Name: ATAÇ-seq tahlil birincil insan CD4 + T lenfositleri kirlenme düşük mitokondrial DNA ile (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-03-22T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 36 s
Description: Öğrenin, aktive insan CD4+ T lenfositlerinde ATAC-seq için geliştirilmiş lizis tamponu kullanarak mitokondriyal DNA kirliliğini %50'den %3'e düşürme yöntemini. Bu protokol dizileme maliyetlerini yarıya indirir ve çeşitli hücre tiplerinde yüksek kaliteli kromatin erişilebilirlik verileri sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Atsede Siba teknik destek için teşekkür ederiz. C.S.C. NIH grant 1R61DA047032 tarafından desteklenir.

Bu geliştirilmiş iletişim kuralı veri analizi (şekil 1) ile tam kan başlangıç malzemesinden ataç-seq CD4 + lenfosit, gerçekleştirmek için adım adım yönergeler sağlar.
1. yalıtım CD4 + T hücre tam kan
Not: Başlangıç bu iletişim kuralı için seçilecek başlangıç materyali kaynağıdır araştırma gereksinimleri temel alarak izin veren standart prosedürler kullanarak toplanan taze tam kan 15 mL malzemedir. Protokol gerektiği şekilde ölçeklendirin. Önceden sıcak fosfat tamponlu tuz (PBS) + %2 fetal buzağı serum (FCS) oda sıcaklığında (RT) için ve CD4 + T hücre zenginleştirme yordamına başlamadan önce santrifüj RT için ayarlayın.
<ol><li>Tam kan 50 mL konik tüp içinde 15 mL 750 µL insan CD4 + T hücre kendilerini zenginleştirmek kokteyl ekleyin ve karışımı yavaşça INVERSION tarafından. RT 20 dk için kuluçkaya. Kuluçka tamamlandığında, PBS + % 2 FCS 15 mL tüp ekleyin ve karışımı yavaşça INVERSION tarafından.</li>
	<li>Yoğunluk orta 15 mL ile taze 50 mL konik tüp hazırlayın. Dikkatle seyreltilmiş kan örneği oluşturur yoğunluk orta/kan arabirimi bozmaya değil emin olmak yoğunluk orta üst üzerine katman. Santrifüj, 1200 x g ve RT küme 1 ve azalan fren OFF ivme ile 20 dk için. Not: Bu ivme 1 ve fren kapalı hücre katmanı yoğunluk orta bozulma önlemek için santrifüj azalan şekilde ayarlamak için önemlidir.</li>
	<li>Zenginleştirilmiş CD4 + T hücreleri dar kök transfer pipet kullanarak yoğunluk orta/plazma arabiriminden toplamak. Kendine hakim hücre taze 50 mL konik tüp aktarın. Kendine hakim CD4 + T hücre 423 x g ve RT., 8 dk santrifüj kapasitesi Not: Adım 1.3 ve tüm aşağıdaki adımları için on 9 ve azalan fren santrifüj ivme dönmek emin olun.</li>
	<li>Süpernatant atmak ve hücre Pelet iki kez PBS + % 2 FCS 50 mL ile yıkayın, 8 dk 423 x g ve RT. atmak için son süpernatant centrifuging yıkama ve yıkanmış hücre Pelet 2 mL PBS + % 2 FCS askıya alma.</li>
	<li>Bir hemasitometre kullanarak hücreleri saymak. ATAÇ-seq ile devam etmek için 2,3 adıma geçin. Daha sonra işlenmek için hücreleri dondurmak için 1,6 adım geçin.</li>
	<li>1 mL taze dondurma orta (% 90 FCS + % 10 Dimetil sülfoksit) 1 milyon hücre başına ekleyin. Kriyojenik güvenli tüpler ortamda dondurma hücrelerinin aliquot 1 mL. Tüpler-80 ° C'de gecede yavaş dondurma konteyner yerleştirin. Ertesi gün, uzun süreli depolama için sıvı nitrojen tüpleri aktarın. Not: 1 milyon CD4 + T hücre orijinal tam kan hacmi 2 mL izole olacak. 1 mL aliquots dondurucu orta 500.000 hücrelerde dondur. Taze dondurma orta her kullanımı olun.</li>
</ol>2. etkinleştirmek ve CD4 + T hücreleri arındırmak
Not: Etkinleştirmek ve CD4 + T hücreleri sadece arındırıcı hızlı bu protokolü 48 h ve sonuçları % 95 uygun, CD4 + T hücreleri aktive gerektirir. 4 ° c santrifüj protokol başlamadan önce serin.
<ol><li>Buz sadece erimiş kadar 1 flakon (500.000) CD4 + T hücre 37 ° C su banyosu içinde çözülme. Yavaşça 15 mL konik tüp 9 mL % 10 FCS, bundan sonra tam RPMI anılacaktır ile takıma Önceden ısıtılmış Roswell Park Memorial Enstitüsü-1640 (RPMI-1640) medya içeren hücreleri aktarın. Not: hücreleri tamamen DMSO maruz önlemek için çözülme izin vermeyin.</li>
	<li>1500 x g ve 4 ° c, 6 dk santrifüj Süpernatant atın ve yavaşça Pelet komple RPMI 2 mL askıya alma. Spin aşağı tekrar süpernatant atın ve yavaşça tam RPMI 0.5 mL hücrelerde askıya alma.</li>
	<li>Bir hemasitometre kullanarak hücreleri saymak. Tam RPMI bir 96-şey yuvarlak alt plaka kuyu başına 200 µL 50.000 hücreleri plaka ile hücre süspansiyon yoğunluğunu ayarlayın. Not: 500 K CD4 + T hücreleri, plaka 10 wells bir şey başına 200 µL 50.000 CD4 + T hücre bir donmuş tüp sizden.</li>
	<li>
Manyetik boncuklar insan T-harekete geçirmek anti-CD3 ve anti-CD28 antikorları ile Birleşik hazırlayın.
	<ol>
<li>Aliquot 12.5 µL insan T-harekete geçirmek CD3/CD28 boncuk ataç-seq örnek bir 1,5 mL tüp için başına. Boncuk 1 mL 1 x PBS ile yıkama ve 1 dk. için bir mıknatıs tüp yerleştirin.</li>
		<li>Dikkatle kaldırmak ve açık süpernatant atmak, tüp mıknatıs kaldır ve boncuk 13'te askıya µL tamamlamak RPMI ataç-seq örnek. Not: işlenmekte olan ataç-seq örnekleri sayısına göre boncuk gerekli miktarını hesaplamak. Bu iletişim kuralı bir ataç-seq örnek oluşturan 12.5 µL CD3/CD28 boncuk 500.000 hücreleri, ücret gerektirir.</li>
	</ol>
</li>
	<li>CD4 + T hücreleri aktif hale getirin. 15 mL konik tüp içinde tam RPMI orta 2.1 ml 500.000 hücreleri toplamak ve 12.5 µL önceden yıkanmış insan T-harekete geçirmek boncuk ekleyin. Karışımı yavaşça tüp ters çevirme.</li>
	<li>Yavaşça boncuk hücrelerle boncuk yuvarlak alt 96-şey plaka bir çok kanallı pipet kullanarak kuyu başı içeren hücrelerin steril bir rezervuar ve plaka 200 µL aktarın. 48 h bir 37 ° C'de % 5 CO2 kuluçka için kuluçkaya.</li>
	<li>Kuluçka sonrası, 96-şey plaka 423 x g ve RT. kaldırmak 100 µL orta bir konik tüp boncuk kaybı olmaz emin olmak için atılmadan önce toplama 96-şey plaka kuyudan başı itibariyle 8 dk santrifüj kapasitesi. Hücre Pelet kalan 100 µL resuspend ve her bir 1,5 mL tüp içinde toplamak. Not: aktive T hücrelerinin 10 kuyu 1 mL hacminde toplanacaktır.</li>
	<li>CD4 + yalıtım gerçekleştirin. Önceden yıkanmış Birleşik CD4 boncuk 50 µL tam RPMI 1 ml 500.000 hücreleri ekleyin. Boncuk ve hücreleri tarafından pipet birleştirir. Buzdolabında 4 ° C'de 20 dk için kuluçkaya. Boncuk ve hücre karışımı her 6 dk kışkırtmak. Not: 500.000 hücreleri bir örneği için kullanılan protokoldür. 500.000 iki veya daha fazla örnek için gerektiği şekilde ayarlayın.</li>
	<li>Kuluçka tamamlandığında, 2 dk. kaldırmak ve süpernatant temiz zaman atmak için tüp üzerinde mıknatıs yerleştirin. Boncuk bağlı hücreler tüp mıknatıs--dan kaldırma, PBS + % 2 FCS 1 mL boncuk bağlı hücrelerde askıya alma, 1 dk. için mıknatıs tüp değiştirme ve açık süpernatant atarak yıkayın. Toplam 3 yıkama için bu işlemi yineleyin. Not: Yıkama sırasında herhangi bir boncuk atmak değil dikkatli olun.</li>
	<li>Son yıkama sonra tüp 1 dk. Kaldır mıknatıs yerleştirin ve süpernatant atmak ve Pelet Buza koyun. Bölüm 3 (ataç-seq) devam etmek.</li>
</ol>3. ataç-seq
Not: Bu adımda, izole çekirdeği harekete geçirmek CD4 + T hücreleri için ataç-devamı. Bu protokol için lizis arabelleği daha verimli sindirim ve yüksek kaliteli sonuçlar ile sonuçlanan çekirdeklerin üzerindeki nazik olmak için geliştirilmiştir. Tüm Santrifüjü adımlar bölümünde 3 4 ° C'de tutulan bir sabit açılı santrifüj ile gerçekleştirilir Santrifüj Protokolü başlamadan önce serin.
<ol><li>Çekirdeklerin yalıtım gerçekleştirin. Boncuk ve soğuk lizis arabellek (10 mM Tris-HCl, pH 7.4, 10 mM NaCl, 3 mM MgCl2, % 0.03 polysorbate 20) içeren hücreleri resuspend. Hemen vasıl 500 x g 4 ° C'de 10 dakika santrifüj kapasitesi Kaldırmak ve süpernatant atın.</li>
	<li>Transposase reaksiyon gerçekleştirin. Tn5 transposase mix (Tablo 1) 50 µL ile izole çekirdeği Pelet askıya alma. Bir thermocycler 4 ° C'de tamamlandığında tutan bir 40 ° C kapaklı 37 ° C'de 30 dk için kuluçkaya.</li>
	<li>Thermocycling sonra hemen aşağı hızlı benchtop santrifüj spin gerçekleştirmek ve tüp boncuk ürün kaldırmak 1 dk için mıknatıs yerleştirin.</li>
	<li>Açık süpernatant tüp sizden bir DNA arıtma sütun üzerinde mıknatıs aktarın. Sütun bir arabellek PE 750 µL iki kez ve bir kez arabellek PB 250 µL ile yıkayın. 10 µL elüsyon arabelleği örnekte elute. Doğrudan 3.5 adıma geçin. Not: Bu adım burada ataç-seq kitaplık olarak adlandırılan ve birleştirilmiş adaptörler ile DNA parçalarının güçlendirir. Bir NGS lane üzerinde çalışmak üzere birkaç ataç-seq kitaplıkları multiplex için tüm örnekleri ve bireysel örnekleri (Tablo 2) için farklı bir dizin oluşturulmuş astar 2 Sıralanmayan astar 1 kullanın. Astar 1,25 µM konsantrasyonları çalışma konusunda kullanılır.</li>
	<li>İlk PCR güçlendirme tepki nükleaz ücretsiz PCR tüp, düzen ve belirtilen birim parçaları birleştirme içinde kurmak Tablo 3. PCR tüp thermocycler yerleştirin ve Tablo 4belirtildiği gibi Bisiklete binme koşullarla PCR güçlendirme programı çalıştırmak.</li>
	<li>
Reaksiyon qPCR tarafından izlemek. QPCR reaksiyon nükleaz ücretsiz PCR tüp, düzen ve tablo 5'te belirtilen tutarı parçaları birleştirme içinde ayarlayın. QPCR makine ve döngüsü içinde belirtilen tablo 6 olarak yer.
	<ol>
<li>Ek amplifikasyon en uygun sayısı için kalan 45 µL tepki döngüleri belirlemek için x ekseni ve y ekseni üzerinde göreli floresan (RFU) üzerinde döngü numarası ile bir çizim oluşturma. Ek amplifikasyon döngüleri en uygun sayısı üçte biri Yaylası ulaşmak qPCR reaksiyon için alır devir sayısıdır. Not: tepki qPCR tarafından izlenmesi en iyi kütüphane parçası amplifikasyon GC içerik ve boyutu önyargı en aza indirirken elde etmek için istenen PCR döngüleri en uygun sayısı tespiti için izin verir.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Kalan 45 µL PCR reaksiyon son PCR amplifikasyon tamamlayın. PCR tüp amplifikasyon tepki adım 3.5 ile thermocycler geri yerleştirin ve Tablo 7' de açıklandığı gibi çalıştırın. Not: Bu protokol için açıklandığı gibi işlenmiş örnekler için PCR güçlendirme döngüleri en iyi toplam sayısını 12 olduğu tespit edilmiştir.</li>
	<li>Yükseltme tamamlandıktan sonra elüsyon arabellek 25 µL içinde eluting üreticinin protokolüne bir PCR Temizleme kiti kullanma kitaplıkları arındırmak. Not: Güçlendirilmiş kitaplıkları en fazla 48 saat için 4 ° C'de depolanan veya uzun süreli depolama için-20 ° C arasında dondurulup.</li>
</ol>4. ataç-seq Kütüphane kalitesi analizi
Not: Kalite ve miktar gelecek nesil sıralama önce ataç-seq kütüphanelerin doğrulanması önemlidir. Kalite ve miktar kütüphanelerin piyasada kitleri ( Tablo malzemelerigörmek) kullanarak değerlendirilmesi.
<ol><li>Boyutlandırma, miktar ve kalite kontrol DNA'ın havacilik tabanlı platformu kullanarak ataç-seq kütüphanelerin miktar ve kalitesini değerlendirmek. Temsilci kalite değerlendirme sonuçları için bkz: Şekil 2 . Not: ATAÇ-seq kütüphanelerin konsantrasyon olması gerekir > 1 ng/µL kalite sıralama sonuçları elde etmek için. Ortalama, 30 nM içinde 25 µL elde.</li>
</ol>5. sıralama ve veri analizi
Not: Bu analiz boru hattı yordamı eşleme okuma kalite kontrol, deneysel tasarım koordinatlarını ayarlamak ve tepeler aşağı akım analizi için çağrı kullanıcılara izin verir. Aşağıdaki komut satırlarını ve yürütme açıklaması vardır. Veri çözümleme paketi (https://github.com/s18692001/bulk_ATAC_seq) kullanılabilir.
<ol><li>Bir sonraki nesil sequencer 42 milyon okuma örnek başına ortalama okuma derinliği için hazırlanan arşivini sıra.</li>
	<li>Sıralama okuma kalitesini komutunu kullanarak FastQC12 yazılım paketi tarafından oluşturulan dosyaları kontrol ederek tahmin: fastqc -o < output_directory >< fastq_file ></li>
	<li>Okuma üsleri Trimmomatic13 yazılımların gerekirse, istimal belgili tanımlık buyurmak FastQC kalite kontrol tarafından belirlenen döşeme (için çift uçlu): Java-jar trimmomatic jar dosyasına < yol > PE < input1 >< input2 >< eşleştirilmiş output1 >< unpaired output1 >< eşleştirilmiş output2 >< unpaired output2 > HEADCROP: < kırpma üsleri ></li>
	<li>Okuyan insan başvuru genom (hg38) Bowtie214 yazılımların Hizala: bowtie2 - x < genom referans > < giriş çift 1 >< -1 giriş çift 2 > -S < çıktı SAM dosyası > Not: Bağımsız değişken - x dizini için başvuru genom basename için ve -S için SAM biçimi çıktı.</li>
	<li>Thequality Samtools15 flagstat paketi kullanarak eşlenen okur kontrol edin: samtools flagstat < BAM Dosya ></li>
	<li>Eşlenen okuma dosya sıralamak ve Picard16 aracını kullanarak Yinelenenleri kaldırmak: Java-picard.jar SortSam giriş kavanoz = < giriş SAM dosya adı > çıkış = < sıralı çıktı BAM dosya adı > SORT_ORDER koordinat = "ve" java-picard.jar MarkDuplicates giriş kavanoz = < sıralanmış BAM Dosya > çıkış = < çıkış BAM dosya yinelenen olmadan > REMOVE_DUPLICATES = TRUE</li>
	<li>Dizin BAM dosya, kullanılmayan kromozom okuma trim ve koordinatları ataç-seq17deneysel nedeni kayması: Java-jar picard.jar BuildBamIndex giriş < BAM Dosya > = samtools idxstats < giriş BAM Dosya > | -f 1 kesmek | GREP - v chrY | GREP - v chrM | GREP - v chrUn | xargs samtools göster -b < giriş BAM Dosya >>< çıkış kesilmiş BAM Dosya > bedtools bamtobed -i < giriş kesilmiş BAM Dosya >>< çıkış kesilmiş yatak Dosya > awk ' başlamak {OFS = "\t"}; {Eğer (6 $ == "+") $1, $2 + 4, $3 + 4, 4 $, 5 $, $6 Yazdır; baskı başka $1, $2-5, $3-5, 4 $, 5 $, $6}' < giriş kesilmiş yatak Dosya >< Trimmed kayar yatak Dosya ></li>
	<li>Negatif koordinasyon kaydırılacağı okuma silin: '{($2 > 0) $1 "\t" $2 "\t" 3 "\t" $4 "\t" 5 $ "\t" 6 $yazdırırsanız}' awk < giriş yatak Dosya >< çıkış negatif koordinasyon yatak Dosya >.</li>
	<li>BAM dosyasına aşağıdaki DiffBind18 analizi için yatak dosya dönüştürmek: bedtools bedtobam -i < giriş yatak Dosya > -g < başvuru genom >< çıkış BAM Dosya ></li>
	<li>Tepe arama gerçekleştirmek DiffBind18 yazılım paketi tarafından: macs2 callpeak -t < giriş BAM Dosya > -f BAM -g hs - nomodel--nolambda--tutmak-dup tüm--arama-zirve--outdir < çıktı dizin yolu > - n < çıktı adı > -B - q 0,01--bdg--üst karakter -100 - extsize 200 Not: Süzme sonra medyan örnek başına 37 milyon okuma bekliyoruz. Mitokondrial DNA kirlenme--dan %0.30 – %5,39 (%1,96 ortalama) aralığı olacaktır. Orada-ecek var olmak çarpma eşlenen okur (ortalama % 6.7-% 56, %19) oranı düşük ve nispeten yüksek oranda kullanılabilir nükleer (% 60-% 92, ortalama olarak % 79) okur.</li>
</ol>

<ol><li>Buenrostro, J. D., Giresi, P. G., Zaba, L. C., Chang, H. Y., Greenleaf, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transposition+of+native+chromatin+for+fast+and+sensitive+epigenomic+profiling+of+open+chromatin%2C+DNA-binding+proteins+and+nucleosome+position%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Transposition of native chromatin for fast and sensitive epigenomic profiling of open chromatin, DNA-binding proteins and nucleosome position.</a> Nature Methods. 10 (12), 1213-1218 (2013).</li>
<li>Buenrostro, J. D., Wu, B., Chang, H. Y., Greenleaf, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ATAC-seq%3A+A+Method+for+Assaying+Chromatin+Accessibility+Genome-Wide%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Protocols+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">ATAC-seq: A Method for Assaying Chromatin Accessibility Genome-Wide.</a> Current Protocols in Molecular Biology. 21, 1-29 (2015).</li>
<li>Song, L., Crawford, G. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNase-seq%3A+a+high-resolution+technique+for+mapping+active+gene+regulatory+elements+across+the+genome+from+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+Protocols%22%5BJournal%5D)">DNase-seq: a high-resolution technique for mapping active gene regulatory elements across the genome from mammalian cells.</a> Cold Spring Harbor Protocols. (2), (2010).</li>
<li>Pajoro, A., Muiño, J. M., Angenent, G. C., Kaufmann, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Profiling+Nucleosome+Occupancy+by+MNase-seq%3A+Experimental+Protocol+and+Computational+Analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Profiling Nucleosome Occupancy by MNase-seq: Experimental Protocol and Computational Analysis.</a> Methods in Molecular Biology. 1675, 167-181 (2018).</li>
<li>Giresi, P. G., Kim, J., McDaniell, R. M., Iyer, V. R., Lieb, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FAIRE+%28Formaldehyde-Assisted+Isolation+of+Regulatory+Elements%29+isolates+active+regulatory+elements+from+human+chromatin%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Research%22%5BJournal%5D)">FAIRE (Formaldehyde-Assisted Isolation of Regulatory Elements) isolates active regulatory elements from human chromatin.</a> Genome Research. 17 (6), 877-885 (2007).</li>
<li>Rosenberg, A. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-cell+profiling+of+the+developing+mouse+brain+and+spinal+cord+with+split-pool+barcoding%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Single-cell profiling of the developing mouse brain and spinal cord with split-pool barcoding.</a> Science. 360 (6385), 176-182 (2018).</li>
<li>Corces, M. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lineage-specific+and+single-cell+chromatin+accessibility+charts+human+hematopoiesis+and+leukemia+evolution%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Genetics%22%5BJournal%5D)">Lineage-specific and single-cell chromatin accessibility charts human hematopoiesis and leukemia evolution.</a> Nature Genetics. 48 (10), 1193-1203 (2016).</li>
<li>Lu, Z., Hofmeister, B. T., Vollmers, C., DuBois, R. M., Schmitz, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combining+ATAC-seq+with+nuclei+sorting+for+discovery+of+cis-regulatory+regions+in+plant+genomes%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Research%22%5BJournal%5D)">Combining ATAC-seq with nuclei sorting for discovery of cis-regulatory regions in plant genomes.</a> Nucleic Acids Research. 45 (6), e41(2017).</li>
<li>Lara-Astiaso, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chromatin+state+dynamics+during+blood+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Chromatin state dynamics during blood formation.</a> Science. 345 (6199), 943-949 (2014).</li>
<li>Gate, R. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+determinants+of+co-accessible+chromatin+regions+in+activated+T+cells+across+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Genetics%22%5BJournal%5D)">Genetic determinants of co-accessible chromatin regions in activated T cells across humans.</a> Nature Genetics. , (2018).</li>
<li>Sanjana, N. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-resolution+interrogation+of+functional+elements+in+the+noncoding+genome%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">High-resolution interrogation of functional elements in the noncoding genome.</a> Science. 353 (6307), 1545-1549 (2016).</li>
<li>Andrews, S. FastQC A Quality Control tool for High Throughput Sequence Data. Babraham Bioinformatics. , Available from:
 <a target="_blank" href="https://www.bioinformatics.babraham.ac.uk/projects/fastqc">https://www.bioinformatics.babraham.ac.uk/projects/fastqc</a> (2018).</li>
<li>Bolger, A. M., Lohse, M., Usadel, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trimmomatic%3A+a+flexible+trimmer+for+Illumina+sequence+data%5BTitle%5D)+AND+%22Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">Trimmomatic: a flexible trimmer for Illumina sequence data.</a> Bioinformatics. 30 (15), 2114-2120 (2014).</li>
<li>Langmead, B., Salzberg, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fast+gapped-read+alignment+with+Bowtie+2%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Fast gapped-read alignment with Bowtie 2.</a> Nature Methods. 9 (4), 357-359 (2012).</li>
<li>Li, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Sequence+Alignment%2FMap+format+and+SAMtools%5BTitle%5D)+AND+%22Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">The Sequence Alignment/Map format and SAMtools.</a> Bioinformatics. 25 (16), 2078-2079 (2009).</li>
<li>Broad Institute. Picard Tools. , Available from:
 <a target="_blank" href="http://broadinstitute.github.io/picard/">http://broadinstitute.github.io/picard/</a> (2018).</li>
<li>Quinlan, A. R., Hall, I. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((BEDTools%3A+a+flexible+suite+of+utilities+for+comparing+genomic+features%5BTitle%5D)+AND+%22Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">BEDTools: a flexible suite of utilities for comparing genomic features.</a> Bioinformatics. 26 (6), 841-842 (2010).</li>
<li>Stark, R., Brown, G. DiffBind: Differential Binding Analysis of ChIP-Seq Peak Data. , Available from:
 <a target="_blank" href="http://bioconductor.org/packages/devel/bioc/vignettes/DiffBind/inst/doc/DiffBind.pdf">http://bioconductor.org/packages/devel/bioc/vignettes/DiffBind/inst/doc/DiffBind.pdf</a> (2018).</li>
<li>Corces, M. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+ATAC-seq+protocol+reduces+background+and+enables+interrogation+of+frozen+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">An improved ATAC-seq protocol reduces background and enables interrogation of frozen tissues.</a> Nature Methods. 14 (10), 959-962 (2017).</li>
<li>Wu, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+landscape+of+accessible+chromatin+in+mammalian+preimplantation+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">The landscape of accessible chromatin in mammalian preimplantation embryos.</a> Nature. 534 (7609), 652-657 (2016).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Bu makalede sunulan değiştirilmiş ataç-seq protokolü en az mitokondrial DNA kirlenme ile tekrarlanabilir sonuçlar sağlar. Protokol başarıyla Kromatin mimari insan birincil PBMCs10, insan monosit, fare dendritik hücreler (yayınlanmamış) karakterize ve kültürlü melanoma hücre11hatları için kullanılmıştır. Biz bu geliştirilmiş lizis tahmin durumu diğer hücre türleri için de iş potansiyeline sahiptir. Ayrıca bu çekirdeklerin yalıtım iletişim kuralı tek çekirdek ataç-seq protoko...

Tahlil transposase erişilebilir Kromatin (ataç-seq) sıralama için hızla Kromatin mimari sorguya için önde gelen yöntem haline gelmiştir. ATAÇ-seq tagmentation, parçalanan ve DNA'ın hangi ile karşıdan karşıya tüm bir genom Kromatin erişilebilirlik sıralama belirleyebilirsiniz kitaplıkları üretmek için aynı enzim tarafından etiketleme işlemi boyunca erişilebilir Kromatin bölgeleri tanımlayabilirsiniz. Bu tagmentation işlem yalnızca Kromatin nucleosomic steric engel nedeniyle açık bölgelerinde keser hiperaktif Tn5 transposase tarafından aracılık ettiği. Bu kesim, Tn5 transposase da hızlı Kütüphane İnşaat tarafından PCR ve yeni nesil sıralama genom genelinde erişilebilir Kromatin1,2için izin sıralaması bağdaştırıcısı ekler.
ATAÇ-seq Kromatin erişilebilirlik nispeten basit ve hızlı iletişim kuralı, kalite ve onun sonuçları ve az miktarda malzeme gerekli başlangıç belirlenebilir bilgi yelpazesi nedeniyle bölgelerinde belirlemek için tercih edilen yöntem haline gelmiştir. (Hangi Ayrıca genom çapında Kromatin erişilebilirlik) Dnaz seq3 , MNase-seq4 (hangi açık genom nucleosome tüfekleriyle belirler) karşılaştırıldığında ve formaldehit aracılı FAIRE-seq5, ATAÇ-seq hızlıdır, daha ucuz ve daha tekrarlanabilir1. Dnaz seq3için gerekli 50 milyon çekirdeği göre 500 çekirdeği olarak az malzeme ile başlayan çalışma daha hassas da. ATAÇ-seq da transkripsiyon faktörü bağlama, nucleosome konumlandırma ve açık Kromatin bölgeleri1de dahil olmak üzere diğer yöntemlere göre Kromatin mimarisi hakkında daha fazla bilgi sağlama yeteneği vardır. Etkili, tek hücreli ataç-seq protokolleri doğrulandıktan, tek hücreli seviye6,7, Kromatin mimarisi hakkında bilgi sağlarsınız.
ATAÇ-seq Kromatin Mimarlık araştırma ve hücre türleri, bitkiler8, insanlar9ve birçok diğer organizmalar da dahil olmak üzere geniş bir spektrum üzerinde tanımlamak için kullanılmıştır. Ayrıca hastalık Birleşik7epigenetik Yönetmeliği teşhis etmek için kritik olmuştur. Ancak, en yaygın kullanılan ataç-seq Protokolü önemli dezavantajı kirlenme sıralama okunma mitokondrial DNA içerir. Bazı veri kümeleri bu kontaminasyon düzeyi olarak sıralama sonuçlar%160 yüksek olabilir. ATAÇ-seq7,10,11daha verimli kullanma için izin vermek için bu bulaşıcı mitokondrial okuma azaltmak üzere alana bir çaba olduğunu. Burada yaklaşık % 50 azalma sıralama maliyeti10dakika sonra izin mitokondrial DNA kirlenme oranı sadece % 3, azaltır geliştirilmiş bir ataç-seq Protokolü mevcut. Bu aerodinamik sürecin CD4 + lenfosit yalıtım ve harekete geçirmek ve mitokondriyal DNA kirlenme minimize kritik bir geliştirilmiş lizis arabellek mümkün olmaktadır.
Bu modifiedATAC-seq Protokolü Primer hücre, insan birincil periferik kan mononükleer hücreler (PBMCs)10, insan birincil monosit ve fare dendritik hücreler (yayınlanmamış) de dahil olmak üzere geniş bir doğrulandı. Bu da başarıyla melanoma hücre hatlarında kümelenmiş bir düzenli olarak interspaced kısa palindromik yineler (CRISPR) ekran öğeleri11kodlamayan sorguya çekmek için kullanılmıştır. Ayrıca, bu protokol için açıklanan ve GitHub üzerinde sağlanan veri çözümleme paketi ataç-seq verileri çözümlemek için yeni ve deneyimli araştırmacılar araçları sağlar. ATAÇ-seq Kromatin erişilebilirlik tüm bir genom eşlemek için en etkili tahlil olduğunu ve burada sunulan değişiklikler mevcut protokol için araştırmacılar yüksek kaliteli veri düşük mitokondrial DNA kirlenme ile üretmek için izin verir, sıralama maliyeti azaltır ve ataç-seq üretilen iş.

<table><tbody><tr><td>1x PBS, Steril</td><td>Gibco</td><td>10010023</td><td>Diğer karşılaştırılabilir ürünleri kullanabilir.</td></tr><tr><td>5810/5810&nbsp; 50 mL, 15 mL ve 1.5 mL Tüp Kovaları ile R Salıncak Kovalı Soğutmalı Santrifüj</td><td>Eppendorf</td><td>22625501</td><td>Diğer karşılaştırılabilir ürünleri kullanabilir.</td></tr><tr><td>96 Kuyu Yuvarlak Alt Plaka</td><td>Thermo Scientific</td><td>163320</td><td>Diğer karşılaştırılabilir ürünleri kullanabilir.</td></tr><tr><td>Agilent 4200 Teyp İstasyonu Sistemi</td><td>Agilent</td><td>G2991AA</td><td>Kalite değerlendirmesi için önerilmiştir.</td></tr><tr><td>Cryotubes</td><td>Thermo Scientific</td><td>374081</td><td>Diğer karşılaştırılabilir ürünleri kullanabilir.</td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma</td><td>D8418</td><td>Diğer karşılaştırılabilir ürünleri kullanabilir.</td></tr><tr><td>Dynabeads İnsan T-Aktivatör CD3 / CD28</td><td>Invitrogen Life Technologies</td><td>11131D</td><td>Kritik Bileşen</td></tr><tr><td>Dynabeads El Değmemiş İnsan CD4 T Hücreleri Kiti</td><td>Invitrogen Yaşam Teknolojileri</td><td>11346D</td><td>Kritik Bileşen</td></tr><tr><td>Dynamagnet</td><td>Invitrogen Yaşam Teknolojileri</td><td>12321D</td><td>Kritik Bileşen</td></tr><tr><td>FCS</td><td>İkizler Biyo Ürünleri</td><td>100-500</td><td>Diğer karşılaştırılabilir kullanabilirsiniz Ürünler.</td></tr><tr><td>Yüksek Hassasiyetli DNA Kiti</td><td>Agilent</td><td>50674626</td><td>Kalite değerlendirmesi için önerilir.</td></tr><tr><td>Magnezyum Klorür, Hekzahidrat, Moleküler Biyoloji Sınıfı</td><td>Sigma</td><td>M2393</td><td>Diğer karşılaştırılabilir ürünleri kullanabilir.</td></tr><tr><td>MinElute PCR Saflaştırma Kiti (Tampon PB, Tampon PE, Elüsyon Tamponu)</td><td>Qiagen</td><td>28004</td><td>Kritik Bileşen</td></tr><tr><td>Mr. Frosty</td><td>Thermo Scientific</td><td>5100-0001</td><td>Diğer karşılaştırılabilir ürünleri kullanabilir.</td></tr><tr><td>NaCl, Moleküler Biyoloji Sınıfı</td><td>Sigma</td><td>S3014</td><td>Diğer karşılaştırılabilir ürünleri kullanabilir.</td></tr><tr><td>NEBNext High Fidelity 2x PCR Master Mix</td><td>New England BioLabs</td><td>M0541</td><td>Kritik Bileşen</td></tr><tr><td>Nextera DNA Kütüphanesi Hazırlama Kiti (2x TD Tamponu, Tn5 Enzimi)</td><td>Illumina</td><td>FC1211030</td><td>Kritik Bileşen</td></tr><tr><td>Nükleaz İçermeyen Steril dH20</td><td>Gibco</td><td>10977015</td><td>Diğer karşılaştırılabilir ürünleri kullanabilir.</td></tr><tr><td>Polisorbat 20 (Tween20)</td><td>Sigma</td><td>P9416</td><td>Diğer karşılaştırılabilir ürünleri kullanabilir.</td></tr><tr><td>PowerUp SYBR Green Master Mix</td><td>Applied Biosystems</td><td>A25780</td><td>Kritik Bileşen</td></tr><tr><td>Hassas Su Banyosu</td><td>Thermo Scientific</td><td>TSGP02</td><td>Diğer karşılaştırılabilir ürünleri kullanabilir.</td></tr><tr><td>QIAquick PCR Saflaştırma Kiti</td><td>Qiagen</td><td>28104</td><td>Kritik Bileşen</td></tr><tr><td>Qubit dsDNA HS Test Kiti</td><td>Invitrogen Life Technologies</td><td>Q32851</td><td>Kalite değerlendirmesi için önerildi.</td></tr><tr><td>Qubit FlouroMeter</td><td>Invitrogen Life Technologies</td><td>Q33226</td><td>Kalite değerlendirmesi için önerildi.</td></tr><tr><td>Rozet Eylül İnsan CD4+ Yoğunluk Orta</td><td>Kök Hücre Teknolojileri</td><td>15705</td><td>Kritik Bileşen</td></tr><tr><td>Rozet Eylül İnsan CD4+ Zenginleştirme Kokteyli</td><td>Kök Hücre Teknolojileri</td><td>15022</td><td>Kritik Bileşen</td></tr><tr><td>RPMI-1640</td><td>Gibco</td><td>11875093</td><td>Diğer karşılaştırılabilir ürünleri kullanabilir.</td></tr><tr><td>Steril Resevoir</td><td>Thermo Scientific</td><td>8096-11</td><td>Diğer karşılaştırılabilir ürünleri kullanabilir.</td></tr><tr><td>T100 Isıtmalı Kapaklı Thermocycler</td><td>BioRad</td><td>1861096</td><td>Diğer benzer ürünleri kullanabilir.</td></tr><tr><td>Tris-HCL</td><td>Sigma</td><td>T5941</td><td>Diğer karşılaştırılabilir ürünleri kullanabilir.</td></tr></tbody></table>

ataÇ-seq tahlil birincil insan cd4 + t lenfositleri kirlenme düşük mitokondrial dna ile

ATAC-seq Assay with Low Mitochondrial DNA Contamination from Primary Human CD4+ T Lymphocytes

ATAÇ-seq epigenetik genom genelinde erişilebilir Kromatin eşleme için hızlı ve basit yaklaşımı nedeniyle çalışmada yaygın olarak kullanılan bir yöntem haline gelmiştir. Bu yazıda biz mitokondrial DNA okuma kirletici azaltır geliştirilmiş bir ataç-seq Protokolü mevcut. Önceki ataç-seq protokolleri ile mücadele var ise ortalama % 50 oranında mitokondrial DNA kirletici okur, bu protokol için sunulan en iyi duruma getirilmiş lizis arabellek % 3 ortalama mitokondrial DNA kirlenme azaltır. Bu gelişmiş ataç-seq iletişim kuralı sıralaması maliyet bir çevre % 50 azalma sağlar. Bu yüksek kaliteli ataç-seq kütüphanelerin aktif CD4 + lenfositlerinin, hazır nasıl CD4 + lenfosit izolasyonu tam kan veri analizi ile kimden adım adım yönergeler sağlama göstermektedir. Bu gelişmiş ataç-seq Protokolü hücre tipleri geniş bir doğrulanır ve Kromatin erişilebilirlik eğitim araştırmacılar için acele kullanma olacaktır.

Taze tam kan 15 mL, bu protokol ortalama 1 milyon CD4 + T hücreleri oluşturur. Bunlar daha sonra işlenmek için dondurulmuş ya da hemen kullanılabilir. CD4 + T hücreleri, taze veya çözülmüş, canlılık olduğunu sürekli &gt; % 95. Bu yöntem CD4 + T hücre izolasyon kaynak malzeme ve toplama zamanında için esneklik sağlar. Bu gelişmiş ataç-seq Protokolü 1 ng/µL sıralama için daha büyük bir final Kütüphanesi üretir. Kalite kontrol ticari olarak mevcut sistemleri kullanılarak yapılır DNA parçalar...

Burada, bir tahlil transposase erişilebilir Kromatin (ataç-seq) aktif CD4 + insan lenfositler üzerinde sıralama için gerçekleştirmek için bir iletişim kuralı mevcut. Protokol % 50 mitokondrial DNA okuma yeni bir lizis arabellek başlanarak % 3 bulaşıcı en aza indirmek için değiştirildi.

ATAÇ-seq tahlil birincil insan CD4 + T lenfositleri kirlenme düşük mitokondrial DNA ile

ATAC-seq has become a widely used methodology in the study of epigenetics due to its rapid and simple approach to mapping genome-wide accessible ...

Bu modifiye ATAC-seq protokolü, mitokondriyal okumaların kontamine sini azaltan yeni bir lisis tamponunu %50'den %3'ün daha az azaltan mitokondriyal kontaminasyonun azalması araştırmacıların sıralama maliyetlerinde %50'lik bir düşüşle daha verimli ATAC-seq yapmalarını sağlayacaktır. Bu yeni ATAC-seq protokolünü insan primer PBMC'lerinde, insan primer monositlerinde, fare dendritik hücrelerinde ve melanom hücre hatlarında doğruladık. Çok çeşitli hücre tiplerinde etkili olacağına inanıyoruz.Hücre aktivasyonu ve seçim sürecinde örnek kaybını en aza indirmek, ATAC-seq ile yüksek kaliteli sonuçlar elde etmek için çok önemlidir. Temel laboratuvar ekipmanlarını kullanarak değerli numunelerden az sayıda hücrenin nasıl işleyeceğini göstereceğiz. Başlamak için, buz eriyene kadar 37 derecelik santigrat su banyosunda önceden izole edilmiş CD4+T hücrelerinden oluşan bir şişeyi eritin.Daha sonra hücreleri hafifçe, önceden ısıtılmış tam RPMI'nin dokuz mililitresini içeren 15 mililitrelik konik bir tüpe aktarın. Hücreleri 1, 500 kat G ve dört santigrat derecede altı dakika santrifüj edin. Sonra supernatant atın ve yavaşça tam RPMI iki mililitre pelet resuspend.Santrifüjü tekrarladıktan sonra, süpernatantı atın ve hücreleri 0,5 mililitre tam RPMI'de yavaşça askıya alın. Hücreleri saymak için bir hemositometre kullanın. Tam RPMI kullanarak, hücre süspansiyon yoğunluğunu 96 kuyulu yuvarlak alt plakanın kuyusu başına 200 mikrolitrede 50, 000 CD4+hücreye ayarlayın.Daha sonra, manyetik boncukhazırlamak için, 1.5 mililitrelik bir tüp aTAC-seq örnek başına İnsan T-Aktivatör CD3/CD28 boncuk 12.5 mikrolitre aliquot. Tüpe bir mililitre 1x PBS ekleyin ve boncukları yıkamak için bir dakika lığına mıknatısın üzerine yerleştirin. Dikkatle kaldırmak ve net supernatant atın ve mıknatıs tan tüp çıkarın.ATAC-seq numunesi başına 13 mikrolitre komple RPMI boncukları yeniden askıya alın. Cd4+T hücrelerini ayarlanmış konsantrasyonla etkinleştirmek için, 15 mililitrelik konik bir tüpte 2,1 mililitre tam RPMI ortamında 500,000 hücre toplayın. İnsan T-Aktivatör boncuk12,5 mikrolitre ekleyin, hazırlanan ve önceki adımlarda yıkanmış, ve yavaşça tüp ters karıştırarak.Sonra yavaşça steril bir rezervuar için, boncuk ile hücreleri aktarın. Çok kanallı bir pipet kullanarak, yuvarlak dipli 96 kuyulu bir plakanın kuyusuna boncuk içeren 200 mikrolitre hücre plakası ve 48 saat boyunca 37 derece santigrat, %5 CO2 kuluçka makinesinde kuluçkaya yatırın. Tam kuluçkadan sonra, plakayı 423 kez G ve oda sıcaklığında sekiz dakika santrifüj edin.Her kuyudan 100 mikrolitre orta litre çıkarın ve boncuk kaybını doğrulamak için atmadan önce konik bir tüpte toplayın. Daha sonra orta kalan 100 mikrolitre hücre pelet resuspend ve 1.5 mililitrelik bir tüp her şeyi toplamak. CD4+hücrelerini izole etmek için, 50 mikrolitre önceden yıkanmış CD4 konjuge boncukları bir mililitre lik tam RPMI'de 500, 000 hücreye ekleyin ve karıştırmak için ters çevirin.Dört santigrat derecede 20 dakika kuluçkaya yat, karıştırmak için her altı dakikada bir el ile hareket ettirin. Tüpü iki dakika boyunca mıknatısın üzerine yerleştirin, ta ki supernatant temiz olana kadar, ve sonra çıkarıp atın. Tüpü mıknatıstan çıkarın.Boncuk la bağlı hücreleri bir mililitre PBS,artı %2 FCS'de yeniden suyararak yıkayın ve tüpü bir dakika lığına mıknatısın üzerine yerleştirin. Açık supernatant atın ve üç yıkar toplam için bu işlemi tekrarlayın. Son yıkamadan sonra, bir dakika için mıknatıs üzerinde tüp yerleştirin.Çıkarın, supernatant atın ve buz üzerine pelet yerleştirin. Daha sonra, çekirdek izolasyongerçekleştirmek için, soğuk lysis tampon 50 mikrolitre boncuk ve hücreleri yeniden askıya almak ve santrifüj hemen 500 G, dört derece santigrat, 10 dakika. Supernatant'ı çıkarın ve atın.Transposaz reaksiyonu gerçekleştirmek için, 50 mikrolitre Tn5 transposaz karışımı ile izole çekirdek pelet resuspend. 37 santigrat derecede 30 dakika boyunca bir termocycler inkübün, kapak 40 santigrat derece ayarlanmış, ve sonra tamamlandığında dört derece santigrat tutun. Termobisikletten hemen sonra, hızlı bir tezgah üstü santrifüj spin-down gerçekleştirin.Üründen boncukkaldırmak için bir dakika için mıknatıs üzerine tüp yerleştirin. Mıknatıstan tüpü çıkarmadan, berrak süpernatant'ı DNA arıtma sütununa aktarın. Kolonu 250 mikrolitre PB tamponu ve 750 mikrolitre PE tamponu ile iki kez yıkayın.Daha sonra numuneyi uzaklaştırmak için 10 mikrolitre elüsyon tamponu ekleyin. Nucleaz içermeyen bir PCR tüpte ilk PCR amplifikasyon reaksiyonu ayarlayın. PCR tüpünü termocycler'a yerleştirin ve PCR amplifikasyon programını çalıştırın.Daha sonra, el yazmasında açıklandığı gibi kalan 45 mikrolitre PCR reaksiyonunun son PCR amplifikasyonunu tamamlayın. PCR tüpünü termocycler'a yerleştirin ve programı çalıştırın. Tam amplifikasyon sonra, bir PCR temizleme kiti kullanarak kütüphaneler arındırın, üreticinin protokolünü izleyerek, elüsyon arabelleği 25 mikrolitre eluting.Hazırlanan kitaplıkları yeni nesil bir sıralayıcıda, örnek başına ortalama 42 milyon okuma derinliğine sıralayın. Bu geliştirilmiş ATAC-seq protokolü sıralama için mikrolitre başına bir nanogramdan daha büyük bir son kütüphane üretti. Kalite kontrol 200 ve 1,000 baz çifti arasında DNA parçaları gösterdi ve daha fazla sıralama bu yüksek kaliteli kütüphaneler ile yapıldı.Bu protokol den sonra hazırlanan kütüphaneler de sadece %3 mitokondriyal kontaminasyon gösterdi. Kullanılabilir okumaların yüksek yüzdesi biyolojik çoğaltmalar arasında yeterince sabittir. Bu protokol, biyolojik kopyaların yanı sıra teknik kopyalar arasında son derece tekrarlanabilir sonuçlar sağladı.Ayrıca, bu protokol, daha önce açıklandığı gibi bir hafta veya daha fazla değil, 48 saat sürdü ve tekrarlanabilir sıralama sonuçlarıyla gösterildiği gibi tutarlı ve verimli etkinleştirme yle sonuçlandı. Ayrıca, tahmin ATAC-seq zirveleri doğru analiz boru hattı tarafından çağrıldı. Sıralama sonucu analizi insan T hücre aktivasyonu sırasında kromatin durumunda net değişiklikler ortaya koymuştur.Açık kromatinin farklı olarak erişilebilen bölgeleri aktivasyondan önce ve 48 saat sonra altı örnek arasında tanımlanmıştır. Bozulmamış çekirdeklerin geri kazanımını en üst düzeye çıkarmak için çekirdekli lysis reaksiyonunun soğutulmuş reaktifler ve malzemelerle yapıldığından emin olun. Modifiye çekirdekli lysis tamponumuz hücrelerde daha naziktir ve mitokondriyal DNA'yı kirleten en aza indirir.Bu modifiye lisis tamponunun tek çekirdekli ATAC-seq'a da uygulanmasını dört gözle bekliyoruz. Bu protokolün araştırmacıların daha yüksek kaliteli ATAC-seq verilerini daha düşük bir maliyetle üretmesine olanak sağlayacağını biliyoruz ve epigenetik alanın iletilmesine yardımcı olacaktır. Protokol basit, hızlı ve herhangi bir tehlikeli reaktif veya enstrüman gerektirmez, atac-seq yeni olanlar için kolayca erişilebilir hale.

atac-seq-assay-with-low-mitochondrial-dna-contamination-from-primary

Research

JoVE Journal

Genetics

Genetik

Tahlil Transposase erişilebilir yüksek üretilen iş sıralama (ataç-seq) ile birleştiğinde Kromatin için erişilebilir Kromatin ortaya çıkarmak için genom geniş bir yöntemdir. Bu bir adım adım ataç-seq insan lenfosit (Th1/Th2) için en iyi duruma getirilmiş son hesaplama çözümleme moleküler üzerinden iletişim kuralıdır. Bu iletişim kuralı yeni nesil sıralama yöntemleri deneyiminiz olmadan araştırmacılar tarafından kabul edilebilir.

Birincil insan T lenfositler tarafından ataç-Seq genom genelinde erişilebilir Kromatin eşleme

Burada tarif biz aynı anda quantitate için müsait bir yöntem ve genomik DNA'ın enzimatik bölünme onun alkalin hidroliz ve sonraki 5´ uç ile birleştirerek tek nükleotid çözünürlükte son derece sağlam DNA genom geniş harita ribonucleotides sıralama.

Eş zamanlı haritalama ve Nefelometri Ribonucleotides insan mitokondriyal DNA'ın

Metabolik adaptasyon, farklılaşmayı, kalıcılığı ve sitotoksisiteyi belirlediği için T hücreleri için temeldir. Burada, ex vivo sitokin farklılaşmış insan primer T hücrelerinde mitokondriyal solunumu izlemek için optimize edilmiş bir protokol sunulmaktadır.

Sitokin Diferansiye İnsan Primer T Hücrelerinde Mitokondriyal Solunumun Gerçek Zamanlı İzlenmesi

Burada, tek hücrelerde mutlak mitokondriyal (mt) DNA kopya sayısını ve mtDNA delesyon heteroplazmi seviyelerini ölçmek için bir protokol sunuyoruz.

Dijital Damlacık Polimeraz Zincir Reaksiyonu Kullanarak Tek Hücreli Mitokondriyal DNA Kopya Sayısını ve Heteroplazmiyi Ölçme

ATAC-seq, transkripsiyon faktörlerinin aracılık ettiği kromatin erişilebilirliğindeki değişiklikleri haritalamak için hiperaktif mutant transpozaz Tn5'i kullanan bir DNA dizileme yöntemidir. ATAC-seq, kanser hücrelerinde fenotipik değişikliklerin altında yatan moleküler mekanizmaların keşfedilmesini sağlar. Bu protokol, kanser hücreleri de dahil olmak üzere epitel hücre tiplerinde ATAC-seq için optimizasyon prosedürlerini özetlemektedir.

Kanser Epigenetiği Araştırmaları için ATAC-Seq Optimizasyonu

Pirosekans testleri, heteroplazmik hücrelerde veya dokularda mitokondriyal DNA tek nükleotid polimorfizmlerinin sağlam ve hızlı genotiplendirilmesini sağlar.

Mitokondriyal Genomdaki Tek Nükleotid Polimorfizmlerinin Pirosequencing ile Genotiplenmesi

Bu protokol, süspansiyon büyüyen kanser hücrelerinden cybrid üretimi için bir tekniği, mitokondrinin tümörojenik süreçteki rolünü incelemek için bir araç olarak tanımlamaktadır.

Kanser Hücre Hatlarını Kullanarak İletimkokondriyal Cybrid Üretimi

mtDNA sentezini ve dağılımını tespit etmek ve ölçmek için çok kuyucuklu bir plaka formatı ve otomatik immünofloresan görüntüleme kullanarak hücrelerdeki mitokondriyal DNA (mtDNA) metabolizmasının dinamiklerini incelemek için bir prosedür açıklanmaktadır. Bu, çeşitli inhibitörlerin, hücresel streslerin ve gen susturmanın mtDNA metabolizması üzerindeki etkilerini araştırmak için de kullanılabilir.

Mitokondriyal DNA Sentezi ve Dağılımının Yüksek Verimli Görüntü Tabanlı Nicelleştirilmesi

CD8 T hücre biyoenerjetik değerleri Mito Stres Testi kullanılarak sorgulanabilir. Bu metodoloji, akut ve kronik metabolik programlamayı incelemek için kullanılabilir. Bu protokol, T hücresi reseptör biyolojisi ve biyoenerjetik analiz arasındaki ilişkileri incelemek için yaklaşımları açıklar.

Naif ve Efektör CD8 T Hücrelerinin Mitokondriyal Fonksiyonunun Ölçülmesi

Bağışıklık hücrelerinde fizyolojik olarak ilgili substrat konsantrasyonları altında mitokondriyal biyoenerjetik çalışma yöntemleri sınırlıdır. İnsan T hücrelerinde, monositlerde ve periferik mononükleer hücrelerde mitokondriyal membran potansiyelinin enerji talebine tepkisindeki değişiklikleri değerlendirmek için yüksek çözünürlüklü florespirometri kullanan ayrıntılı bir protokol sunuyoruz.

İnsan bağışıklık hücrelerinde mitokondriyal membran potansiyelindeki dinamik değişiklikleri değerlendirmek için yüksek çözünürlüklü florespirometri

Bu el yazması, optimal nötrofil canlılığını ve yüksek kütüphane kalitesini garanti etmeyi amaçlayan, murin kemik iliğinden nötrofillerden oluşan bir ATAC-seq kütüphanesi hazırlamak için bir protokolün ana hatlarını çizmektedir. BMC hazırlama, immünomanyetik sıralama ve kütüphane yapımı hakkında adım adım talimatlar sunarak, özellikle nötrofilleri incelemeye yeni başlayanlar için değerli bir rehber görevi görür.

Murin Kemik İliği Kaynaklı Nötrofillerin ATAC-Seq Kütüphanesi Hazırlanması

Öğrenin, aktive insan CD4+ T lenfositlerinde ATAC-seq için geliştirilmiş lizis tamponu kullanarak mitokondriyal DNA kirliliğini %50'den %3'e düşürme yöntemini. Bu protokol dizileme maliyetlerini yarıya indirir ve çeşitli hücre tiplerinde yüksek kaliteli kromatin erişilebilirlik verileri sağlar.

ATAÇ-seq tahlil birincil insan CD4 + T lenfositleri kirlenme düşük mitokondrial DNA ile

Daha fazla video keşfet