-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biochemistry
Vitro Sulandırma Protein kalıpları üzerinde desteklenen Lipid Bilayers kendi kendini düz...
Vitro Sulandırma Protein kalıpları üzerinde desteklenen Lipid Bilayers kendi kendini düz...
JoVE Journal
Biochemistry
This content is Free Access.
JoVE Journal Biochemistry
In Vitro Reconstitution of Self-Organizing Protein Patterns on Supported Lipid Bilayers

Vitro Sulandırma Protein kalıpları üzerinde desteklenen Lipid Bilayers kendi kendini düzenleme

Full Text
12,508 Views
08:10 min
July 28, 2018

DOI: 10.3791/58139-v

Beatrice Ramm*1, Philipp Glock*1, Petra Schwille1

1Department of Cellular and Molecular Biophysics,Max Planck Institute of Biochemistry

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Biz bir protokol vitro için zihin ve benim kendi kendine organizasyon deneyleri desteklenen lipid bilayer açık bir odasında üzerinde sağlar. Ayrıca, biz tepki doğumdan tarafından vivo koşulları taklit için PDMS microcompartments lipid kaplı tahlil içine alın anlatan.

Transcript

Bu yöntem, hücrenin organizasyonu ve zarları hakkındaki temel soruları yanıtlamaya yardımcı olabilir, örneğin, geometrik ipuçlarının süreçte oynadığı rol. Bu tekniğin temel avantajı, protein konsantrasyonları gibi patern oluşumunu etkileyen tüm yönler üzerinde hassas kontrole izin vermesidir. Başlamak için, metin protokolünde açıklandığı gibi çok katmanlı veziküller oluşturun.

Şimdi, lipitleri yedi ila 10 döngü boyunca dondurarak çözün, önce sıcak bir plaka üzerinde 70 ila 99 santigrat derecede su içeren bir beher ve ayrıca sıvı nitrojen tutan bir kap hazırlayın. Azot kaynamayı durdurana kadar şişeyi büyük cımbızla sıvı nitrojen içinde tutun. Ardından, çözelti tamamen çözülene kadar şişeyi sıcak suya aktarın.

Karışıma bağlı olarak, lipit karışımı göze net görünene kadar bu adımları tekrarlayın. Ardından, bir lipit ekstrüder monte edin ve sistemi Min tamponu ile önceden durulayın. Lipid karışımını 50 nanometre gözenek boyutuna sahip bir zardan 35 ila 41 kez ekstrüde edin.

Zarı hiç geçmeyen agregalardan kaçınmak için tek sayıda geçişle bitirdiğinizden emin olun. Cam lamelleri ters çevrilmiş bir cam Petri kabına veya başka bir inert yüzeye dağıtın. Bir cam pipetle, her lamellerin ortasına yedi damla konsantre sülfürik asit ekleyin.

Daha sonra asit damlalarının ortasına iki damla% 50 hidrojen peroksit ekleyin. Reaksiyonu örtün ve en az 45 dakika inkübe edin. Şimdi, lamelleri cımbız kullanarak tek tek alın ve asidi ultra saf suyla durulayın.

Yıkanmış lamelleri yapışmaz tutuculara veya benzeri bir taşıma cihazına yerleştirin. Şimdi her bir lamel ultra saf su ile yoğun bir şekilde durulayın ve yüzeyi basınçlı gazla kurulayın. Lamelin temiz tarafını kalıcı kalemle işaretleyin.

Hazneyi monte etmek için önce kapağı ve 0,5 mililitrelik bir reaksiyon tüpünün konik kısmını keskin bir makasla kesin ve atın. Ardından tüpün üst kenarına UV yapıştırıcısı sürün ve bir pipet ucu kullanarak yapıştırıcıyı eşit şekilde dağıtın. Tüpü lamel temiz tarafına baş aşağı yapıştırın.

Son olarak, 360 nanometrelik bir lamba veya LED'in altına beş ila 15 dakika boyunca birden fazla oda yerleştirerek UV yapıştırıcısını sertleştirin. Desteklenen lipid çift tabaka oluşumu için, bir ısı bloğunu 37 santigrat dereceye ısıtın ve iki mililitrelik reaksiyon tüpünü hazne başına bir tüpte Min veya SLB tamponu ile inkübe edin. UV kürleme ve montajı sırasında çökelmiş olabilecek toz veya diğer parçacıkları temizlemek için monte edilmiş ve kürlenmiş odalara nitrojen üfleyin.

Ardından, odaları ısı bloğunun üzerine yerleştirin. 20 mikrolitrelik berrak lipitleri 130 mikrolitre Min tampon ile seyreltin ve mililitre başına 0.53 miligramlık bir çalışma konsantrasyonu oluşturun. Her hazneye 75 mikrolitre lipit karışımı ekleyin.

Şimdi, bir zamanlayıcıyı üç dakikaya ayarlayın. Kuluçka süresi boyunca, veziküller hidrofilik cam yüzeyde patlar ve tutarlı bir SLB oluşturmak için birleşir. 60 saniye geçtikten sonra, her odaya 150 mikrolitre Min tampon ekleyin.

Kalan 120 saniyeden sonra, her bir hazneyi 200 mikrolitre Min veya SLB tamponu ekleyerek, birkaç kez dikkatlice yukarı ve aşağı pipetleyerek, çıkarıp 200 mikrolitre daha ekleyerek yıkayın. Her hazne bir kez yıkandıktan sonra, iki mililitre tampon bitene kadar ilk hazneyi iyice yıkamaya devam edin. Desteklenen lipit çift katmanlarının yıkanması, haznedeki hareketlerin kapsamını mükemmelleştirmek ve doğru yıkama yoğunluğunu bulmak için biraz deneyim gerektirir.

Desenli silikon gofretlerden PDMS mikro yapıları üretmek için önce 10 gram PDMS tabanı ve bir gram PDMS çapraz bağlayıcı ağırlığında plastik bir kap kullanın. PDMS karışımını karıştırmak ve gazını almak için bir karıştırma cihazı kullanın. Şimdi, az miktarda PDMS'yi doğrudan silikon gofret üzerindeki yapıya bırakmak için bir pipet ucu kullanın.

Hemen PDMS damlasına 1 lamel yerleştirin ve lameli silikon gofret üzerine hafifçe bastırmak için temiz bir pipet ucunun üst ucunu alın. PDMS, lamel ve silikon gofret arasında ince bir şekilde yayılmalıdır. Gofretleri lamellerle birlikte bir fırına koyun ve PDMS'yi üç ila dört saat veya gece boyunca 75 santigrat derecede kürleyin.

Ardından, gofreti fırından çıkarın ve oda sıcaklığına soğumaya bırakın. Bir tıraş bıçağıyla, takılı PDMS ile lameli silikon gofretten dikkatlice çıkarın. Şimdi, cam için daha önce açıklandığı gibi PDMS'ye plastik bir hazne takın.

Lamelleri ekli hazne ile alın ve proses gazı olarak oksijenli plazma temizleyiciye yerleştirin. Lamelleri plazma ile temizleyin. Bu çalışmada bir dakika boyunca %30 güç ve 0.3 milibar oksijen basıncı kullanılmıştır.

Şimdi, daha önce cam üzerinde anlatıldığı gibi haznede bir SLB hazırlayın. Kendi kendine organizasyon testini gerçekleştirmek için, odadaki tampon hacmini, eksi protein ve ATP çözeltisi miktarı düşüldükten sonra 200 mikrolitre Min tampona ayarlayın. Ardından MinD, MinE etiketli MinD ve istenirse MinC ekleyin ve bileşenleri pipetleyerek hafifçe karıştırın.

Şimdi, MinDE'nin kendi kendine organizasyonunu başlatmak için 2.5 milimolar ATP ekleyin. Önümüzdeki 10 ila 30 dakika boyunca, bir floresan mikroskobu üzerinde düzenli MinDE desen oluşumunu ve uygun şekilde oluşturulmuş mikro yapıları kontrol edin. Düzenli MinDE kalıpları oluştuğunda, bileşenleri karıştırmak için iki kez hafifçe yukarı ve aşağı pipetleyin.

100 mikrolitrelik bir pipet kullanarak büyük miktarda tamponu çıkarın ve ardından 10 mikrolitrelik bir pipet kullanarak geri kalanını dikkatlice çıkarın. Daha uzun görüntüleme sürelerine izin vermek için, haznenin içine nemli bir sünger parçası tıkayın. Süngerin lamel yüzeyine temas etmediğinden emin olun.

Mikro yapılarda kalan tamponun kurumasını önlemek için hazneyi hemen bir kapakla kapatın. Mikro yapıların görüntülenmesinden önce, mikro boşluklardaki proteinler salınırken MinDE kendi kendine organizasyonunun PDMS mikro yapısının üzerinde durdurulduğunu doğrulayın. Bu temsili videoda, çift renkli görüntüleme, MinD ve MinE'nin, desteklenen lipid çift katmanları üzerinde spiral desenlere uyan hareketli yüzey dalgaları halinde nasıl kendi kendini organize ettiğini gösterir.

Burada, tek renkli görüntüleme, PDMS mikro yapılarında kutuptan kutba salınımlar gerçekleştiren MinD ve MinE'yi gösterir. Salınımlar, bölme kutuplarında maksimum konsantrasyon ve bölmenin ortasında minimum konsantrasyon ile zaman ortalamalı bir MinD konsantrasyon gradyanı oluşturur. Bu prosedürü takiben, membran bağlanma kinetiğini ve kalma sürelerini belirlemek için tek partikül takibi gibi diğer yöntemler gerçekleştirilebilir.

Piranha solüsyonu ile çalışmanın son derece tehlikeli olabileceğini ve bu işlemi gerçekleştirirken her zaman kişisel koruyucu ekipman gibi önlemlerin alınması gerektiğini unutmayın.

Explore More Videos

Biyokimya sayı: 137 In vitro sulandırma zihin benim desteklenen lipid bilayer desen oluşumu microstructures kendi kendine organizasyon

Related Videos

Bir Çekçek tabanlı Meclisi Yöntemi ile Biomembrane Mikroarray'ler oluşumu

07:56

Bir Çekçek tabanlı Meclisi Yöntemi ile Biomembrane Mikroarray'ler oluşumu

Related Videos

13.9K Views

Solvent destekli çift katlı lipid (SALB) Yöntemi ile biyomembran Fabrikasyon

09:38

Solvent destekli çift katlı lipid (SALB) Yöntemi ile biyomembran Fabrikasyon

Related Videos

15.3K Views

İskele Lipozomlar kullanarak Lipid-proksimal protein-protein etkileşimleri Sulandırın için İn Vitro

08:53

İskele Lipozomlar kullanarak Lipid-proksimal protein-protein etkileşimleri Sulandırın için İn Vitro

Related Videos

9.2K Views

Bir Desteklenen lipit iki tabakalı içinde Ligand Nano küme Diziler

10:34

Bir Desteklenen lipit iki tabakalı içinde Ligand Nano küme Diziler

Related Videos

7.2K Views

Deterjan-Alerjik membran proteinlerinin Ultrafast sulandırma tamamlayıcı-Proteoliposomes ücret Fusogenic kullanarak Lipid Bilayers içine.

11:10

Deterjan-Alerjik membran proteinlerinin Ultrafast sulandırma tamamlayıcı-Proteoliposomes ücret Fusogenic kullanarak Lipid Bilayers içine.

Related Videos

11.5K Views

Mitokondriyal Membran Dinamiğinin Yeniden İkasini için Model Membran Platformu

10:31

Mitokondriyal Membran Dinamiğinin Yeniden İkasini için Model Membran Platformu

Related Videos

7.9K Views

Moleküler Etkileşimlerin Çalışması için Desteklenen ve Askıya Alınan Lipid Bilayer Modellerinin Hücre Taklit Montajı

12:18

Moleküler Etkileşimlerin Çalışması için Desteklenen ve Askıya Alınan Lipid Bilayer Modellerinin Hücre Taklit Montajı

Related Videos

3.8K Views

Membrana Bağlı Minimal Aktin Kortekslerinin Desteklenen Lipid Çift Katmanlı Üzerinde Yeniden Sulandırılması

11:55

Membrana Bağlı Minimal Aktin Kortekslerinin Desteklenen Lipid Çift Katmanlı Üzerinde Yeniden Sulandırılması

Related Videos

2.6K Views

Biyofiziksel Özellikleri ve İşlevleri İncelemek için Membranlarda Septin Düzeneğinin Yeniden Sulandırılması

06:32

Biyofiziksel Özellikleri ve İşlevleri İncelemek için Membranlarda Septin Düzeneğinin Yeniden Sulandırılması

Related Videos

2.5K Views

Model Membranlarda Dinamik Işık Kaynaklı Protein Modelleri

07:10

Model Membranlarda Dinamik Işık Kaynaklı Protein Modelleri

Related Videos

1.4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code