Name: Yalıtım, fiksasyon ve fare böbreküstü bezlerinin ayirt görüntüleme (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-10-02T14:45:00.000+00:00
Duration: 8 min 37 s
Description: Öğrenin fare böbreküstü bezlerinin yalıtımı, fiksasyonu ve immunofloresan boyama yöntemlerini. Bu teknik doku morfolojisini koruyarak adrenal zonasyon ve hücre kimliği araştırmalarını destekler.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Biz Dr Mohamad Zubair onun önerileri ve işyerinde bu protokol teknik yardım için teşekkür ederim. Bu eser diyabet Ulusal Enstitüsü ve sindirim ve böbrek hastalıkları, ulusal kurumları Sağlık Araştırma Bursu 2R01-DK062027 (için G.D.H) tarafından desteklenmiştir.

Tüm yöntemleri kurumsal olarak onaylanmış protokolleri kullanımı ve bakımı hayvanlar Michigan Üniversitesi'nde üniversite Komitesi İKB altında uygun olarak gerçekleştirilmiştir.
1. ameliyat için hazırlık
<ol><li>Ameliyat öncesi günde %4 paraformaldehyde (PFA) hazırlamak / fosfat tamponlu tuz (PBS). Donmuş aliquots durumunda bir çözülme ve 4 ° C'de depolamak için devam Not: % 4 İngiltere'de yılın daha 48 h için istikrarlı değildir. Dikkat: PFA zehirlidir, deriyle ve gözle temastan kaçının ve uygun bir kaba atın.</li>
	<li>Ameliyat günü, cerrahi aletler makas ve forseps % 70 etanol (alkol) ile sterilize hazırlamak ve bir kağıt havlu kuru bildirin.</li>
	<li>24-şey plaka dolu yer 1 x PBS ile (1 mL/iyi yeterli) nedense odamızda buz kovası içinde. Not: Adrenal ameliyattan sonra bu çok iyi kültür yemek tutulacaktır.</li>
</ol>2. adrenal diseksiyon
<ol><li>Kurumsal hayvan bakım ve kullanım Komitesi (IACUC) tarafından onaylanmış standart protokolleri takip fare ötenazi. Ötenazi ölüm (örneğin işten çıkarma) sağlamak için ikincil yöntemi gereklidir.<ol>
<li>Ötenazi isoflurane aşırı doz tarafından fare kadar solunum durur isoflurane buharı ile dolu bir odaya koyun, daha sonra fareyi odasından kaldırmak için bir yüzey üzerinde yatıyordu ve servikal çıkığı gerçekleştirin. Not: Çoğu ötanazi yöntemleri için hayvan sıkıntıya neden ve hipofiz-adrenal eksen ve medüller katekoiamin sürüm aktivasyon karıştırıcı değişken eklemek çünkü stres çalışmaları için uygun değildir. Bu durumda, işten çıkarma benimsemeye önerilen yöntemdir.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Fareyi sırtüstü yatıyordu, karın ve yanları % 70 ile kesi bölgeyi sterilize alkol. Not: kürk tıraş kısırlık artacak olsa da, bu belirli uygulama için bu gerekli değildir.</li>
	<li>Makas kullanarak karın ortasında deriyi kesme, cilt periton ayırmak, fare kesme çevresindeki deri pinching ve iki zıt yönlerde (kaudal ve rostral) çekerek deskin. Sonra karın zarını arka sol ve sağ yanları erişene dek kesti.</li>
	<li>Fare böbreküstü bezi kesme çevreleyen yağ dokusu çevresinde çıkarın ve 1 x PBS ile dolu ve buz üzerinde tutulması 24-multiwell plaka yerleştirin.</li>
</ol>3. Peri-böbreküstü yağ kaldırma
<ol><li>Diseksiyon mikroskop altında böbreküstü temel bir camına yerleştirin veya sahne plaka üzerinde bir petri ışık kaynağı getirin, büyütme oranını seçin ve tüm böbrek üstü açık bir görünümünü elde etmek için odağı ayarlayın. Not: kullanılan büyütme kişisel tercihlerine bağlı olarak değişebilir. Toplam büyütme 30 X bir planı objektifle 1 X, 3 X zoom ve iyi bir görüş alanı ile tüm bezi görselleştirmek için mercek 10 X sağlar.</li>
	<li>Hızlı bir şekilde bitişik yağlı doku böbreküstü susuzluktan kaçınarak iki 25 G iğneler ile kaldırın. Tüm yağ kaldırılmadan önce bu durumda hareket böbreküstü geri kuyunun içine 1-2 min için 1 x PBS içeren ve yağ kaldırma işlemine devam etmek.</li>
	<li>2 min için 2 x 1 x PBS içinde yıkayın.</li>
</ol>4. doku işleme ve katıştırma
<ol><li>Dokular %4 oranında tamir PFA/PBS 4 ° c 2 h için sallanan bir platformda.</li>
	<li>4 kaldırmak % PFA ve yıkama 1 x PBS kurcalayarak, 3 x 4 ° C'de 15 dakika her Dikkat: PFA zehirli ve tehlikeli atık olduğunu; dikkatli kimyasal bir başlık altında ele ve tehlikeli atık konteyner içine atılması gerekir.</li>
	<li>Adrenal % 50 kuluçkaya alkol 4 ° c 2 h için sallanan bir platformda.</li>
	<li>Kuluçkaya adrenal % 70 alkol en az 2 h sallanan bir platformda 4 ° C'de. Not: dokusuyla gömmek için işleme devam değil, adrenal % 70'saklanabilir alkol 4 ° C'de Uzun süreli depolama % 70 kaçınarak alkol ve doku en kısa zamanda işleme devam etmeden daha iyi kaliteli örnekleri verir.</li>
	<li>Gazlı bez içinde kaydırma ve kaset gömme bir doku içine alarak işleme doku böbreküstü hazırlamak. Kaset %70 alkol ve mağaza 4 ° C'de doku işlemci taşımak için hazır kadar dolu bir kavanoz yerleştirin. Tablo 1 ' de rapor olarak programlanmış doku işlemci kaset takın ve çalıştırın.</li>
	<li>Kaset 65 ° C'de erimiş parafin ile dolu bir gömme istasyonu içine transfer Bir soğutma istasyonu yoksa, yanında soğuk soğutma tepsisi getirin.</li>
	<li>Gömme bir kalıp etiket ve kaset katıştırma doku açın. Forseps bir çift kullanarak, gazlı bez paketini açmak ve böbreküstü istenen konumda merkezi tabanının gömme kalıp yavaşça yerleştirin. Erimiş parafin böbreküstü dökün. Gerekirse, başka türlü kalıp kalıp içinde hareket edebilir konumunu güvenli forseps ile böbreküstü tutun.</li>
	<li>Yavaşça gömme kalıp soğutma tepsisi taşımak ve parafin sertleştirme kadar bekleyin. Bundan sonra kesit kolaylaştırmak için gömme kalıpları bir serin yerde muhafaza ediniz.</li>
</ol>5. bir döner Microtome ile kesit
<ol><li>Başlamadan önce microtome temiz olup olmadığını kontrol edin, uzakta tüm atılan parafin artıkları fırça, bıçak (ya da bıçak) bilenmiş 's sağlamak, iç mekanizması petrol ve tam blok tutucu gerekirse geri çek.</li>
	<li>Mikroskop slaytlar bir dizi etiket (olumlu kullanılıyorsa veya doku kaybını önlemek için kaplı ( Tablo malzemelerigörmek)), bir slayt daha sıcak grubu 37 ° C'de onları yatıyordu ve autoclaved tip 1 Ultrasaf Su üstünde tepe-in her slayt dağıtmak.</li>
	<li>Bölüm kalınlığı 5 mikron ayarla.</li>
	<li>Microtome bıçak bıçak tutucu Ekle, bıçak açısını kontrol, bıçak yuvasına sıkıca güvenliğini sağlayın ve parafin blok ve blok tutucu Gümrükleme kontrol edin.</li>
	<li>Blok sahibi en yüksek konumuna getirin ve, eğer olanaklı, çalışma kolu kilitlemek, parafin blok kalıptan çıkarın ve sıkıca kelepçe ile güvenli hale getirme bloğu tutucusuna yerleştirin. Bıçak merkezi hattı ile sokağın karşı karşıya olduğu yüzey açısı 20 ° olmalıdır. Gerekirse, parafin blok yeniden ayarlayabilirsiniz. Dikkat: Bıçak keskin.</li>
	<li>Daha önce kilitli el tekerlek kaldırın ve yüzünü microtome bıçak kenar ile düzey olana parafin blok daha düşük. Düzenli bir ritim ile el tekerleğini döndürün. İlk düzeltme parafin kaldırmak ve adrenal ortaya çıkarmak için gerçekleştirin.</li>
	<li>El tekerlek dönme tutmak ve böbreküstü sonuna kadar bölüm. Aydınlık alan veya diseksiyon mikroskop doku bölümleri varlığını denetlemek için kullanın. Şerit'ten bıçak ayırmak ve bir çift daha forseps yardımıyla cam slayt üzerinde koydu su yerleştirin. Şerit bir yüzeye yerleştirin, dikkatlice streç ve sonra slayt üzerinde monte yararlı olabilir.</li>
	<li>Sıcak plaka üzerinde kuru slayt izin. O zaman onları düz bir slayt tepsi üzerinde yatıyordu ve su hala mevcut ise gece veya daha uzun 37 ° C'de pişirin. Kuru bir kez, slaytları bir slayt kutusu oda sıcaklığında saklayın.</li>
	<li>Kullanılan ekipman yerine koy ve microtome temiz.</li>
</ol>6. ayirt
<ol><li>İmmunostaining için istediğiniz slaytları seçin ve bir slayt sahibi koyun.</li>
	<li>Sıcak plaka üzerinde 0.01 M sitrat pH kaynamaya 2.0 ile dolu bir ölçek getir. Arabellek hacmi kabı boyutuna bağlıdır ve (dikkate alınması gereken bazı buharlaşma ihtiyaçları) kaynama sırasında slaytlara bölümleri kapsayan için yeterli olması gerekir. Alüminyum folyo ile kabı kapağı. Not: Kullanılabilir (bkz: tartışma) antijen alımı için diğer yöntemlerdir.</li>
	<li>% 100 ksilen 2 slaytlar deparaffinize x 5 min için. Aşağıdaki serisi kullanarak slaytları rehydrate: %100 alkol 2 x 5 dk, % 70 alkol 2 x 5 dk, 5 dk 1 Ultrasaf Su yazın. Not: deparaffinization sonra bu bölümler kurumasına izin önemlidir: doku gerekir her zaman bölümlerde arabellekleri veya çözümleri ile yordamı sonuna kadar veya doku yapısı hasar görebilir.</li>
	<li>Antijen alma için slaytlar bir metal slayt sahibi ve alüminyum folyo olmadan sitrat kaynar ile ölçek yerleştirin. 10 dakika kaynamaya izin.</li>
	<li>Kabı sıcak plaka kaldırmak ve 20 dk. yapmak için adrenal bölümleri ile tampon hala tutulduğundan emin soğumaya bırakın.</li>
	<li>Engelleme çözüm hazırlamak. Piyasada bulunan boyama kullanarak Temsilcisi sonuçları için istihdam kiti Eğer (bkz. Tablo malzeme), bir tüp içinde fare IG engelleme reaktif ve %5 normal keçi serum 1,25 mL 1 x PBS, 1 damla (yaklaşık 45 µL eşit) ekleyin. Engelleme çözüm 4 ° C'de veya buz çalışma sırasında saklar. Not: kullanılan serum ikincil antikor'ın ana türler üzerinde bağlıdır. Burada ikincil antikorlar keçi kaldırdı kullanılmıştır. Diğer antikorları için farklı serum konsantrasyonları gerekli olabilir. Ampirik olarak çeşitli konsantrasyonları test ederek doğru serum konsantrasyonu belirlemek.</li>
	<li>Slaytları 1 x PBS ve yıkama 3 x 10 dk her hafif sallanan ile bir rocker üzerinde içeren bir Coplin kavanoza aktarın.</li>
	<li>Oksijen bir oda boyama için hazırlayın.</li>
	<li>Yavaşça, PBS bir slayttan kapalı sarsmak; Slayt alt aşırı PBS silmek için bir hav bırakmayan Temizleme işlemi ile silin.</li>
	<li>Hidrofobik özellikleri ile slaytlar için özel bir işaretleyici kullanarak, cam yüzey mürekkep çözüm bölümüne yayılmasını önlemek için kuru olduğundan emin yapma adrenal her bölümü çevreleyen bir daire çizin. Dikkatle gerekirse, yüzey kuru silin. Slayt oksijen odasına koyun.</li>
	<li>Hızlı bir şekilde, 50 µL (veya bölümler örtecek kadar) pipet çözüm her bölüme engelleme. Oda sıcaklığında 1 h için kuluçkaya. Not: gerekli çözüm cilt engelleme değişebilir; Bu bölümler de çözüm ile kaplıdır önemlidir.</li>
	<li>7.5 mL 1 x PBS ile piyasada bulunan kitinden Dilüent çözüm hazırlamak, 600 µL protein konsantre hisse senedi çözüm ve % 5 normal keçi serum (veya herhangi bir diğer serum ve engelleme çözümde kullanılan toplama). Dilüent çözüm 4 ° C'de veya çalışırken buzda saklayın.</li>
	<li>Dilüent çözümde uygun konsantrasyonlarda birincil antikorlar sulandrarak birincil antikor çözümleri hazırlayın. Co boyama, her antikor bir aliquot yeni bir tüp içinde eklemek ve karışımı yavaşça. Antikorlar ve antikor çözümleri kullanıma hazır kadar buza koyun. Not: Burada çalıştırmaya başladık anti-SF1 antikor tavşan kaldırdı ve bir anti-TH antikor fare kaldırdı. Antikor hazırlamak için yönetmen olarak çalışma çözümleri uygulayın.<ol>
<li>SF1 çalışma çözüm için bir tüp içinde anti-SF1 antikor 1 µL Dilüent çözüm (son konsantrasyon 1,5 µg/mL) 999 µL için ekleyin. TH çalışma çözüm için bir tüp içinde 1 µL anti-TH antikor 499 µL Dilüent çözüm (tahmini son konsantrasyon 2-6 µg/mL) ekleyin.</li>
		<li>SF1 + TH için taze bir tüp antikor çalışma karışımda pipet 250 µL SF1 çalışma çözüm ve 250 µL TH çalışma çözüm. Pipetting tarafından karışımı yavaşça. Buz üstünde depolar.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Slayt 1 x PBS içeren bir Coplin kavanoza aktarın ve hafif sallanan ile bir rocker üzerinde 3 x 5 min için yıkama.</li>
	<li>PBS, pipet SF1 + TH antikor çalışma karışımı (veya diğer birincil antikor çözüm) her bölümünde fazlalığı kapalı silerek sonra slaytları oksijen odasına geri yer oksijen odası kapatın ve gece 4 ° C'de bırakın</li>
	<li>Ertesi gün, bir Coplin içine slaytlar 1 x PBS içeren kavanoz ve hafif sallanan ile bir rocker üzerinde 3 x 15 dakika yıkayın taşıyın.</li>
	<li>Slaytları yıkarken, uygun toplama kullanarak Dilüent çözüm ikincil antikor çözümde hazırlayın. Co boyama yapmak, her ikincil antikor çözüm eşit miktarda yeni bir tüp içinde ekleyin. Pipetting tarafından karışımı yavaşça. Buz üstünde depolar. Tüpler ışıktan korumak ve buz üzerinde kullanıma hazır kadar saklayın. Not: Burada, keçi kaldırdı 488 nm floresan boya etiketli Anti-fare ve keçi kaldırdı 549 floresan boya etiketli Anti-tavşan kullanılan ikincil antikor vardır. İkincil antikor çözüm Dilüent çözüm (son konsantrasyonları 1,2 µg/mL) 799 µL içinde her ikincil antikor 0.5 µL ekleyerek hazırlanmıştır.</li>
	<li>PBS fazlalığı çıkardıktan sonra geri oksijen odasında slaytlar yer, hızlı bir şekilde adrenal bölümlerinde ikincil antikor çözüm pipette, oksijen odası kapatın ve ışıktan korumak. Oda sıcaklığında 1 h için kuluçkaya.</li>
	<li>1 x PBS bir Coplin kavanoza slaytlar yıkama ve 3 x 15 dk için hafif sallanan ile bir rocker ışıktan korumak emin yıkayın.</li>
	<li>4', 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) çözüm nükleer boyama için hazırlamak: DAPI (20 mg/mL) 1 µL 1 ml 1 x PBS. Not: Mavi-floresan nükleer counterstain da Höchst boya kullanılarak elde edilebilir.</li>
	<li>Adrenal bölümler üzerine DAPI çözüm pipet, ışıktan kapak ve 7 dakika oda sıcaklığında kuluçkaya.</li>
	<li>1 x PBS bir Coplin kavanoza slaytlar yıkama ve 3 x 5 min için bir rock'çı nazik slaytları ışıktan koruyarak sallanan ile yıkayın.</li>
	<li>Doğrudan güneş ışığı korumalı bir alanda bir cam yatıyordu, ve 60 µL veya 3 damla ayirt kapak cam yüzeyi boyunca için uygun montaj aracının pipet.</li>
	<li>Yavaşça bir slayt arka kapak cam doğru aşağı yönde ve montaj aracısında ile kapak cam doku bölümler yüz bu yüzden, paralel slayt konum bir hav bırakmayan silin silin. Hafifçe cam slaytta basın ve hiçbir hava kabarcığı kapak cam ve slayt arasında sıkışıp emin olun.<ol>
<li>Gerekirse, hava kabarcıklarının ve montaj Ajan fazlalığı kaldırmak için daha fazla basınç uygulayın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Bir karanlık konteyner ve tedavi, oda sıcaklığında en az 24 saat (ya da kullanılan montaj aracı bilgi sayfasında belirtilen zaman) slayt yatırmak ve görüntüleme için devam edin.</li>
</ol>7. görüntüleme
Not: bir fotoğraf makinesine bağlı bir floresan mikroskop tespit ve uyarma kararlı dalga boylarında, sonra dokular tarafından yayılan floresans yakalamak için gereklidir. Açık iken, antikor ikincil seçmek hatırlamak olan uyarma fluorochromes ile Birleşik ve emisyon spectra donanımları ile uyumlu değildir önemlidir. Görüntüleme ayarlarını mikroskop ve görüntüleri yakalamak için kullanılan yazılım göre değişir. Adrenal bölümleri görüntüleme için geçerli bazı temel kurallar vardır, bu çekim hızı emin olmak gibi kamera kazanç ayarları ve ışık kaynağı yoğunluğu sabit tutulur.
<ol><li>Işık kaynağı ve kamerayı açın, üreticinin yönergeleri izleyerek görüntüleme yazılımını başlatın. Not: Bu eylemlerin sırasını ekipman kullanılan bağlı olarak farklı olabilir.</li>
	<li>Slayt sahne alanı'nda güvenli, objektif kapağı açın ve mikroskop göz mercekleri seyir kullanın nükleer boyama (DAPI) Kanal ve düşük büyütme (4 X) slayt üzerinde doku tanımlamak için: adrenal bölümleri küçüktür ve onların görselleştirme biraz zaman gerektirebilir.</li>
	<li>Daha yüksek bir büyütme (10 X), odağı değiştirmek ve panjurları kapa. Not: Gereksiz yere uzun Fuar photobleaching, sinyal kaybına kaynaklanan neden olabilir ışık altında önlemek önemlidir.</li>
	<li>Yazılım komutlarını kullanarak, objektif (10 X) ve kanal (DAPI) kullanýlýr, pozlama süresi ayarlamak (1 s, sinyal çok güçlü ya da zayıf ise ayarlanabilir). Varsa, canlı görüntüleme (değil satın alma) için binning '2 X 2' dönüşüm geçirmesine 'Orta', ' 20 MHz hıza okuma' için ayarlayın. Kullanılan yazılım görüntüleme sonunda ölçek çubuğu görüntülenmiyorsa, ölçek çubuğu seçeneği seçin ve bar pozisyon istenilen yerde.</li>
	<li>Objektif kapağı açın, odağı gerekirse yeniden ayarlamak ve kanallar (FITC, TRITC, DAPI) geçin. Mikroskop otomatikleştirilmezse sahne alanı taşımadan her kanalda böbrek üstü bir resim çekmek ve kullanılan kanal seçimi ayarlamak emin olun. Bir kez bitmiş panjurları kapa. Not: yazılım otomatik olarak onları kurtarmak değildir diye istihdam ayarları yazın.</li>
	<li>Save resimler. Not: Birleştirilmiş resimler kez mikroskop'ın yazılım veya diğer grafik editörü yazılım paketleri kullanılarak oluşturulabilir.</li>
	<li>Görüntüleme bölümünde ve/veya daha yüksek bir büyütme ile diğer alanlar için yineleyin. Not: Bir 20 X büyütme kez daha kısa bir çekim hızı (Yani, 800 ms) gerektirir.</li>
	<li>Görüntüleme sonunda, doğru sırayla tüm ekipman kapa.</li>
</ol>

<ol><li>Brandtzaeg, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+increasing+power+of+immunohistochemistry+and+immunocytochemistry%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunological+Methods%22%5BJournal%5D)">The increasing power of immunohistochemistry and immunocytochemistry.</a> Journal of Immunological Methods. 216 (1-2), 49-67 (1998).</li>
<li>Matos, L. L., Trufelli, D. C., de Matos, M. G., da Silva Pinhal, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunohistochemistry+as+an+important+tool+in+biomarkers+detection+and+clinical+practice%5BTitle%5D)+AND+%22Biomark+Insights%22%5BJournal%5D)">Immunohistochemistry as an important tool in biomarkers detection and clinical practice.</a> Biomark Insights. 5, 9-20 (2010).</li>
<li>Coons, A. H., Creech, H. J., Jones, R. N. <a target="_blank" href="http://journals.sagepub.com/doi/10.3181/00379727-47-13084P">Immunological properties of an antibody containing a fluorescent group.</a> Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine. 47 (2), 200-202 (1941).</li>
<li>Lerario, A. M., Finco, I., LaPensee, C., Hammer, G. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+Mechanisms+of+Stem%2F+Progenitor+Cell+Maintenance+in+the+Adrenal+Cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Molecular Mechanisms of Stem/ Progenitor Cell Maintenance in the Adrenal Cortex.</a> Frontiers in Endocrinology. 8, (2017).</li>
<li>Yates, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adrenocortical+Development%2C+Maintenance%2C+and+Disease%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrine+Gland+Development+and+Disease%22%5BJournal%5D)">Adrenocortical Development, Maintenance, and Disease.</a> Endocrine Gland Development and Disease. 106, 239-312 (2013).</li>
<li>Jones, I. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Variation+in+the+Mouse+Adrenal+Cortex+with+Special+Reference+to+the+Zona+Reticularis+and+to+Brown+Degeneration%2C+Together+with+a+Discussion+of+the+Cell+Migration+Theory%5BTitle%5D)+AND+%22Quarterly+Journal+of+Microscopical+Science%22%5BJournal%5D)">Variation in the Mouse Adrenal Cortex with Special Reference to the Zona Reticularis and to Brown Degeneration, Together with a Discussion of the Cell Migration Theory.</a> Quarterly Journal of Microscopical Science. 89 (1), 53(1948).</li>
<li>Sucheston, M. E. C., Samuel, M. <a target="_blank" href="https://pdfs.semanticscholar.org/e6f2/ef2e1761e7eb22ceeca818610ff152539fbe.pdf">The Transient-Zone in the Human and Mouse Adrenal Gland.</a> The Ohio Journal of Science. 72, n2 (March, 1972) 120-126 (1972).</li>
<li>Guasti, L., Paul, A., Laufer, E., King, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Localization+of+Sonic+hedgehog+secreting+and+receiving+cells+in+the+developing+and+adult+rat+adrenal+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+and+Cellular+Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Localization of Sonic hedgehog secreting and receiving cells in the developing and adult rat adrenal cortex.</a> Molecular and Cellular Endocrinology. 336 (1-2), 117-122 (2011).</li>
<li>Pihlajoki, M., Dorner, J., Cochran, R. S., Heikinheimo, M., Wilson, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adrenocortical+zonation%2C+renewal%2C+and+remodeling%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Adrenocortical zonation, renewal, and remodeling.</a> Frontiers in Endocrinology. 6, 27(2015).</li>
<li>Farese, R. V., Walther, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lipid+Droplets+Finally+Get+a+Little+R-E-S-P-E-C-T%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Lipid Droplets Finally Get a Little R-E-S-P-E-C-T.</a> Cell. 139 (5), 855-860 (2009).</li>
<li>Shen, W. J., Azhar, S., Kraemer, F. B. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26639173">Lipid droplets and steroidogenic cells.</a> Experimental Cell Research. 340 (2), 209-214 (2016).</li>
<li>Finco, I., LaPensee, C. R., Krill, K. T., Hammer, G. D. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25668018">Hedgehog signaling and steroidogenesis.</a> Annual Review of Physiology. 77, 105-129 (2015).</li>
<li>Paul, A., Laufer, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endogenous+biotin+as+a+marker+of+adrenocortical+cells+with+steroidogenic+potential%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+and+Cellular+Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Endogenous biotin as a marker of adrenocortical cells with steroidogenic potential.</a> Molecular and Cellular Endocrinology. 336 (1-2), 133-140 (2011).</li>
<li>Lowe, J., Anderson, P. <a target="_blank" href="https://www.elsevier.com/books/stevens-and-lowes-human-histology-fourth-edition/9780723435020">Stevens & Lowe's Human Histology, 4th Edition</a>. , Elsevier/Mosby. 263-285 (2015).</li>
<li>Nagatsu, T. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/1684650">Genes for human catecholamine-synthesizing enzymes.</a> Neuroscience Research. 12 (2), 315-345 (1991).</li>
<li>Berthon, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Age-dependent+effects+of+Armc5+haploinsufficiency+on+adrenocortical+function%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Molecular+Geneticst%22%5BJournal%5D)">Age-dependent effects of Armc5 haploinsufficiency on adrenocortical function.</a> Human Molecular Geneticst. 26 (18), 3495-3507 (2017).</li>
<li>Brown, C. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/9864103">Antigen retrieval methods for immunohistochemistry.</a> Toxicologic Pathology. 26 (6), 830-831 (1998).</li>
<li>Billinton, N., Knight, A. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Seeing+the+wood+through+the+trees%3A+a+review+of+techniques+for+distinguishing+green+fluorescent+protein+from+endogenous+autofluorescence%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Seeing the wood through the trees: a review of techniques for distinguishing green fluorescent protein from endogenous autofluorescence.</a> Analytical Biochemistry. 291 (2), 175-197 (2001).</li>
<li>Hirsch, R. E., San George, R. C., Nagel, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intrinsic+fluorometric+determination+of+the+stable+state+of+aggregation+in+hemoglobins%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Intrinsic fluorometric determination of the stable state of aggregation in hemoglobins.</a> Analytical Biochemistry. 149 (2), 415-420 (1985).</li>
<li>Whittington, N. C., Wray, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Suppression+of+Red+Blood+Cell+Autofluorescence+for+Immunocytochemistry+on+Fixed+Embryonic+Mouse+Tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Protocols+in+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Suppression of Red Blood Cell Autofluorescence for Immunocytochemistry on Fixed Embryonic Mouse Tissue.</a> Current Protocols in Neuroscience. 81, 28(2017).</li>
<li>Watson, J. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21391776">Suppressing autofluorescence of erythrocytes.</a> Biotechnic & Histochemistry. 86 (3), 207(2011).</li>
<li>Epp, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+of+CLARITY+for+Clearing+Whole-Brain+and+Other+Intact+Organs%5BTitle%5D)+AND+%22eNeuro%22%5BJournal%5D)">Optimization of CLARITY for Clearing Whole-Brain and Other Intact Organs.</a> eNeuro. 2 (3), (2015).</li>
<li>Erturk, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensional+imaging+of+solvent-cleared+organs+using+3DISCO%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Three-dimensional imaging of solvent-cleared organs using 3DISCO.</a> Nature Protocols. 7 (11), 1983-1995 (2012).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Bu iletişim kuralı için hazırlık birlikte fare böbreküstü bezlerinin yalıtım ve kesitli parafin gömülü fare adrenal boyama yöntemi açıklanır.
Biz test diğer protokoller için karşılaştırıldığında, bu ayirt Protokolü bizim Laboratuvarda kullanılan antikor çoğunluğu için uygun kanıtlamıştır. Ancak, belirli durumlarda boyama sonuçlarını iyileştirmek için bazı ayarlamalar gerekebilir. Kolayca değiştirilebilir ve test bir fiksasyon uzunluğu değişkendir. Diğer laboratuvarlarda fiksasyon saat 12-24 h<...

İmmünhistokimya doku bileşenleri belirli hücresel moleküller ve konjuge antikorlar1algılamak için sonraki boyama teknikleri antikor kullanımı ile tespit için bir tekniktir. Bu immunohistokimyasal yordam belirli fiksasyon gerektirir ve spesifik antijen için sık sık ampirik olarak belirlenir dokuların işleme, doku ve antikor kullanılan2. Fiksasyon doku ve böylece sağlam cep ve hücre altı yapıları ve ifade desenleri Bakımı "orijinal" durumunu korumak çok önemlidir. Daha fazla işleme ve yordamlar katıştırma doku immünhistokimya içeren histolojik araştırmalar için kullanılan ince dilimler halinde kesit için hazırlamak için gerekli.
Immunostaining chromogenic veya floresan algılama ile gerçekleştirilebilir. Chromogenic algılama çözünür bir substrat çözünmez bir renkli ürün haline dönüştürmek için sana bir enzim kullanımı gerektirir. Bu enzim (birincil antikor) antijen tanıma antikor Birleşik iken, daha sık birincil antikor (yani, ikincil antikor) tanıma antikor Birleşik. Bu teknik son derece duyarlıdır; enzimatik reaksiyon gelen kaynaklanan renkli ürün photostable ve görüntüleme için sadece aydınlık alan mikroskop gerektirir. Ancak, chromogenic immunostaining devrilmesinden sonra bir renk devrilmesinden sonra diğer bir maske yapabilirsiniz bu yana, ortak yerelleştirmek iki protein görselleştirmek çalışırken uygun olmayabilir. Co boyama söz konusu olduğunda, ayirt daha avantajlı olduğu ispatlanmıştır. Ayirt gelişiyle Albert Coons ve doku antijenleri floresein ile işaretli antikorlar ile tanımlamak ve ultraviyole ışık3altındaki kesitli dokuları onları görselleştirmek için bir sistem geliştiren iş arkadaşları, atfedilir. Floresans algılama uyarma sonra ışık yayan bir fluorophore ile Birleşik bir antikor temel alır. Farklı dalga boylarında, emisyon ile birkaç fluorophores (ile örtüşme) hiç veya çok az olduğundan, bu algılama yöntemi birden çok protein çalışmaları için idealdir.
Böbrek üstü bezi böbrek yer alan ve mezenkimal kapsül tarafından çevrili iki embryologically farklı bileşenleri ile karakterize eşleştirilmiş bir organdır. Süre nöral crest elde edilen iç medulla, adrenalin, noradrenalin ve dopamin gibi katekolaminler üretmek mesonephric ara mesoderm elde edilen dış adrenal korteks steroid hormon salgılıyor. Adrenal korteks farklı sınıflar steroid hormon salgılayan her bölgesi ile üç konsantrik bölgelerde histolojik olarak ve işlevsel olarak ayrılmıştır: elektrolit homeostazı düzenleyen mineralocorticoids dış zona glomerulosa (zG) üretir ve intravasküler hacim; Orta zona fasciculata (zF), doğrudan stres tepkisi plazma glikoz artırmak için enerji depoları seferberlik aracılığıyla arabuluculuk glukokortikoid zG altında salgılar; ve steroid öncüleri (Yani, dehidroepiandrosteron (DHEAS))4sentezler iç zona reticularis (zR), seks.
Adrenokortikal zonation bazı varyasyon türler arasında mevcuttur: Örneğin, Mus musculus zR yoksun. Benzersiz Doğum sonrası X-bölgenin M. musculus acidophilic cytoplasms5küçük lipid-yoksul hücreleri ile karakterize fetal korteks bir kalıntı var. X-bölge ergenlik erkek farelerde ve dişi farelerde ilk gebelik sonrası, kaybolur veya yavaş yavaş değil yetiştirilen kadın6,7' dönüştürdü. Organizasyon periferik kök ve progenitör hücre içinde ve zG bitişik olduğu gibi Ayrıca, tortuosity ve zG sergiler kalınlığı türler arasında varyasyon olarak işaretlenmiş. Rat, aksine diğer kemirgen zG ve zF arasında görünür farklılaşmamış bölge (zU) bir kök hücre bölge ve/veya geçici ataları yükseltecek bir bölge olarak bu işlevleri vardır. ZU fareler için benzersiz olan ya da sadece daha belirgin hücre kümesi düzenlenen bilinmeyen8,9' dur.
Hücreler adrenal korteksin bütün steroid hormonlar10,11habercisi hizmet kolesterol esterleri depolamak lipid damlacıkları içerir.  Terim "steroidogenesis" kolesterol üzerinden bir serisi steroidogenic faktörü 1 (SF1), Ifade steroidogenic potansiyel bir belirtecidir etkinlik dahil enzimatik reaksiyonların steroid hormonlarının üretim süreci tanımlar. Böbreküstü bezinde Sf1 ifade sadece korteks12hücrelerde bulunur. İlginç bir çalışma ile steroidogenic potansiyel13adrenokortikal hücrelerde endojen biotin ifade buldum. Daha yüksek bir arka planda biotin/streptavidin tabanlı boyama yöntemleri, endojen biotin streptavidin ile Birleşik antikor tarafından algılanması nedeniyle nedeni olabileceği gibi bu da bu özelliği aynı zamanda steroidogenic ayırt etmek için istihdam olabilir diğer nüfus böbreküstü bezi, Yani, endotel, kapsül ve medulla hücreleri içinde hücrelerden.
Sempatik pregangliyonik nöronlar tarafından innervated, adrenal medulla bazofilik hücreler tarafından epinefrin ve norepinefrin içeren ayrıntılı bir sitoplazma ile karakterizedir. Medulla hücreleri "kromafin" kahverengi pigment oksidasyon14sonrası formu katekolaminler yüksek içerik nedeniyle adlandırılır. Tirozin hidroksilaz (TH) hızı sınırlaması adım katekolaminler sentez ve böbrek üstü bezi tromboksan, medulla15içinde ifade enzimdir.
Burada fare böbreküstü bezleri, parafin ve kesit ve adrenal bölümlerde oluşturan hücresel türlerini belirlemek için boyama ayirt gerçekleştirmek için bir yöntem içinde katıştırma için onların işlem yalıtım için bir iletişim kuralı mevcut Adrenal korteks ve medulla. Bu iletişim kuralı laboratuarımızda rutin olarak bizim araştırmada kullanılan birden çok antikorlar ile immunostaining için bir standarttır.

<table><tbody><tr><td>24 oyuklu hücre kültürü plakası</td><td>Nest Biotechnology Co.</td><td>0412B</td><td></td></tr><tr><td>Tek kullanımlık iğneler 25 G x 5/8"</td><td>Exel International</td><td>26403</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehit (PFA)</td><td>Sigma-Aldrich&nbsp;</td><td>P6148</td><td></td></tr><tr><td>Paraplast plus&nbsp;</td><td>McCormik bilimsel</td><td>39502004</td><td>Doku gömme için parafin</td></tr><tr><td>Shandon biyopsi kasetleri II ekli kapaklı</td><td>Termo bilimsel</td><td>1001097</td><td>Doku işleme için kasetler</td></tr><tr><td>Yüksek Profilli Mikrotom Bıçakları</td><td>Accu-Edge</td><td>4685</td><td>Tek kullanımlık paslanmaz çelik bıçaklar</td></tr><tr><td>Soyulabilir tek kullanımlık plastik doku gömme kalıpları</td><td>Polysciences Inc.</td><td>18986</td><td>Kesik, 22 mm kare üst kısım 12 mm alt kısma konik</td></tr><tr><td>Superfrost Plus Mikroskop Slaytları</td><td>Fisherbrand</td><td>12-550-15</td><td>75 mm x 25 mm x 1 mm</td></tr><tr><td>Ksilen</td><td>Fisher Kimyasal</td><td>X5P1GAL&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>200 Korumalı Etanol</td><td>Decon Labs, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Certi-Pad Gazlı bez pedleri&nbsp;</td><td>Sertifikalı Güvenlik Mfg, Inc</td><td>231-210</td><td>3" x 3. Steril lateks içermeyen gazlı bez pedleri</td></tr><tr><td>MOM kiti&nbsp;</td><td>Vektör laboratuvarları</td><td>BMK-2202</td><td>Fare dokusunda fare birincil antikorlarını tespit etmek için</td></tr><tr><td>KimWipes</td><td>Kimtech</td><td>34155</td><td>Mendil 4.4 inç x 8.4 inç</td></tr><tr><td>Süper PAP PEN</td><td>Invitrogen&nbsp;</td><td>00-8899</td><td>Slaytlar üzerine çizim yapmak için kalem</td></tr><tr><td>Mikroskop kapağı camı&nbsp;</td><td>Fisherbrand</td><td>12-544-D</td><td>Boyut: 22 x 50 x 1.5</td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Sigma</td><td>D9542 ></td><td>(20 mg/mL stokta hazırlanmıştır)</td></tr><tr><td>ProLong Altın antifade reaktifi</td><td>Moleküler Problar</td><td>P36930</td><td>İmmünofloresan</td></tr><tr><td>X-cite serisi 120Q</td><td>Lümen Dinamiği</td><td></td><td>Işık kaynağı</td></tr> için montaj maddesi <tr><td>Coolsnap Myo</td><td>Fotometri</td><td></td><td>Kamerası</td></tr><tr><td>Optiphot-2&nbsp;</td><td>Nikon</td><td></td><td>Mikroskop</td></tr><tr><td>mikrotom</td><td>Amerikan Optik</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Doku gömükücü</td><td>Leica</td><td>EG1150 H&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Doku işlemcisi&nbsp;</td><td>Leica</td><td>ASP300S</td><td></td></tr><tr><td>Normal keçi serumu</td><td>Sigma</td><td>G9023</td><td></td></tr><tr><td>Fare anti-TH</td><td>Millipore</td><td>MAB318</td><td>Birincil antikor</td></tr><tr><td>Tavşan anti-SF1</td><td>Ab proteintech grubu (PTGlabs)</td><td>&nbsp; ısmarlama</td><td>Birincil antikor</td></tr><tr><td>Alexa-488 Fare IgG & nbsp; yükseltilmiş keçi</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>115-545-003 & nbsp;</td><td>İkincil antikor</td></tr><tr><td>Dylight-549 Tavşan IgG keçi yetiştirildi</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>111-505-003</td><td>İkincil antikor</td></tr><tr><td>Sitrat asit susuz</td><td>Fisher Chemical</td><td>A940-500</td><td></td></tr><tr><td>NIS-Elements Temel Araştırma&nbsp;</td><td>Görüntüleme için</td> <td>Nikon</td><td></td> Yazılımı</tr></tbody></table>

yalıtım, fiksasyon ve fare böbreküstü bezlerinin ayirt görüntüleme

Isolation, Fixation, and Immunofluorescence Imaging of Mouse Adrenal Glands

Ayirt antijenleri dokularda tespiti fluorochrome Birleşik antikorlar istihdam ile köklü bir teknik ve uygulamaları geniş bir yelpazede vardır. Algılama antijenleri karakterizasyonu ve birden çok hücre türü tanımlaması için sağlar. Böbrekler üzerinde bulunan ve mezenkimal hücreler tabakası tarafından Kapsüllü, böbrek üstü bezi endokrin organ farklı Embriyoda kökenleri ile iki farklı dokular, mesonephric ara mesoderm kaynaklı dış korteks ve sinir tarafından oluşan olduğunu iç medulla Crest kaynaklı. Adrenal medulla katekolaminler (Yani, adrenalin, noradrenalin) üretir, ancak adrenal korteks steroidler (Yani, mineralocorticoids, sebepler, cinsiyet hormonları), salgılar. Adrenal araştırma yürütürken, farklı fonksiyonları ile benzersiz hücre ayırt edebilmek önemlidir. Burada bir protokol sağlar bir dizi sıralı adımları böbreküstü bezinin hücre tipleri tanımlamak için ayirt boyama elde etmek için gerekli açıklar bizim laboratuvarda geliştirilmiştir. Biz ilk fare böbreküstü bezlerinin diseksiyon fiksasyon, işleme ve parafin doku gömme takip periadrenal yağ mikroskobik kaldırma odaklanmak. Biz o zaman bir döner microtome ile doku bloklarını kesit tanımlamak. Son olarak, en iyi sinyal sağlamak için non-spesifik antikor bağlama ve autofluorescence en aza indirmek için geliştirdiğimiz böbreküstü bezlerinin immünfloresan boyama için bir protokol ayrıntı.

Şekil 1 bir şematik yukarıda açıklanan tüm Protokolü'nün temsil eder. Adrenal bezlerin fareler--dan hasat, bitişik yağ dokusu bir diseksiyon mikroskop altında kaldırılır ve böbreküstü sonra %4 oranında sabit PFA. Bu adımdan sonra adrenal işlenir ve parafin içinde gömülü ve mikroskop slaytlar üzerine yatırılır ince dilimler halinde organ kesmek için bir microtome ile kesitli. Bölümleri kurutma sonra ayirt yapıldığını ve bölümleri mikroskop görüntüsü.
<p cl...

Burada adrenal bezlerin fareler üzerinden ayırma, dokuları düzeltmek, onları bölüm ve ayirt boyama gerçekleştirmek için bir yöntem mevcut.

Yalıtım, fiksasyon ve fare böbreküstü bezlerinin ayirt görüntüleme

Immunofluorescence is a well-established technique for detection of antigens in tissues with the employment of fluorochrome-conjugated antibodies and has ...

İmmünofluoresans adrenal zonation hakkında adrenal alanda anahtar sorulara cevap yardımcı olabilir temel bir yöntemdir, hücre kimliği ve fonksiyonu. Bu tekniğin en büyük avantajı, adrenal dokunun morfolojisini korurken birden fazla proteinin incelenmesine olanak sağlamasıdır. Murine adrenal bezi kaldırmak için, çevreleyen yağ dokusu etrafında kesilmiş ve buz üzerinde taze PBS içeren 24-multiwell plaka bir kuyuda bezi yerleştirin.Bir diseksiyon mikroskop altında bir Petri çanak veya cam destek üzerine bezi aktarın ve bitişik yağ dokusu kaldırmak için iki 25 gauge iğnekullanın. Tüm yağ çıkarıldığında, iki saat boyunca sallanan ile dört santigrat derecede% 4 paraformaldehit doku düzeltmek. Kuluçka sonunda bezi, yıkama başına bir ila iki mililitre taze PBS cinsinden dört santigrat derecede üç adet 15 dakikalık yıkama ile durula.Son yıkamadan sonra, iki sıralı etanol daldırma içinde dört derece santigrat bezi dehydrate ve kuluçka başına iki saat sallanan. İşleme için adrenal doku hazırlamak için, gazlı bezsarın ve bir doku gömme kaset adrenal içine. Daha sonra, işlem kadar dört derece santigrat depolama için% 70 etanol ile dolu bir kavanoza kaset yerleştirin.Dokuyu işlemek için kaseti tabloda belirtildiği gibi işlenmesi için doku işlemcisine takın. Programın sonunda, kaseti erimiş 65 derece parafinle dolu bir gömme istasyonuna aktarın ve gazlı bezin imal etmek için bir çift forceps kullanın. Yavaşça katıştırma kalıp tabanının merkezinde uygun pozisyonda adrenal transfer ve bezi üzerine erimiş parafin dökün.Daha sonra, parafinsertliğini kolaylaştırmak için gömme kalıbını bir soğutma tepsisine dikkatlice taşıyın. Döner mikrotom ile kesit yapmadan önce, bir dizi mikroskop slaytını etiketlendirin ve slaytları 37 derece lik santigrat kaydırak ısıtıcısına yatırın. Her slayt üzerine otoklavlı tip bir ultra saf su yaklaşık 450 mikrolitre dağıtın ve beş mikrometre mikrotomun kesme kalınlığını ayarlayın.Gömülü dokuyu kesme bloğuna yükleyin ve numune mikrotom bıçağının kenarı ile yüz hizasına gelene kadar parafin bloğunu indirin. Sabit bir ritim ile el tekerleği döndürme, parafin kaldırmak ve adrenal doku ortaya çıkarmak için bir ilk kırpma gerçekleştirin. Daha sonra, toplandığı gibi önceden etiketlenmiş slaytlar birine su damlacık içine her bölümü aktarmak için forceps kullanarak adrenal bezin sonuna kadar beş mikrometre bölümleri elde.Mikroskopi ile bölümlerde doku varlığını doğruladıktan sonra, yaklaşık iki saat boyunca sıcak plaka üzerinde slaytlar kuru ve daha fazla su görünür kadar 37 santigrat derece bir slayt tepsisinde en az bir gecede pişirin. Kurutuldıktan sonra, slaytları oda sıcaklığında bir slayt kutusunda saklayın. İmmünofloresan antijen alımı için, iki beş dakika 100% ksilen daldırma ile slaytlar de-parafinize, alçalan bir etanol ve su daldırma serisi rehidrasyon izledi.Su daldırma sonra, bir metal slayt tutucu için slaytlar aktarın ve 10 dakika boyunca bir sıcak plaka üzerinde 0,01 azı sitrat kaynayan bir kabın içinde tutucu yerleştirin. Kuluçka sonunda, sıcak tabaktan beher çıkarın ve 20 dakika soğumasını bekleyin, tüm adrenal bölümleri hala tampon ile kaplı olduğunu dikkat çekerek. Kabı soğuduğunda, slaytları bir Coplin kavanozuna aktarın ve taze PBS'de hafif sallanan üç 10 dakikalık yıkıntılar.Son yıkamadan sonra, doku bölümlerine zarar vermeden her slaytyüzeyini dikkatlice silin ve her bölümün etrafında bir daire yapmak için hidrofobik bir marker kullanın. Slaytları nemli bir odaya yerleştirin ve oda sıcaklığında bir saatlik kuluçka için her bölüme en az 50 mikrolitre engelleme çözeltisi ekleyin. Engelleme kuluçka sonunda, sallayarak ve odaya slaytlar dönmek ile yıkama başına beş dakika taze PBS slaytlar üç kez yıkayın.Daha sonra, dört santigrat derece bir gecede kuluçka için her bölüme ilgi birincil antikor kokteyl ekleyin. Ertesi sabah, numuneleri yıkama başına taze PBS'de 15 dakikalık üç yıkayarak yıkayın ve slaytları ışıktan korunan bir saat boyunca uygun ikincil antikor solüsyonuyla etiketleyin. Kuluçka sonunda, numuneleri ışıktan korunan bir kaya üzerinde 15 dakikalık üç yıkama yla yıkayın ve son yıkamadan sonra ışıktan korunan oda sıcaklığında yedi dakika boyunca bölümlerin çekirdeklerini DAPI ile etiketleyin.Üç beş dakikalık PBS sallanan yıkar sonra, örnek başına bir kapak cam yüzeyi boyunca immünororescence için uygun montaj ajanı 60 mikrolitre ekleyin ve hafifçe bir kapak cam üzerine her slayt doku bölümü yan aşağı basın, kabarcıklar önlemek için özen. Daha sonra, görüntülemeden önce en az 24 saat oda sıcaklığında kür için koyu bir kapta her slayt düz yatıyordu. Yağ kaldırma işlemi sırasında, dehidratasyon doku yapısına zarar verebilir gibi adrenal bezi kurumasına izin vermemek için önemlidir.Çevreleyen yağ dokusunun başarılı bir şekilde çıkarılmasından sonra, böbreküstü bezi ekstra görünür yağ ile kolayca tespit edilmelidir. Gösterildiği gibi adrenal bez bölümlerinin immünostaining nükleer steroidojenik faktör bir adrenokortikal hücrelerin boyanması ortaya koymaktadır, medüller hücrelerin tirozin hidroksilaz boyama, dış kapsül non-steroidogenik hücrelerin çekirdeklerinin DAPI boyama, ve adrenokortikal ve medüller hücreler ile co-boyama. Bu yordamı denerken, fare adrenallerinin küçük olduğunu ve konumlarının biraz değişken olduğunu ve tespitlerini zorlaştırdığını hatırlamak önemlidir.Bu nedenle, diseksiyon sırasında alanın net bir görünüme sahip olmak çok önemlidir. Bu prosedürler in vivo adrenal bezin in çalışma için temel tekniklerdir. Bunları takiben, belirli bilimsel ihtiyaçları karşılamak için immünboyama ek yöntemler yapılabilir.Gelişiminden sonra, immünboyama biyomedikal bilim alanlarında araştırmacılar için yerinde protein ekspresyonu, birçok disiplin ve alanlarda yararlı bir araç keşfetmek için yol açtı.

isolation-fixation-immunofluorescence-imaging-mouse-adrenal

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Adrenal medüller kromafin hücre kültürü sistemleri, in vitro ortamda bir uyarım-salgılanması kaplin çalışması için son derece yararlı. Bu protokol adrenaller incelemek ve sonra Adrenal korteks uzak sıyırma medüller bölgede izole etmek için kullanılan yöntemi göstermektedir. Tek kromafin hücrelerine medulla sindirim sonra gösterilmiştir.

Fare Adrenal Kromafin Hücre İzolasyonu

Bu video, aynı konakçı türden birincil antikorları kullanarak multipleks immün boyama gerçekleştirmek için bir testi göstermektedir. Bu yöntemde, bir adrenal doku bölümü iki aşamalı bir immün boyama işlemine tabi tutulur. Başlangıçta, kesit korteksteki belirteçler için spesifik antikorlarla boyanır, ardından bağlı antikor çıkarılır ve medulladaki belirteçler için spesifik antikorlarla yeniden boyanır.

Aynı Konak Türlerden Primer Antikorların Kullanıldığı Bir Multipleks İmmün Boyama Yöntemi

Yetişkin farelerin lenf düğümlerinde 120 um derinliğe kadar kontrastlı sahip yüksek-çözünürlüklü intravital görüntüleme uzamsal bir multi-odak iki foton mikroskop uyarım modelini modüle edilmesi ile elde edilir. 100 mikron derinliğinde biz böylece saçılma ve difraksiyon sınırlarını engellemeyi, 487 nm çözünürlük (lateral) ve 551 nm (eksenel) ölçüldü.

Germinal Merkezleri derece Çözülmüş Intravital Çizgili-aydınlatma Mikroskopi

Ekzositozdan sonra, kaynaşmış plazma zarı endositoz olarak bilinen bir işlemle elde edilir. Bu mekanizma, bir sonraki serbest bırakma turu için yeni sinaptik vezikülleri yeniden düzenler. Bireysel endositik olaylar, fare adrenal kromaffin hücrelerinde hücreye bağlı kapasitans kayıtlarının kullanılması yoluyla yakalanır ve analiz edilir.

Fare Adrenal Kromafin Cell Hücre bağlı Kapasitans Ölçümler Yöntemleri

Bu makalede açıklanan dolaylı immünfloresan protokol algılama ve fare meme bezinde proteinlerin yerelleştirme verir. Tam bir yöntem olup, meme bezi örnekleri hazırlamak için floresan mikroskobu ile görüntü, doku kesitlerinde immunhistokimya gerçekleştirmek için ve görüntüleri yeniden verilir.

Fare Meme Bezinin Dondurulmuş Bölümler Dolaylı İmmünofloresan

Biz fare Wolf kanalı (WD) izolasyonu ve kültürü için bir yöntem mevcut. Biz de floresan levhası 'antikorlarla kültürlü / taze izole Wigner tüm montaj immün için detaylı bir prosedür ortaya koymaktadır. Birlikte, bu teknikler WD geliştirme, sarma ve farklılaşma çalışma sağlar.

Organ Kültür ve Fare Wolffian Kanallarının Tüm Dağı Immunoflorasan Boyama

Biz hipofiz bezleri teşrih ve fareler gelişmekte olan hipofiz koronal bölümleri hazırlamak için bir protokol mevcut.

Diseksiyon ve fare hipofiz bezi geliştirme koronal dilim hazırlık

Aynı konak türün primer antikorları kullanılarak multipleks immünboyama için çeşitli yöntemler oluşturulmuştur. Burada, formalin-sabit parafin gömülü fare adrenal bölümlerinde multipleks immünboyama sırasında antikor çapraz reaktivitesini engellemek için mikrodalga aracılı antikor sıyırma ve florofor-tiramid kullanımını açıklıyoruz.

Fare Adrenallerinde Çokkatlı İmmünoboyama için Mikrowaving ve Florosofor-Tyramide - Aynı Konak Türlerinden Konjuge Olmayan Birincil Antikorların Kullanılması

Bu protokol, sığır adrenal kromafin hücrelerinde üç füzyon modunu tespit etmek için konfokal bir görüntüleme tekniğini tanımlar. Bu füzyon modları arasında 1) füzyon gözenek açma ve kapama içeren yakın füzyon (öpüş ve koş olarak da adlandırılır), 2) füzyon gözenek açılmasını ve açılan gözenekin korunmasını içeren stay-füzyon ve 3) kaynaşmış vezikül büzülmesini içeren büzülme-füzyon bulunur.

Adrenal Kromafin Hücrelerinde Üç Füzyon Gözenek Dinamiği Modunu Ölçmek için Konfokal Mikroskopi

Bu protokol, iskelet ve kalp kası fibro-adipojenik progenitörlerinin (FAP'ler) dikenli fareden (Acomys) enzimatik ayrışma ve floresanla aktive edilen hücre sınıflandırması yoluyla izolasyonunu ana hatlarıyla belirtir. Bu protokolden elde edilen FAP'lar etkili bir şekilde genişletilebilir ve miyofibroblastlara ve adipositlere farklılaştırılabilir.

Dikenli Fare Modelinden Fibro-Adipojenik Progenitör İzolasyonu, Genişlemesi ve Farklılaşması

Fare adrenal korteks için zona glomerulosa ve zona fasciculata ile zenginleştirilmiş hücrelerin 2D birincil kültürlerini oluşturmak amacıyla sağlam ve tekrarlanabilir bir yaklaşım geliştirildi. Bu sistem, her bölgenin temel moleküler ve fonksiyonel özelliklerini koruyarak sinyal yolları, hormon üretimi ve adrenal kortikal hücre davranışının odaklanmış şekilde incelenmesini mümkün kılar.

Fare Adrenal Korteksinden Bölge Zenginleştirilmiş Birincil Kültürlerin Oluşumu

Öğrenin fare böbreküstü bezlerinin yalıtımı, fiksasyonu ve immunofloresan boyama yöntemlerini. Bu teknik doku morfolojisini koruyarak adrenal zonasyon ve hücre kimliği araştırmalarını destekler.

Yalıtım, fiksasyon ve fare böbreküstü bezlerinin ayirt görüntüleme

Daha fazla video keşfet