-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Farelerde İntrathecally Sentezlenmiş Proteinlerin Kantitatif Ölçümü
Farelerde İntrathecally Sentezlenmiş Proteinlerin Kantitatif Ölçümü
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Quantitative Measurement of Intrathecally Synthesized Proteins in Mice

Farelerde İntrathecally Sentezlenmiş Proteinlerin Kantitatif Ölçümü

Full Text
11,612 Views
08:23 min
November 29, 2019

DOI: 10.3791/60495-v

Francesca Gilli1, Nora C. Welsh1,2, Michael R. Linzey1,2, Darlene B. Royce1, Krista D. DiSano1, Andrew R. Pachner1

1Department of Neurology,Geisel School of Medicine & Dartmouth-Hitchcock Medical Center, 2Program in Experimental and Molecular Medicine,Dartmouth College

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents an optimized protocol for collecting cerebrospinal fluid (CSF) and blood from mouse models, aiming to distinguish between elevated CSF protein levels caused by blood-brain barrier alterations and those from intrathecal synthesis. The study emphasizes the practical challenges of obtaining clean CSF samples and provides quantitative measurements related to CSF protein analysis.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Protein analysis
  • Blood-brain barrier integrity

Background

  • Understanding CSF protein levels is essential for investigating neurological disorders.
  • Diffusion of plasma proteins and intrathecal synthesis can both lead to elevated protein levels in CSF.
  • Quantitative assessment of protein origins can inform disease mechanisms.
  • Challenges exist in obtaining uncontaminated CSF samples from mouse models.

Purpose of Study

  • To develop a protocol that quantitatively differentiates between causes of elevated CSF proteins.
  • To provide a baseline for analyzing the origin of CSF proteins and assessing barrier integrity.
  • To detail a methodological approach that can be adapted for various animal models and human studies.

Methods Used

  • The protocol includes blood collection via retro-orbital bleeding and cardiac puncture.
  • CSF is collected through a puncture at the cisterna magna of anesthetized mice.
  • The study outlines essential surgical and collection techniques to minimize contamination.
  • Protein quantification assays are utilized to compare CSF and serum samples, with data analysis conducted via standard curves.
  • Specific measures for ensuring sterility and proper sample handling are highlighted.

Main Results

  • The protocol enables accurate measurement and differentiation of protein synthesis sources.
  • Findings indicate significantly increased total IgG levels in the CSF of rodent models with altered blood-brain barrier permeability.
  • Contrasting albumen quotient values reflect differing blood-brain barrier integrity among various models.
  • The study validates the protocol through observed robust data on CSF protein concentrations.

Conclusions

  • This study provides an essential methodological framework for analyzing CSF protein levels in relation to neurological conditions.
  • Increased understanding of CSF protein origins can impact future research on central nervous system diseases.
  • The insights gained from this protocol can enhance the evaluation of blood-brain barrier functions in various contexts.

Frequently Asked Questions

What advantages does this protocol offer?
This protocol allows for accurate differentiation of CSF protein sources and can be adapted for various models, providing robust data for neurological studies.
How is cerebrospinal fluid collected in this study?
CSF is collected via a puncture at the cisterna magna in anesthetized mice, ensuring minimal contamination through careful surgical technique.
What types of outcomes are measured using this protocol?
The protocol measures CSF protein levels, including total IgG concentrations, to assess blood-brain barrier integrity and intrathecal protein synthesis.
Can this method be adapted for human studies?
Yes, while primarily designed for mouse models, the principles can be applied to human studies involving CSF sampling and protein analysis.
What are the key challenges in collecting CSF from mice?
Obtaining significant volumes of clean CSF can be technically challenging, necessitating practice to refine technique and ensure sample quality.
Why is understanding CSF protein levels important?
Analyzing CSF protein levels helps elucidate the pathophysiological mechanisms underlying various neurological conditions and aids in disease diagnosis.
What impact does this research have on neurological disorders?
The enhanced understanding of protein synthesis in CSF and blood-brain barrier interactions could inform future therapeutic strategies for neurological disorders.

Yüksek spinal sıvı protein düzeyleri ya değiştirilmiş bir kan-beyin bariyeri veya intratekal sentez arasında plazma proteininin difüzyon sonucu olabilir. Bu makalede, her iki vakanın da ayrımına yardımcı olan ve intrathecally sentezlenmiş proteinlerin nicel ölçümlerini sağlayan optimize edilmiş bir test protokolü sunulmuştur.

Bu protokol, BOS protein düzeylerinin kantitatif düzeltmesinde BOS ve kan toplamanın, nörolojik bozuklukların fare modellerinde bir tekal protein sentezini ölçmesine olanak sağlar. Bu prosedür, BOS proteinlerinin patofizyolojik kökeninin ve kan BOS'un bütünlüğünün stabilitesi ve fonksiyonel öneminin değerlendirilebileceği bir temel sağlar. İnterthecal protein sentezi ve bariyer bütünlüğünün analizi diğer hayvan modellerine ve insan çalışmalarına uygulanabilir.

Örneğin, merkezi sinir sistemi hastalıkları kontrol etmek için. Farelerde önemli hacimlerde temiz BOS toplamak teknik olarak zor olabilir, bu nedenle büyük hacimlerde kirlenmemiş numune elde edilene kadar tekniğin pratik edilmesi tavsiye edilir. Prosedürleri gösteren Micheal Linzey, Dartmouth deneysel ve moleküler tıp programı yüksek lisans öğrencisi, bizim yeni immünoloji araştırma grubunda olacaktır.

Retro orbital kanama ile serum toplanması için. 15 gramdan daha büyük bir anestezili farede pedal refleksine yanıt eksikliğini doğruladıktan sonra, baskın olmayan elin başparmak ve işaret parmağıyla kulakların arkasındaki gevşek deriyi tutun ve gözün üzerindeki deriyi geri çekmek için işaret parmağını kullanın. Gözün altındaki deriyi geri çekmek için başparmağı kullanarak, yaklaşık 45 derecelik açıda tutulan Pasteur pipetin ucunu göz küresinin altındaki göz çukurunun altına yerleştirin ve pipeti parmaklar arasında döndürün.

Daha sonra kısa, hafif basınç uygulayın ve kan pipet girmek için izin bırakın. Kan örneği toplandığında, gözü yaralamadan kılcal damarı hafifçe çıkarın ve kanı 1,5 mililitrelik santrifüj tüpüne aktarın. Göz kapağını kapattıktan sonra, daha fazla kanamayı önlemek için gazlı bez ile hafif basınç uygulayın.

Santrifüj ile örnek aşağı dönmeden önce oda sıcaklığında 30 ila 60 dakika pıhtılaşmak için kan bekleyin. Temiz bir pipet tekniği kullanarak, ayrılmış serumu 500 mikrolitrelik yeni bir şişeye alın ve serumu hemen 80 derecede dondurun. Pedal refleks yanıt eksikliği doğruladıktan sonra, anestezili farekafatasının kaudal ucunda hemen beyin omurilik sıvısı toplanması sağlamak için saç yeterince büyük bir alan kaldırmak.

Fareyi steril koşullar altında stereotaksik bir cihaza yatkın bir konuma yerleştirin ve başı kulak çubuklarıyla sabitle. % 30 klorheksidin diasetat ile cerrahi site swab, ve sargı bezi occiput aşağı bir sagittal deri kesi yapmak cisterna magna örten kasları ortaya çıkarmak için. Forceps kullanarak, künt deri altı doku ve kasları incelemek, ve cisterna magna üzerinde dura mater meningeal tabakası ortaya çıkarmak için ayrı kasları tutmak için mikro retraktörler kullanın.

Herhangi bir olası kan kontaminasyonunu gidermek için dokuyu steril PBS ile hafifçe yıkayın ve dura mater kurulekelemek için steril pamuklu bir bez kullanın. İlk delinmenin sarnıktan magna'ya yerlemesi, bol miktarda kontamine olmayan BOS elde etmek için gereklidir. 30 gauge iğne kullanarak, sarnıç magna kapsayan membran hafifçe delinve hızlı ve yavaşça delinme içine küçük bir cam kılcal tüp takın.

BOS beş ila 12 mikrolitre toplandığında, dikkatle membran tüp kaldırmak ve üç mililitreşile şırınga tüp bağlamak için polietilen tüp bir parça kullanın. Toplanan BOS'u buz üzerinde 500 mikrolitrelik etiketli bir tüpe enjekte edin ve kesiyi kapatmak için tek kullanımlık bir iğne ve çeşitli polidioksanon dikişleri kullanın. Herhangi bir kurutulmuş kan veya doku alanı temizleyin ve tam recumbency kadar izleme ile temiz, sıcak bir kafesiçinde fare yerleştirin.

BOS'u santrifüj le toplayın ve peleti görsel olarak inceleyin ve herhangi bir kan kontaminasyon uması için üstte arayın. Daha sonra temiz pipet tekniğini kullanarak, BOS içeren supernate'i yeni bir 200 mikrolitrelik tüpe aktarın ve 80 santigrat derecede anında depolama için Bos'u PBS ile bir veya üç oranında seyreltin. Kardiyak delinme ile serum toplama için, BOS toplama hemen sonra, sadece gösterildiği gibi, supine pozisyonda fare yerleştirin.

Karın derisini %70 alkolle temizler. Göğüs boşluğu açmak için makas kullanın, kalp açığa, ve sol ventrikül içine 3 mililitreşöyyür şırınga bağlı bir 25 gauge iğne takın. Daha sonra şırınga pistonuna hafifçe negatif basınç uygulayın, kan toplandıktan sonra iğneyi geri çekin.

Toplanan kanı 1.5 mililitrelik bir şişeye fırlatmak için pistonu bastırın. Şimdi, santrifüj ile serum ayırmadan önce oda sıcaklığında 30 ila 60 dakika pıhtılaşmak için kan sağlar. Daha sonra, temiz bir pipet tekniği kullanarak, 80 santigrat derece hemen depolama için yeni etiketli 500 mikrolitre lik şişe içine serum aktarın.

Eşleşen serum ve BOS örneklerinde hedef proteinleri ve albumenleri ölçmek için, her bir ilgi proteini için standart bir eğri hazırlamak için referanslı standart proteinler kullanarak standart bir protein nicel testi kullanın. Analizden sonra ham verileri uygun bir yazılım grafik programına aktarın ve her bir ilgi proteini için standart bir eğri oluşturmak için algılama sinyali floresan yoğunluğunu standart protein konsantrasyonlarına göre grafiklendirin. Daha sonra, numuneler ilgi her analiz konsantrasyonları hesaplamak için standart eğrileri kullanın.

Son olarak, Q değerlerini ve intratekal indeksini hesaplamak için albumen ve hedef analit konsantrasyonlarını kullanın. Total IgG gerçek düzeyleri multipl skleroz iki test kemirgen modellerinin BOS önemli ölçüde artar, karşılık gelen yaş eşleşen sham kontrolleri ile karşılaştırıldığında. R-EAE fareler önemli ölçüde gelişmiş albumen katidik değerleri göstermek, Bu farelerde kan beyin bariyerinin artan geçirgenlik gösteren.

TMEV-IDD ve sahte fareler arasında albumen katsayısı nda herhangi bir fark yoktur ve TMEV-IDD farelerde sağlam bir bariyerin önceki bulgularını doğrular. Ayrıca TMEV-IDD hayvanlarda igg indeks değerleri ve dolayısıyla intratekal IgG üretimi gözlenmektedir. Protein indeksi hesaplanması, hem nöroinflamatuar hem de nörodejeneratif hastalıklar için erken tanı, sonuç tahmini ve hastalık dersi takibinde yararlı olan yeni protein biyobelirteçlerinin belirlenmesini kolaylaştırır.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Nörobilim Sayı 153 intratekal sentez beyin omurilik sıvısı kan-beyin bariyeri albumin katiler protein indeksi protein transudate

Related Videos

Cisterna Magna Fare Beyin Omurilik Sıvısı Seri Toplama Tekniği

08:08

Cisterna Magna Fare Beyin Omurilik Sıvısı Seri Toplama Tekniği

Related Videos

104.3K Views

Sinapslar miktarının: Synapse Numarası ölçmek için bir İmmünositokimya tabanlı Testi

18:11

Sinapslar miktarının: Synapse Numarası ölçmek için bir İmmünositokimya tabanlı Testi

Related Videos

36.6K Views

İmmünofloresan Kullanarak Fare Beynindeki Bir Presinaptik Proteinin Dağılımının Ölçülmesi

05:59

İmmünofloresan Kullanarak Fare Beynindeki Bir Presinaptik Proteinin Dağılımının Ölçülmesi

Related Videos

576 Views

İşitsel Ayrımcılık Öğrenme sonra Fare Beyin Bölgeler Yüksek Çözünürlüklü Sayısal Synaptic Proteome Profil

10:36

İşitsel Ayrımcılık Öğrenme sonra Fare Beyin Bölgeler Yüksek Çözünürlüklü Sayısal Synaptic Proteome Profil

Related Videos

11K Views

Amiloid habercisi γ-Secretase-aracılı Protein ve çentik bölünme hücre tabanlı Luciferase muhabir tahlil platformlarda nicel ölçüm

06:40

Amiloid habercisi γ-Secretase-aracılı Protein ve çentik bölünme hücre tabanlı Luciferase muhabir tahlil platformlarda nicel ölçüm

Related Videos

7.1K Views

Vivo Microdialysis beyin interstisyel sıvı yüksek moleküler ağırlık kesme ile gelen büyük hücre dışı proteinler toplamak için yöntem probları

08:17

Vivo Microdialysis beyin interstisyel sıvı yüksek moleküler ağırlık kesme ile gelen büyük hücre dışı proteinler toplamak için yöntem probları

Related Videos

15.2K Views

Serebral protein sentezi In vivo bölgesel oranlarının belirlenmesi için nicel Autoradiographic yöntemi

11:01

Serebral protein sentezi In vivo bölgesel oranlarının belirlenmesi için nicel Autoradiographic yöntemi

Related Videos

7.4K Views

Türdeş olmayan dağıtım ayirt kullanarak fare beynindeki bir sinaptik protein miktarının

09:18

Türdeş olmayan dağıtım ayirt kullanarak fare beynindeki bir sinaptik protein miktarının

Related Videos

8.5K Views

Subcellular Ubiquitin ölçümü-kemirgen beyinde proteasom aktivitesi

09:25

Subcellular Ubiquitin ölçümü-kemirgen beyinde proteasom aktivitesi

Related Videos

7.2K Views

İzole Fare Beyni Mikrogliasında İntranükleer Akış Sitometrisi Kullanılarak Global Histon Post Translasyonel Modifikasyonların Miktar Tayini

07:10

İzole Fare Beyni Mikrogliasında İntranükleer Akış Sitometrisi Kullanılarak Global Histon Post Translasyonel Modifikasyonların Miktar Tayini

Related Videos

2.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code