Name: Zenginleştirilmiş İnsan Hafızası B Hücre Popülasyonlarından İstenilen Özgülliklerle Antikorların Seçimi ve Geri Kazanımı İçin Tek Hücreli Tarama Yöntemi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-08-22T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 s
Description: Öğrenin, BSelex yöntemiyle insan hafıza B hücrelerinden antijen-spesifik antikorların izolasyonu ve klonlanması. Akış sitometrisi, tek hücreli PCR ve ağır-hafif zincir çiftlerinin kurtarımı ile antikor keşif süreçlerini hızlandırın.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar Lucy Chammas, Martha Costa, Julie Kim, Nancy Heredia ve Jeremy Macedo birçok yöntem değişiklikleri ve mevcut BSelex platformunun arıtma kapsamlı test için teşekkür etmek istiyorum.

İnsan gönüllülerden alınan örneklerin kullanımı, Scripps Araştırma Enstitüsü Kurumsal İnceleme Kurulu tarafından onaylanan protokolleri takip etti. Kan bağışı ndan önce bağışçılardan bilgilendirilmiş onam alındı.
1. Reaktif Hazırlama
<ol><li>
Periferik kan mononükleer hücreleri (PBMCs)
	<ol>
<li>Ficoll-Plaque Plus izolasyonu ile normal insan donörlerinden periferik kan mononükleer hücrelerini kurtarın. %90 fetal sığır serumu (FBS) ve %10 dimetil sülfoksitte (DMSO) 50 milyon hücre/mL'de kriyokorun. Hücreleri -80 °C'de dondurun ve uzun süreli depolama için sıvı nitrojene aktarın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Sıralama için hedef antijen peptidlerin etiketleme
	<ol>
<li>Terminal biotin ile hedef proteine özgü (70 kalıntı uzunluğunda) peptidler oluşturun veya elde edin.</li>
		<li>Etiket 4 streptavidin ile her bir biyotinylated peptid kovalent PE bağlı (R-phycoerythrin) veya APC (allophycocyanin) ayrı tüpler. SA-PE ve 5,7 μM SA-APC için yaklaşık 3,2 μM son konsantrasyonu ile streptavidin (SA) için 9:1 peptid molar oranı kullanarak hazırlayın. Biotin tetramerleri negatif kontrol olarak hazırlayın.</li>
		<li>Her peptit karışımını bir gecede, karanlıkta, 4 °C'de yavaş karıştırma ile kuluçkaya yatırın.</li>
		<li>Polyakrilamid boncuklar içeren mikrosütunlar aracılığıyla etiketli peptidler geçirerek sınırsız florofor kaldırın.</li>
		<li>Peptit tetramerlerini 2 aya kadar 4 °C'de saklayın.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. Hücre Sıralama
<ol><li>CD22+ izolasyonundan önce en az 1 saat ila 16 saat, donör PBMC'leri eritin ve 37 °C'de dinlenmeye izin verin.
	<ol>
<li>Dondurulmuş PBMC şişelerini dondurucudan çıkarın ve hemen 37 °C'lik bir su banyosuna aktarın. Şişeler neredeyse çözüldüğünde, çalışma alanına aktarın.</li>
		<li>Her şişenin içeriğini önceden ısıtılmış ortam içeren 50 mL'lik bir tüpe aktarın (bağışçıları ayrı tutmak). 50 mL'lik son hacme orta ekleyin. İçeriği yavaşça karıştırın.</li>
		<li>Oda sıcaklığında 6 dk için 370 x g santrifüj. Supernatant atın, RPMI tam orta 15 mL hücreleri yeniden askıya ve bir hücre sayımı gerçekleştirin.</li>
		<li>Hücre konsantrasyonu 2,0 x 107 hücre/mL RPMI tam orta ile ayarlayın ve hücreleri t75 şişe veya daha büyük ve en az 1 saat ve en fazla 16 saat için 37 °C'de kuluçka ya da çözülmüş hücreler için kurtarma süresi sağlamak için tüp hücre aktarın.</li>
		<li>Hücreleri toplayın (istenirse havuz) ve santrifüj 370 x g'de 6 dk 4 °C'de. 5 mL buz gibi macs arabelleği (PBS, pH 7.6 %0.5 BSA ve 2 mM EDTA içeren) hücreleri atın, MACS arabelleği yle 50 mL'ye getirin ve hücre sayımı yapın.</li>
		<li>4 °C'de 7 dk için 400 x g'deki hücreleri santrifüj edin.</li>
		<li>CD22 mikroboncukları yakalayarak OLUMLU seçerek CD22+ B hücrelerini izole edin. Tüm yıkıntılar için MACS arabelleği kullanın. 4 °C'de 7 dk için 400 x g kont ve santrifüj. Beklenen iyileşme toplam PBMC nüfusunun %5-10'udur.</li>
		<li>Hücreleri mL FACS tamponu başına 40 milyon (Tris tampon, pH 8.0 %0.5 BSA ve 2 mM EDTA içeren) yeniden askıya alın ve bağışçıların hücre boyamasını tek tek veya havuz olarak devam ettirin.</li>
	</ol></li>
	<li>Bellek B hücre sıralama için leke hücreleri
	<ol>
<li>Sitometre kurulumu için bir hücre aliquot'u çıkarın ve kullanılan etiketleme floroforlarının her biri için tazminat alın. Bir denetim olarak lekesiz hücreleri ekleyin.</li>
		<li>Elde edilen CD22+ hücre sayısı için son boyama hacmini hesaplayın (100°L'de 2 milyon boyama).</li>
		<li>B hücreleri (CD19-PerCP-Cy5.5), IgG (IgG-FITC) ve bellek bölmesi (CD27-PECy7) için üreticilerin seyreltme önerilerine göre hücre dışı belirteçler ekleyin ve hafifçe karıştırın. Aliquot 107 hücreleri negatif kontrol için 1,5 mL tüp içine ve 15 mL tüp kalan hücreleri aktarın.</li>
		<li>Çift etiketli biotin-SA tetramerleri, her biri PE ve APC için 36 nM'lik son konsantrasyonla negatif kontrol tüpüne ekleyin ve facs tamponuyla (örn. 10 peptid x 36 nM=360 nM) hacmi 0,5 mL finale getirin.</li>
		<li>PE ve APC için her biri 36 nM'de sıralama tüpüne peptit tetramerleri ekleyin ve hücreleri TBS Tampon ile 100°L'de 2x10 6'ya getirin. Karanlıkta 4 °C'de ve 30-60 dk hafif rotasyonla kuluçkaya yatırın.</li>
		<li>Yıkama 2x 4 °C, 400 x g, 7 dk, son yıkamadan önce saymak için bir aliquot kaldırarak. 5 mL filtre kapağı tüpleri kullanarak hücreleri filtreleyin. HÜCRE ZARI bütünlüğünün bir belirteci olarak sıralamadan hemen önce 0,3 μM son konsantrasyonuna DAPI (4',6-diamidino-2-fenilindole) lekesini ekleyin.</li>
	</ol></li>
	<li>Akış sitometrisi ile tek hücreli sıralama
	<ol>
<li>Sıralama için 96 kuyulu PCR plakalardan 48 kuyu hazırlayın.<ol>
<li>Ana karışım hazırlayın: (2 μL 10x RT tampon, 0,5 μL RNase inhibitörü, 7,5 μL steril PCR sınıfı su) numune başına. Aliquot 10 μL/well, kapak ve sıralamaiçin hazır olana kadar 4 °C'de saklayın.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Hücre ayırıcısı üzerindeki negatif denetimi çalıştırın ve tüm örneği analiz edin.<ol>
<li>Tek hücre li sıralama için uygun hücre popülasyonlarını yalıtmak için akış sitometri kapılarını ayarlayın.<ol>
<li>Arsa FSC alan vs SSC alan ve lenfositler izole etmek için Gate R1 ayarlayın.</li>
				<li>FSC yüksekliği vs FSC genişliği arsa ve FSC doublets hariç Gate R3 ayarlayın.</li>
				<li>SSC yüksekliği vs SSC genişliği arsa ve SSC doublets hariç Gate R4 ayarlayın.</li>
				<li>SSC yüksekliği vs DAPI'yi çizin ve Canlı hücreleri yalıtmak için R5 Kapısı'nı ayarlayın (DAPI-).</li>
				<li>Çizim IgG vs CD19 ve IgG+ B hücreleri (CD19+ IgG+ )izole etmek için Kapı R6 ayarlayın.</li>
				<li>Çizim IgG vs CD27 ve bellek B hücreleri (CD27yüksek)seçmek için Gate R7 ayarlayın.</li>
				<li>Arsa Antigen-PE (Ag-PE) vs antijen-APC (Ag-APC) ve çift pozitif kapı olayların düşük sayıda bir Ag-PE+/ Ag-APC+ çeyrek olarak Gate R8 ayarlayın.</li>
			</ol>
</li>
		</ol>
</li>
		<li>Sinyalin gürültüye doğru belirlenmesi için antijen-pozitif (Ag+) örneğinden eşit sayıda bellek hücresi toplayın.</li>
		<li>Tek hücreleri cd19+ CD27+ Ag-PE+ Ag-APC+ (Gate R8) içeren tek hücreleri hazırlanmış 96 kuyulu PCR plakalarına sıralayın.</li>
		<li>Alüminyum bant pedleri ile kapak plakaları, 400 x g 1 dakika santrifüj ve gelecekteki klonlama için -80 °C'de saklayın.</li>
	</ol></li>
</ol>3. Tek Hücreli Klonlama
<ol><li>
Ters transkripsiyon reaksiyonları
	<ol>
<li>Tek B hücre sıralama plakasını 80 °C'den çıkarın. 2 dk. Açmadan önce kuyuların altındaki havuz içeriğini havuza 3.300 x g 2 dakika boyunca buz üzerinde çözülme.</li>
		<li>Ters astar olarak %10 non-iyonik deterjan ve oligo (dT) içeren bir dNTP/tampon ana karışımı hazırlayın. Tek hücreiçeren her kuyuya enzim karışımı ekleyin ve KARıŞTıRMAYıN.</li>
		<li>65 °C'de 5 dk kuluçka. Toplam hacmi 20 μL'ye çıkarmak için 100 mM DTT, RNase inhibitörü ve ters transkriptaz enzimi içeren enzim ana karışımını ekleyin.</li>
		<li>PCR adımlarını başlatmadan önce buza aktarma</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Çok adımlı iç içe PCR reaksiyonları
	<ol>
<li>Ağır zincir (HC) ve hafif zincir (LC) amplifikasyonu için ayrı iç içe pcr reaksiyonları kullanılır.</li>
		<li>PCR amplifikasyonunun ilk turu için (Adım I), hc ve LC değişken bölgelerini ayrı PCR reaksiyonlarında yükseltmek içinileri astar havuzu ve tek bir ters astar kullanın (Şekil 2). Tasarım olarak, ileri astar havuzu germline lideri (L) dizileri büyük bir yüzdesi yükseltmek ve ters astar ışık zincirleri için kappa (κ) ve lambda (λ) dahil olmak üzere her zincirin downstream sabit bölgelere özgüdür16.<ol>
<li>Her PCR (Adım I) reaksiyonu için şablon olarak 2,5 μL cDNA ürünü kullanın. Her biri için 1 μM'lik son reaksiyon konsantrasyonuna astar ekleyin. 10x polimeraz tamponu ile 2x konsantrasyonu iki katına çıkararak son hacmi reaksiyon başına 25°L'ye getirin. HC PCR reaksiyonlarını 50 döngü boyunca [94 °C/4 dk; 94 °C /15 s, 55 °C /20 s, 68 °C/60 s; 68 °C/3 dk] kullanarak çalıştırın. 50 döngü için [98 °C/4 dk; 98 °C /15 s, 72 °C /20 s, 72 °C/60 s; 72 °C/3 dk] kullanarak LC PCR reaksiyonlarını çalıştırın.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Her (Step II) PCR reaksiyonu için şablon olarak Adım I ürününün 2,5 μL'sini kullanın. HC ve LC (κ ve λ) çerçevesi 1 bölgesine özgü ileri astar havuzunu ve her antikor zincirinin bağlantı bölgesine özgü ters astar havuzunu ekleyin. 10x polimeraz tamponu 2x konsantrasyonuna iki katına çıkın ve Adım I ile aynı parametreleri kullanarak PCR reaksiyonlarını 50'şer döngü çalıştırın.</li>
		<li>Pozitif amplifikasyon vuruşlarını görselleştirmek için tamamlanmış PCR reaksiyonlarını %1 agarose jel üzerinde çalıştırın. Eşleştirilmiş ampliconları (aynı hücreden hem ağır hem de hafif zincir) kurtarın ve jel ekstraksiyonu yoluyla izole edin. Doğru ligasyon karışımı hesaplamaları için OD260 ile DNA parça konsantrasyonunu belirleyin.</li>
		<li>Kurtarılan ağır ve hafif zincir parçalarını bir bağlayıcı parçası ve ifade vektör omurgasını ticari bir kit kullanarak 4 parçalı ligasyon reaksiyonu kullanarak birleştirin.</li>
		<li>Ticari bir kit kullanarak kimyasal olarak yetkin bakterilere ligasyon reaksiyonları dönüştürün. Antibiyotik plakalara bir kez kaplandıktan sonra, kalan dönüşüm kültürüne 4 mL büyüme ortamı (antibiyotikle) ekleyin ve 250 rpm'de bir gecede 37 °C'de kuluçkaya yatırın. Bu "ligasyon karışımı kültür."</li>
		<li>Ticari bir kit kullanarak gece ligasyon karışımı kültürlerden miniprep DNA hazırlayın ve ortaya çıkan plazmid DNA konsantrasyonunu belirlemek.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. Antijen özgüllüğünün teyidi için ELISA Ekranı
<ol><li>
Transfect 10 μg miniprep DNA katyonik lipid bazlı reaktif ile 10 mL süspansiyon 293 hücre içine, ve 3-4 gün boyunca kuluçka 37 °C (8% CO2) ise 125 rpm döndü. Hasat için, santrifüj kültürü 10 dk 1.000 x g ve açıklık medya kurtarmak.
	<ol>
<li>Protein A'ya yakınlık yoluyla süpernatantlarda IgG konsantrasyonu ölçün.</li>
		<li>Her IgG'yi (supernatant içinde) 20 μg/mL'de enzime bağlı adsorbent testi (ELISA) ile streptavidin plakası üzerinde yakalanan veya negatif kontrol olarak aktin olarak yakalanan tek tek peptidlere karşı test edin. Rekombinant klonları tespit etmek için insan IgG Fab karşı bir keçi anti-insan peroksidaz ikincil antikor kullanın. Arka planın çıkarTını ndan sonra, OD > 0.5 ekran pozitif olarak tanımlanır.</li>
		<li>Ek bir ELISA gerçekleştirerek ekran pozitif vuruşlarını onaylayın, mL başına 20 g'dan başlayan bir konsantrasyon eğrisi oluşturmak için IgG süpernatant seyreltmelerini kullanarak ve ilk ekran ELISA'da reaktivite gösteren her bir antijen için OD'ye karşı çizim yaparak.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Su, K. Y., Watanabe, A., Yeh, C. H., Kelsoe, G., Kuraoka, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+Culture+of+Human+Naive+and+Memory+B+Cells+for+Use+as+APCs%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Efficient Culture of Human Naive and Memory B Cells for Use as APCs.</a> Journal of Immunology. 197 (10), 4163-4176 (2016).</li>
<li>Corti, D., Lanzavecchia, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Broadly+neutralizing+antiviral+antibodies%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Broadly neutralizing antiviral antibodies.</a> Annual Review of Immunology. 31, 705-742 (2013).</li>
<li>Steinitz, M., Klein, G., Koskimies, S., Makel, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((EB+virus-induced+B+lymphocyte+cell+lines+producing+specific+antibody%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">EB virus-induced B lymphocyte cell lines producing specific antibody.</a> Nature. 269 (5627), 420-422 (1977).</li>
<li>Bloom, A. D., Nakamura, F. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishment+of+a+tetraploid%2C+immunoglobulin-producing+cell+line+from+the+hybridization+of+two+human+lymphocyte+lines%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Establishment of a tetraploid, immunoglobulin-producing cell line from the hybridization of two human lymphocyte lines.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 71 (7), 2689-2692 (1974).</li>
<li>Olsson, L., Kaplan, H. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human-human+hybridomas+producing+monoclonal+antibodies+of+predefined+antigenic+specificity%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Human-human hybridomas producing monoclonal antibodies of predefined antigenic specificity.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 77 (9), 5429-5431 (1980).</li>
<li>Lechner, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alterations+in+Circulating+Immune+Cells+in+Neovascular+Age-Related+Macular+Degeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Alterations in Circulating Immune Cells in Neovascular Age-Related Macular Degeneration.</a> Scientific Reports. 5, 16754(2015).</li>
<li>Loken, M. R., Brosnan, J. M., Bach, B. A., Ault, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishing+optimal+lymphocyte+gates+for+immunophenotyping+by+flow+cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry%22%5BJournal%5D)">Establishing optimal lymphocyte gates for immunophenotyping by flow cytometry.</a> Cytometry. 11 (4), 453-459 (1990).</li>
<li>Pascual, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunological+memory+to+hyperphosphorylated+tau+in+asymptomatic+individuals%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Neuropathologica%22%5BJournal%5D)">Immunological memory to hyperphosphorylated tau in asymptomatic individuals.</a> Acta Neuropathologica. 133 (5), 767-783 (2017).</li>
<li>van Ameijde, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enhancement+of+therapeutic+potential+of+a+naturally+occurring+human+antibody+targeting+a+phosphorylated+Ser%28422%29+containing+epitope+on+pathological+tau%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Neuropathologica+Communications%22%5BJournal%5D)">Enhancement of therapeutic potential of a naturally occurring human antibody targeting a phosphorylated Ser(422) containing epitope on pathological tau.</a> Acta Neuropathologica Communications. 6 (1), 59(2018).</li>
<li>Gibson, D. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enzymatic+assembly+of+DNA+molecules+up+to+several+hundred+kilobases%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Enzymatic assembly of DNA molecules up to several hundred kilobases.</a> Nature Methods. 6 (5), 343-345 (2009).</li>
<li>Tiller, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+generation+of+monoclonal+antibodies+from+single+human+B+cells+by+single+cell+RT-PCR+and+expression+vector+cloning%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunological+Methods%22%5BJournal%5D)">Efficient generation of monoclonal antibodies from single human B cells by single cell RT-PCR and expression vector cloning.</a> Journal of Immunological Methods. 329 (1-2), 112-124 (2008).</li>
<li>Wrammert, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+cloning+of+high-affinity+human+monoclonal+antibodies+against+influenza+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Rapid cloning of high-affinity human monoclonal antibodies against influenza virus.</a> Nature. 453 (7195), 667-671 (2008).</li>
<li>Han, A., Glanville, J., Hansmann, L., Davis, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Linking+T-cell+receptor+sequence+to+functional+phenotype+at+the+single-cell+level%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Linking T-cell receptor sequence to functional phenotype at the single-cell level.</a> Nature Biotechnology. 32 (7), 684-692 (2014).</li>
<li>Apetri, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+common+antigenic+motif+recognized+by+naturally+occurring+human+VH5-51%2FVL4-1+anti-tau+antibodies+with+distinct+functionalities%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Neuropathologica+Communications%22%5BJournal%5D)">A common antigenic motif recognized by naturally occurring human VH5-51/VL4-1 anti-tau antibodies with distinct functionalities.</a> Acta Neuropathologica Communications. 6 (1), 43(2018).</li>
<li>Jones, H. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+basis+for+recognition+of+the+central+conserved+region+of+RSV+G+by+neutralizing+human+antibodies%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathogens%22%5BJournal%5D)">Structural basis for recognition of the central conserved region of RSV G by neutralizing human antibodies.</a> PLoS Pathogens. 14 (3), 1006935(2018).</li>
<li>Janssen Vaccines & Prevention B.B. US patent. , U.S. Patent Application No. 20170210787, Published July 27, 2017 (2017).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Burada sunulan yöntem akış sitometrisi ve tek hücreli klonlama birleştirir ve burada tanımladığımız yöntemler daha önce Tiller ve meslektaşları tarafından geliştirilen yöntemlere dayalı11. Çalışmaları, insanlarda b hücre repertifini tek tek hücre düzeyinde incelemek için monoklonal antikorların geri kazanımını ve klonlamalarını tanımlar. Çok aşamalı amplifikasyon astar stratejisi de dahil olmak üzere, bellek B hücrelerinin bir popülasyondan antijene özgü monoklonal antikorların geri kazanımı sağlamak için onların sürecinin ana bileşenleri ni uyarladık. Büyük değişiklik etiketli antijen "yem" eklenmesidir. Klonlama vektör omurgasının tek bir ifade plazmidi, germline repertuarının ek astar kapsamı (hem lider sırası hem de çerçeve 1) olarak değiştirilmesi dahil olmak üzere (ancak bunlarla sınırlı olmamak üzere) yayınlanan protokole ek uyarlamalar yapılmıştır. daha yüksek ekspresyon için süspansiyon HEK293 hücrelerinin transfeksiyonu ve PCR amplifikasyon sırasında yüksek sadakat polimerazların kullanımı.
Burada açıklanan yöntemler için, en kritik adımlar akış sitometrisi ve tek hücreli klonlama arasındaki geçiş yakındır. İlk olarak, plaka içine sıralanmış tek hücrelerin uygun yerleştirme esastır. Bırakma gecikmesini sıralayıcıda doğru şekilde ayarlamak önemli bir adımdır. Hedef sıra plakalarında statik bir silah kullanılmadığı sürece geri kazanım verimimizin önemli ölçüde düştüğünü bulduğumuzdan, düşük nem gibi çevresel faktörler de dikkate alınmalıdır. Hücre yerleşimini takiben, plakalar, hücrelerin kuyuların altındaki 10 μL arabellekle temas etmesini sağlamak için santrifüj edilir. Tüm bu önlemler moleküler biyoloji bölümünün başarılı olması için çok önemlidir. Tek bir hücrenin ters transkripsiyon reaksiyonu için koşullar alt-optimal ise, β-aktinin bile PCR amplifikasyonu zor olabilir. Sunulan yöntemin gücü milyonlarca hücreyi sorgulama ve sadece antijen reaktivite kriterlerini tercih edilen antijenle karşılaştıran ları sıralama yeteneğidir. Bu, sinyalin gürültü oranının mümkün olduğunca yüksek olmasını gerektirir ve bu da sıralamadan önce yem konsantrasyonlarını optimize ederek yapılır. Çift etiketli yem, floroforlardan birinin yüksek arka plana sahip olması durumunda ortaya çıkabilen yanlış pozitif hücrelerin iyileşmesini azaltmak için kullanılır. Birden fazla antijen yem kullanarak sinyal yapabilirsiniz: gürültü optimizasyonu daha zor, ama aynı anda birden fazla peptidler sorgulamak için yeteneği bu yöntemin başka bir yararıdır.
Kurtarma verimliliği düşük olduğunda, şablon cDNA'nın mevcut olduğunu doğrulamak için iç içe gelişmiş β-aktin astarları kümesi kullanılır. Bu yaklaşımın dezavantajı, kuyuda hücre bulunup bulunmadığını veya ters transkripsiyon reaksiyonunun başarısız olup olmadığını belirlemenin zor olması ve bu da sorun gidermenin zor olmasıdır. Bazen tersi meydana gelecek ve verimlilik beklenenden daha yüksektir. Ağır zincir için tipik iyileşme% 30-45 arasında ve hafif zincirler% 40-60 arasında, daha yüksektir. Her PCR reaksiyonu (Adım I & II) tek bir hücreden yükseltmek için 50 döngü kullanır. Toplam çevrim sayısının yüksek olması da bu yöntemi kontaminasyona karşı duyarlı hale getirir. Amplicons dizi analizi bir kirletici tanıtıldı veya alışılmadık yüksek kurtarma oranı meşru elde edilmiştir olup olmadığını belirlemek için kullanılabilir.
Bu yöntemin bir antijene karşı yerli insan antikorları kurtarmak için yarar birkaç önemli sınırlamaları vardır. İlk olarak, sadece etiketlenebilir çözünür proteinler akış sitometri için "yem" olarak kullanılabilir. Temsili sonuçlarda sunulan tür için, tau proteininden sentezlenmiş bir dizi üst üste binme peptidkullandık, çünkü tüm proteini kullanmak zor oldu. Doğrusal peptidlerin kullanımı muhtemelen en iyi değildir, çünkü doğrusal olmayan veya yapısal epitoplara karşı antikorların belirlenmesini sınırlayabilir. Ancak, tau karşı birkaç benzersiz antikorları tespit başardık ve bu şu anda daha fazladeğerlendirme8 geçiyor,9. Başka bir sınırlama moleküler biyoloji kurtarma ve IgGs klonlama düşük iş bölümüdür. İlk sıralama stratejisi milyonlarca hücrenin taranmasına olanak sağlar, ancak sonraki moleküler biyoloji işleme birden fazla aşamadan oluşur. Gibson Assembly10 gibi yeni teknolojileri dahil etmek için devam eden optimizasyon çabaları çeşitli adımları düzene, ancak darboğaz bireysel ağır ve hafif zincir çiftleri klonlama kalır.
"BSelex" yöntemi, bellek B hücrelerinin yüzeyinde antijen reaktivite gösteren hücreleri tanımlamak için ifade bcr kullanır, vedaha sonra akış sitometri 11 ile bu bireysel hücreleri kurtarmak 11,12. BCR'ye olan bu güven nedeniyle, yöntem bellek B hücre bölmesi ile sınırlıdır ve plazmablastlar gibi antikor salgılayıcı hücreleri (ASC) yakalamaz. Ancak, bu yaklaşım, ASC'lere kıyasla antijene özgü immünoglobinlerin daha geniş bir repertoresini kurtarmak için avantajlı olabilir. Grip aşılama çalışmaları reaktif ASCs genişletilmiş B hücre klonları az sayıda hakim olabilir iken, antijene özgü bellek B hücre nüfusu nadiren klonal olduğunu göstermektedir12. T hücrelerinin yüzeyindeki T hücre reseptörü (TCR), çeşitliliği en üst düzeye çıkarmak için gen düzenlemesi ve rekombinasyonda B hücre reseptörüne benzerlikler gösterir. Burada sunulan yöntemde anlatılanlara benzer tek hücreli yaklaşımlar, alfa ve beta zincirlerinin geri kazanımı ve tek hücreli klonlama dahil olmak üzere T hücre repertoisini değerlendirmek için geliştirilmiştir13. Ancak, TCR tanıma peptidler MHC molekülleri tarafından sunulmasını gerektirir, peptid özgü T hücrelerini tanımlamak için etiketli yem yaklaşımına önemli karmaşıklık ekleyerek. B hücrelerinin aksine, T hücreleri tüm değişken bölgenin yakınlık olgunlaşması tabi değildir, bu nedenle kısa CDR3 bölgesinin tanımlanması ve bazı yan diziler tanımlama ve yeniden yapılanma için gerekli olan tek şeydir. Son olarak, bu yöntem akış sitometrisi kullanarak IgG moleküllerinin tanımlanmasını açıklar, ancak farklı izotiplerin B hücrelerini tanımlamak için alternatif henotipik belirteçler kullanmak da mümkündür.
Şu anda, antijen özgüllüğünün fonksiyonel analizi ile yeni nesil sıralamatoplanan büyük miktarda veri bağlamak için geliştirilen yöntemler vardır, ancak bu yöntemler hala rafine edilmektedir. Sınırlamalarına rağmen, burada açıklanan yöntem hem enfeksiyöz hem de bulaşıcı olmayan hastalıklar için potansiyel terapötik değeri olan antikorları tanımlamak için kullanılmıştır8,14,15, ve güvenilir bir temsil b hücreleri veya geniş hücre kültürü kapsamlı manipülasyon olmadan, insanlardan ilgili antijen özgü IgGs kurtarmak için yaklaşım.

Antikorlar terapötik moleküllerin büyüyen bir sınıf, ve herhangi bir insan mevcut B hücre repertifiti bu tür antikorların potansiyel bir kaynağıdır. Bir insan donör kurtarıldı zaman, hiçbir adaptasyon veya "insanlaşma" gerektirir, diğer hayvan sistemlerinde üretilen antikorlar için gerekli olan adımlar. B hücre aktivasyonu ve proliferasyon 1, EBV dönüşümü ile ölümsüzleştirme1,ve hibridoma hücre hatlarının üretimi 4 dahil olmak üzere insan antikorlarının tanımlanması ve izole edilmesi için çeşitli yöntemler vardır. ,5. Ancak, tüm bu yöntemlerin tarama ve antijen özgü antikorlar kurtarmak için geniş hücre kültürü gerektirir. İnsan antikor repertuarı hakkındaki bilgiler, yeni nesil sıralama (NGS) teknolojisinin geliştirilmesiyle büyük ölçüde genişletilerek, donör örneklerinde bulunan büyük miktarda bireysel dizinin tanımlanmasına olanak sağladı. Ancak, NGS mevcut tüm dizilerin agnostik bir görünüm verir, bu tanımlama ve antijene özgü antikorların izolasyon, özellikle nadir veya düşük frekanslı antikorlar durumunda izin vermez.
"BSelex" yönteminin amacı, insan donörlerinde periferik kan mononükleer hücrelerinin dolaşımından kaynaklanan antijene özgü antikorları belirlemek ve daha fazla analiz için bu antikordizilerini izole etmek ve kurtarmaktır. Bu yöntem, bellek B hücrelerinin yüzeyinde ifade edilen B hücre reseptörü (BCR) yararlanmak için akış sitometrisi ve hücre sıralama kullanır. Daha düşük iş moleküler biyoloji yöntemleri başlatılmadan önce milyonlarca B hücresi akış sitometrisi yoluyla antijen özgüllüğü açısından taranabilir. Hücre dizilerini toplu olarak analiz eden ngs yöntemlerinin çoğunda eşleştirilmiş ağır ve hafif zincir tanımlaması mümkün değildir. Burada açıkladığımız yöntemde, hücreler ayrı ayrı izole edilir ve hem ağır hem de hafif zincir dizilerinin eşleştirilmiş olarak geri kazanımı mümkündür, bu da doğrudan klonlama ve tam IgG'nin ifade edilmesine olanak sağlar.

<table><tbody><tr><td>MoFlo Astrio EQ, Hücre Sıralayıcı</td><td>MoFlo</td><td></td><td>hücre sıralama</td></tr><tr><td>Biyotinillenmiş peptitler</td><td>New England Peptit</td><td></td><td>Hücre sıralama "yem"</td></tr><tr><td>Mikro Bio-spin P30 jel sütunu</td><td>BioRad</td> <td># 7326223</td><td></td></tr><tr><td>Streptavidin (R-PE)</td> <td>Thermo Scientific</td><td>SA10041</td><td></td></tr><tr><td>Streptavidin (APC)</td> <td>Thermo Scientific</td><td>S32362</td><td></td></tr><tr><td>CD22 Mikro Boncuklar, insan&nbsp;</td><td>Miltenyi</td> <td># 130-046-401</td><td></td></tr><tr><td>LS sütunları</td><td>Miltenyi</td> <td># 130-042-401</td><td></td></tr><tr><td>Ön ayırma filtreleri&nbsp;</td><td>Miltenyi</td> <td># 130-041-407</td><td></td></tr><tr><td>PerCp-Cy5.5 fare anti-insan CD19</td><td>BD Biosciences</td><td>BD # 340951</td><td></td></tr><tr><td>PE-Cy7 fare anti-insan CD27 & nbsp;</td><td>BD Biosciences</td><td>#560609</td><td></td></tr><tr><td>FITC fare anti-insan IgG</td><td>BD Biosciences</td><td>#560952</td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Life Technologies</td><td>#D21490</td><td></td></tr><tr><td>RNaseOUT</td><td>Life Technologies</td><td>#10777-019</td><td></td></tr><tr><td>Sığır serum albümini, Fraksiyon V</td><td>Sigma</td><td>#A4503</td> RPMI ortamı Hyclone#SH30096.01 <td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>HI FBS (Fetal sığır serumu)</td><td>Invitrogen</td><td>#10082147</td><td></td></tr><tr><td>Mastercycler Gradyan</td><td>Eppendorf</td><td>Model #6325</td><td>PCR makinesi</td></tr><tr><td>PCR 96 kuyucuklu plakalar</td><td>Phoenix</td><td>MPS-500</td><td></td></tr><tr><td>PCR Plaka paspasları</td><td>Phoenix</td><td>SMX-PCR96</td><td></td></tr><tr><td>Avantajı UltraPure PCR Deoksinükleotid Karışımı</td><td>Clontech</td><td>#639125</td><td></td></tr><tr><td>Üst Simge IV Birinci iplikli sentez sistemi</td><td>Invitrogen</td><td>#18091050</td><td></td></tr><tr><td>Phusion High Fidelity Polimeraz</td><td>Thermo Scientific</td><td>F-531-L</td><td></td></tr><tr><td>Platin polimeraz</td><td>Invitrogen</td><td>#10966108</td><td></td></tr><tr><td>Nükleaz içermeyen su</td><td>QIAGEN#</td><td>129114</td><td></td></tr><tr><td>Oligonükleotid primerleri</td><td>IDT</td><td>çeşitli</td><td>Tüm PCR adımları için primerler</td></tr><tr><td>Jel Ekstraksiyon Kiti</td><td>QIAGEN</td> <td># 28706</td><td></td></tr><tr><td>PCR Arıtma kiti</td><td>QIAGEN</td> <td># 28106</td><td></td></tr><tr><td>Miniprep Kiti</td><td>QIAGEN</td> <td># 27106</td><td></td></tr><tr><td>NEBuilder HiFi DNA Montajı Klonlama Kiti</td><td>New England Biolabs</td><td>E5520S</td><td>Gibson montajı</td></tr><tr><td>Expi293 İfade Ortamı</td><td>Invitrogen</td><td>#A14351-01</td><td></td></tr><tr><td>ExpiFectamine 293 Transfeksiyon Kiti</td><td>Invitrogen</td><td>#A14525</td><td></td></tr><tr><td>Opti-MEM Media</td><td>Invitrogen</td><td>#31985070</td><td></td></tr><tr><td>CO2 inkübatörü (Multitron)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Octet&nbsp; RED384 Sistem</td><td>Pall/ Forte Bio</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pierce Streptavidin Kaplı Yüksek Bağlama Kapasitesi Şeffaf 96 oyuklu Plakalar</td><td>Thermo Scientific</td> <td># 15500</td><td></td></tr><tr><td>Corning Costar 96 kuyulu Polistiren Plaka Yüksek Bağlayıcı Yarım Alan</td><td>Corning</td> <td># 3690</td><td></td></tr><tr><td>Keçi Anti-insan IgG Fab İkincil Antikor</td><td>Jackson Labs</td> <td># 109-036-097</td><td></td></tr><tr><td>Keçi Anti-fare HRP İkincil Antikor</td><td>Jackson Labs</td><td>#115-035-072</td><td></td></tr><tr><td>SureBlueTM TMB Microwell Peroksidaz Substratı (1 Bileşenli)&nbsp;</td><td>KPL</td> <td># 52-00-03</td><td></td></tr><tr><td>TMB Durdurma Çözümü</td><td>KPL</td> <td># 50-85-06</td><td></td></tr></tbody></table>

zenginleştirilmiş İnsan hafızası b hücre popülasyonlarından İstenilen Özgülliklerle antikorların seçimi ve geri kazanımı İçin tek hücreli tarama yöntemi

Single-cell Screening Method for the Selection and Recovery of Antibodies with Desired Specificities from Enriched Human Memory B Cell Populations

İnsan antikor repertifiti potansiyel terapötik antikorlar ve yararlı biyobelirteçler büyük ölçüde kullanılmayan kaynağı temsil eder. Yeni nesil sıralama (NGS) gibi mevcut hesaplama yöntemleri, dizi düzeyinde antikor repertoire üzerinde muazzam veri setleri verirken, belirli bir antijen veya dizi için hangi dizilerin ilgili olduğunu belirlemek için işlevsel veriler gereklidir. Antijen. Burada, periferik kan mononükleer hücrelerinden (PBMCs) insan kanı donöründen bireysel antijene özgü antikorları tanımlamak ve kurtarmak için bir yöntem açıklıyoruz. Bu yöntem olgun B hücrelerinin ilk zenginleştirme kullanır ve akış sitometri yoluyla IgG bellek B hücrelerini izole etmek için henotypik hücre belirteçleri ve floresan etiketli protein bir arada gerektirir. Ağır ve hafif zincir değişken bölgeleri daha sonra klonlanır ve yeniden taranır. Bellek B hücre bölmesi ile sınırlı olmasına rağmen, bu yöntem milyonlarca B hücresini sorgulamak için akış sitometrisinden yararlanır ve ifade ve özgüllük onayı için hazır bir biçimde tek bir hücreden eşleştirilmiş ağır ve hafif zincir dizilerini döndürür. Bu yöntemle geri lehte olan antikorlar terapötik potansiyel açısından düşünülebilir, ancak bireylerde B hücre repertifini değerlendirmek için özgüllük ve işlevi biyoinformatik yaklaşımlarla da ilişkilendirebilirler.

Bu yöntem insan donörlerden antijene özgü antikorları izole etmek için çok aşamalı bir süreci kapsar. Burada gösterilen temsili verilerde, hücreler, putatif fosforilasyon alanlarını taklit etmek için fosforitane peptidler de dahil olmak üzere tau proteininin çeşitli farklı alanlarını temsil eden floresan etiketli peptidler havuzu ile kuluçkaya yatırıldı. Bu peptidler tau epitopyaları(lar) ile reaktif olan hücreleri tanımlamak için "yem" olarak kullanılmıştır. Sıralamaya hazırlanırken, zenginleştirilmiş B hücre popülasyonu içindeki farklı hücre popülasyonlarını tanımlamak için floresan etiketli henotypik belirteçlerden oluşan bir panel kullanılmıştır. Hedef bellek B hücrelerini izole etmek için bir dizi sitometri kapısı geliştirildi (Şekil 1). Lenfositler hücre büyüklüğüne ve granüleritliğine göre ileri dağılım (FSC) ve yan dağılım (SSC) akım sitometrisi6,7çizimleri kullanılarak izole edildi. Birden fazla hücre ("doublets") ve ölü hücrelerin dışlanmasından sonra, henotibik belirteçler IgG+ bellek B hücrelerinin IgG, CD19 (B hücresi) ve CD27 (bellek) üzerinden ayrılmasına olanak sağladı. Bu yaklaşımda, CD27 işaretçisi iki ayrı popülasyona dağılmaz, bu nedenle CD27+ ifade hücrelerinin en üst E'i son kapıya dahil edilir. Son olarak, hem APC hem de PE floroforlar için çift pozitif hücreler, peptidlerin her iki etiketli versiyonlarına reaktiviteyi gösteren gating grafiğinin sağ üst kadranda dağıtır. Çekilen kapının içine düşen hücreler izole edildi ve 96 kuyuluk bir plakanın tek tek kuyularına ayrı şıldı. İki farklı etiketli antijenin kullanılması sinyal-gürültü oranını artırır ve sonraki moleküler biyoloji sürecinde yanlış pozitif lerin sayısını azaltır. Sıralanmış hücreler son kapıdaki bellek B hücrelerinin yaklaşık %0,1'ini ve başlangıç hücre örneğinin %0,001'ini temsil eder.
Tek hücreli klonlamanın ilk okuması, ilgili ağır ve hafif değişkenzincirlerin amplifikasyonunun doğrulanmasıdır (Şekil 2). Her iki amplikonlunın eşleştirilmiş geri kazanımı istendiğinden, PCR reaksiyonları agarose jel üzerinde yan yana değerlendirilir ve eşleşen çiftler jelden çıkarılır ve DNA parçaları çıkarılır. Amplifikasyon tipik verimliliği% 30-50 ağır zincir ve% 50-70 hafif (kappa) zinciridir. Eşleştirilmiş amplikonrların geri kazanımı genellikle %-40 arasında verimliliktir. Bu verimlilik donör havuzları arasında farklılık gösterir ve temsiliveriler (Şekil 3) 24 tek hücreden (B eşleştirilmiş kurtarma) çok verimli bir amplifikasyon örneğidir. IgG klonlama sonra, IgG ifade vektörinsan embriyonik böbrek içine transfected (HEK-293) süspansiyon hücreleri, hangi ifade maksimize etmek için kullanılır. Serumsuz ortam kullanımı rekombinant antikor hazırlığındaki kirletici proteinleri azaltır ve sonraki bağlayıcı tahlillerde gürültüyü en aza indirmeye yardımcı olur. Kurtarılan antikorlar tau peptidlerin orijinal paneline karşı taranır ve ELISAtarafından reaktivite için puanlandırılır (Şekil 4). Pozitif antijen reaktivitesini göstermek için od = 0.5'in ilk eşiği kullanılır ve β-aktin proteini spesifik olmayan bağlanma için bir kontrol olarak kullanılır. Akış sitometrisi ve sıralama adımları karışık bir peptid havuzu kullanıyorsa, tarama ELISA kurtarılan IgG'lerin spesifik reaktivitelerini deconvolutingin ilk adımıdır. 10 IgG'den üçü fosforiile CBTAU2.1 peptidine karşı reaktivite gösterdi ve biri fosforilasyonsuz CBTAU27.1'e reaktif tiyatuyet oldu (Şekil4A). İlave doğrulama, ilk ekranda tanımlanan peptidlere karşı aynı rekombinant antikor örneklerinin konsantrasyon eğrisi ve negatif kontrol olarak ek bir peptid kullanılarak tamamlanmıştır (Şekil4B). Her pozitif vuruş için, tek bir plazmid klon dönüştürülmüş havuzdan izole edildi ve aynı ELISA yöntemi ile yeniden doğrulandı. Sadece Klon 34'e sunulan veriler gösterilmiştir ve fosforilasyonsuz CBTAU27.1'e reaktivite doğrulanırken, fosforlu 27.1 peptid ile daha düşük afinite bağlama gözlenmiştir (Şekil 4C).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59809/59809fig1.jpg"> Şekil 1 : Akım sitometrisi ile antijen-reaktif tek hücrelerin izolasyonu. (A) Gösterilen lenfosit popülasyonu çizilen kapı içinde yer aldığı temsili bir arsadır. (B) İleri ve yan dağılıma dayalı kapılar (FSC yüksekliği v FSC genişliği (R3); SSC- yükseklik v SSC- genişlik (R4)) doublets hariç kullanılmıştır. Sonraki parsellerde sadece çizilen kapılardaki hücreler değerlendirildi. DAPI+ hücreleri ölü olarak kabul edildi ve dışlandı (R5). Bu deneyde 3.7 x 107 "canlı" hücreler sorgulandı. Canlı hücrelerin çoğu B hücreleri (CD19+) ve IgG+ hücreleri (%4.66) idi. bu popülasyondan izole edilmiştir (R6). CD27+ifade bellek hücrelerinin üst C,2'si seçim kapısına (R7) dahil edildi. (C) Quadrant 2 (Q2) etiketli antijenlere (peptit-APC v peptid-PE) reaktif hücreler içeriyordu ve bu hücreler ayrı ayrı 96-well plakaiçine alındı. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59809/59809fig1large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59809/59809fig2.jpg"> Şekil 2 : PCR amplifikasyonu klonlama için IgG ağır ve hafif değişken dizikurtarır. (A) Hem ağır (VH) hem de hafif (Vk veya Vl) zincir değişken bölgeleri iç içe pcr reaksiyonları kullanılarak kurtarılır. Adım I astarlar yerli lider dizisinden ileri ye doğru yükseltmek ve sabit bölge içinde ters. Birden fazla ok, olası mikropların geniş kapsama alanını sağlamak için kullanılan 7-12 astarlık bir havuzu temsil eder. Adım II astarlar, değişken açık okuma çerçevesinin aşırı uçlarına özgü iç içe ve ifade vektöründe bitişik sıraya homolog olan amfikonların uçlarına sıra eklenir. (B) Bağlayıcı sabit hafif zincir (Ck veya Cl), ağır zincir organizatörü ve yerli olmayan bir sinyal peptid dizisi takip oluşur. Amplicons, bağlayıcı ve plazmid omurga aynı anda Step II PCR amplifikasyon sırasında oluşturulan örtüşen homolog dizisi ile ligated, ve bozulmamış plazmid olarak izole. Son ifade vektöründeki rekombinant ağır ve hafif zincirler bağımsız (ve özdeş) CMV destekçileri tarafından tahrik edilir ve ayrı proteinler olarak tercüme edilir. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59809/59809fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59809/59809fig3.jpg"> Şekil 3 : IgG ağır ve hafif değişken zincirli amplikonlar tek hücreden elde edilir. İç içe pcr reaksiyonları (Step II) doğrudan% 1 agarose jel üzerine yüklendi ve görselleştirilmiş. Aynı hücreden gelen ağır zincir (H) ve kappa hafif zincir (L) PCR reaksiyonları bitişik kuyulara yüklenmiş, böylece eşleştirilmiş amfinler kolayca gözlemlenmiştir. Başarılı ağır ve hafif zincir ürünleri sırasıyla yaklaşık 400 bp ve 350 bp vardır. Eşleştirilmiş amfikonların başarılı bir şekilde kurtarılması bir (*) ile gösterilir. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59809/59809fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59809/59809fig4.jpg"> Şekil 4 : Antijen özgüllüğü rekombinant IgGs'den doğrulanır. Kurtarılan ağır ve hafif zincir dizilerini içeren plazmidler ifade için HEK hücrelerine aktarılır. Dört gün sonra rekombinant antikorlar ELISA tarafından reaktivite için değerlendirilir. (A) Açıklığa kavuşturulan ortamdaki IgG konsantrasyonu ölçüldü ve 20 g/mL'ye seyreltildi. Sıralama için kullanılan peptidhavuzu streptavidin plakalarında her kuyuda 40 pmol kullanılarak ayrı ayrı değerlendirildi. Tüm IgG'ler yinelenen kuyularda test edildi. (B) OD450 ölçümü &gt;0.5 görüntülenen klonlar ekranda tanımlanan peptidlere karşı 1:5 seyreltme adımı kullanılarak yeniden değerlendirildi (klonlar #32, #34, #35) yeniden değerlendirildi. (C) Bir kez bir hit olarak doğrulandı, tek bir plazmid klon dönüştürülmüş ligasyonlar #34 klon izole edildi, transfected, ve ELISA tarafından reconfirmed. Aynı klonlar #32 ve #35 (veri gösterilmez) için yapıldı. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59809/59809fig4large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>

BSelex yöntemi tanımlamak ve insan periferik kan mononükleer hücrelerden bireysel antijen özgü antikorlar kurtarmak için tek hücreli PCR ve klonlama ile akış sitometri birleştirir.

Zenginleştirilmiş İnsan Hafızası B Hücre Popülasyonlarından İstenilen Özgülliklerle Antikorların Seçimi ve Geri Kazanımı İçin Tek Hücreli Tarama Yöntemi

The human antibody repertoire represents a largely untapped source of potential therapeutic antibodies and useful biomarkers. While current computational ...

Bu protokol, nadir, antijene özgü B hücrelerini tanımlamak için insan donörlerin bağışıklık repertoirelerini sorgulamak için kullanılabildiği için önemlidir. Bu teknik bize hızla klonlanabilir yerli eşleştirilmiş ağır ve hafif zincirler elde etmek için izin verir, ve daha sonra doğrudan ilgi antijen veya antijenlere karşı test edilebilir. Prosedürü gösteren Mike Morton, laboratuarımızdan bir teknisyen.Erime ve iyileşmeden en az bir saat sonra, donör PBMC'yi santrifüj ile toplayın. Ve 50 mililitre lik buz gibi mes tampondaki hücreleri tekrar askıya alın. Hücreleri başka bir santrifüj le peletleyin ve STANDART protokollere göre CD22 mikroboncukları ile pozitif seçilerek CD22-pozitif B hücrelerini izole edin.Boncuk izole CD22-pozitif hücreleri santrifüj ile toplamak ve Vax tampon konsantrasyonu mililitre başına yedinci hücrelere dört kez 10 hücreleri resuspend. Nazik karıştırma ile üreticinin seyreltme önerilerine göre hücrelere bir IgG CD19 CD27 antikor kokteyl ilerve aliquot 10 negatif kontrol için 1.5 mililitre mikrosantrifüj tüp içine yedinci hücrelere. Bir PE ve APC ile her 36 nanomolar son konsantrasyonunda negatif kontrol tüpü ne çift etiketli biotin steptavidin tetramers ekleyin, sıralama tüp peptidlerin sayısı ile çarpılır.Taze Vax tampon ile her tüp 2,5 mililitre son hacmi getirin ve 36 nanomolar her PE ve APC de tüp sıralama peptid tetramerleri ekleyin. Santrifüjden sonra hücreleri, 30 ila 60 dakikalık bir kuluçka için 100 mikrolitre de 6'ya kadar, karanlıkta, dört santigrat derecede, rotasyonla iki katına getirin. Kuluçka sonunda, örnekleri tek tek beş mililitrelik filtre kapağı tüplere sokmadan önce hücreleri yıkama başına taze TBS tamponuyla iki kez yıkayın.Hücre zarı bütünlüğünün bir belirteci olarak DAPI 0.3 mikromolar son konsantrasyonu ile leke örnekleri. Ve tek hücre sıralama için uygun hücre popülasyonları izole etmek için akış sitometri kapılarını ayarlamak için hücre ayırıcıüzerinde tüm negatif kontrol çalıştırın. Antijen PE karşı antijen APC arsa ve bir antijen PE-pozitif olarak R8 kapı ayarlamak, ve Çift pozitif kapı olayların düşük sayıda APC-pozitif çeyreği.Sonra, tek CD19-pozitif CD27-pozitif antijen PE-pozitif sıralamak, bir Master Mix bireysel kuyular içine antijen APC-pozitif hücreleri 96 iyi plaka hazırladı. Sıralamanın sonunda, alüminyum bant pedleri ile plaka kapağı ve eksi 80 derece depolama önce 400 kez g bir dakika hücreleri santrifüj. Ters transkriptaz reaksiyonu gerçekleştirmek için, plakayı 3300 kez g'de iki dakika döndürmeden önce buz üzerinde sıralanmış B-hücrelerini iki dakika eritin ve kuyu içeriğini açmadan önce plakanın altına çekin.Uygun bir enzim Master Mix ile hücreleri tedavi ettikten sonra, her PCR reaksiyonu için bir şablon olarak ücretsiz DNA 2,5 mikrolitre ekleyin ve her reaksiyon için 1 mikromolar son konsantrasyonuna astar ekleyin. Daha sonra, reaksiyon başına 25 mikrolitre son hacmi getirmek için her iyi 10X polimeraz tampon 2X konsantrasyonu ekleyin. Ve her biri 50 döngü boyunca ağır ve hafif zincirLI PCR reaksiyonlarını çalıştırın.Reaksiyonların sonunda, pozitif amplifikasyon isabetleri görselleştirmek için% 1 agarose jel üzerinde örnekleri çalıştırın. Jel çıkarma yoluyla aynı hücreden eşleştirilmiş ağır ve hafif zincir reaksiyonlarını izole edin. Doğru ligasyon karışımı hesaplamaları için DNA parça konsantrasyonunu optik yoğunluk 60'a göre belirleyin.Kurtarılan ağır ve hafif zincir parçalarını bir bağlayıcı parçası ve ifade vektör omurgası ile üreticinin talimatlarına göre dört parçalı ligasyon reaksiyonu kullanarak birleştirin. Ve üreticinin talimatlarına göre kimyasal olarak yetkin bakterilere ligasyon reaksiyonları dönüştürmek. Bir kez antibiyotik plakaları üzerine plakalı, dakikada 250 rotasyonlar 37 santigrat derece de kuluçka için kalan dönüşüm kültürüne antibiyotik ile büyüme orta dört mililitre ekleyin.Ertesi sabah, üreticinin talimatlarına göre bir gecede ligasyon karışımı kültürlerden bir miniprep DNA hazırlamak ve ortaya çıkan plazmid DNA konsantrasyonunu belirlemek. İzole antikorların antijen özgüllüğünü doğrulamak için, 293 hücrenin 10 mililitrelik süspansiyonunda katyonik lipid baz reaktifi ile miniprep DNA'nın transfect 10 mikrogramı. Hücre kültürünü 3-4 gün 37 santigrat derece, %8 karbondioksit ve dakikada 125 dönüşle kuluçkaya yatırın.Kuluçka sonunda, 1000 kez g 10 dakika kültür santrifüj ve açıklık orta kurtarmak. Protein A'ya yakınlık yoluyla süpernatanttaki IgG konsantrasyonu ölçün ve her antikoru elisa tarafından mililitre konsantrasyonu başına 25 mikrogramda standart ELISA protokollerine göre sıralamaiçin kullanılan bireysel peptidlere karşı test edin. Daha sonra, mililitre başına 20 mikrolitreden başlayan ve ilk ekran ELISA'ya reaktivite gösteren her antijen için optik yoğunluğa karşı çizim yapmak için IgG supernatant seyreltmelerini kullanarak ekran pozitif vuruşlarını onaylayın.Antijene özgü antikorları insan donörlerinden izole etmek için, hedef bellek B-hücrelerini izole etmek için bir dizi sitometri kapısı tasarlanabilir. Lenfositler ileri ve yan dağılım kullanılarak hücre büyüklüğüne ve granüleritliğine göre izole edilirler. Doublets ve ölü hücrelerin dışlanmasından sonra, henotibik belirteçler IgG-pozitif CD19-pozitif B-hücrelerinin ve CD27-pozitif bellek B-hücrelerinin ayrılmasına olanak sağlar.Tek hücreli klonlamanın ilk okuması, ilgili ağır ve hafif değişken zincirlerin amplifikasyonunun bir teyididir. Burada, PCR gösterildikten sonra %42 eşleştirilmiş kurtarma ile 24 tek hücreden çok verimli bir amplifikasyon örneği. IgG klonlama sonrasında, IgG ekspresyonu vektörü insan embriyonik böbrek 293 hücrelerine geçirilir.Kurtarılan antikorlar ELISA tarafından reaktivite için puan Tau peptidler orijinal paneli karşı taranır. Ek onay daha sonra ilk ekranda tanımlanan peptidler karşı aynı rekombinant antikor örneklerinin bir konsantrasyon eğrisi kullanılarak tamamlanır. Her pozitif vuruş için, tek bir plazmid klon dönüştürülmüş havuzdan izole edilebilir ve aynı ELISA yöntemi ile yeniden teyit edilebilir.Amaç tek hücrelerden gelen dizileri yükseltmektir, bu nedenle hatırlanması gereken en önemli şey, bu işlemin PCR kısmı sırasında herhangi bir kontaminasyonun arttırılmasıdır. Bu prosedür, üretmek istediğiniz kadar antikor saflaştırma ve fonksiyonel karakterizasyonu sağlar bozulmamış insan rekombinant antikorlar, verir.

single-cell-screening-method-for-selection-recovery-antibodies-with

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Biz tek bir insan kan bağışında düzenleyici, bellek ve naif T hücreleri oluşturmak için bir yöntem açıklanmaktadır. Polarize Tregs sonra da burada ayrıntılı bir bastırma testi dahil olmak üzere genetik homojenlik ile genetik ve fonksiyonel uygulamalar çeşitli diğer komutlara göre olabilir.

İlköğretim İnsan naif ve Bellek T Hücreleri gelen İsteyerek Düzenleyici T Hücreleri Üretimi

Epitopa spesifik T-hücrelerinin alçak frekans popülasyonları izole etmek ve akış sitometrisi ile analiz etmek için bunları MHC tetramerleri ve manyetik mikro-küreler: Bu protokol peptit kullanımı açıklanmıştır. Bu yöntem ilgi endojen T hücre popülasyonlarının doğrudan çalışma...

Peptid: Epitop-spesifik T-hücrelerinin MHC tetramer bazlı Zenginleştirme

Video, immünomanyetik hedefleme ve periferik kan mononükleer hücre süspansiyonundan ayırma yoluyla B hücrelerini saflaştırmanın bir yolunu açıklıyor. Yöntem, istenmeyen hücre tiplerinin, manyetik ayırma yoluyla heterojen hücre süspansiyonundan tükenecek olan spesifik hücre yüzey proteinlerini hedefleyen spesifik antikorlar veya ligandlar (manyetik parçacıklara bağlı) ile etiketlenmesini içerir.

Negatif İmmünomanyetik Seçim: Periferik Kan Mononükleer Hücrelerinden B Hücrelerini Saflaştırmak İçin Bir Yöntem

Bu videoda, B olmayan hücrelere özgü biyotinile antikorlar ve streptavidin konjuge manyetik mikro boncuklar kullanarak B hücrelerinin insan periferik kanından izolasyonunu gösteriyoruz.

İnsan Periferik Kanından B Hücrelerinin İzolasyonu ve Saflaştırılması

Bu video, antikor salgılayan B hücrelerinin, ASC'lerin işlevini değerlendirmek için ELISpot testinin kullanımını göstermektedir. ASC'ler tarafından salgılanan antikorlar, enzim konjuge IgG veya IgM antikorları tarafından tespit edilen zara bağlı poliklonal antikor fragmanları ile etkileşime girer. Her bir oyukta üretilen renkli nokta, B hücrelerinin salgı aktivitesi ile ilişkili olan spesifik antikorun izotipinin varlığını gösterir.

Antikor Salgılayan B Hücrelerinin ELISpot Testi Kullanılarak Fonksiyonel Değerlendirmesi

Burada göbek kordon kanı habercisi alt B-hücreleri izole etmek için bir protokol açıklar. Nükleik asitlerin yeterli bir miktarı ve kalitesi hücrelerinden çıkarılır ve DNA ya da RNA kullanılarak daha sonraki deneylerde kullanılabilir.

Kordon Kanı gelen Prekürsör B-hücreli altkümeleri İzolasyonu

İnsan monoklonal antikorlarının sentezi, oto-antikor aracılı immün yanıtların patofizyolojik mekanizmalarını çözmeyi amaçlayan çalışmaların ilk basamağıdır. B hücresi izolasyonu, antikor klonlaması ve in vitro sentez dahil olmak üzere kanla sınıflandırılmış B hücrelerinden rekombinant insan immünoglobulin G (IgG) monoklonal antikorları üretmek için bir protokol geliştirdik.

Ölümsüzleştirilmiştir Sıralama B hücrelerinden Rekombinant İnsan IgG Monoklonal Antikorlarının Üretimi

İnsan periferik kanı, humoral immün yanıtın değerlendirilmesi için yaygın olarak kullanılır. Burada, insan B hücrelerini periferik kandan izole etme, insan B hücrelerini kültürde antikor (Ab) salgılayan B hücrelerine (ASC'ler) ayırma ve bir ELISpot testi ile toplam IgM ve IgG-ASC'leri numaralandırma yöntemleri açıklanmaktadır.

İzolasyon, Farklılaşma ve Niceleme İnsan Kanı B Hücreleri Antikor salgılayan: ELISPOT Hümoral Bağışıklık bir Fonksiyonel Göstergesi&#39;nin olarak

Fonksiyonel ve fenotipik analizi için antijene reaktif B hücreleri tespit etmek ve ettirecek bir manyetik nano-tanecikleri kullanır basit ama etkili bir yöntem tarif edilmiştir.

Fenotip ve Fonksiyon Analizi için algılama ve Nadir zenginleştirilmesi antijene özgü B hücreleri

Biz insan kanında dolaşan nadir B hücreleri başlayarak insan antikorlar faiz, bir antijen için belirli üretim için bir yöntem açıklanmaktadır. Bu doğal antikorlar nesil verimli ve hızlı ve elde edilen antikor arasında son derece ilgili antijenleri ayırt edebilirsiniz.

Kanda dolaşan nadir antijen spesifik B hücreleri Discriminative insan monoklonal antikorların üretimi

Çok adımlı kültür sistemleri kullanarak, biz in vitro bir B hücre plazma hücre farklılaşması modeli için rapor.

Uzun ömürlü plazma hücreleri insan Normal bellek B hücrelerine vitro farklılaştırma modelinde

Öğrenin, BSelex yöntemiyle insan hafıza B hücrelerinden antijen-spesifik antikorların izolasyonu ve klonlanması. Akış sitometrisi, tek hücreli PCR ve ağır-hafif zincir çiftlerinin kurtarımı ile antikor keşif süreçlerini hızlandırın.

Zenginleştirilmiş İnsan Hafızası B Hücre Popülasyonlarından İstenilen Özgülliklerle Antikorların Seçimi ve Geri Kazanımı İçin Tek Hücreli Tarama Yöntemi (Video) | JoVE Journal

Zenginleştirilmiş İnsan Hafızası B Hücre Popülasyonlarından İstenilen Özgülliklerle Antikorların Seçimi ve Geri Kazanımı İçin Tek Hücreli Tarama Yöntemi

Daha fazla video keşfet