-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Fare Beyin Dilimlerinde Uzun Menzilli Girdilerin Optogenetik Stimülasyonu için Vivo İntraserebral...
Fare Beyin Dilimlerinde Uzun Menzilli Girdilerin Optogenetik Stimülasyonu için Vivo İntraserebral...
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
In Vivo Intracerebral Stereotaxic Injections for Optogenetic Stimulation of Long-Range Inputs in Mouse Brain Slices

Fare Beyin Dilimlerinde Uzun Menzilli Girdilerin Optogenetik Stimülasyonu için Vivo İntraserebral Stereotaksik Enjeksiyonlarda

Full Text
12,169 Views
09:07 min
September 20, 2019

DOI: 10.3791/59534-v

Louis Richevaux1,2, Louise Schenberg1,2, Mathieu Beraneck1,2, Desdemona Fricker1,2

1CNRS (Integrative Neuroscience and Cognition Center, UMR 8002), 2Université Paris Descartes, Sorbonne Paris Cité

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This protocol outlines methods for identifying the cell-type specific functional connectivity of long-range inputs from distant brain regions using optogenetic stimulation in ex vivo brain slices. The study employs photostimulation to activate specific axon terminals, enabling researchers to investigate synaptic responses in targeted neuronal populations.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Electrophysiology
  • Optogenetics

Background

  • Understanding functional connectivity in the brain is crucial for elucidating neuronal networks.
  • Optogenetics allows for precise control of neuronal activity using light.
  • The method utilizes ex vivo brain slices to facilitate cellular recordings and manipulations.

Purpose of Study

  • To explore the functional connections between specific brain regions.
  • To assess the excitatory and inhibitory responses of targeted neurons following stimulation.
  • To establish a protocol that can be broadly applied to different neuronal types and connections.

Methods Used

  • Utilizes ex vivo brain slices from anesthetized animals.
  • Specific brain regions are targeted for optogenetic manipulation using light-sensitive ion channels.
  • Critical steps include surgical preparation, viral injection, and slice preparation.
  • Whole-cell patch-clamp recording is performed to measure neuronal responses.

Main Results

  • Demonstrated that light stimulation elicits excitatory post-synaptic potentials in pyramidal neurons.
  • Responses varied with light intensity, indicating modulation of synaptic efficacy.
  • Identified synaptic transmission dynamics in presubicular neurons via current clamp measurements.

Conclusions

  • This study provides a robust protocol for investigating long-range functional connectivity in the brain.
  • Highlights the potential of optogenetic techniques to elucidate synaptic mechanisms and connectivity patterns.
  • Contributes to the understanding of how different neuronal populations interact and process information.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using ex vivo brain slices?
Ex vivo brain slices allow for direct electrophysiological recordings while preserving the overall network architecture of the brain, enabling detailed studies of synaptic interactions.
How are specific brain regions targeted in this protocol?
Targeting is achieved through stereotaxic surgery, which allows for precise positioning of injections and stimulation sites in the desired brain area.
What types of data can be obtained from patch-clamp recordings?
Patch-clamp recordings provide insights into the excitability of neurons, synaptic responses, and the dynamics of neurotransmitter release in response to stimulation.
How can the method be adapted for different neuronal types?
By using different viral constructs coding for various light-sensitive channels, researchers can target a wide range of neuronal populations and study their unique connectivity patterns.
What limitations should be considered when using this method?
Limitations include the potential alteration of synaptic properties due to the slice preparation and the inability to observe metabotropic signaling pathways effectively.

Bu protokol, ex vivo beyin dilimlerinde optogenetik stimülasyonlar kullanarak uzak beyin bölgelerinden gelen uzun menzilli girdilerin hücre tipi spesifik fonksiyonel bağlantısını belirlemek için bir dizi yöntemi açıklamaktadır.

Bu yöntemin amacı, uzak beyin bölgelerinden gelen uzun menzilli girdilerin fonksiyonel bağlantısını beyin dilimlerinde fotostimülasyon kullanarak belirlemektir. Işığa duyarlı iyon kanallarının çeşitli aracılı ekspresyonu için belirli bir beyin bölgesinin stereotaksik hedeflemesi, o bölgeden gelen aksonun ışıkla seçici uyarılmasını sağlar. Prosedürü gösteren Louis Richevaux, benim grup bir doktora öğrencisi olacaktır.

Ameliyattan önce, hayvanın ayak parmak çimdikiyle iyi anons edilebiyi doğrulayın. Yavaşça nefes kolaylaştırmak için dilini çekin. Sonra, kafatası nın saçlarını tıraş edin.

Yerel anestezi için baş deri altına 20 mikrolitre lidokain hidroklorür enjekte edin ve beş dakika bekleyin. Kafatasını ortaya çıkarmak için kafa derisini kes. Sonra, stereotaksik bir çerçeve içinde hayvan yerleştirin.

Kulak çubukları yerleştirin ve kemiklerin üzerinde hafifçe kulaklara rostral onları dinlenme ve kafatası iyi erişim oluşturmak için deri aşağı çekin. Kulak çubuklarını sıkın ve burun parçasını töşeyin. Boy ayarlı bir destek kullanarak hayvanın vücudunu yatay olarak ve baş seviyesinde koruyun.

Fizyolojik sıcaklıkta tutmak için hayvanın altına bir ısıtma yastığı yerleştirin. Daha sonra yumuşak doku kaldırmak için bir pamuk lu bez ile% 0.9 sodyum klorür uygulayarak kafatası temizleyin. Kafatasını, bregma lambda erişiminin tesviye edilebilmiş olması için ayarlayın.

Daha sonra, posterior ve medial koordinatlarına göre kafatasındaki enjeksiyon bölgesini bulun ve enjeksiyon iğnesini üzerine yerleştirin. Kafatasını tek kullanımlık bir iğneyle işaretle. Daha sonra, dört santimetre yukarı enjeksiyon iğnesi taşıyın.

0,5 milimetrelik çapak kullanarak, maksimum hızın yarısı işareti üzerinde bir milimetre çapında kraniyotomi oluşturun. Herhangi bir kanama oluşursa bir doku ile swab. Sonra, tamamen bir pompa ile çıkararak depolama için Hamilton şırınga bulunan su boşaltın.

Sadece iğne suyla dolu. Buza enjekte edilecek viral çözeltiyi eritin, sonra, kısa bir süre buzdan çıkarın ve mikropipetle çözeltinin 700 nanolitresini elde edin. Sonra, parafin filminin bir parçasına bir damla yatır.

Parafin filmini kraniyotominin üstüne yerleştirin. Anteroposterior ve lateral pozisyon değiştirmeden viral çözelti damla iğne Dalma. Daha sonra, parafin film viral çözelti yaklaşık 500 nanolitre ile şırınga doldurmak için pompanın geri çekme işlevini kullanın.

Bu işlemi stereoskop altında gerçekleştirin, düşüşün kayboluşünü izleyin ve hava yıkmayın. Şırınganın doğru doldurulduğundan emin olun. Küçük bir sıvı damlasını çıkarmak için pistonun aşağısına inerek fırlatma sistemini test edin.

Daha sonra, seçilen derinliğe beyne iğne ekleyin. Enjeksiyon için çalıştır düğmesine basın. Sonra, yavaş yavaş 3-5 dakika içinde iğne çekin.

Tıkanmasını önlemek için iğneyi hemen temiz distile suda birkaç kez doldurarak yıkayın. Daha sonra, stereotaksik çerçeve hayvan çıkarın. Sütür deri ve 2-1-1 standart cerrahi düğüm ile bağlı üç veya dört dikiş olun.

Beyin ayıklamak için, boyundan buruna deri üzerinde bir kesim yapmak, sonra makas ile kafatasından son omur bölüm. Deri geri çekin ve kaudal yönden orta hat boyunca kafatası kesti. Parietal kemiği ve frontal kemiğin kaudal kısmını dikkatlice çıkarın.

Beyin ve kranial zemin arasına yerleştirerek küçük bir yuvarlak spatula ile beyin ayıklayın, koku ampul bölümleme, optik sinir, ve diğer kranial sinirler ve beyincik. Beyni yavaşça buz gibi kesme solüsyonuna batırın. Daha sonra, bir filtre kağıdına beyin transferi ve yavaşça kortikal yüzeykuru.

Yatay beyin dilimlerini kesmek için beyin korteksini, kaudal tarafı bıçakla bakacak şekilde bir vibratomun numune tutucusuna yapıştırın. Daha sonra, kesme odasını buz gibi oksijenli kesme çözeltisi ile doldurun, böylece beyin tamamen batırılmış olur. Bölüm 300 mikrometre kalınlığında, bir milimetre genliğinde saniyede 07 milimetre hızda vibratom ile dilimler.

Bu aşamada, floresan el feneri ve ilgili filtre gözlükleri kullanarak talamusta chronos-GFP ifadesini kısaca kontrol etmek önerilir. Tüm hücreli yama-kıskaç kaydı nı gerçekleştirmek için, hipokampal kompleksi içeren bir beyin dilimini yavaşça kayıt odasına aktarın. Kayıt odasını dakikada 2-3 mililitre karbogen ile kabardırılmış 34 santigrat derece ACSF ile sürekli olarak perfit.

4X büyütmede mavi LED aydınlatma ile ilgi bölgesindeki akson terminallerinde Chronos-GFP ifadesini kısaca inceleyin. 63X daldırma hedefine değiştirin ve odağı ayarlayın. Chronos-GFP ifade aksonları kontrol edin ve yama kaydı için bir piramidal nöron seçin.

Daha sonra, potasyum glukonat bazlı iç çözelti ile bir pipet doldurun. Baş sahnede pipet tutucuya monte edin. Hücreyi voltaj kıskacı konfigürasyonunda yama.

Tanımlanan nörona yaklaşın ve pipet ucunu soma üzerine hassas bir şekilde bastırın. Pozitif basınç membran yüzeyinde bir gamze üretmelidir. Sonra, bir gigoom mühür oluşturmak için basınç bırakın.

Mühürlendikten sonra, tutma gerilimini eksi 65 milivolta ayarlayın. Negatif basınç keskin bir darbe ile membran break. Tüm hücreli akım kelepçe modunda nöronun hiperpolarize ve depolarize akım basamaklarına tepkilerini kaydedin.

Chronos ifade afferent liflerin 475 nanometre LED tüm alan stimülasyonu akım veya voltaj kıskaç postsinaptik yanıtları kayıt. 20 hertz iki milisaniye lik süre on uyarım trenler ile uyarın. Hiperpolarizasyon ve depolarize akım basamaklarına yanıt olarak üçüncü tabakadaki presubiküler nöronların aktivitesi tüm hücre yama-kıskaç konfigürasyonunda kaydedildi.

Chronos-GFP'yi ifade eden ADN akson terminallerinin uyarılması, mevcut klemp modunda presubiküler tabakadaki üç ana hücrede uyarıcı post-sinaptik potansiyeller ortaya çıkar. Işık yoğunluğuna bağlı olarak, EPS eylem potansiyel eşiğine ulaşabilir. Gerilim kıskacı modunda sinaptik sonrası yanıtlar da gözlendi, uyarıcı post-sinaptik akımlar ortaya çıkarıldı.

Burada gösterilen bir tabaka üç piramidal nöron bir epifloresan mikroskop ile görüntülenmiş DAPI boyama ile presubiküler yüzeysel tabakalarda Chronos-GFP ifade talamik aksonlarla çevrilidir. Ve bu görüntü konfokal mikroskopla daha yüksek bir büyütmede çekildi. Bir floresan izleyici ile pilot deneyler yaparken eksen boyunca bregma dikkatli tesviye stereotaksik enjeksiyon hassasiyetini artırmak için çok önemlidir.

Bu yordam aynı zamanda iki farklı dalga boylarına duyarlı iki generatif sahne enjekte ederek farklı alanlardan yakınsama projeksiyonları araştırmak için kullanılabilir. Bu tekniğin geliştirilmesi, hücre tipine özgü bir şekilde uzak beyin bölgeleri arasında kesin anatomik ve fonksiyonel devre analizine olanak sağlamıştır.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Nörobilim Sayı 151 stereotaksik enjeksiyon kanalozopopsin optogenetik elektrofizyoloji akut beyin dilimi tüm hücre liyasik kıskaç kaydı nöronal morfoloji hipokampus sinaptik iletim

Related Videos

Fare hipokampal dilimlerindeki nöronların fotostimülasyon ve tam hücre yama kelepçesi kayıtları

03:05

Fare hipokampal dilimlerindeki nöronların fotostimülasyon ve tam hücre yama kelepçesi kayıtları

Related Videos

645 Views

Fare Hipokampal Dilimlerinde Uyarıcı Postsinaptik Akımların MikroRNA Aracılı İnhibisyonu

04:27

Fare Hipokampal Dilimlerinde Uyarıcı Postsinaptik Akımların MikroRNA Aracılı İnhibisyonu

Related Videos

491 Views

Sıçan Beyin Dilimlerinde Sinaptik Olayların Optogenetik Stimülasyonu ve Elektrofizyolojik Kaydı

03:18

Sıçan Beyin Dilimlerinde Sinaptik Olayların Optogenetik Stimülasyonu ve Elektrofizyolojik Kaydı

Related Videos

607 Views

Fare beyninde hedeflenen nöronal gen düzenlemesi için stereotaksik viral enjeksiyon

04:17

Fare beyninde hedeflenen nöronal gen düzenlemesi için stereotaksik viral enjeksiyon

Related Videos

745 Views

Optogenetically Hedeflenen Önbeyin Devreler Lazer tarama photostimulation

07:43

Optogenetically Hedeflenen Önbeyin Devreler Lazer tarama photostimulation

Related Videos

9.6K Views

Kemirgen Santral Sinir Sistemi vivo optogenetic Stimülasyon içinde

09:37

Kemirgen Santral Sinir Sistemi vivo optogenetic Stimülasyon içinde

Related Videos

60.4K Views

Eşzamanlı İki foton İn Vivo Fare Retrosplenial kortekste sinaptik Girişlerin Görüntüleme ve postsinaptik Hedefler

16:45

Eşzamanlı İki foton İn Vivo Fare Retrosplenial kortekste sinaptik Girişlerin Görüntüleme ve postsinaptik Hedefler

Related Videos

12K Views

Beyin Dilimlerinde Afferent Yolakların Optogenetik Aktivasyonu ve Uçucu Anesteziklerle Yanıtların Modülasyonu

08:16

Beyin Dilimlerinde Afferent Yolakların Optogenetik Aktivasyonu ve Uçucu Anesteziklerle Yanıtların Modülasyonu

Related Videos

2.6K Views

Derin Beyin In Vivo Kalsiyum Görüntüleme için Stereotaksik Viral Enjeksiyon ve Degrade İndeks Lens İmplantasyonu

11:11

Derin Beyin In Vivo Kalsiyum Görüntüleme için Stereotaksik Viral Enjeksiyon ve Degrade İndeks Lens İmplantasyonu

Related Videos

6.8K Views

Eski Vivo Medial Prefrontal Korteksten Lateral Entorinal Kortekse Uzun Menzilli Sinaptik İletim ve Plastisitenin Optogenetik Sorgulanması

11:31

Eski Vivo Medial Prefrontal Korteksten Lateral Entorinal Kortekse Uzun Menzilli Sinaptik İletim ve Plastisitenin Optogenetik Sorgulanması

Related Videos

2.8K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code