-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Bioengineering
Beyin kanseri ve nörodejeneratif hastalıkların Incelenmesi için insan nöral Organoidler
Beyin kanseri ve nörodejeneratif hastalıkların Incelenmesi için insan nöral Organoidler
JoVE Journal
Bioengineering
This content is Free Access.
JoVE Journal Bioengineering
Human Neural Organoids for Studying Brain Cancer and Neurodegenerative Diseases

Beyin kanseri ve nörodejeneratif hastalıkların Incelenmesi için insan nöral Organoidler

Full Text
10,706 Views
09:36 min
June 28, 2019

DOI: 10.3791/59682-v

Erika Cosset*1, Manon Locatelli*2, Antoine Marteyn2, Pierre Lescuyer3, Florence Dall Antonia3, Flavio Maurizio Mor4, Olivier Preynat-Seauve5, Luc Stoppini4, Vannary Tieng2

1Laboratory of Tumor Immunology, Translational Research Center in Onco-Hematology, Department of Internal Medicine Specialties, Faculty of Medicine,University of Geneva, 2Department of Pathology and Immunology, University Medical Center,University of Geneva, 3Laboratory of Toxicology and Therapeutic Drug Monitoring,Geneva University Hospitals, 4Tissue Engineering Laboratory, Hepia/HES-SO,University of Applied Sciences Western Switzerland, 5Laboratory of Experimental cell therapy, Department of Diagnostics,Geneva University Hospitals

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study introduces protocols for deriving human neural organoids to model glioblastoma development and dopaminergic neuron differentiation. These organoids provide a relevant platform for studying human-specific neurological conditions.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Stem Cell Biology
  • Regenerative Medicine

Background

  • Human neural organoids mimic physiological development closely.
  • Protocols developed are reproducible and scalable.
  • Applications include studying glioblastoma and Parkinson's disease.
  • Utilization of pluripotent stem cells for organoid generation.

Purpose of Study

  • To develop a model for studying glioblastoma in human neural organoids.
  • To investigate dopaminergic differentiation in a three-dimensional context.
  • To enhance understanding of human neurological diseases.

Methods Used

  • Generation of three-dimensional organoids from pluripotent stem cells.
  • Use of ROCK inhibitors and dual-SMAD inhibition for neural induction.
  • Culture conditions optimized for growth and differentiation.
  • Monitoring of organoid development and differentiation stages.

Main Results

  • Successful generation of human neural organoids.
  • Demonstrated protocols for glioblastoma modeling.
  • Achieved dopaminergic differentiation in organoids.
  • Established a reproducible method for future studies.

Conclusions

  • Human neural organoids are effective for studying glioblastoma and Parkinson's disease.
  • Protocols can be adapted for various neurological research applications.
  • Future research can build on these findings to explore therapeutic avenues.

Frequently Asked Questions

What are human neural organoids?
Human neural organoids are three-dimensional structures derived from pluripotent stem cells that mimic the development of human brain tissue.
How are organoids used in studying glioblastoma?
Organoids provide a relevant model to investigate the development and progression of glioblastoma in a human context.
What is the significance of dopaminergic differentiation?
Dopaminergic differentiation is crucial for studying diseases like Parkinson's, as it allows researchers to model neuron function and degeneration.
What protocols were developed in this study?
Protocols for generating and culturing human neural organoids were developed, focusing on glioblastoma and dopaminergic neuron differentiation.
Can these methods be applied to other neurological diseases?
Yes, the methods can be adapted to study various neurological conditions beyond glioblastoma and Parkinson's disease.

Bu çalışmada, iki spesifik insan nöral organoidleri, insan sinirsel organoidlerin içinde sadece insanlarda ve 2) nöron dopaminerjik olarak eğitim için ilgili ve doğru bir model olarak 1) insan glioblastoma gelişimi türetmek için protokoller tanıtır ve açıklanmaktadır üç boyutlu bir organoid üreten farklılaşma.

Rejeneratif tıpta, pluripotent kök hücrelerin belirli bir nöral hücre tipine doğru farklılaşması için sağlam bir protokol değerli bir araçtır. Bizim olgumuzda, bu protokoller hem glioblastoma gelişimi hem de Parkinson hastalığını incelemek için çok yararlı oldu. Yani ilk olarak, üç boyutlu organoid üretimi fizyolojik gelişimi yakından taklit avantajına sahiptir, ve ayrıca pluripotent kök hücrelerden boyut kalibre nörosferüretimi yüksek tekrarlanabilirlik vardır.

Aşağıdaki prosedür Manon Locatelli, bizim laboratuvardan bir doktora öğrencisi tarafından gösterecektir. Üç Boyutlu kültüre başlamadan 24 saat önce hESC ortamını 10 mikromolar ROCK inhibitörü ile takviye edilmiş serumsuz ortamla değiştirin. Hücreler %60 birleşmeyle olmalıdır.

Ertesi gün, orta kaldırarak ve kalsiyum ve magnezyum içermeyen PBS ile durulama hESC kolonileri tek hücre olarak ayırın. Daha sonra, enzimatik çözünme çözeltisi beş mililitre ekleyin ve bir ila iki dakika için 37 santigrat derece kuluçka. Daha sonra, 10-mikromolar ROCK inhibitörü ile serumsuz ortamda hücreleri toplamak ve beş dakika boyunca 300 kez g hücreleri santrifüj.

Santrifüjden sonra hücre peletinin boyutunu kontrol edin. Supernatant çıkarın ve 10-mikromolar ROCK inhibitörü ile desteklenen serum içermeyen orta 10 mililitre hücreleri saymak. Buna paralel olarak, mikrokuyu plakayı her kuyuda serumsuz iki mililitre ile durulayın ve nörosfer oluşumunu önlemek için tüm kabarcıkları çıkarmak için 1, 200 kez g beş dakika boyunca plakayı santrifüj edin.

Daha sonra, 10 mikromolar ROCK inhibitörü ile desteklenen serumsuz orta 12,5 mililitre 28,2 milyon hücre hazırlamak. Mikrokuyu başına 1000 hücre dağıtın. Hücreleri 5 dakika boyunca 300 kez g'de santrifüj edin ve mikroskop altında mikrokuyu plakasındaki hücrelerin homojen olarak yeniden bölünmesini kontrol edin.

Tabağı gece boyunca 37 derecede kuvöze yerleştirin. Ertesi gün, her mikrokuyuda oluşan kürelerin boyutunu kontrol etmek için microwell plakasını inceleyin. Hızlı nöral indüksiyonu teşvik etmek için çift SMAD inhibisyonu kokteyli ile desteklenen ortamı kullanarak küreleri altı kuyulu bir tabağa aktarın.

Bu adımdan itibaren küreler, birbirine yapışmasını veya plakaya yapışmasını önlemek için 60 rpm'de rotasyonla kültürlenir. Birinci günden 4'e kadar, sinirsel indüksiyon yapmadan önce her 2-3 günde bir ortamı değiştirin. Dördüncü günden 11'e kadar, egf ve bFGF'yi mililitrebaşına 10 nanogramda, çift SMAD kokteyli ile desteklenen B27 ortamına ekleyerek hESC kaynaklı nöral rozetlerin çoğalmasını teşvik edin.

Gün 11-13, kültür B27 orta küreler 0.5 mikromolar BMP inhibitörü ile takviye. Gün 13-21, kültür B27 orta alanlarda GDNF ve BDNF mililitre başına 10 nanogram ve bir mikromolar gama-sekretaz inhibitörü ile desteklenmiştir. 21. günde, bir kültür plakasını yeni bir altı kuyuluk kuyununiçine yerleştirin.

Daha sonra, büyüme faktörleri ve inhibitörleri ile desteklenen bir mililitre B27 ortamı nı membran ucunun altındaki her bir kuyuya ekleyin. Daha sonra, bir kültür plakası eklemek üzerinde biriken bir hidrofilik PTFE membran küreler plaka ve farklılaşma aşağıdaki üç hafta boyunca her iki ila üç günde bir orta değiştirin. Bu adımdan döndürmeyi durdurun.

Rozetlerin varlığı sinirsel farklılaşmanın başlangıcını gösterir. 21.günden 25'e kadar, aynı sinirsel olgunlaşma ortamında insan sinir organoidleri yetiştirin. Sonra, gün 25-28, sadece bir mikromolar gama-sekreten inhibitörü ile B27 orta tamamlayıcı.

28.günden 39'a kadar gama salgı inhibitörlerini eklemeyi bırakın ve sadece B27'de insan nöral organoid kültürüne devam edin. Üç hafta sonra, nöral organoidler GIC implantasyonu için kullanıma hazırdır. Sıfır ın gününde, iki B kültüründeki hESC'leri %60'a kadar yükseltin.

Daha sonra, hESC'lerin pluripotency özelliklerini korumak için kullanılan kök hücre ortamını, ertesi gün geçiş sırasında hücrelerin sağkalım oranını artırmak için nöral indüksiyon ve 10 mikromolar ROCK inhibitörü başlatmak için çift SMAD inhibisyonu kokteyli içeren serumsuz bir ortamla değiştirin. İlk gün, aynı ROCK inhibitörü ve çift SMAD inhibisyon molekülleri içeren serumsuz ortamın kuyusu başına 2,5 mililitre ile mikrokuyu plakasını hazırlayın. Nöral tüp ventral desen doğru hücreleri ayırt etmek için, mililitre başına 100 nanogram ve iki mikromolar agonist düzeltilmiş SHH ve FGF8 ekleyin.

Orta ekledikten sonra, mikrowells hava kabarcıkları kaldırmak için beş dakika boyunca 1, 200 kez g plaka santrifüj. Microwell plakayarı ayırt edici orta ile kullanıma hazır olduğunda, hESC'lerin ortasını çıkarın ve kalsiyum ve magnezyum klorürsüz PBS ile hızlı bir şekilde yıkayın. Bir T75 şişesine 7,5 mililitre rekombinant enzimatik çözelti ekleyerek kolonileri tek hücreli süspansiyona ayırın.

Hücreleri 37 santigrat derecede iki dakika kuluçkaya yatırın ve ardından 7,5 mililitre DMEM F12 ekleyin. Daha sonra, hücre süspansiyon ve santrifüj toplamak 300 kez g beş dakika. Sonra, supernatant çıkarın ve microwell plaka hazırlamak için kullanılan aynı ortamda hücreleri saymak.

Orta hacmi, mikrowell başına 1,000 hücre içeren nöroküreler oluşturmak için bir hücre süspansiyon elde etmek için ayarlayın orta 2.5 mililitre içinde 4.7 milyon hücre hazırlayarak, ve zaten plaka yerleştirilen orta önceki 2.5 mililitre ekleyerek. Her mikrokuyudaki hücreleri doğru bir şekilde dağıtmak için plakayı hafifçe sallayın ve 5 dakika boyunca 300 kez g'de santrifüj edin. Daha sonra, küreler oluşturmak için 24 saat boyunca 37 santigrat derecede plaka kuluçka.

İkinci gün, mikro kuyuları hafifçe orta ile temizle ve küreleri doku yla tedavi edilen altı kuyuluk tabakta aktarın. Küreleri 37 santigrat derecede döndürün ve her iki ila üç günde bir temiz orta ile ortamın yarısını değiştirin. Gün üç ila 13, nöral indüksiyon geliştirmek ve bir orta beyin kimliği ile nöral atalara dönüştürmek için, üç mikromolar GSK-3-beta inhibitörü ile orta tamamlayın.

Küre yoğunluğunu azaltmak ve küre toplamaönlemek için iki yeni doku tedavi altı-iyi plakalar halinde örnek bölün. Sekizinci günde, büyüme faktörleri ile yeni ortama geçerek nöral olgunlaşmaya başlayın ve her iki ila üç günde bir ortamı değiştirin. 21. günde, bir kültür plakasını yeni bir altı kuyulu plakanın bir kuyuya yerleştirin ve membran ucunun altına nörosfer farklılaşması için kullanılan 1,2 mililitre nöral olgunlaşma ortamı ekleyin.

Daha sonra, ptfe membranını bir kültür plakası ekleme sokuluüzerine yerleştirin. Son olarak, nöral organoid oluşturmak için, PTFE membran üzerinde hava-sıvı arayüz koşulları altında yaklaşık 100 nörosfer tohumu. Bu adımdan rotasyonu durdurun ve gerekli farklılaşma süresi elde edilene kadar her iki ila üç günde bir orta yı değiştirin.

Burada dopaminerjik nöral organoidlerin üretimi için standart bir protokol şeması. Bu görüntülerde gösterilen dopaminerjik nöral organoidlerin immünoresans analizi, orta beyne özgü bir belirteç olan Nurr1'i coexpressing TH immünoreaktif hücreleri gösterir. Bu iki grafik, nicel RT-PCR tarafından değerlendirilen TH ve Nurr1 gen ekspresyonunun kinetiklerini temsil eder.

Burada MEA platformu ile kaydedilen ham veri bir örnektir. Her başak dikey bir çizgi yle görüntülenirken, kalan iz gürültüdür. Ve bu resim MEA'da biriken bir nörosferi temsil eder.

Bu grafikler, ham verilerden algılanan tipik ani artışların süperpozisyonunu gösterir. Siyah kalın eğri, ilgili kırmızı eğrilerin ortalamasını gösterir. Bu raster arsa algılanan her başak ile ilişkili zaman damgaları gösterir.

Farklı renkler farklı elektrotları vurgular. Bu protokoller araştırmacı nöral organoid ile kanser hücresi etkileşimi hakkında soruya cevap yanı sıra dopaminerjik organoid ile doğrudan tarama sağlar.

Explore More Videos

Biyomühendislik Sayı 148 nöral organoid glioblastoma multiforme kanser kök hücreleri insan embriyonik kök hücreleri dopaminerjik nöronlar nörodejeneratif hastalık

Related Videos

İnsan Beyni Organoidlerini Oluşturmak için İn Vitro Bir Yöntem

03:33

İnsan Beyni Organoidlerini Oluşturmak için İn Vitro Bir Yöntem

Related Videos

903 Views

İnsan Embriyonik Kök Hücrelerinin Nöral Organoidlere Farklılaşması ve Olgunlaşması

03:52

İnsan Embriyonik Kök Hücrelerinin Nöral Organoidlere Farklılaşması ve Olgunlaşması

Related Videos

704 Views

iPSC türetilmiş İnsan Beyin Organoids oluşturulması Erken Nörogelişimsel Bozuklukları Model

07:40

iPSC türetilmiş İnsan Beyin Organoids oluşturulması Erken Nörogelişimsel Bozuklukları Model

Related Videos

21.6K Views

İnsan Embriyonik Kök Hücrelerinden Beyin Organoidleri Üretmek için Statik Kendi Kendini Yöneten Bir Yöntem

08:30

İnsan Embriyonik Kök Hücrelerinden Beyin Organoidleri Üretmek için Statik Kendi Kendini Yöneten Bir Yöntem

Related Videos

9.5K Views

Mitokondriyal Hastalık Modellemesi için İnsan Beyni Organoidlerinin Üretimi

08:09

Mitokondriyal Hastalık Modellemesi için İnsan Beyni Organoidlerinin Üretimi

Related Videos

6.9K Views

Beyin Nöronal Yaşlanmasını Modellemek için Kortikal Beyin Organoidlerinin Sağlam ve Yüksek Oranda Yeniden Üretilebilir Üretimi In Vitro

05:40

Beyin Nöronal Yaşlanmasını Modellemek için Kortikal Beyin Organoidlerinin Sağlam ve Yüksek Oranda Yeniden Üretilebilir Üretimi In Vitro

Related Videos

4.7K Views

Nöral Hücre Transplantasyonunun İnsan Serebral Organoid Modeli

08:58

Nöral Hücre Transplantasyonunun İnsan Serebral Organoid Modeli

Related Videos

2.1K Views

Genetik Modifikasyon için Primat Serebral Organoidlerinin Hedefe Yönelik Mikroenjeksiyonu ve Elektroporasyonu

11:44

Genetik Modifikasyon için Primat Serebral Organoidlerinin Hedefe Yönelik Mikroenjeksiyonu ve Elektroporasyonu

Related Videos

5.2K Views

Laboratuvar Mühendisliği: Glioblastoma Organoid Kültürü ve İlaç Taraması

10:49

Laboratuvar Mühendisliği: Glioblastoma Organoid Kültürü ve İlaç Taraması

Related Videos

1.5K Views

Gelişmiş mikro ve Nanopartikül Manipülasyon Plasmonic ve Fotonik Kristal Nanoyapıların Kullanımı

09:29

Gelişmiş mikro ve Nanopartikül Manipülasyon Plasmonic ve Fotonik Kristal Nanoyapıların Kullanımı

Related Videos

12.7K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code