-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
CRISPR-Cas9 kullanılarak Bal Arısı Beyin Bölümlerinde Anti-RDL ve Anti-mGlutR1 Reseptörleri Antik...
CRISPR-Cas9 kullanılarak Bal Arısı Beyin Bölümlerinde Anti-RDL ve Anti-mGlutR1 Reseptörleri Antik...
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
Anti-RDL and Anti-mGlutR1 Receptors Antibody Testing in Honeybee Brain Sections using CRISPR-Cas9

CRISPR-Cas9 kullanılarak Bal Arısı Beyin Bölümlerinde Anti-RDL ve Anti-mGlutR1 Reseptörleri Antikor Testi

Full Text
8,591 Views
09:25 min
January 30, 2020

DOI: 10.3791/59993-v

Irina Sinakevitch1,2, Zev Kurtzman*2, Hyun G. Choi*2, David Arturo Ruiz Pardo3, Romain A. Dahan2, Nathaniel Klein1, Branimir Bugarija4, Erik Wendlandt4, Brian H. Smith2

1Department of Neuroscience,University of Arizona, 2School of Life Sciences,Arizona State University, 3Department of Scientific and Technologic Investigations,University of Sonora, 4Integrated DNA Technologies, Inc.

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a protocol employing the CRISPR-Cas9 system to modify the expression of specific proteins in the adult honeybee brain, specifically targeting GABAA and metabotropic glutamate receptors. The aim is to investigate the roles of these proteins in learning and memory, as well as to assess antibody specificity against them.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Genetics
  • Behavioral biology

Background

  • Previous studies have explored gene modifications in various species.
  • The CRISPR-Cas9 system is a powerful tool for gene editing.
  • The honeybee presents a unique model for studying learning and memory mechanisms.
  • Antibody specificity is crucial for validating protein functions.

Purpose of Study

  • To use CRISPR-Cas9 to reduce protein production in the honeybee brain.
  • To investigate the effects of targeted genetic modifications on cognitive functions.
  • To facilitate testing of antibody specificity toward GABAA and glutamate receptors.

Methods Used

  • CRISPR-Cas9 gene editing and immunocytochemical analysis were employed.
  • Adult honeybee brains were the biological model used for the interventions.
  • Key steps involved RNA guide design, formation of ribonucleoprotein complexes, and microinjection into bees.
  • Injected bees were monitored and subsequently prepared for confocal imaging of brain sections.

Main Results

  • Targeted silencing of proteins resulted in distinct changes in protein expression levels, as verified by immunocytochemistry.
  • There were observable differences in neural structures, enhancing the understanding of receptor roles in learning and memory.
  • The study highlights the specificity of antibodies used for imaging in modified bees.

Conclusions

  • This protocol enables detailed investigation of gene function in honeybees.
  • It provides a framework for further studies on neural mechanisms involved in behavior.
  • The method may have broader applications for studying neuronal plasticity and cognitive functions across species.

Frequently Asked Questions

What advantages does the honeybee model offer?
The honeybee model allows for intricate studies of learning and memory mechanisms in a controlled laboratory environment.
How is the gene editing performed in honeybees?
Gene editing is executed via microinjection of CRISPR-Cas9 ribonucleoprotein complexes into specific areas of the bee brain.
What types of data are generated from this study?
Data includes fluorescence imaging of brain sections and quantification of protein expression changes post gene editing.
Can this method be adapted for other organisms?
Yes, the protocol can be potentially adapted for other insect models, broadening its application in neuroscience research.
What are some limitations of this approach?
Potential limitations include challenges in the efficiency of gene editing and the need for precise microinjection techniques.

Burada sunulan bir protokol antikor özgüllüğünü test etmek için yetişkin bal arısı beyninde bir protein üretimini azaltmak için CRISPR-Cas9 sistemi kullanmaktır.

İlk defa yetişkin bal arısı beyninde nöronların alt kümelerinde iyonotropik GABAA ve metabotropik glutamat reseptörleri için kodlanmış genlerin bir modifikasyonu kurduk. CRISPR-Cas9 gen düzenleme kontrollü laboratuvar koşulları altında öğrenme ve bellek rollerini keşfetmek için yetişkin arı beyinlerinde bir veya birden fazla gen değiştirmek için kullanılabilir. Bu yöntem, erişkin arılarda spesifik proteinlerin işlevini incelemek ve antikorların ilgili proteinlere karşı özgüllüğünü test etmek için kullanılabilir.

Irina Sinakevitch ile prosedürü gösteren Lev Kurtzman ve Hyun Choi, benim laboratuvar eski lisans olacak. CRISPR-Cas9 enjeksiyonundan sonra rdl ve mGlutR1 ekspresyonunu immünositokimyasal analiz ile test etmek için, ilk olarak, apis mellifera, RDL ve mGlutR1 kılavuz DNA dizisini kullanarak kılavuzları tasarlamak için çevrimiçi CRISPR-Cas9 aracını kullanın. Her kılavuz RNA için kılavuz RNA karmaşık oluşumları hazırlamak için, kılavuz RNA adı ile her kılavuz için bir test tüpü etiketve nükleotit içermeyen tampon 92 mikrolitre, 100 mikromolar florofor dört mikrolitre, CRISPR RNA transactivating etiketli ve her tüp için uygun kılavuz RNA çözeltisi dört mikrolitre ekleyin.

Tüm malzemeler eklendiğinde, çözeltileri nazikçe karıştırın ve çözeltiyi tortulamak için tüp içeriğini beş saniye boyunca tezgah üstü bir santrifüjde döndürün. Ardından, çözümleri 5 dakika boyunca 95 dereceye kadar saklayarak bir kılavuz RNA kompleksi ve ardından oda sıcaklığında 10 dakikalık soğuma oluşturun. Ribonükleoprotein kompleks oluşumları hazırlamak için uygun etiketli tüplere her kılavuz RNA çözeltisinin altı mikrolitreve mikrolitre Başına 0,5 mikrolitre SP-Cas9 nükleaz V3 ekleyin.

Nazik karıştırma sonra, enjeksiyon için RNP ribonükleoprotein karışımları yapmak için 10 dakika boyunca 37 derece santigrat çözeltiler kuluçka, kuluçka sonunda uygun RDL her ribonükleoprotein dört mikrolitre ekleyin. Bir kontrol yapmak için, kılavuzsuz RNA çözeltisi dört mikrolitre tracer RNA ile 92 mikrolitre tampon ve dört mikrolitre su karıştırın. Su ilavesi sonra, 95 santigrat derece beş dakika boyunca çözelti tutun ve oda sıcaklığına ulaşana kadar karışımı soğumasını bekleyin.

Daha sonra, kılavuzsuz RNA çözeltisinin altı mikrolitresini, mikrolitre Başına 0,5 mikrogramlık altı mikrolitre cas9 nükleaz V3 ile karıştırın. Ribonükleoprotein karışımı enjeksiyonu için, şişelerde küçük bir delik ile tek tek arıları yakaladıktan sonra, arıları buzüzerinde en fazla üç dakika hareketsiz hale getirin ve her arıyı koli bandı ile önceden hazırlanmış metal tutuculara sabitleyin. Arka göğüs kafesi, kanatları ve kafası açıkta. Arıları aç kalmadan tek azılı sakkaroz çözeltisi ile beslemek için beş mililitrelik bir şırınga kullanın ve güvenli arıları nem için ıslak kağıt havlulu bir kutuya yerleştirin.

Daha sonra, iki 35 mililitre petri yemekleri kapaklarının içine balmumu yerleştirin ve balmumu üzerine yemeklerin dipleri yerleştirin. Her kabın kapağı ve alt arasında bir azı sakaroz enjekte edin ve bir cam slayt ile beyaz kutu içine bir besleme petri çanak yerleştirin ve bir cam slayt ile siyah kutu içine diğer yerleştirin. Daha sonra, her kutuya küçük bir tarak yerleştirin ve RDL CRISPR-Cas9 karışımı ile bir mikroenjeksiyon sistemi yükleyin.

RDL CRISPR-Cas9 enjeksiyonu için, sekiz arının median ocelli'sini 345 nanolitre ribonükleoprotein RDL karışımı ile enjekte edin ve ardından arıları kara deneysel kutuya bırakmadan önce bir azı sakarozla besleyin. Herhangi bir enjeksiyon olmadan kontrol olarak sekiz arılar ikinci bir set beslemek ve beyaz kontrol kutusuna bırakın. Daha sonra, her iki kutuyu da ıslak kağıtla polistiren bir kap içine yerleştirin, arıları günde iki kez gözlemleyerek yeterli yiyecek ve iyi bir neme sahip olmalarını sağlayın.

Enjeksiyondan 48 saat sonra arıları buzüzerinde 30 saniye hareketsiz hale getirin ve her böceğin kafasını kesmek için makas kullanın. PBS'de %4 paraformaldehit başlığını duman kaputunda bir diseksiyon mikroskobu altında yerleştirin ve antenleri, bileşik gözleri ve üst dış iskeleti dikkatli ama hızlı bir şekilde çıkarmak için barraquer iris makası kullanın. Başların ekso iskeletin geri kalanını kafadan ve kalan tüm trakeadan çıkarmadan önce 10 dakika boyunca fiksatif çözeltide oturmasını bekleyin.

Daha sonra, her beyin yerleştirin 1.5 mililitre mikrosantrifüj tüp içeren en az bir mililitre içeren 4% paraformaldehit bir gecede dört ila sekiz santigrat derece. Ertesi sabah, bir erlenmeyer şişesinde 50 mililitre distile suya 3,8 gram argrose ekleyin ve argrose sıvılaştırılana kadar mikrodalga çözeltisi. Yeni bir 35 milimetre petri çanak içine 3-4 sabit bal arısı beyinleri aktarın ve aşırı fiksatif kaldırmak için doku kağıt kullanın.

Dikkatlice beyin üzerinde sıvı argrose dökün ve anten lobları yukarı bakacak şekilde argrose içinde örnekleri yönlendirmek. Argrose katılaşmış sonra, tek bir beyin içeren argrose bireysel blokları kesmek ve bir hidrofobik örgü alt ve iyi başına PBS 600 mikrolitre ile bir sepet ile yüklü 24 iyi plaka her kuyu doldurmak için bir neşter kullanın. Sonra, her argrose blok beyin dokusunun 70 mikrometre kesitleri elde etmek için bir vibratom kullanın.

Tek bir beyinden gelen kesitleri elde edilen sepetin örgüsünün üzerine yerleştirmek. Standart protokollere göre, forofororon konjuge antikorlar ile bölümleri etiketledikten sonra, montaj ortamı bir damla kullanarak tek bir beyinden bölümleri ile her slayt gömmek ve floresan mikroskopi ile örnekleri görselleştirmek. Anti-RDL etiketler vahşi tip frontal bölümünde nöropiller, ama CRISPR-Cas9 RDL nakavt arı beyinleri.

Anti-mGlutR1 antikorları için benzer bir özgüllük gözlendi. Bu temsilde, rdl CRIPSR-Cas9 enjekte arı beyinlerinde kantitatif PCR bırakma testleri, floresence göreli azalma örnekte değiştirilmiş kılavuz DNA sayısına karşılık geldi. mGlutR1 CRISPR-Cas9 enjeksiyonundan sonra, kılavuz DNA'nın göreceli modifikasyonu enjekte edilen arıların beyinlerinde enjekte edilmeyen arıların beyinlerinde gözlenen kılavuz DNA ile karşılaştırıldığında yaklaşık %59 idi.

Bu kantitatif RT-PCR inader ayrı bir grupta haberci RNA RDL göreli azalma yaklaşık% 59 enjekte arılarda RNA düzeyine göre, ve enjekte arılarda haberci mGlutR1 RNA göreli azalma yaklaşık% 53 önemli oldu, ocelli üzerinden RDL CRISPR-Cas9 enjeksiyonu her zaman beyin hücrelerinin çok sayıda ulaşmak olmayabilir. Örneğin, bu preparatlarda sekiz kişiden sadece birinde diğer arı beyinlerine göre çok sayıda beyin hücresi bulunan RDL CRISPR-Cas9 vardı. RDL CRISPR-Cas9 protocerebrum hücreleri içinde yoğunlaşmış ile, ama anten lob.

Dondurulmuş ve yeniden dondurulmuş RNA önlemek için emin olun. Arıları aşırı soğutmamaya dikkat edin. Şişede hareket etmeyi bıraktıktan hemen sonra onları dizginleyin.

Bu teknik mantar gövdesi ve bal arısı davranışı üzerinde merkezi kompleks inhibitör iyonotropik ve metabotropik reseptörlerin azaltılması etkilerini incelemek için kullanılabilir.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Nörobilim Sayı 155 GABAA reseptörü RDL metabotropik glutamat reseptörleri mGlutR1 konjuge antikor kontrolleri CRISPR-Cas9

Related Videos

Bal Arısı RNAi-aracılı Çift Gen demonte ve tat Algı Ölçüm ( Apis mellifera)

10:57

Bal Arısı RNAi-aracılı Çift Gen demonte ve tat Algı Ölçüm ( Apis mellifera)

Related Videos

15.5K Views

Ölçülü ve Serbest uçan Bal Arısı Nörofarmakolojik Manipülasyon, Apis mellifera

11:08

Ölçülü ve Serbest uçan Bal Arısı Nörofarmakolojik Manipülasyon, Apis mellifera

Related Videos

10.3K Views

Locust Antenlerinde Odorant Reseptör Genlerinin RNA ile Lokalizasyonu Yerinde Hibridizasyon

09:30

Locust Antenlerinde Odorant Reseptör Genlerinin RNA ile Lokalizasyonu Yerinde Hibridizasyon

Related Videos

8.6K Views

SwarmSight: Gerçek zamanlı izleme böcek anten hareketleri ve hortum uzantısı refleks bir ortak hazırlık ve geleneksel donanım kullanarak

08:13

SwarmSight: Gerçek zamanlı izleme böcek anten hareketleri ve hortum uzantısı refleks bir ortak hazırlık ve geleneksel donanım kullanarak

Related Videos

8.6K Views

Balarısı üzerinden beyin Homogenate Fosfolifaz C aktivite tespiti

08:30

Balarısı üzerinden beyin Homogenate Fosfolifaz C aktivite tespiti

Related Videos

8.1K Views

Nasonia vitripennis'te RNAi ve CRISPR Gen Düzenleme için Pupal ve Yetişkin Enjeksiyonları

08:41

Nasonia vitripennis'te RNAi ve CRISPR Gen Düzenleme için Pupal ve Yetişkin Enjeksiyonları

Related Videos

5.9K Views

Karınca Harpegnathos tuzlayıcısında  CRISPR Aracılı Mutagenez için Embriyo Enjeksiyonları

08:30

Karınca Harpegnathos tuzlayıcısında CRISPR Aracılı Mutagenez için Embriyo Enjeksiyonları

Related Videos

3.1K Views

CRISPR/Cas9 Genom Düzenlemeli Helicoverpa Armigera'nın (Hübner) Embriyo Mikroenjeksiyonu ve Nakavt Mutant Tanımlaması

06:37

CRISPR/Cas9 Genom Düzenlemeli Helicoverpa Armigera'nın (Hübner) Embriyo Mikroenjeksiyonu ve Nakavt Mutant Tanımlaması

Related Videos

5K Views

CRISPR/Cas9 Teknolojisi Kullanılarak Göçmen Locust'un Homozigot Mutantlarının İnşası

10:07

CRISPR/Cas9 Teknolojisi Kullanılarak Göçmen Locust'un Homozigot Mutantlarının İnşası

Related Videos

2.6K Views

Bal Arısı Dokusunda Histolojinin Temelleri ve Hücre Ölümü Tespiti

06:18

Bal Arısı Dokusunda Histolojinin Temelleri ve Hücre Ölümü Tespiti

Related Videos

3K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code