-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Biocytin kurtarma ve dolgulu hipokampal CA2 Interneurons 3D rekonstrüksiyonu
Biocytin kurtarma ve dolgulu hipokampal CA2 Interneurons 3D rekonstrüksiyonu
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
Biocytin Recovery and 3D Reconstructions of Filled Hippocampal CA2 Interneurons

Biocytin kurtarma ve dolgulu hipokampal CA2 Interneurons 3D rekonstrüksiyonu

Full Text
8,973 Views
11:21 min
November 20, 2018

DOI: 10.3791/58592-v

Georgia Economides*1, Svenja Falk*1, Audrey Mercer1

1Department of Pharmacology,University College London

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a protocol for the immunofluorescence analysis and high-quality reconstructions of hippocampal CA2 interneurons, following intracellular electrophysiological recordings in vitro. This methodology allows for the characterization of neuronal properties and detailed anatomical studies, enhancing our understanding of cortical circuitry.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Neuroanatomy
  • Electrophysiology

Background

  • CA2 interneurons play a critical role in the hippocampal circuitry.
  • Understanding the morphology and function of these neurons is vital for deciphering hippocampal operations.
  • This method improves the preservation of neuronal ultrastructure.
  • High-quality reconstructions are essential for assessing neuronal subtype characteristics.

Purpose of Study

  • To develop a reliable protocol for studying hippocampal interneurons.
  • To facilitate precise anatomical reconstructions post-electrophysiological recordings.
  • To enhance the understanding of the functional mapping of neuronal subtypes.

Methods Used

  • The study utilized electrophysiological recordings on hippocampal CA2 interneurons.
  • Detailed protocols for tissue fixation, embedding, and sectioning were followed to ensure the integrity of neuronal structures.
  • Immunofluorescence was employed for fluorescence imaging, specifically targeting critical neuronal markers.
  • Critical steps included careful tissue handling and multiple fixation processes to prepare samples for high-resolution imaging.
  • Sections were prepared for electron microscopy, allowing in-depth analysis of neuronal morphology.

Main Results

  • The protocol successfully preserved dendritic and axonal arbors, facilitating high-quality neuronal reconstructions.
  • Electrophysiological analysis provided insights into the excitability and functional characteristics of CA2 interneurons.
  • The study emphasized the ultrastructural features of these neurons, contributing significantly to the understanding of their role in hippocampal function.
  • Results indicated enhanced preservation techniques yield better morphological assessments.

Conclusions

  • This study demonstrates a comprehensive approach for investigating CA2 interneurons, crucial for understanding hippocampal circuitry.
  • It highlights the importance of meticulous sample preparation for accurate anatomical reconstructions.
  • Insights gained from this work may have implications for studying neuronal mechanisms and related disorders.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using this reconstruction protocol?
The protocol optimizes neuronal preservation for accurate structural analysis, resulting in high-quality reconstructions that are essential for understanding neuronal function.
How are hippocampal CA2 interneurons characterized?
These interneurons are characterized through intracellular recordings and subsequent immunofluorescence, allowing for both functional and anatomical assessments.
What types of data can be obtained from this method?
The methods yield rich data on neuronal morphology, excitability, and the organization of synaptic connections within the hippocampus.
How can this method be adapted for other neuron types?
This protocol can be modified by adjusting the fixation and embedding processes to accommodate different neuronal types while maintaining structural integrity.
Are there limitations to this study?
While the method excels at preserving ultrastructure, careful handling is required to avoid artifacts, and applicability may vary with different neuron types.

Burada özetlenen protokolünü ayirt analizi, biocytin kurtarma ve hücre içi elektrofizyolojik kayıtlar in vitro nöron izin takip hipokampal CA2 interneurons yüksek kaliteli rekonstrüksiyonlar açıklar karakterizasyonu ve belirlenmesi için sonuçta iyi nöronal anatomisi.

Bu yöntem nöronal alt tipleri sınıflandırmaya yardımcı olabilir ve kortikal devrelerin fonksiyonel haritası anlayışımızı genişletmek. Bu protokol, nöronların ultrayapısını korumak ve hem dendritik hem de aksonal çardakların mükemmel bir şekilde geri kazanımını elde etmek için optimize edilmiştir ve yüksek kaliteli rekonstrüksiyonlara olanak sağlar. Elektrofizyolojik kaydın sonunda, kaydedilen hücreyi içeren dilimi küçük bir ACSF kabına aktarın.

Duman kaputunda çalışırken, dilimi ince kalitede filtre kağıdının küçük bir parçasının üzerine yuvarlayın ve dilimin üzerine başka bir nemlendirilmiş filtre kağıdı yerleştirin. Dokuyu 5 ila 10 mililitre fiksatif çözelti içeren küçük bir plastik tencereye yerleştirin ve bir gecede dört santigrat derecede saklayın. Ertesi gün, durulamak için 0.1 molar fosfat tampon iki mililitre ile bir kap için fiksatif çözelti ile konteyner doku aktarın ve bir neşter bıçak ile herhangi bir fazla doku kesip.

Bir Petri kabına dilim yerleştirerek fazla doku çıkarın ve bir neşter bıçak ile aşırı doku kesip. Kesilmiş dokuyu temiz bir Petri kabına aktarın ve kıvrımveya kırışıklık olmadan düz olmasını sağlar. Kuru boya fırçası kullanarak fazla arabelleği çıkarın.

Sıcak jelatin çözeltisi ile doku kapağı ve hızlı bir şekilde çözelti soğutmak için dondurulmuş bir blok üzerine Petri çanak yerleştirin. Daha sonra jelatina ayar yemeğini 30-60 dakika boyunca 4 dereceye taşıyın. Bir duman kaputunda, jelatin gömülü doku içeren küçük, 1 X 1 santimetrelik bir blok kesmek için bir neşter bıçak kullanın.

Küçük bir spatula kullanarak bloğu kaldırın ve taze fiksatif çözeltiye dikkatlice aktarın. Dört santigrat derecede en az 30 dakika düzeltmek için izin verin. Bu ikinci fiksasyondan sonra jelatin bloğunu beş mililitre PB'de üç kez yıkayın.

Yıkadıktan sonra, bir kağıt mendil parçası kullanarak blok kuru. Sonra süper tutkal kullanarak bir vibratome kamyon üzerine, üst doku ile yönelik blok sopa için siyanoakrilat tutkal küçük bir miktar kullanın. Bir vibratom kullanarak 50 mikron kalınlığında dilim bölüm ve yüzde 10 sakaroz içeren bir cam şişe dikkatlice her bölümü yerleştirin.

Kesitsonra, dikkatlice şişeden bir bölüm almak ve bir Petri çanak kapağı içine düz yerleştirin. Sonra bölümün çevresindejelatin kaldırmak için taze bir neşter bıçak kullanın. PB taze yüzde 10 sakaroz 2 mililitre içeren bir şişe içine bölümleri yerleştirin ve kriyokoruma işlemine başlamak için 10 dakika boyunca çalkalayın.

Kriyokorumayı takiben, bölümleri boya fırçası kullanarak küçük bir alüminyum folyo dikdörtgeninüzerine düz bir şekilde yerleştirin. Bölümlerden herhangi bir fazla sıvı çıkarın ve dikkatle bir paket içine folyo katlayın. Alüminyum folyoyu 30 saniye boyunca yüzeye dokunmadan sıvı nitrojen yüzeyine yakın tutun.

Ve sonra bölümlerin yaklaşık 30 saniye boyunca tamamen erimesine izin verin. Dondurma yı tekrarlayın, iki kez daha çözülün. Bir fırça ile folyo tüm bölümleri çıkarın ve sürekli ajitasyon altında aşırı sakaroz yıkamak için PB iki mililitre içeren bir cam şişe içine yerleştirin.

Floresan görüntüleme için immünboyama sonra, PBS içeren bir cam Petri kabıiçine slayt yerleştirin ve dikkatlice kapak kayma kaldırın. Daha sonra pasteur pipetinden pbs'nin yumuşak darbelerini kullanarak slayttaki bölümleri yıkayın. Bölümleri PBS içeren temiz bir cam şişeye yerleştirin.

HrP reaksiyon ürünyükseltmek için en az iki saat, Avidin biotin kompleksi veya ABC bölümleri kuluçka ile Avidin HRP reaksiyonu gerçekleştirin. Daha sonra, 10 dakika pbs ile 3 kez bölümleri yıkayın ve sonra 10 dakika boyunca iki kez tris tampon ile. Son tris tampon yıkama çıkardıktan sonra, hızlı diaminobenzidin çözeltisi veya DAB çözeltisi için yüzde sekiz nikel klorür çözeltisi bir damla ekleyin.

Daha sonra çözeltiyi karıştırıp karıştırın ve bu çözeltinin bir mililitresini bölümlerin üzerine hızla ekleyin. Bu çözeltideki bölümleri 15 dakika kuluçkaya yatırın. Sonra DAB çözeltisine yüzde 1 hidrojen peroksit 10 mikrolitre ekleyin.

Hücreler etiketlenene kadar reaksiyonun karanlıkta sürekli ajitasyon altında yaklaşık bir ila iki dakika devam etmesine izin verin. Bir duman başlık içinde, bir Petri kabına filtre kağıt küçük bir daire yerleştirin ve PB ile nemle. Bir boya fırçası kullanarak cam şişeden bölümleri birer birer kaldırın ve dikkatlice kağıt üzerinde düz yerleştirin. Bölümleri başka bir nemlendirilmiş filtre kağıdı çemberi ile kapatın ve kağıt mendil kağıdını yüzeye hafifçe dokunarak fazla tamponu çıkarın.

Üst kağıda PB'deki %1 osmiyum tetroksitin sekiz veya dokuz damlasını uygulayın. Çanak kapak ve en az 30 dakika boyunca duman kaputunda tutmak, ama en fazla 1 saat. Durulama, montaj ve bölümleri kapladıktan sonra, yüzde 50, yüzde 70, yüzde 95 ve yüzde 100 alkol çözeltileri bir dizi ile dehydrate.

Dehidratasyon adımını takiben, bölümleri yaklaşık beş dakika boyunca bir çalkalayıcıüzerinde yüzde 100 etanol içeren cam bir şişeye aktarın. Propilen oksit ile alkol çözeltisi değiştirin ve beş dakika boyunca üç kez yıkayın. Son yıkamadan sonra, şişede propilen oksit yaklaşık iki mililitre tutun ve 1:1 oranında reçin ekleyin.

Resenin eridiğinden emin olun ve bölümleri 30 dakika boyunca sürekli ajitasyon altında tutun. 30 dakika sonra, epoksi reçine içeren alüminyum bir planchette her bölümü yerleştirmek için ahşap bir sopa kullanın, ve gece kuluçka. Ertesi gün, yaklaşık 10 dakika sıcak bir plaka üzerine planchette yerleştirin.

Sonra ahşap bir sopa ile her bölümü almak ve temiz bir slayt üzerinde yer. Tüm bölümler slayta aktarıldıktan sonra, dilimlerin yönünü kontrol etmek için slaytı bir kesme mikroskobu altında görüntüleyin ve bölümlerin üzerine bir kapak kayması yerleştirin. 56 santigrat derecede 48 saat fırında kür.

Hücre gövdesini içeren ev bölümüne odaklanmak için düşük büyütme hedefi kullanın. Sonra 100x hedefi kullanın, hücre gövdesine odaklanın ve başvuru noktasını işaretlemek için merkeze tıklayın. 100x hedefini kullanarak soma'yı 3B olarak izlemek için izleme sekmesinden kontur seçin ve hücre gövdesi konturunu seçin.

Odak hücre vücudunun en üstüne taşımak için joystick kullanın. Şu anda odaklanmış olan parçanın çevresini tıklatarak noktaları yerleştirin. Bu ilk anahattı bitirmek için sağ tıklatın ve yakın kontur seçin.

Hücre gövdesinin altına ulaşılınceye kadar bu işlemi farklı z pozisyonlarında tekrarlayın. Dendritik arbor izlemek için, nöron menüsünde, dendrit veya apikal dendrit seçin. İlk olarak, imlecin çapını denditin çapına uyacak şekilde ayarlamak için fare kaydırma tekerleğini kullanarak her dendrite için kısa bir başlangıç segmenti iz.

Her dendrite boyunca iz. Ağaçtaki bir düğüme ulaşıldığında, açılan menüden bifurcating düğümü veya trifurcating düğümü sağ tıklatın ve seçin. Tamamlanan bölümle eşleşen bir bölümdeki dendritler arasındaki eşleşen noktaları belirlemek için, hareket sekmesine tıklayın ve maç noktalarını seçin.

Eşleşmesi gereken puan sayısını seçin ve ardından Tamam'a basın. Tamamlanan bir dalışun sonuna tıklayın ve ardından dala tıklayın. Bunu her maç noktası için tekrarlayın. Her bölümün tüm dendritleri izlendikten sonra, burada gösterilen aynı işlemi kullanarak akson izini bir çizim tüpü kullanarak sınırlı dendritik ve aksonal arbor ile bir CA2 sepet hücre nin rekonstrüksiyonudur.

Dendritler siyah, akson kırmızı. Bu burada açıklanan Avidin HRP protokolü aşağıdaki biocytin dolu sepet hücre örnek bir görüntüdür. Burada gösterilen CA2 sepet hücresinin bir 3D nöronal rekonstrüksiyon bir video.

Dendritler koyu pembe, akson ise beyaz. Son olarak, bu resim CA2 sepet hücresinin bir dendrogramını gösterir. Bu protokolle yeterli olmak zaman alacaktır.

Ancak, bu optimize yaklaşım karmaşık kortikal ve hipokampal yapıların yüksek çözünürlüklü görüntüleri in-vitro oluşturabilirsiniz.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Neuroscience sayı: 141 immünhistokimya ayirt protokolü HRP protokolü nöronal rekonstrüksiyonu Neurolucida Camera Lucida nöronal anatomi dendrites akson

Related Videos

Sıçan hipokampal bölümünde internöronların immün boyanması

02:36

Sıçan hipokampal bölümünde internöronların immün boyanması

Related Videos

436 Views

Görselleştirme için sıçan hipokampal dilimlerinde biyositin dolu internöronların etiketlenmesi

05:06

Görselleştirme için sıçan hipokampal dilimlerinde biyositin dolu internöronların etiketlenmesi

Related Videos

448 Views

Juxtasomal Biocytin Etiketleme Bireysel Kortikal nöronlar yapı-fonksiyon ilişkisi Çalışması için

10:36

Juxtasomal Biocytin Etiketleme Bireysel Kortikal nöronlar yapı-fonksiyon ilişkisi Çalışması için

Related Videos

14K Views

Morphologically- ve nörokimyasal tanımlanan hipokampal internöronlardan gelen tüm hücre Patch-kelepçe Kayıtlar

14:37

Morphologically- ve nörokimyasal tanımlanan hipokampal internöronlardan gelen tüm hücre Patch-kelepçe Kayıtlar

Related Videos

25.2K Views

Ultra Düşük Yoğunluk için Basitleştirilmiş Bir Yöntem, Uzun Vadeli İlköğretim Hipokampal Nöron Kültürü

11:19

Ultra Düşük Yoğunluk için Basitleştirilmiş Bir Yöntem, Uzun Vadeli İlköğretim Hipokampal Nöron Kültürü

Related Videos

16.6K Views

Nörokimyasal markerleri Biocytin dolu ve İşlenmiş Bölümler immün

08:54

Nörokimyasal markerleri Biocytin dolu ve İşlenmiş Bölümler immün

Related Videos

23.9K Views

Nöronal Dendrites beyin dilimleri içinde iki fotonlu kalsiyum görüntüleme

10:35

Nöronal Dendrites beyin dilimleri içinde iki fotonlu kalsiyum görüntüleme

Related Videos

11.5K Views

Retinogeniculate ve Kortikogeniculate SYNAPSE fonksiyonunun elektrofizyolojik Incelemeleri

09:09

Retinogeniculate ve Kortikogeniculate SYNAPSE fonksiyonunun elektrofizyolojik Incelemeleri

Related Videos

6.5K Views

Yetişkin Farelerin Dentat Girusunda Tüm Hücre Kaydı ve Nöronal Rekonstrüksiyon için Dorsal Hipokampustan Akut Dilimlerin Hazırlanması

10:45

Yetişkin Farelerin Dentat Girusunda Tüm Hücre Kaydı ve Nöronal Rekonstrüksiyon için Dorsal Hipokampustan Akut Dilimlerin Hazırlanması

Related Videos

8.4K Views

Eski Vivo Medial Prefrontal Korteksten Lateral Entorinal Kortekse Uzun Menzilli Sinaptik İletim ve Plastisitenin Optogenetik Sorgulanması

11:31

Eski Vivo Medial Prefrontal Korteksten Lateral Entorinal Kortekse Uzun Menzilli Sinaptik İletim ve Plastisitenin Optogenetik Sorgulanması

Related Videos

2.8K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code