Name: E. colide Heterolog Ekspresyon ile Membran Taşıyıcılarının Karakterizasyonu ve Membran Veziküllerinin Üretimi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-12-31T12:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 16 s
Description: Öğrenin, E. coli'de membran taşıyıcılarını karakterize etmek için membran vezikülü hazırlama yöntemini. Bu teknik, substrat afinitesini belirlemeye ve taşıma mekanizmalarına dair bilgi sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu proje için destek BGSU Graduate College ve BGSU Ofis Sponsorprogramları ve Araştırma geldi.

1. P1 Transdüksiyonlu E. coli Double Knock Out Mutant Üretimi
<ol><li>E. coli Genetik Stok Merkezi'nden ΔPotE ve ΔCadB <a href="http://cgsc.biology.yale.edu" target="_blank">(http://cgsc.biology.yale.edu)</a> e. coli tek nakavt mutant suşları edinin. NOT: ΔPotE suşu kanamisin edayanıklı26 ve ΔCadB suşu tetrasikline dayanıklıdır 27.</li>
	<li>P1 transdüksiyon protokolü28kullanarak PotE/CadB çift nakavt (DKO) gerilimi inşa edin.<ol>
<li>Lysate hazırlık<ol>
<li>Taze LB (1:100) δPotE bir gecede kültür seyreltmek 10-25 mM MgCl2, 5 mM CaCl2ve 0.1-0.2% glikoz ile desteklenmektedir.</li>
			<li>37 °C'de 1-2 saat büyütün.</li>
			<li>Kültüre 40 μL P1 faj lysate ekleyin ve 37 °C'de büyümeye devam edin. Kültür dinlenene kadar 1-3 saat monitör NOT: Kültür lysed zaman, hücresel enkaz tüp görünür olacak ve kültür bulanıklık önemli bir kayıp olacaktır.</li>
			<li>Lysate ve girdap kloroform (50-100 μL) birkaç damla ekleyin. Santrifüj 12.000 x g 2 dakika hücresel enkaz kaldırmak ve taze bir tüp için supernatant transfer.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Iletim<ol>
<li>LB ortamda bir gecede ΔCadB zorlanma büyümek.</li>
			<li>2 dk için 4.000 x g santrifüj ile hücreleri hasat ve 1/5-1/3 taze LB hasat kültür hacmi 100 mM MgSO4 ve 5 mM CaCl2ile takviye resuspend .</li>
			<li>ΔCadB hücre süspansiyonu adım 1.2.1.4'ten faj ile tüpe ekleyin ve hızla karıştırın.</li>
			<li>200 μL 1 M Na-Sitrat (pH5.5) ekleyin, ardından antibiyotiğe dirençli belirteç ifadesini sağlamak için 37 °C'de 1 mL LB. Incubate ekleyin.</li>
			<li>Hücreleri 4000 x g'de 5 dk.</li>
			<li>100 μL LB'de 100 mM Na-Sitrat (pH 5.5) ve girdap ile hücreleri dağıtmak için tekrar lanır.</li>
			<li>50 μg/mL kanamisin ve 10 μg/mL tetrasiklin içeren LB agar plakaları üzerindeki rekombinant suşları seçin ve uygun astarlar26,27ile Polimeraz Zincir Reaksiyonu (PCR) ile onaylayın.</li>
			<li>PCR parçalarını sıralayarak doğrulayın.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. E. coli Mutant'ta Hedef Genin (AtBAT1) İfadesi
<ol><li>Hedef genin tam uzunluktadizisini PCR ile yükseltin ve Ağ Geçidi giriş vektörü pENTR/D-TOPO29'ayerleştirin. NOT: Bu durumda ATBAT1.1 ileri astar 5'CGGCGATCAATCCTTGTT ve ters astar 5'GCTAAGAATGTTGGAGATGG kullanılarak yükseltildi, 2 dk için 98 °C'de ilk denatürasyon ve sonra 98 °C'de 0,1 dk için 30 döngü denatürasyon, 0,3 dakika için 59 °C'de annealing, 72 °C'de 0,40 dakika uzatma ve 10 dk için 72 °C'de son uzatma. PCR ürünü bir PCR temizleme kiti kullanılarak saflaştırılmış, bir spektrometre kullanılarak ölçüldü. PCR ürününün Gateway vektörüne yerleştirilmesi, manufactrurers yönergelerini takip ederek yapıldı.<ol>
<li>Giriş vektörünü Heatshock ile yetkili Top10 E. coli hücrelerine dönüştürün ve standart moleküler klonlama protokollerini izleyerek 50 g/mL kanamisin ile LB medyasında başarılı rekombinantlar seçin30.</li>
		<li>Plazmid DNA'sını, üreticinin yönergelerini izleyerek plazmid ekstraksiyon kiti kullanarak ayıklayın ve doğru eklemeyi onaylamak için sıralayın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Hedef geni E. coli hedef vektörüne aktarın, pBAD-DEST49 Gateway LR klonlama ile bir ifade vektörü oluşturmak için29.<ol>
<li>İfade vektörünü 30 s'lik ısı şoku ile yetkili Top10 E. coli hücrelerine dönüştürün ve 100 μg/mL ampisilin30ile LB medyasında başarılı rekombinantlar seçin.</li>
		<li>Doğru eklemeyi onaylamak için plazmid DNA30 ve dizi ayıklayın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>İfade vektörünü E. coli ΔpotE740(del)::kan, ΔcadB2231::Tn10'a dönüştürün ve lb plakaları üzerinde ampisilin, kanamisin ve tetrasiklin30ile seçin.</li>
	<li>İndüksiyon için arabinose optimal konsantrasyonunu belirlemek için, açıklandığı gibi arabinose gradyan konsantrasyonları ile LB medyada araBAD promotörü kontrolü altında hedef geni ifade29.</li>
	<li>Hücre peletlerini toplayın ve sds-PAGE ile protein ekspresyonunu değerlendirin ve ürün kılavuzunda açıklandığı gibi protein bantlarının görselleştirilmesi29. NOT: E. coli ΔpotE740(del)::kan, ΔcadB2231::Tn10 BAT1 ifadesi olmadan kontrol örneği olarak kullanılmıştır. E.coli çift devre dışı mutant hücreleri boş pBAD-DEST49 vektörü ile vektörde ccdB geninin varlığı nedeniyle kontrol olarak kullanılmadı.</li>
</ol>3. İç-Dış Membran Veziküllerin Üretimi
<ol><li>Kültür E. coli mutant hücreleri poliamin içermeyen medya 5 mL gecede tek bir koloni büyüyerek hedef protein ifade (2% gliserol, K 6 g2HPO4, KH 3 g2PO4, NaCl 0.5 g, NH4Cl, 50 mg tiamin, 0.79 g maya komple sentetik media adenin hemisülfat (10 mg/L), L-Arginin (50 mg/L), L-Aspartik asit (80 mg/L), L-Histidin hidro klorür monohidrat (20 mg/L), L-L-Lösin (100 mg/L), L-Lizin hidroklorür (50 mg/L), L-Metiyonin (20 mg/L), L-Fenilalanin (50 mg/L), L-Treonin (100 mg/L), L-Triptofan (50 mg/L), L-Tirozin (50 mg/L), L-Valine (140 mg/L), Urasil (20 mg/L)). Bu kültürü %0,0002 arabinose ile desteklenen poliaminiçermeyen 500 mL'ye aktarın ve hücre kültürü 0,6-0.8'in OD600'ünü (genellikle ~5 saat) ulaşana kadar büyüyün.</li>
	<li>4 °C'de 15 dakika boyunca 2.000 x g'de santrifüj ile hücre peletini toplayın. Peleti yeniden askıya alın ve 10 mM EDTA içeren 0,1 M potasyum fosfat tamponu, pH 6.6 ile üç kez yıkayın (Tampon 1). Üçüncü dönüşten sonra Tampon 1'deki hücrelerin son hacmi 10 mL olmalıdır.</li>
	<li>35 mL Fransız basınç Hücresi kullanarak bozulmamış hücrelerin Fransız Basın tedavisi (10.000 p.s.i.) ile iç-dış membran veziküller oluşturun.</li>
	<li>Numuneyi standart Fransız basınç hücresine yüklemeden önce, hücreye daha kolay yerleştirilmesi için piston ve O-halkalarını yağlatın. Not:Bu talimatlar standart basınç hücresinin kullanımı için özeldir31.<ol><li>Kapatma fişini hücrenin alt ucuna dikkatlice vidaladı. Hücrenin yan tarafındaki harflere göre hücrenin sağ tarafta olduğundan emin olun. Pistonu hücreye takın ve pistondaki maksimum dolgu hattı pistonun üst kısmına ulaşana kadar hücreye taşıyın. Üniteyi ters çevirin ve sağlanan standın üzerine yerleştirin.</li>
		<li>Hücre süspansiyonu hücrenin vücuduna dökün. NOT: Biz sadece 10 mL kullanıyoruz, bu yüzden 35 mL kapasiteli Fransız basınç hücre odasında, oda bol kalacak.</li>
		<li>Standart basınç hücresini Fransız basınç hücresi ünitesine monte edin.<ol>
<li>Önce elektriğin kesişip kapandığını kontrol et. Panelin sol tarafında Oran Seçici anahtarı yer alan bir anahtar vardır. Üç pozisyonu vardır: Çalışma sonunda aşağı, daha küçük bir basınç hücresi kullanmak için düşük, ve yüksek standart Fransız basınç hücresi ile kullanılmak üzere. Fransız basını daha önce küçük hücreli olarak kullanılmışsa piston tamamen geri çekilmeyebilir. Bu anahtarı Aşağıolarak ayarlayın.</li>
		</ol></li>
		<li>Ünitenin arka tarafındaki RHS anahtarıyla makineyi açın ve Duraklat düğmesini Çalıştır konumuna getirin. Bu, pistonun tamamen geri çekilmesine neden olur. Anahtarı Duraklat'ageri taşıyın ve makineyi kapatın.</li>
		<li>Başparmak vidalarını gevşetin ve iki paslanmaz çelik kolona yayılan emniyet kelepçesini yana doğru hareket ettirin. Sağa doğru sallanacak. Bir elinizkapatma fişinin tabanını yerinde tutarak, Fransız basınç hücresini iki elinizle yukarı kaldırın ve 180° döndürün, böylece piston artık dik konumdadır. Platforma yerleştirin ve bu kelepçenin Fransız basınç hücresini pozisyonda tutması için güvenlik kıskacını yerine geri taşıyın.</li>
		<li>Kapatma fişindeki Akış Valfi tertibatının işletmeci tarafından erişilebilir olması ve valfin serbestçe çevrilebilmesi için konumlandırılması gerektiğini unutmayın. Akış valfi tertibatını saat yönünün tersine birkaç dönüşle açın. Pistonun kollarını iki ve sekiz yönünde yönlendirilen şekilde yerleştirin. Standart basınç hücresiyerinde tutulacak şekilde başparmak vidaları sıkın.</li>
		<li>Numune çıkış tüpünü kapatma fişe takın ve kırık hücre enkazının şahin tüpünde toplayabilmesi için kısa bir esnek boru parçası bağlayın. Biz genellikle şahin tüp dik tutmak için 300 mL buz dolu bir beher kullanın, ve hücre enkaz soğutulmuş tutmak için.</li>
		<li>Duraklatma anahtarının Duraklatolarak ayarlandıklarına ve valf tertibatının açık konumdaolduğundan emin olun. Makineyi tekrar açın, Oran Seçici'yi Yüksek'eçevirin ve ön paneldeki Basınç Artış Valfini yaklaşık yarım dönüşle sağa çevirin.</li>
		<li>Piston, odadaki havayı yerinden çıkarmak için üsten yükselmeye başlayacak. Örnek çıkış tüpüne bağlı Tygon borudan çıkan havayı kabın borusu yla yönlendirin.</li>
		<li>İlk sıvı damlaları çıktığında, akış valfi tertibatını saat yönünde çevirerek kapatın. Bu basınç hücresi ile metal mühür bir metal oluşturur, bu yüzden aşırı sıkmak yok.</li>
		<li>Fransız Basını'nın ön panelinde basınç hücresiiçindeki biyolojik hücreler üzerinde uygun basınç oluşturmak için bir grafik vardır. Bu durumda, Gösterge 640 psi'ye ulaşana kadar Basınç Artış Valfi'ni saat yönünde çevirerek basıncı artırın. Bu 10.000 psi bir iç basınç yaratacak.</li>
		<li>Hücre hedef basınca ulaştıktan sonra akış valfi tertibatını saat yönünün tersine çevirerek hafifçe açın. Vananın açılmasını, her dk başına sadece yaklaşık 10 damla akış hızı sağlayacak şekilde ayarlayın.</li>
		<li>Piston gövdesindeki stop çizgisi akış hücresinin tepesine ulaştığında. Duraklat-Çalıştır Anahtarını Duraklat'açevirin. Bu çok önemlidir, çünkü pistonun hücreye daha fazla yerleştirilmesi üniteye zarar verir. Akış valfi tertibatını açın ve kalan damlaları toplayın.</li>
		<li>Oran Seçici'yi Aşağı'yaçevir in ve ardından Çalıştır anahtarını Çalıştır'aayarlayın. Alt plaka tamamen geri çekildiğinde Çalıştır anahtarını Duraklatdüğmesine ayarlayın ve makineyi kapatın.</li>
		<li>Fransız basınç hücresini Fransız basınından çıkarın ve temizlik için sökün. Gliserol bir ışık kaplama ile kuru tüm parçaları saklayın. Herhangi bir conta veya contayı aşınma işaretleriyle çıkarın ve değiştirin.</li>
	</ol></li>
	<li>4 °C'de 15 dakika boyunca 10.000 x g'de santrifüj ile Fransız basınının kırılmamış hücrelerini ve hücre enkazını çıkarın. Pelet atın ve ultracentrifuge tüpler için supernatant aktarın.</li>
	<li>4 °C'de 1 saat için 150.000 g ultracentrifugationat tarafından ortaya çıkan supernatant pelet membran vezikülleri.</li>
	<li>Membran vezikülleri bir kez yıkayın, resuspension olmadan, 1 mM Tris-maleate, pH 5.2 içeren 0.14 M KCl, 2 mM 2-mercaptoetanol ve 10% gliserol ve aynı tampon resuspend (Tampon 2)23 bir Dounce doku öğütücü kullanarak. Tipik olarak 500 mL'lik kültürmembran fraksiyonu 5 mL tamponda, 5-10 mg membran protein/mL konsantrasyonu biokinik asit analizikullanılarak 32.</li>
	<li>-80 °C'de 100 μL membran preparatlarını 1,5 mL mikrosantrifüj tüplerinde saklayın.</li>
</ol>4. Batı Leke ve Taşıyıcı Tsay Oryantasyon
<ol><li>30 mM Tris pH 7.8 + 0.1 mM CoCl2'de3.7 adımdan vezikülleri yıkayın ve resuspend.</li>
	<li>100 μL numuneye 0,1 M NaCl, 30 mM Tris, 0,2 mM CoCl2 pH 7,8'de 1 μL 2 mg/mL karboksipeptidaz ekleyin.</li>
	<li>20 °C'de 20 dk kuluçkaya yatırın. 0,5 M NaEDTA 5 μL, 0,5 M 2-mercaptoetanol pH 7,5 ekleyerek sindirimi durdurun.</li>
	<li>Enzimi tam olarak inaktive etmek için, çözeltiyi oda sıcaklığında 1 saat kuluçkaya yatırın. NOT: Catboxypeptidaz olmayan veziküller Kontrol olarak kullanıldı.</li>
	<li>Lityum dodecyl sülfat varlığında elektroforez ile örnekleri analiz edin. 150 mg/mL lityum dodecyl sülfat, 450 mg/mL gliserol, 0.1 mg/mL bromofenol mavisi, 0.4 M Tris pH 7.5 ila 100 μL numune ekleyin.</li>
	<li>Poliakrilamid jel üzerine 25 mM sodyum-hidrojen fosfat pH 7.5 ile nemlendirilmiş bir nitroselüloz filtre döşenerek immünoblotlama gerçekleştirin. İki nemlendirilmiş selüloz filtreler arasında ve son olarak iki nemlendirilmiş plastik ovma pedleri arasında yerleştirin. Bu ümyarayı 25 mM sodyum-hidrojen fosfat pH 7,5'i 2-4 °C'de içeren bir haznenin elektrotları arasına yerleştirin.</li>
	<li>Proteinlerin elektrotransferinin 20 V ve 2-3 A'da 3 saat boyunca devam etmesine izin verin.</li>
	<li>0,15 M NaCl, 10 mM Tris, pH 7,5 ve 0,5 mg/mL Ara 2033blokaj tamponu ile nitroselüloz membranını gece boyunca 2 °C'de bloke edin.</li>
	<li>Nitroselüloz filtresini 2 saat boyunca 1:5000 adet Anti-His (C terminali)-HRP antikorunu bloke edici tamponda (20 mL) seyrelterek inkübe edin ve toplam 60 dakika boyunca 50 mL tamponla iki kez yıkayın.</li>
	<li>İmmünoblotu görselleştirmek için, 6 mg 4-kloro-1-naphthol'u 20 mL deatürayla çözün ve 80 mL 15 mM Tris pH 7.5 ve 50 μL %30 H2O2ekleyin. 20 dakika boyunca substrat çözeltisindeki filtre kağıdını yıka. Reaktif, nitroselüloz zarında mavi bir çökelti oluşturmak için antikorla reaksiyona girer. Yeterli renk geliştiğinde, membranı suyla durulayın ve kurumasını bekleyin.</li>
</ol>5. Taşıma Tsası
<ol><li>12 °C'de 5 dakika boyunca 100 μL membran vezikülleri inkübün.</li>
	<li>Membran veziküllerine 50 μM'lik son konsantrasyonda radyoetiketli poliaminler ekleyerek taşımayı başlatın (aksi belirtilmedikçe). 10 mM Tris-HCl, 10 mM potasyum fosfat, pH 8.0 ve 0.14 M KCl23 (Tampon 3) modelini içeren bir hakem tamponunda 3H-substrat (spermidin veya putrescine) çözeltisi yapın.</li>
	<li>1,5 mL mikrofuge tüplerinde 1 2 °C'de 1 dk taşıma tahlilleri gerçekleştirin.</li>
	<li>1 dakika sonra reaksiyon karışımlarını filtrasyon manifolduna aktarın ve 0,45 μm nitroselüloz membran filtresinden süzün.<ol>
<li>Nonspesifik bağlamayı azaltmak için poliaminler olmadan 3 mL'lik bir arabellek ve ardından etiketlenmemiş poliaminlerin 10 kat daha yüksek konsantrasyonu içeren 3 mL buz gibi ar-sonuç tamponu ekleyin.</li>
		<li>Yıkanmış filtreleri 10 mL sintillasyon sıvısı içeren 20 mL tek kullanımlık sintillasyon şişelerine aktarın ve bir sıvı sintillasyon sayacı kullanarak radyoaktiviteyi belirleyin. Scintillation karşı örnekteki radyoaktiviteölçer ve min başına parçalanmaolarak raporlar (dpm).</li>
	</ol>
</li>
	<li>12 °C'de kuluçkaya yatan veziküller tarafından 1 dk'daki alım arasındaki fark ve buzda kuluçkaya yatan veziküller tarafından 0 dk.'da alım arasındaki fark olarak net poliamin alımını hesaplayın. NOT: Veziküllere ithal substrat kütlesi aşağıdaki gibi hesaplanır. Mikrofuge tüpündeki numune hacmi 0.2 μL ve substrat başlangıç konsantrasyonu 100 μM ise, mikrofuge tüpündeki substrat toplam kütlesi 20 x 10-12 M'dir. Ticari olarak etiketlenmiş substratların (genellikle 2,22 x 109 dpm/mM) çok yüksek özgül aktivitesi nedeniyle, eklenen izotopun kütlesi hesaplamada göz ardı edilebilir. Yani mikrofuge tüpüne eklenen izotopun toplam miktarı 100 x 106 dpm ve veziküllerin net alımı 1.000 dpm ise, veziküller tarafından alınan substrat toplam kütlesi substrat veya 2 x 10-13 M'lik mol lerin toplam sayısının %1'i idi.<ol>
<li>Hedef proteini ifade eden veziküllere 10, 25, 50, 250 ve 500 μM radyoetiketli substrat alımını ölçerek substrat için Km'yi belirleyin. İstatistiksel yazılım paketi34Michaelis Menton modelini kullanarak doğrusal olmayan bir regresyon yöntemi kullanarak Michaelis-Menten kinetik hesaplayın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Yarışma deneyleri için, 100 μM, 500 μM, 1 mM, 1,5 mM veya 2 mM etiketsiz rekabetçi substrat ı 12 °C'de 100 μL vezikül içeren 1,5 mL mikrosentrifuge tüpüne deneme tamponuna ekleyin.<ol>
<li>Mikrosantrifüj tüpüne aynı anda radyoetiketli poliamin (50 μM) ekleyin.</li>
		<li>Yukarıda belirtildiği gibi veziküllerin içinde sıkışıp kalan radyoaktiviteyi 5 ile 5.4.2 adımlarını tekrarlayarak ölçün.</li>
		<li>100 μM veya daha yüksek etiketsiz substrat varlığında 10, 25, 50, 250 ve 500 μM radyoetiketli poliaminalımalımını ölçerek ve eğriyi çizmek için doğrusal olmayan bir regresyon yöntemi kullanarak rekabetçi yüzeyler için belirgin Km (Km,app)belirleyin.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Haferkamp, I., Linka, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+expression+and+characterisation+of+membrane+transport+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Biology+%28Stuttgart%29%22%5BJournal%5D)">Functional expression and characterisation of membrane transport proteins.</a> Plant Biology (Stuttgart). 14 (5), 675-690 (2012).</li>
<li>Sauer, N., Caspari, T., Klebl, F., Tanner, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+expression+of+the+Chlorella+hexose+transporter+in+Schizosaccharomyces+pombe%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Functional expression of the Chlorella hexose transporter in Schizosaccharomyces pombe.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 87 (20), 7949-7952 (1990).</li>
<li>Sauer, N., Stolz, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SUC1+and+SUC2%3A+two+sucrose+transporters+from+Arabidopsis+thaliana%3B+expression+and+characterization+in+baker%27s+yeast+and+identification+of+the+histidine-tagged+protein%5BTitle%5D)+AND+%22The+Plant+Journal%22%5BJournal%5D)">SUC1 and SUC2: two sucrose transporters from Arabidopsis thaliana; expression and characterization in baker's yeast and identification of the histidine-tagged protein.</a> The Plant Journal. 6 (1), 67-77 (1994).</li>
<li>Weber, H., Borisjuk, L., Heim, U., Sauer, N., Wobus, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+role+for+sugar+transporters+during+seed+development%3A+molecular+characterization+of+a+hexose+and+a+sucrose+carrier+in+fava+bean+seeds%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">A role for sugar transporters during seed development: molecular characterization of a hexose and a sucrose carrier in fava bean seeds.</a> Plant Cell. 9 (6), 895-908 (1997).</li>
<li>Huang, J. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GhDREB1+enhances+abiotic+stress+tolerance%2C+delays+GA-mediated+development+and+represses+cytokinin+signalling+in+transgenic+Arabidopsis%5BTitle%5D)+AND+%22Plant%2C+Cell+%26+Environment%22%5BJournal%5D)">GhDREB1 enhances abiotic stress tolerance, delays GA-mediated development and represses cytokinin signalling in transgenic Arabidopsis.</a> Plant, Cell & Environment. 32 (8), 1132-1145 (2009).</li>
<li>Bassham, D. C., Raikhel, N. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plant+cells+are+not+just+green+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiology%22%5BJournal%5D)">Plant cells are not just green yeast.</a> Plant Physiology. 122 (4), 999-1001 (2000).</li>
<li>Garcia-Mata, R., Bebok, Z., Sorscher, E. J., Sztul, E. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+and+dynamics+of+aggresome+formation+by+a+cytosolic+GFP-chimera%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Characterization and dynamics of aggresome formation by a cytosolic GFP-chimera.</a> Journal of Cell Biology. 146 (6), 1239-1254 (1999).</li>
<li>Liu, J., Sitaram, A., Burd, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+copper-dependent+endocytosis+and+vacuolar+degradation+of+the+yeast+copper+transporter%2C+Ctr1p%2C+by+the+Rsp5+ubiquitin+ligase%5BTitle%5D)+AND+%22Traffic%22%5BJournal%5D)">Regulation of copper-dependent endocytosis and vacuolar degradation of the yeast copper transporter, Ctr1p, by the Rsp5 ubiquitin ligase.</a> Traffic. 8 (10), 1375-1384 (2007).</li>
<li>Drew, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GFP-based+optimization+scheme+for+the+overexpression+and+purification+of+eukaryotic+membrane+proteins+in+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">GFP-based optimization scheme for the overexpression and purification of eukaryotic membrane proteins in Saccharomyces cerevisiae.</a> Nature Protocols. 3 (5), 784-798 (2008).</li>
<li>Schachtman, D. P., Schroeder, J. I., Lucas, W. J., Anderson, J. A., Gaber, R. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+an+inward-rectifying+potassium+channel+by+the+Arabidopsis+KAT1+cDNA%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Expression of an inward-rectifying potassium channel by the Arabidopsis KAT1 cDNA.</a> Science. 258 (5088), 1654-1658 (1992).</li>
<li>Boorer, K. J., Forde, B. G., Leigh, R. A., Miller, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+expression+of+a+plant+plasma+membrane+transporter+in+Xenopus+oocytes%5BTitle%5D)+AND+%22FEBS+Letters%22%5BJournal%5D)">Functional expression of a plant plasma membrane transporter in Xenopus oocytes.</a> FEBS Letters. 302 (2), 166-168 (1992).</li>
<li>Miller, A. J., Zhou, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Xenopus+oocytes+as+an+expression+system+for+plant+transporters%5BTitle%5D)+AND+%22Biochimica+et+Biophysica+Acta%22%5BJournal%5D)">Xenopus oocytes as an expression system for plant transporters.</a> Biochimica et Biophysica Acta. 1465 (1-2), 343-358 (2000).</li>
<li>Reinders, A., Sivitz, A. B., Starker, C. G., Gantt, J. S., Ward, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+analysis+of+LjSUT4%2C+a+vacuolar+sucrose+transporter+from+Lotus+japonicus%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Functional analysis of LjSUT4, a vacuolar sucrose transporter from Lotus japonicus.</a> Plant Molecular Biology. 68 (3), 289-299 (2008).</li>
<li>Kovermann, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Arabidopsis+vacuolar+malate+channel+is+a+member+of+the+ALMT+family%5BTitle%5D)+AND+%22The+Plant+Journal%22%5BJournal%5D)">The Arabidopsis vacuolar malate channel is a member of the ALMT family.</a> The Plant Journal. 52 (6), 1169-1180 (2007).</li>
<li>Blattner, F. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+complete+genome+sequence+of+Escherichia+coli+K-12%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">The complete genome sequence of Escherichia coli K-12.</a> Science. 277 (5331), 1453-1462 (1997).</li>
<li>Terpe, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Overview+of+bacterial+expression+systems+for+heterologous+protein+production%3A+from+molecular+and+biochemical+fundamentals+to+commercial+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+Microbiology+and+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Overview of bacterial expression systems for heterologous protein production: from molecular and biochemical fundamentals to commercial systems.</a> Applied Microbiology and Biotechnology. 72 (2), 211-222 (2006).</li>
<li>Miroux, B., Walker, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Over-production+of+proteins+in+Escherichia+coli%3A+mutant+hosts+that+allow+synthesis+of+some+membrane+proteins+and+globular+proteins+at+high+levels%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Over-production of proteins in Escherichia coli: mutant hosts that allow synthesis of some membrane proteins and globular proteins at high levels.</a> Journal of Molecular Biology. 260 (3), 289-298 (1996).</li>
<li>Wagner, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Consequences+of+membrane+protein+overexpression+in+Escherichia+coli%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+%26+Cellular+Proteomics%22%5BJournal%5D)">Consequences of membrane protein overexpression in Escherichia coli.</a> Molecular & Cellular Proteomics. 6 (9), 1527-1550 (2007).</li>
<li>Bernaudat, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heterologous+expression+of+membrane+proteins%3A+choosing+the+appropriate+host%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Heterologous expression of membrane proteins: choosing the appropriate host.</a> PLoS One. 6 (12), e29191(2011).</li>
<li>Takabatake, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+characterization+of+cDNAs+encoding+mitochondrial+phosphate+transporters+in+soybean%2C+maize%2C+rice%2C+and+Arabidopis%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Isolation and characterization of cDNAs encoding mitochondrial phosphate transporters in soybean, maize, rice, and Arabidopis.</a> Plant Molecular Biology. 40 (3), 479-486 (1999).</li>
<li>Picault, N., Palmieri, L., Pisano, I., Hodges, M., Palmieri, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+a+novel+transporter+for+dicarboxylates+and+tricarboxylates+in+plant+mitochondria.+Bacterial+expression%2C+reconstitution%2C+functional+characterization%2C+and+tissue+distribution%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Identification of a novel transporter for dicarboxylates and tricarboxylates in plant mitochondria. Bacterial expression, reconstitution, functional characterization, and tissue distribution.</a> Journal of Biological Chemistry. 277 (27), 24204-24211 (2002).</li>
<li>Snowden, C. J., Thomas, B., Baxter, C. J., Smith, J. A., Sweetlove, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+tonoplast+Glu%2FAsp%2FGABA+exchanger+that+affects+tomato+fruit+amino+acid+composition%5BTitle%5D)+AND+%22The+Plant+Journal%22%5BJournal%5D)">A tonoplast Glu/Asp/GABA exchanger that affects tomato fruit amino acid composition.</a> The Plant Journal. 81 (5), (2015).</li>
<li>Kashiwagi, K., Igarashi, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+assays+of+polyamine+transport+systems+in+Escherichia+coli+and+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Identification and assays of polyamine transport systems in Escherichia coli and Saccharomyces cerevisiae.</a> Methods in Molecular Biology. 720, 295-308 (2011).</li>
<li>Kashiwagi, K., Miyamoto, S., Suzuki, F., Kobayashi, H., Igarashi, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Excretion+of+putrescine+by+the+putrescine-ornithine+antiporter+encoded+by+the+potE+gene+of+Escherichia+coli%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Excretion of putrescine by the putrescine-ornithine antiporter encoded by the potE gene of Escherichia coli.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 89 (10), 4529-4533 (1992).</li>
<li>Tsuchiya, T., Rosen, B. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calcium+transport+driven+by+a+proton+gradient+and+inverted+membrane+vesicles+of+Escherichia+coli%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Calcium transport driven by a proton gradient and inverted membrane vesicles of Escherichia coli.</a> Journal of Biological Chemistry. 251 (4), 962-967 (1976).</li>
<li>Baba, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Construction+of+Escherichia+coli+K-12+in-frame%2C+single-gene+knockout+mutants%3A+the+Keio+collection%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Systems+Biology%22%5BJournal%5D)">Construction of Escherichia coli K-12 in-frame, single-gene knockout mutants: the Keio collection.</a> Molecular Systems Biology. 2, (2006).</li>
<li>Nichols, B. P., Shafiq, O., Meiners, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sequence+analysis+of+Tn10+insertion+sites+in+a+collection+of+Escherichia+coli+strains+used+for+genetic+mapping+and+strain+construction%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Bacteriology%22%5BJournal%5D)">Sequence analysis of Tn10 insertion sites in a collection of Escherichia coli strains used for genetic mapping and strain construction.</a> Journal of Bacteriology. 180 (23), 6408-6411 (1998).</li>
<li>Sauer, B. P1vir phage transduction. , https://openwetware.org/wiki/Sauer:P1vir_phage_transduction (2011).</li>
<li>Invitrogen. pBAD-DEST49 Gateway Destination Vector. , https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/12283016 (2010).</li>
<li>Green, M. R., Sambrook, J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGreen%2C+MR+%22Molecular+Cloning%3A+a+laboratory+Manual%22">Molecular Cloning: a laboratory Manual</a>. , 4th edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press. (2012).</li>
<li>GlennMills. Thermo Electron French Press Operation Manual. , http://www.glenmills.com/wp-content/uploads/2011/06/GLEN-MILLS-INC.-FRENCH-PRESS-Operating-Manual-Feb-2007-Rev-11.pdf (2007).</li>
<li>Smith, P. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+protein+using+biochinic+acid%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Measurement of protein using biochinic acid.</a> Analytical Biochemistry. 150, 76-85 (1985).</li>
<li>Wright, J. K., Overath, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification+of+the+lactose%3A+H%2B+carrier+of+Escherichia+coli+and+characterization+of+galactoside+binding+and+transport%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Purification of the lactose: H+ carrier of Escherichia coli and characterization of galactoside binding and transport.</a> European Journal of Biochemistry. 138 (3), 497-508 (1984).</li>
<li>PRISM. GaphPad Software. , https://www.graphpad.com/data-analysis-resource-center/ (2019).</li>
<li>Kirchberger, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+and+biochemical+analysis+of+the+plastidic+ADP-glucose+transporter+%28ZmBT1%29+from+Zea+mays%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Molecular and biochemical analysis of the plastidic ADP-glucose transporter (ZmBT1) from Zea mays.</a> Journal of Biological Chemistry. 282 (31), 22481-22491 (2007).</li>
<li>Deniaud, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+a+chloroplast+ATP%2FADP+transporter+in+E.+coli+membranes%3A+behind+the+Mistic+strategy%5BTitle%5D)+AND+%22Biochimica+et+Biophysica+Acta%22%5BJournal%5D)">Expression of a chloroplast ATP/ADP transporter in E. coli membranes: behind the Mistic strategy.</a> Biochimica et Biophysica Acta. 1808 (8), 2059-2066 (2011).</li>
<li>Sze, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((H%2B-Translocating+ATPases%3A+Advances+Using+Membrane+Vesicles%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Plant+Physiology%22%5BJournal%5D)">H+-Translocating ATPases: Advances Using Membrane Vesicles.</a> Annual Review of Plant Physiology. 36, 175-208 (1985).</li>
<li>Bush, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proton-coupled+sugar+and+amino+acid+transporters+in+plants%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Plant+Physiology+Plant+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Proton-coupled sugar and amino acid transporters in plants.</a> Annual Review of Plant Physiology Plant Molecular Biology. 44, 513-542 (1993).</li>
<li>Futai, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orientation+of+membrane+vesicle+from+Escherichea+coli+prepared+by+different+procedures%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Membrane+Biology%22%5BJournal%5D)">Orientation of membrane vesicle from Escherichea coli prepared by different procedures.</a> Journal of Membrane Biology. 115, 15-28 (1974).</li>
<li>Seckler, R., Wright, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sideness+of+native+membrane+vesicles+of+Escherichea+coli+and+orientation+of+the+reconstituted+lactose%3A+H%2B+carrier%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Sideness of native membrane vesicles of Escherichea coli and orientation of the reconstituted lactose: H+ carrier.</a> European Journal of Biochemistry. 142 (2), 269-279 (1984).</li>
<li>LaVallie, E. R., Lu, Z., Diblasio-Smith, E. A., Collins-Racie, L. A., McCoy, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thioredoxin+as+a+fusion+partner+for+production+of+soluble+recombinant+proteins+in+Escherichia+coli%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Enzymology%22%5BJournal%5D)">Thioredoxin as a fusion partner for production of soluble recombinant proteins in Escherichia coli.</a> Methods in Enzymology. 326, 322-340 (2000).</li>
<li>Goodman, D. B., Church, G. M., Kosuri, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Causes+and+effects+of+N-terminal+codon+bias+in+bacterial+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Causes and effects of N-terminal codon bias in bacterial genes.</a> Science. 342 (6157), 475-479 (2013).</li>
<li>Wacker, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((N-linked+glycosylation+in+Campylobacter+jejuni+and+its+functional+transfer+into+E.+coli%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">N-linked glycosylation in Campylobacter jejuni and its functional transfer into E. coli.</a> Science. 298 (5599), 1790-1793 (2002).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Bu çalışmada, önce E. coli'deki proteini ifade ederek ve daha sonra membran vezikülleri üreterek bir antiporterın karakterizasyonu için bir yöntem özetleyilmiştir, böylece heterolog olarak ifade edilen protein hücresiz bir sistemde doğrulanabilir. Çoğu moleküler biyoloji laboratuvarında bulunan ekipmana ek olarak, bu strateji bir Fransız basını, ultracentrifuge ve radyoizotop tahlilleri yapmak için bir tesise erişim gerektirir.
Bu tekniğin temel gereksinimlerinden biri heterolog prote...

Metabolitlerin ticaretinde rol oynayan proteinler fizyolojik düzenlemenin temel bir düzeyini oluşturmaktadır, ancak bitki zarı taşıyıcılarının büyük çoğunluğu henüz işlevsel olarak karakterize edilmemiştir. Yeni taşıma proteinlerini karakterize etmek için çeşitli stratejiler uygulanmıştır. E. coli gibi model organizmalarda heterolog ekspresyon ve maya, Kenopus oositleri, memeli hücreleri, böcek hücreleri ve bitki hücreleri gibi ökaryotik hücreler taşıma aktivitelerini belirlemek için kullanılmıştır1. Ökaryotik hücreler ökaryotik proteinlerin ekspresyonu için tercih edilir, çünkü temel hücresel bileşim, sinyal transducing yolları, transkripsiyon ve çeviri makineleri yerli koşullarla uyumludur.
Maya bitkilerde yeni taşıma proteinleri karakterizasyonu için önemli bir model organizma olmuştur. Başarıyla maya ifade edildi ilk bitki taşıma proteini(Saccharomyces pombe) Chlorella2heksoz taşıyıcı HUP1 oldu. O zamandan beri, birçok bitki taşıma proteinleri fonksiyonel bir maya ifade sistemi kullanılarak karakterize edilmiştir. Bunlar, bitki şekeri taşıyıcıları (SUC1 ve SUC23, VfSUT1 ve VfSTP14)ve auxin taşıyıcılar (AUX1 ve PIN5)içerir. Bitki proteinlerini ifade etmek için maya kullanmanın dezavantajları, mayanın bu organelden yoksun olması, yanlış hedeflenme6, yanlış katlanmış agregaların oluşumu ve membran proteinlerinin aşırı ekspresyonuna bağlı olarak mayadaki stres tepkilerinin aktivasyonu7,8,9.
Xenopus oositlerinde taşıma proteinlerinin heterolog ekspresyonu10taşıyıcıların elektrofizyolojik karakterizasyonu nda yaygın olarak kullanılmaktadır. Xenopus oositlerinde heterolog ekspresyon kullanılarak karakterize edilen ilk bitki taşıma proteinleri Arabidopsis potasyum kanalı KAT110 ve Arabidopsis heksoz taşıyıcısı STP111idi. O zamandan beri, Xenopus oositler plazma membran taşıyıcıları 12 gibi birçok bitki taşıma proteinleri karakterize etmek için istihdam edilmiştir12,vacuolar sakaroz taşıyıcı SUT413 ve vacuolar malate taşıyıcı ALMT914. Xenopus oositlerinin taşıma tahlilleri için önemli bir sınırlama hücre içi metabolitlerin konsantrasyonunun manipüle edilemeyeceğidir1. Ayrıca, profesyonel bilgi Xenopus oositler hazırlamak için gereklidir ve oosit toplu değişkenlik kontrol etmek zordur.
E. coli modelinde heterolog ifade, yeni bitki taşıma proteinlerinin karakterizasyonu açısından ideal bir sistemdir. Tam sekanslı genom15ile E. coli'nin moleküler ve fizyolojik özellikleri iyi bilinmektedir. Moleküler araçlar ve teknikler iyi16kurulmuştur. Buna ek olarak, farklı ekspresyon vektörleri, patojenik olmayan suşlar ve mutantlar mevcuttur17,18,19. Ayrıca, E. coli yüksek bir büyüme hızına sahiptir ve laboratuvar koşullarında kolayca yetiştirilebilir. Birçok protein kolayca ifade edilebilir ve E. coliyüksek miktarlarda saflaştırılmış9. Proteinler hücresel sistemlerde doğrudan titreşemediğinde, proteinlerin lipozomlara dönüştürülmesi de başarılı olmuştur, ancak saflaştırılmış membran proteinlerinin karakterizasyonu için zorlu bir yenilik olmuştur. Soya fasulyesi, mısır, pirinç ve Arabidopsis, Arabidosil-trikarboksilit taşıyıcı gibi soya, mısır, pirinç ve Arabidopsis, dikarboksilat-trikarboksilat taşıyıcı gibi solute taşıyıcılar da dahil olmak üzere bitki mitokondriyal taşıma proteinleri fonksiyonel karakterizasyonu bu model sistemi kullanılarak gerçekleştirilmiştir20,21. Ancak, domates proteini SICAT9 rekombinant proteinlerreconstitution deneylerde fonksiyonel olmayan bulundu, ve CAT taşıyıcı ailesinin diğer üyeleri Xenopus oosit tahlilleri fonksiyonel olmayan bulundu22. Bu nedenle membran taşıyıcılarının karakterizasyonu için ek moleküler araçlara ihtiyaç vardır.
E. coli23'tebeş poliamin taşıma sistemi bulunur. Bunlar spermidin ve putrescine alımı aracılık iki ABC taşıyıcılar, bir putrescine / ornitin eşanjör, bir kadavra / lizin değiştirici, bir spermidin ihracatçısı ve putrescine ithalatçısı içerir. Putrescine değiştirici PotE başlangıçta bir vezikül titreği kullanılarak karakterize edildi, iç dış veziküller bir Fransız basın ıskarta hücreleri lysing tarafından hazırlanan ve ornithine karşılığında veziküller içine radiolabeled putrescine alımını ölçme24. Vezikül tahlilleri de bir proton gradyan25yanıt olarak kalsiyum taşıma aracılık bir kalsiyum taşıyıcı karakterize etmek için kullanılmıştır. Bu deneyler bizi diğer poliamin eşanjörleri karakterizasyonu için bir strateji geliştirmek için istenir. Biz ilk PotE ve CadB değiştiriciler E. coli eksik bir gerginlik oluşturdu. Burada, modifiye E. coli suşunda heterlogous ifade ile bir bitki poliamin antiporter fonksiyonel karakterizasyonu göstermek, bir Fransız basın kullanarak membran vezikülüretimi, ve radiolabeled tahliller.

<table><tbody><tr><td>2-merkaptoetanol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M6250</td><td></td></tr><tr><td>3H-putresin</td><td>PerkinElmer</td><td>NET185001MC</td><td></td></tr><tr><td>3H-spermidin</td><td>PerkinElmer</td><td>NET522001MC</td><td></td></tr><tr><td>4-kloro-1-naftol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C8890</td><td></td></tr><tr><td>14C arginin</td>, <td>Moravek Inc.</td><td>MC137</td><td></td></tr><tr><td>Arginin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A-5006</td><td></td></tr><tr><td>Anti-His (C-term)-HRP antikoru</td><td>ThermoFisher</td><td>R931-25</td><td>C-terminal polihistidin (6xHis) etiketini algılar, tespit için serbest karboksil grubunu gerektirir</td></tr><tr><td>Arabinoz</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A3256</td><td></td></tr><tr><td>BCA protein test kiti</td><td>ThermoFisher</td><td>23227</td><td>Pierce BCA protein testi kit.</td></tr><tr><td>Bromofenol mavisi</td><td>Bio-Rad</td><td>161-0404</td><td></td></tr><tr><td>Karboksipeptidaz B</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C9584-1mg</td><td></td></tr><tr><td>Santrifüj</td><td>Sorvall</td><td></td><td>SS-34 sabit açılı rotor ve GA-6 sabit açılı rotor</td></tr><tr><td>Dounce doku öğütücü</td><td>LabGenome</td><td>7777-7</td><td>Corning 7777-7 pyrex homojenizatör, dökme ağızlı.</td></tr><tr><td>Ecoscint-H</td><td>Ulusal Teşhis</td><td>LS275</td><td>sintilasyon kokteyli</td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Filtrasyon manifoldu</td><td>Hoefer</td><td>FH225V</td><td></td></tr><tr><td>Fransız Basınç Hücresi</td><td>Glen Değirmenleri</td><td>FA-080A120</td><td></td></tr><tr><td>GABA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A2129</td><td></td></tr><tr><td>Glutamat</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G6904</td><td></td></tr><tr><td>Gliserol</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>GraphPad Prizma yazılımı</td><td></td><td></td><td><a href="http://www.graphpad.com/prism/Prism.htm" target="_blank">http://www.graphpad.com/prism/Prism.htm</a></td></tr><tr><td>Hidrojen peroksit</td><td>KROGER</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Potasyum Klorür</td><td>J.T. Baker</td><td>3040-01</td><td></td></tr><tr><td>Sıvı sintilasyon sayacı</td><td>Beckman</td><td>LS-6500</td><td></td></tr><tr><td>Maleate</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M0375</td><td></td></tr><tr><td>Nanodrop</td><td>ThermoFisher</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nitroselüloz membran filtreler</td><td>Merck Millipore</td><td>hawp02500</td><td>0.45 & mikro; M</td></tr><tr><td>PCR temizleme kiti</td><td>Genscript</td><td></td><td>QuickClean II</td></tr><tr><td>Potasyum Fosfat dibazik</td><td>ThermoFisher</td><td>P290-500</td><td></td></tr><tr><td>putresin</td><td>fluka</td><td>32810</td><td></td></tr><tr><td>Potasyum Fosfat monobazik</td><td>J.T.Baker</td><td>4008</td><td></td></tr><tr><td>Spermidin</td><td>Sigma-aldrich</td><td>S2501</td><td></td></tr><tr><td>Suşları: E. coli ve Delta; potE740(del)::kan, &Delta; cadB2231::Tn10</td><td>Bu el yazması</td><td>istek üzerine temin edilebilir.</td><td>PotE ve CadB poliamin değiştiricilerinde gerinim yetersizdir.</td></tr><tr><td>Tris-base</td><td>Araştırma Ürünleri</td><td>T60040-1000</td><td></td></tr><tr><td>Ultrasantrifüj</td><td>Sorvall MTX 150</td><td>46960</td><td>Thermo Fisher S150-AT sabit açılı rotor</td></tr><tr><td>Ultrasantrifüj tüpleri</td><td>ThermoFisher</td><td>45237</td><td>S150-AT rotor için santrifüj tüpleri</td></tr><tr><td>Vektör: pBAD-DEST49</td><td>E. coli<td></td><td></td> Ağ Geçidi ifade vektörü></tr></tbody></table>

e. coli'de heterolog ekspresyon ile membran taşıyıcılarının karakterizasyonu ve membran veziküllerinin Üretimi

Characterization of Membrane Transporters by Heterologous Expression in E. coli and Production of Membrane Vesicles

Yeni membran taşıyıcıları işlevsel olarak karakterize etmek için çeşitli yöntemler geliştirilmiştir. Poliaminler tüm organizmalarda her yerde bulunur, ancak bitkilerdeki poliamin eşanjörleri tanımlanmamıştır. Burada, escherichia coli hücrelerinin lysis'inden üretilen membran vezikülleri kullanarak poliamin antiporterlarını karakterize eden bir yöntem inanışı bir bitki antiporterını heterologolarak ifade eder. İlk olarak, atbat1'i poliamin ve arginin değişim taşıyıcılarında eksik olan Bir E. coli süzmesinde heterolog olarak ifade ettik. Veziküller bir Fransız presi kullanılarak üretildi, ultrasantrifüj ile saflaştırılmış ve taşıyıcının substrat özgüllüğünü göstermek için etiketli substratların membran filtrasyon telinde kullanıldı. Bu tahliller AtBAT1 arginin bir proton aracılı taşıyıcı olduğunu gösterdi, γ-aminobutirik asit (GABA), putrescine ve spermidin. AtBAT1 tahlil için geliştirilen mutant suşu bitki ve hayvan poliamin eşanjörlerin diğer ailelerin fonksiyonel analizi için yararlı olabilir. Ayrıca bu proteinler bakteri hücre zarında ifade edilebildiği sürece, bu yaklaşımın diğer birçok antiporter türünü karakterize etmek için kullanılabileceğini de varsayız. E. coli, yerli taşıyıcıları susturmak için kullanılan birden fazla yöntem olduğundan, yeni taşıyıcıların karakterizasyonu için iyi bir sistemdir.

Bu protokoldeki önemli adımlar Şekil 1'deresimsel olarak özetlenmiştir. Kısaca, Tüm poliamin eşanjörleri eksik ve AtBAT1 ifade E. coli hücreleri kültürlü, santrifüj, bir tampon ile yıkanmış ve bir Fransız basın ıslatır tabi. Lysis çoğunlukla iç-dış veziküller üretmek ve hücrelerin dışında tampon tuzak eğilimindedir. Hücre enkazı santrifüj ile kaldırılır ve ikinci bir ultracentifugation adım bir membran pelet toplamak için kullanılır. Membran...

E. coli'de heterolog ekspresyon ve fransız presi kullanılarak hücrelerin lysis'inde üretilen membran vezikül preparatlarında proton-tahrikli membran taşıyıcılarının karakterizasyonu için bir yöntem tanımladık.

E. coli'de Heterolog Ekspresyon ile Membran Taşıyıcılarının Karakterizasyonu ve Membran Veziküllerinin Üretimi

Several methods have been developed to functionally characterize novel membrane transporters. Polyamines are ubiquitous in all organisms, but polyamine ...

Membran taşıyıcılarını karakterize etmek için bu tekniğin en önemli avantajlarından biri, taşıyıcının belirli yüzeyler için göreceli yakınlığını belirlemenin yanı sıra taşıma mekanizması hakkında bilgi edinmenizdir. Substrat naklini sağlamak için protein gradyanlarını kullanan membran proteinlerinin karakterizasyonu, burada gösterdiğimiz bu iç-dış vezikül teşrisi için özellikle uygundur. Bu tahlil bir Fransız basın ve ultracentrifuge erişim gibi bazı özel ekipman gerektirir iken, biz membran taşıyıcıları yapay lipozomlar içine yeniden gerekli tahliller daha teknik olarak daha kolay olabileceğini düşünüyorum.Bu tekniğin en büyük avantajı, farklı yüzeylere ilişkin göreceli yakınlıkları ölçmemize ve rakip yüzeylerin taşıma ızgaraları üzerindeki etkisini test etmek için rekabet tahlilleri yapmamıza olanak sağlamasıdır. Bu titreyi göstermek için kullanılan BAT1 taşıyıcısı durumunda, biz de arginin tarafından taşıyıcı substrat aktivasyon göstermek başardık. Bu prosedüre başlamak için, kültür uygun antibiyotikler ile poliamin 3 medya beş mililitre tek bir koloni aşılama ve 37 santigrat derece bir gecede büyüyen hedef protein ifade hazırlanan E.coli mutant hücreleri.Ertesi gün, hücre kültürü 0.6 ve 0.8 arasında bir OD600 ulaşana kadar 0.0002% arabinose ile desteklenen taze poliamin 3 medya 500 mililitre bu kültürü aktarın. Bundan sonra, santrifüj 2000 kez G ve dört derece santigrat hücre pelet toplamak için 15 dakika. Peleti yeniden askıya alın ve her seferinde 15 dakika boyunca 2000 kez G'de santrifüj ve dört santigrat derecede tampon bir ile üç kez yıkayın.Üçüncü dönüşten sonra Tampon bir hücrelerin son hacmi 10 mililitre olmalıdır. 35 mililitrelik bir Fransız basınç hücresi ortaya koyve hücre süspansiyonu hücrenin gövdesine dökün. Ünitenin arka tarafındaki RHS anahtarıyla makineyi açın ve oran seçici anahtarını yükseklere ayarlayın.Pompa düğmesini aç. Piston, odadaki havayı yerinden çıkarmak için üsten yükselmeye başlayacak. Gösterge 640 PSI'ya ulaşana kadar basınç artış valfi saat yönünde çevirerek basıncı artırın.Bu 10.000 PSI bir iç basınç yaratacak. Hücre hedef basınca ulaştıktan sonra, akış valfi tertibatını saat yönünün tersine çevirerek hafifçe açın. Dakikada sadece yaklaşık 10 damla bir akış hızı sağlamak için vana nın açılmasını ayarlayın.Piston gövdesindeki stop hattı akış hücresinin üst bölümüne ulaştığında pompa kapatın. Oran seçici anahtarını aşağıya yerleştirerek alt plakayı indirin ve pompa anahtarını açın. Alt plaka tamamen geri çekildiğinde, basınç artış valfini saat yönünün tersine çevirerek sistem basıncını sıfıra indirin.Pompayı kapatın ve makineyi kapatın. Fransız basını 10, 000 kez G ve dört santigrat derecede 15 dakika boyunca kırılmamış hücreleri ve hücre enkazını yok etmek için ekspertiz. Pelet atın ve ultracentrifuge tüpler için supernatant aktarın.Ultracentrifuge membran veziküller pelet için bir saat için 150, 000 kez G ve dört derece santigrat elde supernatant. Membran vezikülleri tampon ikide yeniden süspansiyon olmadan bir kez yıkayın. Sonra, tampon iki membran vezikülleri yeniden askıya almak için bir Dounce doku öğütücü kullanın.Membran preparatlarının 100 mikrolitrelik aliquotlarını 1,5 mililitrelik santrifüj tüplerde hazırlayın ve eksi-80 santigrat derecede saklayın. İlk olarak, pH 7.8'de Tris'in 30 milimolar'ındaki vezikülleri yıkayın ve yeniden askıya alın, bu da 0.1 milimolar kobalt II klorür içerir. Her 100 mikrolitre lik numuneye sodyum klorür, Tris ve kobalt II klorür de bir mikrolitre karboksipeptidaz ekleyin.20 derecede 20 dakika kuluçkaya yat. Sindirimi durdurmak için PH 7.5'te sodyum EDTA ve 2-Mercaptoetanol içeren bir çözeltinin beş mikrolitresini ekleyin. Enzimi tamamen inaktive etmek için çözeltiyi oda sıcaklığında bir saat kuluçkaya yatırın.Daha sonra, sıvı dodecyl sülfat, gliserol, bromofenol mavisi ve Tris içeren bir çözeltinin beş ila 10 mikrolitresini ekleyin ve numunenin pH 7,5 ila 100 mikrolitresini elektroforez ile analiz edin. Amino blotting gerçekleştirmek için, poliakrilamid jel üzerine 25 milimolar sodyum hidrojen fosfat ile nemlendirilmiş bir nitroselüloz filtre yatıyordu. İki nemlendirilmiş selüloz filtreler arasında yerleştirin, ve son olarak, iki nemlendirilmiş plastik ovma pedleri arasında.Bu derlemeyi 25 milimolar sodyum hidrojen fosfat içeren bir haznenin elektrotları arasına iki ila dört santigrat derece arasında bir sıcaklıkta yerleştirin. Proteinleri 20 voltta ve 2-3 amperde üç saat boyunca elektrotransfer edin. Nitroselüloz zarını bir gecede iki santigrat derecede tamponu bloke ederek kapatın.Ertesi gün, anti-His C-terminal HRP antikor 20 mililitre de nitroselüloz kuluçka, Anti-His C-terminal HRP antikor ve iki saat boyunca tampon engelleme ve tampon ile iki kez yıkama 50 mililitre tampon toplam 60 dakika. Amino lekegörselleştirmek için, denatüre alkol 20 mililitre 4-Chloro-1-naphthol altı miligram eritmek ve 15 milimolar Tris 80 mililitre ve% 30 hidrojen peroksit 50 mikrolitre ekleyin. Bu substrat çözeltisindeki filtre kağıdını 20 dakika yıka.Yeterli renk geliştiğinde, membranı suyla durulayın ve kurumasını bekleyin. Başlamak için, membran veziküllerin 100 mikrolitrelik aliquot'u 12 derecede beş dakika kuluçkaya yatırın. Taşımabaşlatmak için membran veziküller için 50 mikromolar son konsantrasyonunda radyoetiketli poliaminler içeren tampon 3 ekleyin.12 santigrat derecede bir dakika boyunca nakil titresini yap. Bundan sonra reaksiyon karışımlarını filtrasyon manifolduna aktarın ve 0,45 mikrometre nitroselüloz membran filtresinden filtreleyin. Etiketlenmemiş poliaminlerin on kat daha yüksek konsantrasyoniçeren buz gibi araştırma tamponüç mililitre ekleyin, non-spesifik bağlama azaltmak için poliaminler olmadan üç mililitre saymama tampon izledi.Yıkanmış filtreleri 10 mililitre sintilasyon sıvısı içeren 20 mililitrelik tek kullanımlık sintilasyon şişelerine aktarın ve radyoaktiviteyi belirlemek için sıvı bir sintilasyon sayacı kullanın. Metin protokolünde belirtildiği gibi net poliamin alımını hesaplayın. Hedef proteini ifade eden veziküllere radyoetiketli substrat alımını ölçerek substrat için Km'yi belirleyin ve doğrusal olmayan bir regresyon yöntemi kullanarak Michaelis-Menten kinetiklerini hesaplayın.Yarışma deneyleri için, 12 santigrat derecede 100 mikrolitre vezikül içeren santrifüj tüpüne, aynı anda radyoetiketli poliaminin 50 mikromolar eklerken, deneme tamponunda yapılan etiketsiz rekabetçi substratı ekleyin. Veziküllerin içinde sıkışıp kalan radyoaktiviteyi daha önce açıklandığı gibi ölçün. Radiolabeled poliaminlerin alımını ve 100 mikromolar veya daha yüksek etiketli olmayan substrat varlığını ölçerek rekabetçi yüzeyler için bir üst KM belirleyin ve eğriyi çizmek için doğrusal olmayan bir regresyon yöntemi kullanın.Bu çalışmada, bir anti-hamal ilk E.coli protein ifade ile karakterizedir, ve daha sonra, heterologca ifade protein hücresiz bir sistemde titretilebilir böylece membran veziküller üreten. Batıda bir leke AtBAT1 vezikül e nakledilir doğrulamak için kullanılır. Bir Anti-His C-terminal antikor ile leke probing yaklaşık 72.3 kilodalton bir füzyon yapı proteini ortaya.SDS-PAGE'den önce veziküllerin sindirimi azalmaya yol açtı, ancak sonda sinyalinin tam bir kaybı olmadı. 12 santigrat derecede, veziküller tarafından radyoetiketli spermidin alımı bir dakika en yüksek ve üç dakika boyunca doğrusal kaldı. Bu nedenle, taşıma tsanının kuluçka süresi bir dakika içinde sabitlenir.Bir dakika sonra, vezikül membranı boyunca proton gradyanı olmadığı için pH 8.0'da hazırlanan ve depolanan membran vezikülleri ile izotopun net alımı yoktur. Yapay proton gradyanının dağılmasının etkisini göstermek için membran vezikülleri pH 8.0 tamponunda 10 dakika boyunca inkübiterek etiketli substrat ilave edilir ve radyoetiketli substratın minimum alımına yol açmaktadır. Birlikte ele alındığında, bu sonuçlar spermidin proton tahrikli alımı BAT1 proteini nedeniyle olduğunu göstermektedir.Proteinin substrat özgüllüğünü belirlemek için, Km değerleri farklı konsantrasyonlarda radyoetiketli substrat alımı ölçülerek hesaplanır. Spermidin, putrescine ve arginin için Km değerleri bu proteinin yüksek afiniteli poliamin ve arginin değiştirici olduğunu göstermektedir. Belirli bir alt tabaka için taşıyıcının affinity da dolaylı olarak rekabet tahlilleri kullanılarak tespit edilebilir.Bu tahliller GABA spermidin rekabetçi bir inhibitörü olduğunu ortaya koymaktadır. Ayrıca, farklı amino asitlerin değişen konsantrasyonlarda varlığında radyoetiketli spermidin 50 mikromolar alımının ölçülmesi AtBAT1 de milimoler konsantrasyonlarda glutamat ve alanin taşıma yeteneğine sahip olduğunu ortaya koymaktadır. Bu işlemi gerçekleştirirken, membran taşıyıcısının bakteri zarına entegrasyonu, belli ki, kritiktir.İlgi proteininin membrana entegre edildiğinin doğrulanması, C-terminal etiketlerine karşı yöneltilen antikorlar kullanılarak yapılabilir. İnsan ışınlayıcılarının genetik varyasyonu, hem metabolitlerin hem de belirli taşıyıcının alt tabakaları olan ilaçların taşınmasını etkileyebilir. Böylece, allelic varyasyon etkileyebilir, hem, alımı ve ilaçların atılımı.Birçok allelik varyantları hızlı bir ifade vektörü taşıyıcı genin yan yönettiği mutagenezi tarafından yapılabilir. Bu varyantların fonksiyonel tahlilleri daha sonra içten dış vezikül tahlilleri kullanılarak çok kontrollü koşullar altında test edilebilir. Membran taşıyıcıları tüm proteinlerin 8-10'undan oluşan ve çoğunluğu model organizmaların hiçbirinde tam olarak karakterize edilmemiştir.Organel membranlara lokalize olan taşıyıcılar, ökaryotik hücrelerde heterolog ifade ile karakterize etmek özellikle zordur. Değişim tipi veya proton aracılı taşıyıcılar bu E.coli membranlokalize edilebilir, bu taşıyıcılar fonksiyonel olarak bu in vitro tsay kullanılarak karakterize edilebilir. Veziküllerin kalitesi ve verimi Fransız basınından hücre parçalarının elüsasyon oranındaetkilenir.Izotopları ile veziküllerin taşıma tahlilleri yaparken, deneysel çoğaltmalar yapmayı kolaylaştıran deneysel bir kurulum olması önemlidir. Bunu yapmanın birçok yolu vardır, ancak bunu nasıl yaptığımızı size göstermenin bize yardımcı olacağını düşünüyoruz.

characterization-membrane-transporters-heterologous-expression-e-coli

Research

JoVE Journal

Biochemistry

Biyokimya

Bu protokolde, çözünebilir bir protein deterjan kompleksi olarak, ifade, çözünmüş ve recombinantly ifade membran proteini, MexB arıtma göstermektedir. MexB fırsatçı bakteriyel patojen Pseudomonas aeruginosa bir çok ilaca direnç membran taşıyıcı.

İfade, Deterjan çözünürleştirme ve Membran Transporter, MexB ilaca Direnç Protein Saflaştırılması

Yeşil floresan proteini füzyon göre, Escherichia coli içinde rekombinant zar proteinlerinin ifadesi için tarama için bir aerodinamik bir yaklaşım sunulmuştur.

Membran proteinlerinin Yeşil floresan proteini temelli Ekspresyon elemesinde<em&gt; Escherichia coli</em

β namlulu dış zar proteinleri (OMP'ler), Gram-negatif bakterilerin, mitokondrilerin ve kloroplastların dış zarları içinde birçok işleve hizmet eder. Burada, X-ışını kristalografisi veya NMR spektroskopisi ile yapı belirleme için yeterli miktarlarda β namlulu OMP'lerin üretimi için protokoller sunarak yapısal çalışmalarda bilinen bir darboğazı hafifletmeyi umuyoruz.

β-varil Dış Membran Proteinleri Yapı Tayini Doğru - Yapıların itibaren Crystals

Çeşitli uygulamalarda uygulama için gelişmiş enzim stabilitesi sağlayan enzim paketli dış zar veziküllerinin (OMV) üretimi, saflaştırılması ve kullanımı için bir protokol sunulmaktadır.

Outer zar vezikülleri içinde Yönetmen Protein Paketleme<em&gt; Escherichia coli</em&gt;: Tasarım, Üretim ve Arıtma

Bu iletişim kuralı tarafından cryo-elektron mikroskobu, verimli bir şekilde en az çaba ve toksisite, protein ayıklama, arıtma ile memeli hücrelerinde genlerin ifade etmek için kullanılan bir baculovirus sistemi de dahil olmak üzere iyon kanal yapılarını belirlemek için kullanılan teknikler açıklanır, ve kalite kontrol, örnek kılavuz hazırlık ve tarama, hem de veri toplama ve işleme.

İfade ve insan Lipid duyarlı ba * kanal TRPC3 arınma için tek-parçacık Cryo-elektron mikroskobu ile yapısal kararlılık

Burada sunulan peptid tabanlı Küçük unilamellar veziküller büyüme yeteneğine oluşturulması için protokoller vardır. Membran peptid vesiculo üretiminde kolaylaştırmak için, bu veziküller bir transkripsiyon-çeviri sistemi ve peptid-kodlama Plasmid ile donatılmıştır.

Vesiculo 'da otonom vezikül büyümesi için peptid membran öncülerinin sentezini

Önceden oluşturulmuş nanodisklere birlikte translasyonel yerleştirme, tanımlanmış lipit ortamlarında deterjanlarla temas etmeden hücresiz sentezlenmiş membran proteinlerinin incelenmesini mümkün kılar. Bu protokol, temel sistem bileşenlerinin hazırlanmasını ve ifade verimliliğini ve numune kalitesini artırmak için kritik parametreleri açıklar.

Membran Proteinlerinin Önceden Oluşturulmuş Nanodisklere Ko-Translasyonel Olarak Yerleştirilmesi

Bu protokol, buğday hücresiz sistem ve lipozomlar kullanılarak çift katmanlı diyaliz yöntemiyle yüksek kaliteli proteolipozom üretimi için etkili bir hücresiz yöntemi tanımlamaktadır. Bu yöntem, membran proteinlerinin fonksiyonel analizi, ilaç hedeflerinin taranması ve antikor gelişimi için uygun araçlar sağlar.

Membran Proteinlerini Hedefleyen Fonksiyonel Analiz ve Antikor Gelişimi için Proteolipozomların Hücresiz Üretimi

Bu makalede, Saccharomyces cerevisiae'de aşırı ifade edilen Candida albicans ABC (ATP bağlayıcı kaset) protein Cdr1'in karakterizasyonu için küçük ölçekli bir plazma membran izolasyon protokolü sunulmaktadır. Cdr1 ile etiket arasında 16 kalıntılı bağlayıcı bulunan proteaz-bölünebilir C-terminal mGFPHis çift etiket, Cdr1'in saflaştırılmasını ve deterjan taramasını kolaylaştırmak için tasarlanmıştır.

Candida albicans Cdr1-mGFPHis Analizi için Küçük Ölçekli Plazma Membran Hazırlama

Bu protokol, hücre dışı membrana bağlı veziküller içinde paketlenmiş, tipik olarak çözünmeyen veya disülfür bağı içeren proteinler de dahil olmak üzere rekombinant proteinlerin bakteriyel üretimi için ayrıntılı bir yöntem açıklamaktadır. Bu, uygulamalı biyoteknoloji ve tıp da dahil olmak üzere çok yönlü bilimsel araştırma alanlarına uygulanma potansiyeline sahiptir.

E. coli'den Rekombinant Protein Dolu Veziküllerin Optimize Edilmiş Üretimi ve Analizi

Bu protokol, bir model membran proteininin lipid çift tabakasına sentezinin ve dahil edilmesinin araştırılması için dev bir unilamellar vezikül (GUV) içinde bir hücresiz ekspresyon (CFE) sistemini kapsüllemek için kullanılan ters emülsiyon yöntemini tanımlar.

Bakteriyel Glutamat Reseptör Kanalının, Hücresiz Bir Ekspresyon Sisteminin Kapsüllenmesi ile Sulandırılması

Öğrenin, E. coli'de membran taşıyıcılarını karakterize etmek için membran vezikülü hazırlama yöntemini. Bu teknik, substrat afinitesini belirlemeye ve taşıma mekanizmalarına dair bilgi sağlar.

E. coli'de Heterolog Ekspresyon ile Membran Taşıyıcılarının Karakterizasyonu ve Membran Veziküllerinin Üretimi

Daha fazla video keşfet