-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Yalıtım ve kültür embriyonik fare nöral kök hücrelerin
Yalıtım ve kültür embriyonik fare nöral kök hücrelerin
JoVE Journal
Neuroscience
Author Produced
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Isolation and Culture of Embryonic Mouse Neural Stem Cells

Yalıtım ve kültür embriyonik fare nöral kök hücrelerin

Full Text
19,063 Views
09:04 min
November 11, 2018

DOI: 10.3791/58874-v

Farshad Homayouni Moghadam1, Maryam Sadeghi-Zadeh1,3, Bahareh Alizadeh-Shoorjestan1,3, Reza Dehghani-Varnamkhasti1,3, Sepideh Narimani1,2, Leila Darabi1,3, Abbas Kiani Esfahani1, Mohammad Hossein Nasr Esfahani1

1Department of Cellular Biotechnology, Cell Science Research Center, Royan Institute for Biotechnology,ACECR, 2Department of Biology, Faculty of Basic Sciences,Islamic Azad University, 3Department of Biology,ACECR Institute of Higher Education

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study introduces a novel microsurgical technique for isolating neural stem cells from the ganglionic eminence of E 13 mouse embryos. The aim is to provide a reliable and efficient protocol for the extraction and culture of these cells, which are essential for understanding neural development and stem cell biology.

Key Study Components

Area of Science

  • Cellular and Molecular Biology
  • Neuroscience
  • Stem Cell Research

Background

  • Neural stem cells play a critical role in brain development.
  • The ganglionic eminence is a key region for neurogenesis.
  • Current methods for isolating these cells can be cumbersome and inefficient.
  • This technique aims to streamline the process and improve cell yield.

Purpose of Study

  • To establish a reliable method for the isolation of neural stem cells.
  • To enhance the understanding of neurogenesis in early embryos.
  • To provide a protocol that can be utilized in various research settings.

Methods Used

  • The technique involves microsurgical dissection of E 13 mouse embryos.
  • It includes specific steps for tissue dissociation and cell plating in culture.
  • Important steps include the use of HEPES MEM buffer and careful microsurgery for brain extraction.
  • Results are obtained after culturing the cells, allowing for the observation of neurosphere formation.

Main Results

  • The protocol successfully yields a high percentage of viable neural stem cells.
  • Neurospheres form within 3 days, indicating successful stem cell proliferation.
  • Flow cytometry reveals that approximately 95% of cells are Nestin positive, confirming their identity as neural stem cells.
  • Cells show differentiation potential, with 94% exhibiting neuronal characteristics after further culture.

Conclusions

  • This study demonstrates a practical approach to isolate neural stem cells from mouse embryos.
  • The method lays the groundwork for future research into neural development and disease models.
  • It has potential implications for stem cell therapy and regenerative medicine.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of the microsurgical technique?
This technique is efficient, provides high yields of viable neural stem cells, and streamlines the isolation process compared to traditional methods.
How are the embryos harvested for the protocol?
Embryos are harvested from the uterus and subjected to micro-dissection to isolate the ganglionic eminence for neural stem cell extraction.
What types of cells are generated through this method?
The method primarily yields neural stem cells, which can differentiate into neurons and glia under appropriate culture conditions.
How can this technique be applied in research?
The isolated neural stem cells can be used for studies on neurogenesis, drug screening, and regenerative therapies, contributing to a better understanding of neural development.
What critical steps are involved in the protocol?
Key steps include careful microsurgery, tissue dissociation in neural media, and cell culture for observing neurosphere formation.
Are there any limitations to this method?
The technique requires precision in microsurgery and may necessitate advanced skills, which could limit accessibility to some researchers.

Burada, E13 fare embriyo ganglionic itibar bir roman mikrocerrahi teknik nöral kök hücrelerin izolasyonu için tanıtmak.

Bu video protokolünün amacı Embriyonik Fare Nöral Kök Hücre İzolasyon ve Kültür için bir kaynak ve verimli bir protokol oluşturmaktır. Merhaba, ben Meryem Sadeghi-Zadeh. Royan Enstitüsü'nde Hücresel ve Moleküler Biyoloji yüksek lisans öğrencisiyim.

Bugün ben ve meslektaşım size 13 embriyo fare ganglionik itibar dan nöral kök hücre hasat nasıl göstermek istiyorum. Merhaba, ben Bahareh Alizadeh-Shoorjestan. Royan Biyoteknoloji Enstitüsü Kök Hücre Bölümü'nde Hücresel ve Moleküler Biyoloji yüksek lisans öğrencisiyim.

Merhaba, ben Rıza Dehghani-Varnamkhasti. Ayrıca Royan Enstitüsü'nde Hücresel ve Moleküler Biyoloji okuyorum. Cerrahi işlemler rahim her 13 fare embriyoları hasat içerir.

Kafatasından beyni çıkaran bükülmüş bir iğne ucuyla embriyonun fontanel'inin ön ünü kesmek. Ganglionik saygınlığı toplamak için izole beynin mikro-diseksiyonu. Tek bir hücre süspansiyonu elde etmek için nöral kök hücre orta hasat doku dissociation.

Ve son olarak, sinir hücreleri oluşturmak için bir süspansiyon kültürü nde hücreleri kaplama. Temiz ve dezenfektan karın bölgesinin cilt% 70 etanol ile püskürterek. Kontrol deri yukarı karın ve daha sonra karın boşluğu ve rahim boynuzları ortaya çıkarmak için makas ile deri ve altı çizili yüz kesti.

Makas ile embriyoiçeren rahim boynuzları çıkarın ve 25 ml soğuk HEPES MEM tampon içeren 50 ml konik tüp içine transfer. Konik tüpü laminal akış başlığının altına yerleştirin. Kaputun altındaki kapağı aç.

Rahim boynuzlarını tüpten dışarı getirin ve enkaz ve kanı ortadan kaldırmak için taze soğuk HEPES MEM tamponunun yeterli hacmiyle üç kez durulayın. Rahim dokusunu 7 ila 10 ml soğuk HEPES MEM tamponu içeren 10 cm'lik petri kabına aktarın. Rahim boynuzlarını ince makas kullanarak açın ve embriyoları 7 ila 10 ml soğuk HEPES MEM tamponu içeren yeni bir tabağa aktarın.

Şimdi mikro-diseksiyon işlemi için diseksiyon mikroskobu n altında embriyolar ile 10 cm çanak koyun. Bir şırınga iğnesinin ucunu çelik neşter bıçak sapına bastırarak bükün. Ucu 70 ila 90 derecelik bir açıyla bükülene kadar iğnenin ucunu bükün.

İğnenin ucundaki bükümü görmek için kesme mikroskobunun altındaki iğnenin ucunu kontrol edin. Doğal olarak embriyolar bu bir lateral konuma sahip. Konumlarını değiştirmeden, ince forceps ile embriyo nun boyun ve vücut düzenlenen ve daha sonra derin embriyo başının fontanel önüne iğne bükülmüş kısmını yerleştirin.

Orada küçük bir kanama ya da kan pıhtısı olurdu. Bükülmüş kısmı alına doğru şişkinlik içinde ve daha sonra başın arkasına doğru iken yüzeysel iğne ucu taşıyın. Deri ve kafatası ile kesmek için emin olun, ve altta yatan beyin zarar değil.

Beyin ortaya çıkarmak için yanal iğne ucu ile cilt itin. İğneyi derinin lateral tarafından beynin altındaki bölgeye deri den lateral tarafına kadar çerçevenin altına yerleştirin. Ve sonra bu kafa derisi nden beyin çıkararak onu parçalanmış kafatası ndan çıkması için iterek.

Ganglionik itibar açıkça medial ve lateral parçaları ile video gösterilir. Beyin bakım forsepskullanarak sabit tuttu ve sonra ganglionik itibar ortaya çıkarmak için her yarımkürenin korteksini kesmek için mikroskalsors kullanarak. Beyin düzenlenen ve nöral kök hücre medya içeren 15 ml santrifüj tüp içine diseksiyon ganglionik itibar yerleştirin.

Tüm beyin mikro-diseksiyon olana kadar bu işlemi tekrarlayın. Tek bir hücre süspansiyon almak için doku kırmak için 2 5 kez yukarı ve aşağı süspansiyon tüp ve pipet altına pipet ucu yerleştirerek kesilen ganglionik itibar kesilir. Süspansiyonu 110 g'da 5 dakika santrifüj edin.

Supernatant çıkarın ve EDTA% 0.05 tüp 1 ml hücreleri yeniden askıya. Hücre süspansiyonuna 37 derece lik bir süre 10 dakika kuluçkaya yat. Ve sonra tripsin aktivitesini durdurmak için soya tripsin inhibitörü eşdeğer bir hacim ekleyin.

Pipet, tripsinin tamamen inaktive edildiğinden emin olmak için hücre süspansiyonu yukarı ve aşağı. Hücre süspansiyonuna 110 g'da 5 dakika santrifüj edin. Supernatant çıkarın ve tam nöral kök hücre orta 1 ml hücreleri resuspend ve hücre sayısını saymak.

Nöral kök hücre orta hücreleri uygun boyutta doku kültürü şişesi içine plaka. 2T25 5 ml, T75'e 20 ml ve T175 şişelerine 40 ml aktarın. Nörosferler 3 gün sonra 37 santigrat derecede nemlendirilmiş bir kuluçka makinesinde %5 CO2 ile ortaya çıkar.

Kültür nörosferleri emmek için, 5 dakika boyunca 110 g santrifüj için santrifüj için askıya nörosferler ile orta transfer, ve sonra supernatant atın. 1 ml 0.05% tripsin EDTA ve inkübate 37 derece Santigrat 10 dakika. Sonra soyaben tyrpsin inhibitörü ve pipet kullanarak tripsin inaktive yavaşça yukarı ve aşağı onları tek hücre yapmak için nörosferler.

Hücre süspansiyonuna 110 g'da 5 dakika santrifüj edin. Supernatant atın ve nöral kök hücrelerin orta 1 ml hücreleri resuspend. Bu hücreler ileri deneyler için laminat ve tamamen kaplanmış yüzeyde bir sonraki adım kültür veya kültür için hazırdır.

Yedi gün sonra bir milyon birincil nöral kök hücre yetiştirerek hücre sayısı üç ila dört milyona çıkacaktır. Altı ila yedi gün sonra küreler çapı 150 ila 200 mikrometre arasında ölçmek gerekir ve nöronal farklılaşma için bFGF ve EGF yokluğunda laminat poli ornitin kaplı yemekler alt kültür için hazır olacaktır. Akış sitometri tahdit sonuçları, nörosferleri oluşturan hücrelerin %95'ine yakınının nöral kök hücreler için bilinen bir belirteç olan Nestin pozitif olduğunu göstermektedir.

Beta tubulin III ve ganglio fibröz protein antikorları kullanılarak yapılan tahliller, kaplamalı yüzeyde nöral kök hücrelerin %94 civarında işitilmesi yle nöronal fenotip ve yaklaşık %5'inin glial fenotip gösterdiğini ortaya koymaktadır. Sadece bu kısa video 13 fare embriyo ganglionik saygınlık nöral kök hücrenin hızlı izolasyon için bir laboratuvar tekniği. Umarım nöral kök hücre kültüründe başarılı olursun.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Neuroscience sayı: 141 nöral kök hücre yalıtım nöron Ganglionic Hazretleri fare embriyo

Related Videos

Fare Nöral Kök Hücre Öncüleri Kültür

27:44

Fare Nöral Kök Hücre Öncüleri Kültür

Related Videos

20.5K Views

Neurosphere Testi kullanarak Embriyonik Fare Nöral Kök Hücre Kültürü oluşturulması

11:54

Neurosphere Testi kullanarak Embriyonik Fare Nöral Kök Hücre Kültürü oluşturulması

Related Videos

25.4K Views

Fare Embriyonik motor nöronlar lektin tabanlı İzolasyon ve Kültür

09:25

Fare Embriyonik motor nöronlar lektin tabanlı İzolasyon ve Kültür

Related Videos

18.5K Views

Embriyonik Mürin Nöral Tüp çıkan sinirsel Crest Hücre İzolasyonu ve Kültür

12:48

Embriyonik Mürin Nöral Tüp çıkan sinirsel Crest Hücre İzolasyonu ve Kültür

Related Videos

17.9K Views

Fare Subkallozal Bölgesinden Erişkin Nöral Kök Hücrelerin İzolasyonu ve Kültürlenmesi

05:31

Fare Subkallozal Bölgesinden Erişkin Nöral Kök Hücrelerin İzolasyonu ve Kültürlenmesi

Related Videos

519 Views

Fare Embriyonik Kök Hücrelerinden Nöral Progenitör Hücreler Üretmek İçin Bir Teknik

02:22

Fare Embriyonik Kök Hücrelerinden Nöral Progenitör Hücreler Üretmek İçin Bir Teknik

Related Videos

611 Views

Doğum Sonrası Fare Beyinciğinden Kök Hücrelerin İzolasyonu ve Nöral Hücrelere Farklılaşması

04:04

Doğum Sonrası Fare Beyinciğinden Kök Hücrelerin İzolasyonu ve Nöral Hücrelere Farklılaşması

Related Videos

416 Views

Bir Fare, İki Kültür: İzolasyon ve Yetişkin Nöral Kültür Bireysel Farelerde iki Nörojenik Bölgeler'den Kök Hücre

09:52

Bir Fare, İki Kültür: İzolasyon ve Yetişkin Nöral Kültür Bireysel Farelerde iki Nörojenik Bölgeler'den Kök Hücre

Related Videos

39.1K Views

Serum serbest Tek tabakalı Kültüründe Fare Embriyonik Kök Hücre Sinir Farklılaşma

06:09

Serum serbest Tek tabakalı Kültüründe Fare Embriyonik Kök Hücre Sinir Farklılaşma

Related Videos

14.5K Views

Fare Subcallosal Zone İzolasyon ve Yetişkin Nöral Kök Hücre Kültürü

09:24

Fare Subcallosal Zone İzolasyon ve Yetişkin Nöral Kök Hücre Kültürü

Related Videos

15.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code