine bağlı olarak 24-48 h ve hastalar arasında varyasyon arasında yeniden epithelialize yara görüntülerini almak.</li>
</ol>

<ol><li>Nagy, T. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Helicobacter+pylori+regulates+cellular+migration+and+apoptosis+by+activation+of+phosphatidylinositol+3-kinase+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22J+Infect+Dis%22%5BJournal%5D)">Helicobacter pylori regulates cellular migration and apoptosis by activation of phosphatidylinositol 3-kinase signaling.</a> J Infect Dis. 199 (5), 641-651 (2009).</li>
<li>Mnich, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+Helicobacter+pylori+on+the+healing+process+of+the+gastric+barrier%5BTitle%5D)+AND+%22World+J+Gastroenterol%22%5BJournal%5D)">Impact of Helicobacter pylori on the healing process of the gastric barrier.</a> World J Gastroenterol. 22 (33), 7536-7558 (2016).</li>
<li>Zhang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bm-TFF2%2C+a+toad+trefoil+factor%2C+promotes+cell+migration%2C+survival+and+wound+healing%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+Biophys+Res+Commun%22%5BJournal%5D)">Bm-TFF2, a toad trefoil factor, promotes cell migration, survival and wound healing.</a> Biochem Biophys Res Commun. 398 (3), 559-564 (2010).</li>
<li>Crabtree, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+cytokines+in+pathogenesis+of+Helicobacter+pylori-induced+mucosal+damage%5BTitle%5D)+AND+%22Dig+Dis+Sci%22%5BJournal%5D)">Role of cytokines in pathogenesis of Helicobacter pylori-induced mucosal damage.</a> Dig Dis Sci. 43 (Supplement), 46S-53S (1998).</li>
<li>Riahi, R., Yang, Y., Zhang, D. D., Wong, P. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advances+in+wound-healing+assays+for+probing+collective+cell+migration%5BTitle%5D)+AND+%22J+Lab+Autom%22%5BJournal%5D)">Advances in wound-healing assays for probing collective cell migration.</a> J Lab Autom. 17 (1), 59-65 (2012).</li>
<li>Zhang, M., Li, H., Ma, H., Qin, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+microfluidic+strategy+for+cell+migration+assay+in+an+in+vitro+wound-healing+model%5BTitle%5D)+AND+%22Wound+Repair+Regen%22%5BJournal%5D)">A simple microfluidic strategy for cell migration assay in an in vitro wound-healing model.</a> Wound Repair Regen. 21 (6), 897-903 (2013).</li>
<li>Schlaermann, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+human+gastric+primary+cell+culture+system+for+modelling+Helicobacter+pylori+infection+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Gut%22%5BJournal%5D)">A novel human gastric primary cell culture system for modelling Helicobacter pylori infection in vitro.</a> Gut. 65 (2), 202-213 (2016).</li>
<li>Bertaux-Skeirik, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CD44+plays+a+functional+role+in+Helicobacter+pylori-induced+epithelial+cell+proliferation%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathog%22%5BJournal%5D)">CD44 plays a functional role in Helicobacter pylori-induced epithelial cell proliferation.</a> PLoS Pathog. 11 (2), e1004663(2015).</li>
<li>Tarnawski, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+and+molecular+mechanisms+of+gastrointestinal+ulcer+healing%5BTitle%5D)+AND+%22Dig+Dis+Sci%22%5BJournal%5D)">Cellular and molecular mechanisms of gastrointestinal ulcer healing.</a> Dig Dis Sci. 50 (Suppl 1), S24-S33 (2005).</li>
<li>Wright, N. A., Pike, C., Elia, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+a+novel+epidermal+growth+factor-secreting+cell+lineage+by+mucosal+ulceration+in+human+gastrointestinal+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Induction of a novel epidermal growth factor-secreting cell lineage by mucosal ulceration in human gastrointestinal stem cells.</a> Nature. 343, 82-85 (1990).</li>
<li>Wright, C. L., Riddell, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histology+of+the+stomach+and+duodenum+in+Crohn%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Surg+Pathol%22%5BJournal%5D)">Histology of the stomach and duodenum in Crohn's disease.</a> Am J Surg Pathol. 22 (4), 383-390 (1998).</li>
<li>Engevik, A. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Development+of+Spasmolytic+Polypeptide%2FTFF2-Expressing+Metaplasia+%28SPEM%29+During+Gastric+Repair+Is+Absent+in+the+Aged+Stomach%5BTitle%5D)+AND+%22CMGH%22%5BJournal%5D)">The Development of Spasmolytic Polypeptide/TFF2-Expressing Metaplasia (SPEM) During Gastric Repair Is Absent in the Aged Stomach.</a> CMGH. , In Press (2016).</li>
<li>Bertaux-Skeirik, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CD44+variant+isoform+9+emerges+in+response+to+injury+and+contributes+to+the+regeneration+of+the+gastric+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pathology%22%5BJournal%5D)">CD44 variant isoform 9 emerges in response to injury and contributes to the regeneration of the gastric epithelium.</a> Journal of Pathology. 242 (4), 463-475 (2017).</li>
<li>Nam, K. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mature+chief+cells+are+cryptic+progenitors+for+metaplasia+in+the+stomach%5BTitle%5D)+AND+%22Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">Mature chief cells are cryptic progenitors for metaplasia in the stomach.</a> Gastroenterology. 139 (6), 2028-2037 (2010).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Geçerli protokol çizik-yara deneyleri için kullanılan insan ve fare türetilmiş Gastrik epitel monolayers kurulması ayrıntıları. Değiştirilmiş bir protokol ilk Schlaermann ve ark7tarafından yayınlanan ve protokol ikamet kök hücre izolasyon birincil insan (veya fare) doku kavramı üzerinde bağlıdır. Özellikle, biz burada protokolü bir birleşmesi kurmak için optimize edilmiş ve hangi ifade eder ve ana hücre içinde Gastrik epitel vivo içindebulunan soy Gastrik epitel monolayer polariz...

Çizik-yara deneyleri kullanımı onarım ve rejenerasyon1,2,3,4,5,6eğitim için popüler bir yöntemdir. Önerilen metodoloji özellikle mide yenilenme ve Helicobacter pylori kolonizasyon eğitim için kullanılabilir. Geçmişte, mide kanseri hücre hatları Helicobacter pylori (H. pylori) enfeksiyon1,2 çalışma için bir araç olarak kullanılmış olan ve ana kadar son zamanlarda mide kanseri hücre hatları AGS hücreleri gibi tercih1 vardı. ,2,3,4. Bir mide kanseri hücre kültürleri Gastrik epitel hücre çeşitliliği özetlemek için onların başarısızlığı kısıtlamasıdır. Bu sınırlama, adres deneyin için işte kuruluş ve birincil insan ve fare-kaynaklı 3 boyutlu fundic mide organoids (FGOs) transferi için değiştirilmiş bir yöntemiyle ilk alan yara iyileşme deneyleri için Gastrik epitel monolayer gösterdi Schlaermann ve arktarafından açıklanan. 7 biz Gastrik epitel monolayers türetilen güdülmesini 3D Gastrik FGOs veya tek hücre FGO elde tutmak yakından bu Gastrik epitel temsil eden bir polarize hücresel kompozisyon göstermek içinde vivo. Mide kanseri hücre hatları bu teknik görüntüler hücre kompozisyon göstermek değil ki, geçerli protokol alternatif çizik-yara tahlil yöntemleri üzerinde bir avantaj sahiptir. Monolayers bütün organoids veya tek hücre süspansiyon Disosiye organoids üzerinden kurulan ve kaplama bir membran matrisi kullanarak veya kollajen-kaplama olabilir mademki bu metodoloji optimize edilmiştir. Bu iletişim kuralı genel amacı bir organoid Gastrik epitel monolayer kültürler bir roman yara iyileşme tahlil için türetilmiş kurmaktır.

<table><tbody><tr><td>Gelişmiş Dulbecco'nun modifiye edilmiş Eagle / F12 ortamı (bazal ortam)</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>12634-010</td><td></td></tr><tr><td>GlutaMAX (L-glutamin)</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>25030-081</td><td></td></tr><tr><td>Penisilin / Streptomisin</td><td>Termo Bilimsel</td><td>SV30010</td><td></td></tr><tr><td>Amfoterisin B / Gentamisin</td><td>Termo Bilimsel</td><td>R01510</td><td></td></tr><tr><td>Kanamisin</td><td>Termo Fisher</td><td>RO1510</td><td></td></tr><tr><td>HEPES Tampon</td><td>Sigma Aldrich</td><td>H0887</td><td></td></tr><tr><td>n-Asetilsistin</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A9165</td><td></td></tr><tr><td>N2</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>17502-048</td><td></td></tr><tr><td>B27</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>12587-010</td><td></td></tr><tr><td>BMP İnhibitörü (Noggin)</td><td>Pepro Tech</td><td>250-38</td><td></td></tr><tr><td>Gastrin</td><td>Tocris</td><td>3006</td><td></td></tr><tr><td>EGF</td><td>Pepro Tech</td><td>315-09</td><td></td></tr><tr><td>FGF10</td><td>Pepro Tech</td><td>100-26</td><td></td></tr><tr><td>Nikotinamid</td><td>Sigma Aldrich</td><td>N0636</td><td></td></tr><tr><td>Y-27632 ROCK İnhibitörü</td><td>Sigma Aldrich</td><td>Y0503</td><td></td></tr><tr><td>TGF-&beta; İnhibitör</td><td>Tocris</td><td>2939</td><td></td></tr><tr><td>Ca 2 + / Mg 2 + -ücretsiz DPBS</td><td>Fisher</td><td>21-031CV</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco'nun modifiye edilmiş Eagle Medium (DMEM)</td> <td>Yaşam Teknolojileri</td><td>12634-010</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Sığır Serumu</td><td>FBS</td><td></td><td></td></tr><tr><td>OPTIMEM</td><td>Invitrogen</td><td></td><td></td></tr><tr><td>0.22 & mikro; M filtre</td><td>Fisher</td><td>099-720-004</td><td></td></tr><tr><td>37 & derece C Su Banyosu</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kollajenaz Tip 1</td><td>Worthington&nbsp;</td><td></td><td></td>LS004214</tr><tr><td>Sığır Serumu Albümini</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A9418</td><td></td></tr><tr><td>Kimwipes (kağıt mendil)</td><td>Fischer Scientific</td><td>06-666C</td><td></td></tr><tr><td>125 mL yuvarlak tabanlı şişe</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 inç (25 mm) karıştırma çubuğu</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kauçuk Septa</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Steril Gazlı Bez</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Karıştırma Plakası</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Halka Standı</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Halka Stand Kelepçeleri</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Steril petri kabı</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>18 G 1,5 uzunluğunda iğneler</td><td>Thermo Fisher</td><td>305196</td><td></td></tr><tr><td>3,5 inç uzunluğunda 20 G omurga iğneleri</td><td>Thermo Fisher</td><td>405182</td><td></td></tr><tr><td>12 oyuklu hücre kültürü ile muamele edilmiş plaka</td><td>Midwest Scientific</td><td>92012</td><td></td></tr><tr><td>Büyüme Faktörü Azaltılmış, Fenol Kırmızısı İçermeyen MatrigelTM (Bodrum membran matrisi)</td><td>Fisher</td><td>CB-40230C</td><td></td></tr><tr><td>Steril Tıraş Bıçakları</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td>Geniş uçlu cımbız</td></tr><tr><td>Kavisli Hemostatik Forseps</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>200 ve mikro; L geniş pipet uçları</td><td>Thermo Fisher</td><td>02-707-134</td><td></td></tr><tr><td>5 mL hücre kültürü test tüpleri</td><td>Fisher</td><td>14-956-3C</td><td></td></tr><tr><td>Kauçuk hortumlu</td><td></td><td></td><td></td>Oksijen Tankı</tr><tr><td>1 g D-Sorbitol</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sükroz</td><td>Fisher</td><td>SS-500</td><td></td></tr><tr><td>Diseksiyon mikroskobu</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Diseksiyon Tepsisi</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sallanan Masa</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sıçan Kuyruğu Kollajen Tip 1</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>A10483-01</td><td></td></tr><tr><td>Hücre kültürü sınıfı buzlu asetik asit</td><td>Fisher</td><td>A38-212</td><td></td></tr><tr><td>Hücre kültürü sınıfı su</td><td>Corning</td><td>25-055-CV</td><td></td></tr><tr><td>2 kuyulu odacıklı slayt</td><td>Thermo Fisher</td><td>155380</td><td></td></tr><tr><td>12 kuyulu Transwell (polyester membran ekleri)</td><td>Corning</td><td>3460</td><td></td></tr><tr><td>Hücre sıyırıcı</td><td>Corning</td><td>353086</td><td></td></tr><tr><td>Accutase (hücre ayırma solüsyonu)</td><td>Kök Hücre Teknolojileri</td><td>7920</td><td></td></tr><tr><td>263/8 G şırınga</td><td>Thermo Fisher</td><td>309625</td><td></td></tr><tr><td>Jiletli</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>L Hücreleri</td><td>Wnt3a üreten bir hücre hattı olan L hücreleri, Dr. Hans Clevers (Hubrecht Gelişim Biyolojisi ve Kök Hücre Araştırmaları Enstitüsü, Hollanda) tarafından hediye olarak alındı. &nbsp;</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>HEK-293T Rspondin salgılayan hücreler</td><td>Dr. Jeff Whitsett'ten (Neonatoloji, Perinatal ve Pulmoner Biyoloji Bölümü, Cincinnati Çocuk Hastanesi Tıp Merkezi ve Cincinnati Üniversitesi Tıp Fakültesi, Cincinnati, ABD) modifiye edilmiş bir HEK-293T R-spondin salgılayan hücre hattı elde edildi. &nbsp; &nbsp;</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>HK-ATPase Birincil Antikor</td><td>İnvitrojen</td><td>SC-374094</td><td></td></tr><tr><td>E-Cadherinn</td><td>SantaCruz</td><td>sc-59778</td><td></td></tr><tr><td>UEA1</td><td>Sigma Aldrich</td><td>L9006</td><td></td></tr><tr><td>Hoechst 33342</td><td>Thermo Fisher</td><td>H3570</td><td></td></tr><tr><td>Alexafluor 488 ikincil antikor (Eşek anti-fare 488 ikincil antikor)</td> <td>ThermoFisher Scientific</td><td>R37114</td><td></td></tr></tbody></table>

fare ve insan elde edilen birincil gastrik epitel monolayer kültür yenilenme çalışmaları için

Mouse- and Human-derived Primary Gastric Epithelial Monolayer Culture for the Study of Regeneration

Vitro çalışmalar, mide yarası onarma genelde mide kanseri hücre hatlarında bir çizik-yara tahlil hücresel proliferasyonu ve göç kullanımını içerir. Bir kritik böyle deneyleri, ancak, onların homojen karışım-in hücresel türleri kısıtlamasıdır. Onarım birkaç hücre tipleri arasındaki etkileşimin talepleri karmaşık bir süreçtir. Bu nedenle, bir kültür hücresel alt türlerinden yoksun çalışmaya Eğer biz onarım süreci anlamak için aşılması gereken bir sorundur. Mide organoid modeli mademki türdeş olmayan hücre türleri topluluğu benzer biçimde, Gastrik epitel veya diğer yerel doku içinde vivoyansıtan bu sorunu hafifletmek. İşte bir roman, insan türetilmiş vitro çizik-yara tahlil gösterdi veya sonra bir Gastrik epitel monolayer sağlam ya organoids ya da bir tek hücre süspansiyon olarak transfer edilebilir fare 3 boyutlu organoids ayrışmış organoids. Gastrik yenilenme eğitim için bir roman çizik-yara tahlil sisteminde kullanılan organoid kaynaklı Gastrik epitel monolayers kurmak için protokol hedefidir.

Organoids ya corpus/vücut insan ya da fundus fare mide dokuların (şekil 1A) elde edilmiştir. Ya collagenase ya da EDTA sindirim mide dokusunun insan veya fare türetilmiş sonra sırasıyla, bezleri membran matris gömülü ve 6-7 gün (şekil 1A) kültürlü. Şekil 1B sonra Gastrik epitel monolayer (huGEM) için membran matris kaplı odası slaytlarda transfer edilmiş insan kaynaklı mide organoids (huFGOs) oluşumu...

Burada biz kurmak ve 3 boyutlu (3D) Gastrik organoids insan ve fare türetilen ve yöntemi 3D organoids aktarmak için bir 2-boyutlu monolayer kültür bir protokol tanımlamak. Yenilenme çalışmaları bir roman çizik-yara tahlil olarak Gastrik epitel monolayer kullanımı da açıklanmıştır.

Fare ve insan elde edilen birincil Gastrik epitel Monolayer kültür yenilenme çalışmaları için

In vitro studies of gastric wound repair typically involves the use of gastric cancer cell lines in a scratch-wound assay of cellular proliferation and ...

Bu kültür sisteminin genel amacı, bir yara iyileşme testinde rejenerasyon çalışması için birincil bir fare veya insan kaynaklı mide tek tabakası oluşturmaktır. Bu yöntem, yaralanmaya yanıt olarak mide epitel hücresi rejenerasyonunun mekanizması gibi mide alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu tekniğin ana avantajı, ilk olarak, birincil fare veya insan kaynaklı mide hücrelerinden üretilen bir yara iyileşme testinde hücre göçü ve rejenerasyonunun incelenmesi ve büyük ölçekli deneyler için ikinci nesil insan kaynaklı mide organoidleridir.Bu yöntem mide epitelinin rejenerasyonu hakkında bilgi sağlayabilse de, helicobacter pylori enfeksiyonu ve epitelyal immün hücre ko-kültürleri gibi diğer sistemlere de uygulanabilir. Prosedürü gösteren, laboratuvarımdan bir yüksek lisans öğrencisi olan Emma Teal olacak. Başlamak için, hazırlanan dokuyu kalsiyum magnezyum içermeyen DPBS ile doldurulmuş büyük bir plastik kapta toplayın.Plastik kabı kullanana kadar buz üzerinde bırakın. Daha sonra, forseps yardımıyla, dokuyu 100 mililitre kalsiyum magnezyum içermeyen DPBS içeren steril bir beherde yaklaşık 30 saniye boyunca kuvvetlice yıkayın. Ardından, mukus tabakasını epitelden silmek için steril bir gazlı bez kullanın.Daha sonra, dokunun kas tabakasını sıkıca tutmak için büyük forseps kullanın, ardından büyük kavisli hemostatik forseps kullanın ve epiteli kuvvetle kazıyın. Kazınmış epiteli steril bir polistiren petri kabında saklayın. Doku sindirimini optimize etmek için epitel dokusunu parçalara ayırın.Daha sonra dokuyu antibiyotiklerle desteklenmiş kalsiyum, magnezyum içermeyen DPBS ile yıkayın. Kanı çıkarmak için birkaç kez yıkayın. Yıkamayı bir atık kabına atın.Daha sonra yıkanmış epitel parçalarını, 25 milimetrelik bir karıştırma çubuğu ve önceden ısıtılmış inkübasyon ortamı ile 125 mililitrelik cam yuvarlak tabanlı bir şişede toplayın. Doku parçalarını topladıktan sonra, yuvarlak tabanlı şişeyi bir septa ile kapatın. Ardından, kurulumu bir halka standına sabitlemek için kelepçeler kullanın.Ardından septaya 20 gauge omurga iğnesi yerleştirin. Septayı lastik hortumlu bir oksijen tankına bağlayın. Yırtılmasını önlemek için septaya 10 ila 15 çıkış iğnesi sokun, oksijen çıkışını düşük seviyede tutun.Bundan sonra, su banyosunu 30 ila 45 dakika boyunca bir karıştırma plakası üzerinde 37 santigrat derecede kalibre edin. Kalibre edildikten sonra kurulumu su banyosuna yerleştirin. 15 dakikalık inkübasyondan sonra, ayrışmış bezleri kontrol edin.İstenilen inkübasyon süresinden sonra, serolojik bir pipet kullanarak inkübasyon ortamına 15 mililitre önceden ısıtılmış DMEMF12 ekleyin. Daha sonra, steril bir gazlı bezden elde edilen bez karışımını dört adet 15 mililitrelik konik tüpte süzün. Daha sonra süzüntüyü buz üzerinde 15 dakika inkübe edin.Bu, bezin konik tüpün dibine yerleşmesine izin verecektir. Bez süspansiyonunun üstünden 40 mililitre süpernatanı atmak için serolojik bir pipet kullanın. Memnun karışımın kalan 10 mililitresini antibiyotiklerle takviye edilmiş 10 mililitre DPBS'de tekrar süspanse edin.Daha sonra tüm karışımı beş mililitrelik hücre kültürü test tüplerine dağıtın. Tüpleri dört santigrat derecede beş dakika boyunca 65 kez G'de santrifüjleyin. Santrifüjlemeden sonra, süpernatanı dikkatlice çıkarın.Elde edilen glandüler peleti, 200 mikrolitrelik geniş bir pipet ucu kullanarak düşünce bazal membran matrisi ile çözün. Süspansiyonu homojen olana kadar karıştırın. Daha sonra bezleri geniş uçlu bir pipet yardımıyla 15 mikrolitrelik bazal membran matrisine yerleştirin.Bazal membran matrisinin polimerize olması için 37 santigrat derecede 10 ila 15 dakika inkübe edin. Daha sonra, 12 oyuklu bir kültür plakasında kültürlenmişse, her oyukta bir mililitre hFGO ortamı ekleyin. Daha sonra hücreleri nemlendirilmiş bir hücre kültürü inkübatöründe 37 santigrat derecede kültürleyin.Ortamı her 45 günde bir değiştirin. Altı ila yedi günlük 3B fare veya insan kaynaklı FGO kültüründen sonra, 3B organoidleri 2B tek katmana aktarmaya başlayın. Bunu yapmak için, 3D bazal membran kabarcığını plakadan çıkarmak için balonun ortasına bir mililitre kalsiyum magnezyum içermeyen DPBS ekleyin.Daha sonra bazal membran matrisini ve organoid karışımını hücre kültürü tüpünde toplayın. Daha sonra dört santigrat derecede beş dakika boyunca 40 kez G'de santrifüjleyin. Santrifüjlemeden sonra, süpernatanı ve mümkün olduğunca fazla bazal membran matrisini çıkarmak için bir vakum sistemi kullanın.Ardından, peleti dört mililitre kalsiyum magnezyum içermeyen DPBS'de çözün. Tek tabakaya hazırlanırken organoidleri hasat ettikten sonra bodrum matrisinin mümkün olduğunca çoğunu çıkardığınızdan emin olun. Daha sonra, her bir test tüpüne 37 santigrat derecede bir mililitre önceden ısıtılmış hücre ayırma çözeltisi ekleyin.Daha sonra tüpün içeriğini birkaç kez ters çevirerek karıştırın. Son olarak, tüpü 37 santigrat derecede 10 dakika inkübe edin. Tek hücreli bir süspansiyon elde etmek için, iki mililitre kalsiyum magnezyum içermeyen DPBS'yi doğrudan test tüplerinin her birine ekleyin.Ardından, süspansiyonu iki ila üç kez karıştırmak için 26 gauge bir iğne kullanın. Karıştırdıktan sonra, hücre süspansiyonunu santrifüjleyin, ardından hücre peletini 2D FGO ortamında çözün. Tüm organoidi elde etmek için, hücre süspansiyonunu kaplanmış plakalar üzerine plakalayın.Daha sonra plakaları yaklaşık dört gün boyunca 37 santigrat derecede inkübe edin. Renk sarıya dönerse ortamı değiştirin. Kültür yüzde 100 birleşmeye ulaşır ulaşmaz, tek tabakayı bir tıraş bıçağı kullanarak çizin.Daha sonra tek katmanları oda sıcaklığında yüzde 3,7 paraformaldehit kullanarak 15 dakika sabitleyin. Daha sonra, tek katmanları Triton X-100 ile oda sıcaklığında 20 dakika geçirgen hale getirin. Permeablizasyondan sonra, tek katmanları bir saat boyunca yüzde iki eşek serumu ile bloke edin.Bir saatlik blokajdan sonra, tek tabakayı gece boyunca dört santigrat derecede birincil antikor çözeltisi ile inkübe edin. Gece boyunca kültürün buharlaşmasını ve kurumasını önlemek için tek tabakayı parafilm ile sarın. Ertesi gün, PBS'de yüzde 0,1 iyonik olmayan deterjanla yıkayın.Daha sonra, ikincil antikor ve mililitre başına 10 mikrogram konak hücre çekirdeği boyası ile oda sıcaklığında bir saat boyunca inkübe edin. Sonra, hücreleri boyayın. Ardından, konfokal mikroskop altında 2D insan kaynaklı gastrik monotabaka kültüründeki yüzey mukoza çukuru hücrelerini tanımlayın.Son olarak, birkaç saatte bir yaranın görüntülerini çekin. Hızlandırılmış analizden elde edilen bu görüntüler, insan FGO'larının oluşumunu göstermektedir. Bu organoidler bazal membran matriks kodlu oda slaytları üzerinde gastrik epitelyal tek tabakaya aktarılır.Gastral epitel tek tabakası bir gün boyunca her sekiz saatte bir analiz edilir. Görüntü, yara alanının azalmaya devam ettiğini ve sadece bir gün içinde kültürde tamamen kaybolduğunu göstermektedir. Bu immünol floresan boyama, yüzey mukoza hücrelerinden oluşan E-kaderin pozitif tek tabakasının hediyelerini gösterir.Bu, gastrik epitel tek tabakasının yenilenmesini gösterir. Mevcut çekirdekler hoechst ile boyanmıştır. Daha sonra, parietal yüzey mukozası, şef ve mukoza boynu hücrelerinin ekspresyonunu doğrulamak için insan gastrik epitel tek tabakasından ekstrakte edilen RNA kullanılarak RTPCR analizi yapılır.ATPa ve PgC'nin varlığı, sırasıyla parietal ve primer hücrelerin varlığını gösterir. MUC5AC ve MUC6'nın varlığı sırasıyla yüzey mukozası ve mukoza boynu hücrelerinin varlığını gösterir. Bu immünol floresan görüntüsünde, insan gastrik epitelyal tek tabaka kültüründe çoğalan hücreler, EdU'nun hazır alımı ile gösterilmiştir.Bu immünol floresan görüntüleri, çizik yarasından sıfır, sekiz, 16 ve 24 saat sonra mide epitelinin yenilenmesini ve yüzey mukozası ve parietal hücrelerin ekspresyonunu gösterir. Mastering yapıldıktan sonra, 3D'den 2D'ye aktarım, düzgün bir şekilde gerçekleştirilirse bir saat içinde yapılabilir. Bu prosedürü denerken, 2D aktarımdan önce hasat edilen organoidlerden bazal membran matrisinin mümkün olduğunca çoğunu yıkamayı unutmamak önemlidir.Bu prosedürü takiben, konak patojen etkileşimleri gibi ek soruları yanıtlamak için tek tabakalarda ve tek tabakalı immün hücre ko-kültürlerinde helicobacter pylori enfeksiyonu gibi diğer yöntemler de gerçekleştirilebilir. Bu teknik, geliştirilmesinden sonra gastroenteroloji alanındaki araştırmacıların midedeki hastalıkları ve yenilenmeyi keşfetmelerinin yolunu açtı. İnsan dokusu ile çalışmanın son derece tehlikeli olabileceğini ve bu işlemi gerçekleştirirken steril teknik ve kişisel koruyucu önlemler gibi önlemlerin her zaman alınması gerektiğini unutmayın.

mouse-human-derived-primary-gastric-epithelial-monolayer-culture-for

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Bu videoda, mide epitel hücrelerini insan fundik dokusundan izole etmek için bir yöntem açıklanmaktadır. İzole edilmiş epitel hücreleri, mide fizyolojisi ve patofizyolojisindeki düzenleyici rollerini incelemek için in vitro bir model olarak kullanılabilir.

Mide Fundik Bezleri İzolasyonu: Fon Bezlerini İnsan Mide Dokusundan İzole Etmek İçin Bir Yöntem

Bu video, fare retinalarından izole edilen Müller glial (MG) hücrelerinin kültürlenmesini göstermektedir. Retinalar, sindirim enzimleri kullanılarak tek hücreli bir süspansiyona ayrıştırılır. Hücreler daha sonra MG hücre proliferasyonunu ve nöronal hücre ölümünü destekleyen bir büyüme faktörüne sahip bir ortamda büyütülür. Ölü nöronal hücreler geçerken çıkarılır ve MG hücreleri daha fazla analiz için büyütülür.

Fare Retinalarından Elde Edilen Müller Glial Hücre Kültürünün Kurulması

Kök hücre türevli kültürler, bulaşıcı hastalıkları modellemek için muazzam bir potansiyel barındırıyor. Burada, yetişkin kök hücrelerden türetilen fare ve insan mide organoidlerinin kültürü anlatılmaktadır. Organoidlere mide patojeni Helicobacter pylori mikroenjekte edilir.

Enfeksiyon Hastalıkları Modeli Olarak Organoids: Helicobacter Pylori ve İnsan Kültür ve kemirgen Mide Organoids ve Mikroenjeksiyon

Bu protokol karışık fare küçük bağırsak hücrelerinin izolasyonu ve kültürü anlatılmaktadır. Bu primer bağırsak kültürler bir takım teknikler kullanılarak bağırsak peptidi salgısının temel sinyal yollarının inceleme sağlar.

Enteroendokrin Hücre Gut Hormon salgısını Çalışması ve Canlı Hücre Görüntüleme için Amaçlanan Kemirgen Küçük Bağırsak Karışık İlköğretim Kültürler

Burada, doğrudan/dolaylı ilişkileri monosit ve kollajen bozulması, bağışıklık hücre işe alım, hücre gibi sonuçlar ile çalışma olarak birincil meme kanser hücrelerinin de Morfoloji çözümlenecek bir üç boyutlu kültür yöntemi açıklamak işgali ve promosyon inflamasyon kanserle ilgili.

Monosit ve bir hücre dışı matriks içinde birincil meme kanseri hücreleri arasındaki iletişimi analiz özü (ECME)-üç boyutlu sistem tabanlı

Biz adım adım talimatları tarif: 1) etkin bir şekilde bağırsak organoidleri Lenti-veya retroviral dönüştürücü için manyetik nano maddeler kullanarak mühendis ve 2) mühendislik organoidler dondurulmuş bölümler oluşturmak. Bu yaklaşım, akım etkilerinin incelenmesi için organoidlerde gen ifadesini verimli bir şekilde değiştirmek için güçlü bir araç sağlar.

Primer fare bağırsak Organoidlerin genetik mühendisliği dondurulmuş bölümleme için Manyetik Nano madde dönüştürücü viral vektörler kullanma

Bu protokolde, murine primer epitel kolon monolayerlerinin doğrudan bağırsak mahzenlerinden nasıl üretılacağını açıklıyoruz. Geçirgen filtreler üzerinde birleştirici monolayerler, çizik yarası iyileşmesi ve biyokimyasal çalışmalar için birikme monolayerleri ve immünofluoresans analizi için seyrek ve birleştirici monolayerler üretmek için deneysel yaklaşımlar sunuyoruz.

Bağırsak Mezarlarından Murine Primer Kolon Epitel Monolayerlerinin Üretimi

Fare retinalarından elde edilen Müller glia primer kültürleri, mikroRNA tedavisinden sonra retinal progenitör hücrelere glial dönüşümü incelemek için çok sağlam ve güvenilir bir araçtır. Tek moleküller veya kombinasyonlar, daha sonra in vivo yaklaşımların uygulanmasından önce test edilebilir.

MikroRNA Tedavisi Sonrası Murine Müller Glia'nın Rejenerasyon Potansiyelini İncelemek için Birincil Hücre Kültürleri

Mide hastası kaynaklı organoidler araştırmalarda giderek artan bir kullanım alanı bulmaktadır, ancak standartlaştırılmış tohumlama yoğunluğuna sahip tek hücreli sindirimlerden insan mide organoidleri üretmek için resmi protokoller eksiktir. Bu protokol, üst endoskopi sırasında elde edilen biyopsi dokusundan gastrik organoidlerin güvenilir bir şekilde oluşturulması için ayrıntılı bir yöntem sunar.

Benign Gastrik Vücut ve Antral Epitel Biyopsilerinden Hasta Kaynaklı Gastrik Organoidlerin Oluşturulması ve Karakterizasyonu

M Peyer Kullanıcı yamaları içeren özel bir folikül ilişkili epitel hücreleri mukozal immunosurveillance bağırsak ile ilişkili lenfoid doku için önemli bir rol oynamaktadır. Burada bakteriyel transcytosis M hücreleri tarafından açıklanan değerlendirme...

Fare Uygulama M hücreleri tarafından Bakteriyel Alımı değerlendirin Peyer Patch Bağırsak Loop Testi bağlandı

Keşfedin fare ve insan kaynaklı primer gastrik epitel monolayer kültürü ile yara iyileşme deneylerinde hücre göçü ve rejenerasyon mekanizmalarını. Bu yöntem gastroenteroloji araştırmaları için uygundur.

Fare ve insan elde edilen birincil Gastrik epitel Monolayer kültür yenilenme çalışmaları için

Daha fazla video keşfet