-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Levator Auris Longus Gerilim kelepçe koşullar altında memeli nöromuskuler iletim Sınavı ...
Levator Auris Longus Gerilim kelepçe koşullar altında memeli nöromuskuler iletim Sınavı ...
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Levator Auris Longus Preparation for Examination of Mammalian Neuromuscular Transmission Under Voltage Clamp Conditions

Levator Auris Longus Gerilim kelepçe koşullar altında memeli nöromuskuler iletim Sınavı Hazırlık

Full Text
9,810 Views
10:45 min
May 5, 2018

DOI: 10.3791/57482-v

Steven R. A. Burke1, Eric J. Reed1, Shannon H. Romer1, Andrew A. Voss1

1Department of Biological Sciences,Wright State University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a protocol for isolating the mouse levator auris longus (LAL) muscle and its innervating nerve to record spontaneous and nerve-evoked postsynaptic potentials and currents at the neuromuscular junction. This method can elucidate key aspects of synaptic transmission, including neurotransmission mechanisms under normal and disease conditions.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Electrophysiology
  • Synaptic physiology

Background

  • The protocol focuses on the mouse levator auris longus muscle.
  • It assesses the mechanisms of synaptic transmission.
  • The study aims to explore both normal and pathological states.
  • Combining electrophysiological recordings with optical techniques provides a broader understanding of synaptic dynamics.

Purpose of Study

  • To isolate the LAL muscle and its nerve for detailed synaptic measurements.
  • To enhance understanding of end plate current size and quantal content.
  • To evaluate neurotransmission relationships with muscle excitability.

Methods Used

  • This study employs a mouse model for nerve and muscle preparation.
  • Electrophysiological techniques are used, including voltage and current-clamp recordings.
  • No multiomics workflows are mentioned.
  • The procedure is expected to take about an hour when performed proficiently.
  • Critical steps include careful isolation of the LAL and maintenance of physiological conditions during recording.

Main Results

  • The protocol facilitates direct observation of synaptic function through electrophysiological data collection.
  • Insights into the excitation and neurotransmission mechanisms at the neuromuscular junction are anticipated.
  • No details on specific molecular changes or experimental results were provided.
  • The study aims to enhance understanding of neuronal communication and its implications for both health and disease.

Conclusions

  • This method enables the investigation of synaptic transmission dynamics on a per-synapse basis.
  • The insights gained can contribute to understanding diseases affecting neuromuscular transmission.
  • This study highlights the potential for detailed exploration of synaptic physiology.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using the LAL muscle for this study?
The LAL muscle provides a well-defined model for studying synaptic transmission due to its accessible location and the distensible nature of the innervating nerve.
How is the nerve-muscle preparation achieved?
The preparation involves meticulous dissection under a stereo-dissecting microscope, ensuring minimal damage to the nerves.
What parameters can be measured using this method?
Researchers can measure synaptic currents, end plate potentials, and evaluate neurotransmission characteristics.
How can this method be applied to other organisms?
While the protocol is designed for mice, the techniques can be adapted for studying similar neuromuscular junctions in species ranging from flies to mammals.
What are some limitations of this technique?
The procedure can be technically challenging due to the fragility of the nerve-muscle prep, requiring practice for successful implementation.
What insights does this research aim to provide?
The study aims to elucidate the mechanisms of synaptic transmission and their implications for neuromuscular diseases.

Bu raporda açıklanan protokol nöromüsküler kavşak spontan kaydetmek için fare levator auris longus (LAL) kas ve postsinaptik potansiyeller (akım tipi kelepçe) sinir uyarılmış ve akımlar (gerilim tipi kelepçe) kullanır. Bu tekniğin kullanımı hastalık ve normal koşullar altında sinaptik aktarım mekanizmaları içine anahtar anlayışlar verebilir.

Bu prosedürün genel amacı, nöral kas kavşağındaki sinaptik akımları kaydetmek için levator auris longus kasını ve sinirini izole etmektir. Bu yöntem, uç plaka akım boyutu, kuantal içerik, salınım olasılığı ve nörotransmisyon ile kas uyarılabilirliği arasındaki ilişkiler gibi sinaptik fizyolojideki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu tekniğin temel avantajı, tek bir sinapstan elde edilen ayrıntılı elektrofizyolojik kayıtların, canlı hücre optik deneyleri ile kolayca birleştirilebilmesidir.

Bu yöntem, sinir ve kas arasındaki sinaptik fonksiyon ve geri bildirim iletişimi hakkında fikir verebilse de, drosophila'dan memelilere kadar diğer sistemlere de uygulanabilir. Genel olarak, bu yönteme yeni başlayan bireyler, memeli sinir kası hazırlığı, özellikle de sinir kırılgan olduğu için mücadele edecektir. Sonraki voltaj kelepçesi verilerini dikkatli bir şekilde elde etmek ve yorumlamak da zor olabilir.

Bir kez ustalaştıktan sonra, bu teknik düzgün bir şekilde yapılırsa bir saat içinde yapılabilir. Prosedürü göstermek laboratuvarımdan Steve Burke olacak. Bu işleme başlamak için, stereo-diseksiyon mikroskobu altında, farenin arkasındaki deride kürek kemiği seviyesinde küçük bir kesi yapın.

Bir çift mikrodiseksiyon makası kullanın. Cildi başın ve sırtın üzerinden kesin. Daha sonra, kürek kemiğinin yakınındaki kesi boyunca cildi yukarı çekin.

Sağ kürek kemiğinden başlayarak LAL'den daha düşük olan kasları kesin. Ardından, kesilen dokuyu yavaşça orta hattın hemen sağına kaldırın. Sol LAL'den daha düşük olan birkaç kas katmanını çıkarmak için makasın bıçakları kafatasına bastırılarak sol kulağa doğru bir kesim yapın.

Kulak kanalının etrafını saran ve kulağın medial tarafındaki kaslara giren LAL'i innerve eden siniri kesmekten kaçının. Sinirin mümkün olduğunca çoğunu bağlı tutarak kulak kanalını kesmeye devam edin. Ardından, kulak kanalının arkasındaki yağ dokusunu kulağın ventrolateral kısmı boyunca kesin.

Kası fareden tamamen çıkarmak için sağ tarafta yapılan işlemlere benzer şekilde sol kürek kemiği boyunca kesin. Daha sonra, kulağın kulak kepçesini taban boyunca kesin ve kulağın kıkırdaklı kısmını LAL'e bağlı bırakın. Kası, alt taraf yukarı bakacak şekilde çevirin.

LAL kasını izole etmek için, LAL'i ve çevresindeki dokuyu silikon elastomer tabanlı bir Petri kabına yerleştirin ve diseke edilen dokuyu tabana sabitleyin. Dokuyu sık sık fizyolojik bir tuzlu su çözeltisinde yıkayın. Ardından, hazırlığı yerinde tutmak için kulak kanalına bir böcek iğnesi yerleştirin.

Daha küçük pimler kullanarak, kalan dokuyu LAL'in orta hattının karşı tarafına sabitleyin. Bir çift forseps kullanın. Kası germek için cildi kulağın yan kısmında nazikçe yukarı çekin ve cilde küçük bir iğne yerleştirin.

Mendil tabağa iyice sabitlenene kadar bu adımı tekrarlayın. LAL'i kaplayan ve bağ dokusu yoluyla LAL'e bağlı olan ve özellikle orta hatta yakın olan kasları çıkarın. Daha sonra, üstteki kas tabakasını yukarı çekin ve bıçaklar çekilmekte olan kas tabakasına doğru yönlendirilmiş olarak bağ dokusunu kesin.

Orta hatta giden yolun yaklaşık 3/4'üne kadar orta hatta doğru kesin ve sadece LAL kalana kadar kas katmanlarını çıkarmaya devam edin. Temizleme işlemi sırasında sinirlerin zarar görmediğinden emin olun. Bunu takiben, elektrotların kazınmasına yardımcı olmak için LAL'i kaplayan kalan bağ dokusunun bir kısmını çıkarın.

Sadece işlem sırasında LAL'e zarar verme riski olmadan kolayca yapılabilen dokuyu çıkarın. LAL'i innerve eden siniri tanımlamak için, bir sinir stimülatörü kullanarak, sinir stimülatörü ile sinirlere dokunun. Kas kasıldığında, doğru sinir tanımlanmıştır.

Ardından, sinirin yakınındaki dokuyu dikkatlice tutun ve siniri kulağı çevreleyen dokudan ayırmak için yaylı makas kullanın. Hasarı en aza indirmek için, sinirin çoğunu, daha sonra siniri kayıt kabına sabitlemek için kullanılacak olan bazı çevre dokulara gömülü tutun. Bu noktada, araştırmacı, LAL 20 mililitre veya daha fazla fizyolojik tuzlu su çözeltisi ile yıkandığı sürece bir saat ara verebilir.

Daha sonra, kasın pimini çıkarın ve elektrofizyoloji deneyleri için diseksiyon mikroskobu altında bir sahne ekine aktarın. Kası uçlarından ve kenarı boyunca sabitleyin. Siniri kas liflerine dik olarak konumlandırın ve sinirin ucunda sağlam kalan fazla dokudan bir miktar fazla doku yoluyla tabağın dibine sabitleyin.

Dokuyu her zaman fizyolojik bir tuzlu su çözeltisinde yıkayın. Elektrofizyoloji deneyi için, perfüzyon odasını LAL ile mikroskop aşamasına sabitleyin. Referans elektrodu, bir agar köprüsü ile kayıt odasına bağlanan üç molar potasyum klorür ile doldurulmuş bir kaba yerleştirin.

Bu noktada, sinir uyarıcı elektrodu sinirin üzerine yerleştirin. Nöromüsküler kavşak görselleştirmesi için yeterli floresan elde etmek için LAL preparatını 10 dakika boyunca 4-Di-2-Asp'ye maruz bırakın. 10 dakika sonra, 4-Di-2-Asp çözeltisini normal kalsiyum çözeltisi ile değiştirin.

Bu arada, cam kılcal damarları voltaj algılayan ve akım geçiren elektrotlar için uygun solüsyonlarla doldurun. Hava kabarcıklarını gidermek için kılcal damara hafifçe vurun ve doldurulmuş kılcal damarı başlıktaki elektrot tutucusuna sabitleyin.tage. Standart parlak alan ve floresan aydınlatmalı dik bir mikroskop kullanarak, düşük büyütmeli bir su çıkarma hedefi ile hazırlık boyunca kas liflerine dik uzanan parlak bir floresan yeşil nöromüsküler kavşak bandı arayın.

Ardından, elektrofizyoloji ile incelemek için kasın üst tabakasında bir nöromüsküler kavşağı tanımlamak için daha yüksek büyütmeli bir su çıkarma hedefine geçin. Öncelikle parlak alan kullanarak, elektrodu belirlenen nöromüsküler kavşağın 100 mikronu içinde kas zarının üzerine yerleştirin. Bu şekil, 12 haftalık vahşi tip bir R62 fareden alınan akım kelepçesi altında bir LAL fiberden gelen akım darbelerinin ve voltaj tepkilerinin bir örneğini göstermektedir.

Kayıtlar normal fizyolojik tuzlu su çözeltisinde elde edildi ve mEPP'lerin varlığı bu kayıtların motor uç plakasından alındığını gösteriyor. Burada, voltaj kelepçesi koşulu altında elde edilen bir EPC ve iki mEPC'nin temsili bir kaydı bulunmaktadır. Bu şekil, temsili bir fiberden üst üste binen EPC'leri ve mEPC'leri göstermektedir.

Bir kez ustalaştıktan sonra, bu teknik düzgün bir şekilde yapılırsa bir saat içinde yapılabilir. Bu prosedürü takiben, vezikül salınımı alımı veya morfolojik değişiklikler ile ilgili soruları yanıtlamak için FM143 veya histoloji gibi membran boyaları ile canlı hücre görüntüleme gibi diğer yöntemler uygulanabilir. Geliştirildikten sonra bu teknik, fizyoloji alanındaki araştırmacıların drosophila'dan memelilere kadar çeşitli organizmalarda sinaptik iletim ve sinir hücresi iletişimini keşfetmelerinin yolunu açtı.

Bu videoyu izledikten sonra, nöromüsküler kavşaktaki sinaptik akımları kaydetmek için innerve levator auris longus kasını nasıl izole edeceğinizi iyi anlamalısınız. Bu prosedürü denerken, LAL'e bitişik kas dokusunun çıkarılmasına ve sinirin izole edilmesine büyük özen göstermeyi unutmamak önemlidir.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Neuroscience sorunu 135 nöromüsküler kavşak sinaptik iletimi Elektrofizyoloji gerilim kelepçe Endplate Cari Endplate potansiyel eksitatör postsinaptik geçerli eksitatör postsinaptik potansiyeli

Related Videos

Drosophila Larva NMJ Synaptic Potansiyeller kayıt için Elektrofizyolojik Yöntemler

05:46

Drosophila Larva NMJ Synaptic Potansiyeller kayıt için Elektrofizyolojik Yöntemler

Related Videos

21.6K Views

C. Elegans Nöromüsküler Kavşağı Diseksiyon ve kayıt

15:19

C. Elegans Nöromüsküler Kavşağı Diseksiyon ve kayıt

Related Videos

16.1K Views

Elektrofizyolojik Kayıt Drosophila Embriyo

11:31

Elektrofizyolojik Kayıt Drosophila Embriyo

Related Videos

11.9K Views

Drosophila Larva Nöromüsküler Kavşakta Sinaptik Akımların Kaydedilmesi

03:11

Drosophila Larva Nöromüsküler Kavşakta Sinaptik Akımların Kaydedilmesi

Related Videos

515 Views

Fare Retina Ganglion Hücreleri Synaptic ve Yapay iletkenlikleri Dinamik Kelepçe Uygulama

11:46

Fare Retina Ganglion Hücreleri Synaptic ve Yapay iletkenlikleri Dinamik Kelepçe Uygulama

Related Videos

12.8K Views

Nöromüsküler kavşak işlevleri ölçme

10:40

Nöromüsküler kavşak işlevleri ölçme

Related Videos

18.6K Views

Vivo Aksonal uyarılabilirlik test ile sıçan Ulnar sinirin Elektrofizyolojik ölçüm

04:56

Vivo Aksonal uyarılabilirlik test ile sıçan Ulnar sinirin Elektrofizyolojik ölçüm

Related Videos

9.9K Views

Ürünleri ve tüm hücre yama kelepçe kayıt Xenopus laevis Tectal nöronlar için iletişim kuralları

05:25

Ürünleri ve tüm hücre yama kelepçe kayıt Xenopus laevis Tectal nöronlar için iletişim kuralları

Related Videos

10K Views

Konfokal Mikroskopi Kullanılarak Fare Nöromüsküler Kavşağında Yüksek Zamansal Çözünürlükte Kalsiyum Geçici Maddelerinin Kaydı

11:12

Konfokal Mikroskopi Kullanılarak Fare Nöromüsküler Kavşağında Yüksek Zamansal Çözünürlükte Kalsiyum Geçici Maddelerinin Kaydı

Related Videos

2.4K Views

Kranial Levator Auris Longus İskelet Kasının Kombine İn Vivo Elektroporasyonu ve Kısa Süreli Reinnervasyonu

04:44

Kranial Levator Auris Longus İskelet Kasının Kombine İn Vivo Elektroporasyonu ve Kısa Süreli Reinnervasyonu

Related Videos

905 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code