Name: Lentiviral Vektör Yaklaşımı Kullanarak Transgenik Sıçanların Üretimi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-05-17T12:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 7 s
Description: Öğrenin, lentiviral vektörler kullanarak sıçan embriyolarına transgen yerleştirme yöntemini. Bu teknik, gen fonksiyonlarını canlı organizmalarda çalışmak için etkili ve erişilebilir bir protokol sunar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma, Avrupa Birliği tarafından WK'ya Avrupa Bölgesel Kalkınma Fonu kapsamında ortaklaşa finanse edilen Polonya Bilim Vakfı'nın Team Tech Core Facility Plus programı kapsamında ki ANIMOD projesi tarafından desteklenmiştir.

Viral vektörlerin üretimi ve uygulanması Biyogüvenlik Düzey 2 yönergelerine uygun olarak ve Polonya Çevre Bakanlığı tarafından onaylanmıştır. Aşağıda açıklanan tüm deneysel hayvan prosedürleri Yerel Etik Komitesi tarafından onaylanmıştır. Hayvanlar stabil sıcaklıkta (21-23 °C) ve nem (%50-60) ayrı ayrı havalandırılan kafeslerde barındırıldı. 12 h/12 h ışık/karanlık döngüsü altında su ve gıda reklam libitum erişimi ile.
1. Lentiviral vektör üretimi
<ol><li>HEK 293T hücrelerinin transfeksiyonu NOT: Burada sunulan protokol, yaklaşık 200 mL ham vektör süpernatant üreten yirmi Ø10 cm kültür yemeklerinin transfeksiyonu için tasarlanmıştır.<ol>
<li>DMEM ortamda 37 °C'de nemlendirilmiş CO2 kuluçka makinesinde fetal büyükbaş serum (%10, v/v) ile takviye edilen Kültür HEK 293T hücreleri. Transfeksiyon için, yirmi 10 cm çapında plakalar hazırlamak ve tohum 1.5-2 x 106 HEK 293T çanak başına hücreleri.</li>
		<li>Birleştiğinde ~%70'e ulaştığında, hücreleri polietilenin (PEI) reaktifi pH 7.0 kullanarak 1 μg DNA'da 3 μg PEI oranında transfect.<ol>
<li>Transfeksiyon karışımını beş tabak için hazırlayın (toplam tabak sayısına göre tekrar sayısını hazırlayın). Dulbecco'nun Modifiye Kartal Orta (DMEM) 1 mL için, üç plazmid karışımı ekleyin böylece VSVg plazmid 25 μg, delta R8.2 50 μg ve kodlama plazmid 50 g nihai bir miktar ulaşmak.</li>
			<li>Pipet yukarı ve aşağı, ve 3 μg/μL konsantrasyonda 125 μL PEI ekleyin. Plaka başına transfeksiyon karışımı200 μL ekleyin. Daha sonra, 37 °C'de nemlendirilmiş co2 kuluçka makinesinde plakaları kuluçkaya yatırın.</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
	<li>Lentiviral vektörlerin konsantrasyonu<ol>
<li>Transfeksiyondan kırk sekiz saat sonra, LV parçacıkları içeren ortamı hasat edin. 50 mL konik tüpler kullanın. NOT: Floresan etiketli bir plazmid kullanırken, hücreler transfeksiyon verimliliğini doğrulamak için bu noktada görselleştirilebilir. DMEM ortamının yeni bir kısmı eklenebilir ve hücreler ek olarak 24 saat kuluçkaya yatırılabilir. LV verimi transfeksiyon sonrası 48 ve 72 saat zaman noktalarında toplandığında karşılaştırılabilir.</li>
		<li>Ayrılmış hücreleri kaldırmak için 5 dakika ve oda sıcaklığında 3.000 x g orta santrifüj.</li>
		<li>Supernatant 'ı (0,45 m) filtreleyin ve yeni tüplere dökün. NOT: Bu adım atlanabilir.</li>
		<li>DNase I (RNase içermez, 1 μg/mL) ve MgCl2 (1 mM) ekleyin ve 37 °C'de 15 dakika boyunca bir su banyosunda kuluçkaya yatırın.</li>
		<li>Orta yı tek kullanımlık polietilen tüplere aktarın ve 115.000 x g ve 4 °C'de 1,5 saat boyunca sallanan bir rotorda ultracentrifuge'a aktarın.</li>
		<li>Santrifüjden sonra tüplerin duvarlarını orta kalıntılardan hafifçe boşaltın.</li>
		<li>Peleti steril fosfat tamponlu salin (PBS; tüp başına 70-80 μL) ile ıslatın.</li>
		<li>4-8 °C'de 2 saat kuluçka.</li>
		<li>PBS'deki viral vektörleri nazik pipetleme ile yeniden askıya alın. DİkKAT: Köpürmekten kaçının.</li>
		<li>1,5 mL santrifüj tüpüne ve santrifüje 7.000 x g ve 4 °C'de 30 s. Süpernatant'ı yeni bir tüpe aktarın. Hücresel enkaz peleti görünmeyene kadar bu adımı tekrarlayın.</li>
		<li>Aliquot ve -80 °C'de dondurun. LV aliquot'u yeniden dondurmaktan kaçının.</li>
	</ol></li>
	<li>Kantitatif polimeraz zincir reaksiyonu kullanılarak virüs titresinin tayini NOT: Viral vektörlerin titrasyonu nicel PCR (qPCR) kullanılarak gerçekleştirilir. Bu yöntem, viral genomun uzun terminal tekrar bölgesi içinde çift iplikli 84 bp uzunluğunda DNA parçasının yükseltilmelerine dayanmaktadır15.<ol>
<li>1:500, 1:1.000, 1:5.000, 1:10.000, 1:100.000 ve 1:1.000.000: LV kodlama plazmid seri seyreltme yaparak standart eğrihazırlayın. Standart eğri için kullanılan plazmidkopya sayısını belirleyin. Aşağıdaki formülü kullanın: kopya sayısı/μL = (konsantrasyon [g/μL] x 6,02 x 1023 [sayı/mol]) / (660 [g/mol] x plazmid boyutu [bp]), 6,02 x 1023 sayı/mol Avogadro'nun sayısı dır ve 660 g/mol bp ağırlığıdır. NOT: Çevrimiçi kopya numarası hesap makineleri kullanılabilir.</li>
		<li>Lentiviral süspansiyon un seyreltmelerini hazırlayın: 1:100, 1:500 ve 1:1,000.</li>
		<li>Reaksiyon karışımını (kuyu başına hacimler): 10 μL qPCR Mastermix, 1 μL 10 μM Forward astar, 1 μL 10 μM ters astar ve 7 μL H2O. Pipet karışımı 96 kuyulu plakaların kuyularına yerleştirin. NOT: İleri astar: 5'-AGCTTGCCTTGAGTGCTTCA. Ters astar: 5'-TGACTAAAAGGGTGAGGGA.</li>
		<li>Trilikat olarak her standart seyreltme ve lentiviral süspansiyon 1 μL ekleyin.</li>
		<li>QPCR'ı aşağıdaki parametrelere göre çalıştırın: 2 dk için 50 °C, 5 dk için 96 °C ve 20 s için 96 °C'nin 35 döngüsü, 40 s için 60 °C ve 1 dk için 70 °C, ardından erime eğrisi aşaması: 1 dk için 95 °C ve 30 sn'da 60 °C.</li>
		<li>Her seyreltme için alınan molekül sayısını standart eğriyle karşılaştırarak sonuçları analiz edin. Her seyreltme için üç çoğaltma ortalaması olarak vektör moleküllerinin konsantrasyonu belirleyin. NOT: Sunulan nicelik viral parçacıkların fiziksel konsantrasyonunu verir. Fonksiyonel bir titre olarak ele alınmamalıdır.</li>
	</ol></li>
</ol>2. Transgenik sıçanların üretimi
<ol><li>Döllenmiş embriyoların süperovülasyonu ve toplanması<ol>
<li>Gonadotropinleri uygulayın. NOT: Toplanan embriyo sayısını artırmak için (kadın başına yaklaşık 30), hormonal stimülasyon için olgunlaşmamış 5 haftalık Wistar dişikullanın.<ol>
<li>1. Günde (12:00-1PM), intraperitoneally gebe mare serum gonadotropin enjekte (PMSG; 25 Kadın başına IU). Hormon tozunu %0,9 NaCl'de eriterek 125 IU/mL konsantrasyonda 1 mL çalışma çözeltisi hazırlayın. -20 °C'de 1 aya kadar veya -80 °C'de 6 aya kadar saklayın.</li>
			<li>3. günde (12 PM-1 PM), intraperitoneally enjekte insan koryonik gonadotrophin (hCG; kadın başına 30 IU). Hormon tozunu %0,9 NaCl'de eriterek 1 mL çalışma çözeltisi (150 IU/mL) hazırlayın. -20 °C'de 1 aya kadar veya -80 °C'de 6 aya kadar saklayın.</li>
		</ol>
</li>
		<li>HCG uygulamasından sonra, eş kadın 1:1 cinsel doğurgan erkekler (3-10 aylık) ile.</li>
		<li>Ertesi sabah (gün 4 8-10 AM), bir vajinal fiş varlığı için kadın kontrol edin. En iyi görüntüleme için miyetgecesinden sonra sabah erken saatlerde kontrol edilmelidir beyazımsı bir miyon fiş varlığı için vajinal açılış kontrol edin. Embriyo toplama için, görünür bir fiş ile sadece kadın kullanın.</li>
		<li>10:00'da embriyoları toplayın. Oviducts çıkarmak için hayvanları kurban ve önceden ısıtılmış M2 orta ile bir tabak içinde oviducts toplamak.<ol>
<li>Oviduct'ları, 0,5 mg/mL konsantrasyonla büyükbaş testislerinden hyaluronidaz ile önceden ısıtılmış M2 ortamı içeren 35 mm'lik bir tabağa aktarın.</li>
			<li>Oviduct'in duvarlarını stereomikroskop altında ince çömleçler kullanarak açın ve embriyolar serbest bırakılıncaya kadar ampulla (yani kümülüs hücreleri yle çevrili döllenmiş embriyolar içeren oviduct'in şişmiş kısmına) basın. NOT: Hyaluronidase enzimatik olarak kümülüs hücrelerini sindirir ve embriyoları serbest bırakarak. DİkKAT: Hyaluronidase uzun süreli maruz kalma embriyolar için zararlıdır; bu nedenle, bu adım en fazla 5 dakika sürmelidir.</li>
			<li>Embriyoların kümülüs hücrelerinden salınımını kolaylaştırmak için, ağızdan işletilen bir aspiratör tüpüne bağlı cam transfer pipetini kullanarak onları yavaşça yukarı ve aşağı pipetleyin.<ol>
<li>Transfer pipetüretmek için, düz ~ 5-10 cm ucu üretmek için bir alev üzerinde bir cam Pasteur pipet çekin. ~4 cm'lik bir uç bırakarak pipeti kırın.</li>
			</ol>
</li>
			<li>Hyaluronidase ve hücresel enkaz kaldırmak için M2 orta embriyolar birkaç kez yıkayın. Embriyoları % 5 CO2 atmosfere sahip nemlendirilmiş 37 °C kuvözde, sıvı parafin veya mineral yağ la kaplı önceden dengelenmiş M16 ortamı (~50°L) damlaları içeren 60 mm'lik bir tabağa aktarın.</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
	<li>Zona pellucida altında tek hücreli embriyo merceksi viral vektörlerin mikroenjeksiyon NOT: Mikroenjeksiyon için iki görünür pronüklei içeren tek hücreli evreli embriyolar kullanın (Şekil 1).<ol>
<li>Kalan hücresel enkaz pelet 2 dakika için oda sıcaklığında ve santrifüj 10.000 x g ve RT LV aliquot çözültün.</li>
		<li>Mikroenjeksiyon kurulumu<ol>
<li>Bir mikroforge kullanarak cam tutma pipetleri (borosilikat cam kılcal) hazırlayın. 5-10 cm'lik bir uç üretmek için cam kılcal damarı bir alevin üzerine çekin. ~4 cm'lik bir uç bırakarak pipeti kırın. Dış çapı ~80-120 μm olmalıdır. NOT: Pipet ucunun mükemmel düz ve pürüzsüz olduğundan emin olun.</li>
			<li>Çekilen pipetleri, ısıtma filamentinin önünde ucu yla bir mikroforge halinde monte edin. Filamenti pipet ucuna çok yakın ısıtın ve ~15 μm (embriyo büyüklüğünün yaklaşık %20'si) çapına küçülmesine izin verin. Pipeti, pipet ucundan 2-3 mm uzaklıktaki ısıtma filamentine dik olarak yerleştirin ve ısıtmaya başlayın. Cam yumuşayacak. 15° açıya ulaşana kadar ısıtın.</li>
			<li>Bir pipet çekmece kullanarak bir filament ile mikroenjeksiyon borosilikat cam kılcal hazırlar. Kılcal damarı çekme odasına yerleştirin. Bir rampa testi çalıştırın (yeni cam için ilk kez ve filament değiştirdikten sonra her zaman). Isı'yı rampa değerine -10, Çekme'yi 100'e, Hızı 150'ye ve Zaman'ı 100'e ayarlayın. NOT: En uygun enjeksiyon kılcal damarı elde etmek için parametreleri değiştirin.</li>
			<li>Biyogüvenlik laminar akış kaputu altında, viral çözeltinin yaklaşık 2 μL'sini mikroyükleyici ucuyla mikroenjeksiyon pipete yükleyin.</li>
			<li>Sıvı parafin veya mineral yağ la kaplı 100°L M2 orta (ortada) içeren bir mikroenjeksiyon kabı (60 mm Petri kabıkapağı) hazırlayın.</li>
			<li>Ters bir mikroskop altında bir mikromanipülatör ve mikroenjeksiyon çanağı viral çözelti ile yüklenir tutma pipet ve mikroenjeksiyon kılcal monte.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Mikroenjeksiyonu gerçekleştirin.<ol>
<li>15-20 tek hücreli embriyoyu mikroenjeksiyon kabındaki M2 damlasına aktarın. Bir tutma pipetkullanarak embriyo tutun.</li>
			<li>400x büyütme kullanarak, otomatik bir enjektöre bağlı cam kılcal kullanarak perivitellin alana zona pellucida altında LV çözeltisi enjekte. Bir an için zona pellucida altında kılcal tutun. NOT: Hafif pozitif basınç kullanılarak, viral çözelti enjeksiyon kılcal damarDan sürekli olarak akar, ancak teslim edilen süspansiyonun hacmi kontrol edilemez.</li>
			<li>İnce bir pipet kullanarak, embriyoları %5 CO2 atmosferinde 37 °C'de kuvözdeki kültür kabına geri getirin. Bir zigotun enjeksiyon sayısı değişebilir ve viral vektör konsantrasyonuna göre uyarlanabilir. NOT: Enjekte edilen embriyolar, tek hücreli evrede koruyucu annelere transfer edilebilir veya iki hücreli aşamada transfer edilmeden önce M16 ortamda o/n inkübe edilebilir. Sıçan embriyolarının uzun süreli in vitro kültüründen kaçınılmalıdır.</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
	<li>Enjekte edilen embriyoların koruyucu annelere transferi<ol>
<li>Doğumla olgun sd erkek veya vazektomi SD erkek (vazektomi prosedürü bölüm 3 aşağıda açıklanan) ile cinsel olgun SD kadın çiftleşme tarafından foster anneler hazırlamak gün 3 (tek hücreli aşamada embriyo transferi için) veya gün 4 (iki hücreli aşamada embriyo transferi için). NOT: Oviduct transferi için, 0,5 gün sonra coitum (dpc) dişikullanın.</li>
		<li>Ertesi sabah, vajinal fiş için SD kadın kontrol edin ve sadece görünür bir fiş ile kullanın.</li>
		<li>Embriyo transferi gerçekleştirin. NOT: Cerrahi işlemi stereomikroskop altında steril aletlerle gerçekleştirin. Ameliyat gününden önce, otoklav makas, ince forceps, iğne tutucu ve neşter tutucu.<ol>
<li>Ketamin (50 mg/kg) ve medetomidin (0.5 mg/kg) çözeltisi i.p. uygulaması ile bir dişiyi anesteziedin. Cerrahi işlem başlamadan önce anestezi onaylamak için refleksler için test edin.</li>
			<li>İltihabı, ağrıyı ve enfeksiyonu önlemek için hayvana subkutan olarak tolefenamik asit (2 mg/kg), butorphanol tartarat (1 mg/kg) ve enrofloksacin (5-10 mg/kg) enjekte edin.</li>
			<li>Korneanın kurumasını önlemek için her iki göze de oftalmik merhem yağlanması uygulayın. Kürkü arkadan tıraş edin ve cildi cerrahi scrub ile sterilize edin ve ardından %70 alkol le yapışmaz pedler kullanarak. Cildin kurumasını bekleyin.</li>
			<li>Hayvana subkutan olarak %0,25 bupivacaine (lokal anestezik) enjekte edin. Cerrahi mikroskop amacı altında bir ısıtma yastığı üzerinde temiz bir yüzeye eğilimli bir pozisyonda hayvan aktarın. Alt sırt üzerinde kesilmiş küçük bir delik ile steril bir perde ile sıçan kapağı.</li>
			<li>Lomber vertebral kolona paralel olarak yaklaşık 2 cm deri kesisi yapın.</li>
			<li>Keskin makas kullanarak, karın duvarında bir kesim yapmak. Forceps kullanarak bir yumurtalık yağ yastığı kapmak ve yumurtalık ve oviduct çekin ve gazlı bez üzerine yerleştirin 0.9% NaCl ile ıslanır.</li>
			<li>Aspire M2 orta, hava üç kabarcıklar, ve transfer kılcal içine embriyolar. Transfer edilmesi önerilen toplam embriyo sayısı (tek taraflı veya iki taraflı): gebe kadın (≤ 15-16 embriyo), psödoge gebe kadın (≤ 30 embriyo).</li>
			<li>Mikro makas kullanarak oviduct (infundibulum ve ampulla arasında) küçük bir kesi yapın ve oviduct transfer pipet eklemek.</li>
			<li>Yavaşça oviduct için pipet gelen embriyolar ve hava kabarcıkları dışarı. Künt forceps ile, karın boşluğunda geri üreme yolu yerleştirin.</li>
			<li>Poliglikolik asit emilebilir dikişler ile karın duvarı dikiş ve yara klipleri ile cilt kesi kapatın. Mevcut embriyo sayısına bağlı olarak, diğer oviduct için bu işlemi tekrarlayın.</li>
			<li>Anestezinin etkisini tersine çevirmek için hayvana intraperitoneal atipamezole (0.5 mg/kg) enjekte edin.</li>
			<li>Temiz bir kafese hayvan aktarın ve anestezi tamamen kurtarmak için bir ısınma plaka üzerinde tutmak. Sıçanlarda doğum ~ 21 gün sonra gerçekleşir. NOT: Erkek BN sıçanlar çiftleme için kullanıldığında, sadece beyaz yavrular potansiyel olarak transgeniktir; kahverengi yavrular doğal gebelikten.</li>
			<li>Doku parçalarını (tercihen kulaktan) 3 haftalık yavrulara kadar genotip toplayın.</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
</ol>3. Vazektomi
NOT: Ameliyat gününden önce otoklav makas, ince prifone ve iğne tutucu.
<ol><li>Ketamin (50 mg/kg) ve medetomidin (0.5 mg/kg) çözeltisi i.p. uygulaması ile 5 haftalık erkek SD sıçan anestezi. Cerrahi işlem başlamadan önce anestezi onaylamak için refleksler için test edin.</li>
	<li>Sırasıyla inflamasyon, ağrı ve enfeksiyonu önlemek için tolfenamik asit (2 mg/kg), butorphanol tartatat (1 mg/kg) ve enrofloksain (5-10 mg/kg) subkutan olarak uygulayın.</li>
	<li>Korneanın kurumasını önlemek için her iki göze de oftalmik merhem yağlanması uygulayın. Bir ısıtma yastığı üzerinde temiz bir yüzeye sıçan supine yerleştirin ve cerrahi scrub ile testisler üzerinde sterilize% 70 alkol steril olmayan yapışma pedleri kullanarak takip. Cildin kurumasını bekleyin. Testisler üzerinde küçük bir delik kesilmiş steril bir perde ile sıçan kapağı. Skrotal kesedeki testisleri ortaya çıkarmak için karnına hafifçe bastırın.</li>
	<li>Cerrahi makas kullanarak, skrotal kese ortasında ~ 0,5 cm kesi yapmak. Testisler arasındaki orta çizgi duvarını (beyazımsı çizgi) bulun.</li>
	<li>Midline duvarın sol tarafına yakın testis membran5 mm kesi olun.</li>
	<li>Dikkatle sola testis itin ve vas deferens bulmak (testis ve orta hat arasında) tek bir kan damarı ile beyaz bir kanal olarak.</li>
	<li>Bir saatçinin püslerini kullanarak vas deferens'i skrotal keseden yavaşça çekin. Vas deferens bir çift forceps ile tutun ve ince makas ile kesin (veya ikinci bir çift forceps kırmızı-sıcak uçları ile cauterize). Kanalın ~1 cm'lik bir parçasını çıkarın. NOT: Katuterizasyon yapılırsa, ikinci çift forceps'un ucunu alev içinde tutun.</li>
	<li>Diğer testisler için yukarıdaki yordamı tekrarlayın. Cildi poliglikolik asit emilebilir dikişlerle süsler ve hayvana intraperitoneal olarak atipamezole (0.5 mg/kg) enjekte edin.</li>
	<li>Hayvan anestezi kurtarır kadar bir ısınma plaka üzerinde temiz bir kafese sıçan yerleştirin. NOT: Erkekler ~ 2 haftalık iyileşme döneminden sonra test çiftleşmelerinde kullanılabilir. Kısırlık onaylandıktan sonra, psödogebelik indüksiyonu için kullanılabilir.</li>
</ol>

<ol><li>Lazar, J., Moreno, C., Jacob, H. J., Kwitek, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+genomics+on+research+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Research%22%5BJournal%5D)">Impact of genomics on research in the rat.</a> Genome Research. 15 (12), 1717-1728 (2005).</li>
<li>Tarkowski, A. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Studies+on+mouse+chimeras+developed+from+eggs+fused+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22National+Cancer+Institute+Monographs%22%5BJournal%5D)">Studies on mouse chimeras developed from eggs fused in vitro.</a> National Cancer Institute Monographs. 11, 51-71 (1963).</li>
<li>Gordon, J. W., Ruddle, F. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integration+and+stable+germ+line+transmission+of+genes+injected+into+mouse+pronuclei%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Integration and stable germ line transmission of genes injected into mouse pronuclei.</a> Science. 214 (4526), 1244-1246 (1981).</li>
<li>Gill, T. J., Smith, G. J., Wissler, R. W., Kunz, H. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Rat+as+an+Experimental+Animal%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">The Rat as an Experimental Animal.</a> Science. 245 (4915), 269-276 (1989).</li>
<li>Aitman, T. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progress+and+prospects+in+rat+genetics%3A+a+community+view%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Genetics%22%5BJournal%5D)">Progress and prospects in rat genetics: a community view.</a> Nature Genetics. 40 (5), 516-522 (2008).</li>
<li>Hammer, R. E., Maika, S. D., Richardson, J. A., Tang, J. P., Taurog, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spontaneous+inflammatory+disease+in+transgenic+rats+expressing+HLA-B27+and+human+beta+2m%3A+an+animal+model+of+HLA-B27-associated+human+disorders%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Spontaneous inflammatory disease in transgenic rats expressing HLA-B27 and human beta 2m: an animal model of HLA-B27-associated human disorders.</a> Cell. 63 (5), 1099-1112 (1990).</li>
<li>Mullins, J. J., Peters, J., Ganten, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fulminant+hypertension+in+transgenic+rats+harbouring+the+mouse+Ren-2+gene%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Fulminant hypertension in transgenic rats harbouring the mouse Ren-2 gene.</a> Nature. 344 (6266), 541-544 (1990).</li>
<li>Menoret, S., Remy, S., Usal, C., Tesson, L., Anegon, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+Transgenic+Rats+by+Microinjection+of+Short+DNA+Fragments%5BTitle%5D)+AND+%22Rat+Genomics%3A+Methods+and+Protocols%22%5BJournal%5D)">Generation of Transgenic Rats by Microinjection of Short DNA Fragments.</a> Rat Genomics: Methods and Protocols. 597, 81-92 (2010).</li>
<li>Tesson, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenic+modifications+of+the+rat+genome%5BTitle%5D)+AND+%22Transgenic+Research%22%5BJournal%5D)">Transgenic modifications of the rat genome.</a> Transgenic Research. 14 (5), 531-546 (2005).</li>
<li>Charreau, B., Tesson, L., Soulillou, J. P., Pourcel, C., Anegon, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenesis+in+rats%3A+Technical+aspects+and+models%5BTitle%5D)+AND+%22Transgenic+Research%22%5BJournal%5D)">Transgenesis in rats: Technical aspects and models.</a> Transgenic Research. 5 (4), 223-234 (1996).</li>
<li>Ritchie, W. A., Neil, C., King, T., Whitelaw, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenic+embryos+and+mice+produced+from+low+titre+lentiviral+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Transgenic+Research%22%5BJournal%5D)">Transgenic embryos and mice produced from low titre lentiviral vectors.</a> Transgenic Research. 16 (5), 661-664 (2007).</li>
<li>Lois, C., Hong, E. J., Pease, S., Brown, E. J., Baltimore, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Germline+transmission+and+tissue-specific+expression+of+transgenes+delivered+by+lentiviral+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Germline transmission and tissue-specific expression of transgenes delivered by lentiviral vectors.</a> Science. 295 (5556), 868-872 (2002).</li>
<li>Pfeifer, A., Ikawa, M., Dayn, Y., Verma, I. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenesis+by+lentiviral+vectors%3A+lack+of+gene+silencing+in+mammalian+embryonic+stem+cells+and+preimplantation+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Transgenesis by lentiviral vectors: lack of gene silencing in mammalian embryonic stem cells and preimplantation embryos.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (4), 2140-2145 (2002).</li>
<li>Koza, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuronal+TDP-43+depletion+affects+activity-dependent+plasticity%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiology+of+Disease%22%5BJournal%5D)">Neuronal TDP-43 depletion affects activity-dependent plasticity.</a> Neurobiology of Disease. 130, 104499(2019).</li>
<li>Scherr, M., Battmer, K., Blomer, U., Ganser, A., Grez, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+determination+of+lentiviral+vector+particle+numbers+by+real-time+PCR%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechniques%22%5BJournal%5D)">Quantitative determination of lentiviral vector particle numbers by real-time PCR.</a> Biotechniques. 31 (3), 520(2001).</li>
<li>Canseco, R. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+transfer+efficiency+during+gestation+and+the+influence+of+co-transfer+of+non-manipulated+embryos+on+production+of+transgenic+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Transgenic+Research%22%5BJournal%5D)">Gene transfer efficiency during gestation and the influence of co-transfer of non-manipulated embryos on production of transgenic mice.</a> Transgenic Research. 3 (1), 20-25 (1994).</li>
<li>Charreau, B., Tesson, L., Soulillou, J. P., Pourcel, C., Anegon, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenesis+in+rats%3A+technical+aspects+and+models%5BTitle%5D)+AND+%22Transgenic+Research%22%5BJournal%5D)">Transgenesis in rats: technical aspects and models.</a> Transgenic Research. 5 (4), 223-234 (1996).</li>
<li>Brinster, R. L., Chen, H. Y., Trumbauer, M. E., Yagle, M. K., Palmiter, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Factors+affecting+the+efficiency+of+introducing+foreign+DNA+into+mice+by+microinjecting+eggs%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Factors affecting the efficiency of introducing foreign DNA into mice by microinjecting eggs.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 82 (13), 4438-4442 (1985).</li>
<li>Armstrong, D. T., Opavsky, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Superovulation+of+immature+rats+by+continuous+infusion+of+follicle-stimulating+hormone%5BTitle%5D)+AND+%22Biology+of+Reproduction%22%5BJournal%5D)">Superovulation of immature rats by continuous infusion of follicle-stimulating hormone.</a> Biology of Reproduction. 39 (3), 511-518 (1988).</li>
<li>Popova, E., Krivokharchenko, A., Ganten, D., Bader, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+between+PMSG-+and+FSH-induced+superovulation+for+the+generation+of+transgenic+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Reproduction+and+Development%22%5BJournal%5D)">Comparison between PMSG- and FSH-induced superovulation for the generation of transgenic rats.</a> Molecular Reproduction and Development. 63 (2), 177-182 (2002).</li>
<li>Johnson, L. W., Moffatt, R. J., Bartol, F. F., Pinkert, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+of+embryo+transfer+protocols+for+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Theriogenology%22%5BJournal%5D)">Optimization of embryo transfer protocols for mice.</a> Theriogenology. 46 (7), 1267-1276 (1996).</li>
<li>van den Brandt, J., Wang, D., Kwon, S. H., Heinkelein, M., Reichardt, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lentivirally+generated+eGFP-transgenic+rats+allow+efficient+cell+tracking+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Genesis%22%5BJournal%5D)">Lentivirally generated eGFP-transgenic rats allow efficient cell tracking in vivo.</a> Genesis. 39 (2), 94-99 (2004).</li>
<li>Remy, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Use+of+Lentiviral+Vectors+to+Obtain+Transgenic+Rats%5BTitle%5D)+AND+%22Rat+Genomics%3A+Methods+and+Protocols%22%5BJournal%5D)">The Use of Lentiviral Vectors to Obtain Transgenic Rats.</a> Rat Genomics: Methods and Protocols. 597, 109-125 (2010).</li>
</ol>

Yazar (W.K.) Polonya Cumhuriyeti patent ofisinden "Transgenik hayvan üretme yöntemi" patentine sahiptir (no. P 355353; 21.03.2008).

Transgenik teknolojilerdeki gelişmeler kemirgen modellerini biyomedikal araştırmalarda paha biçilmez bir araç haline getirmiştir. Onlar vivo genotip-fenotip ilişkileri çalışma fırsatı sağlar. Burada pronükleer enjeksiyonlar ile konvansiyonel transgenez için yaygın olarak kullanılabilir bir alternatif salıyoruz. Lentiviral gen transdüksiyonunun kullanımı, zona pellucida altında enjekte edilebildiği için zorlu mikroenjeksiyon ihtiyacını atlar. Bu yaklaşım embriyo bütünlüğünü etkilemez, bu da enjekte edilen zigotlar için %1...

Uzun yıllar boyunca, fare ve fare gibi laboratuvar kemirgenleri, insan fizyolojik ve patolojik koşulları modellemek için kullanılmıştır. Hayvan araştırmaları başka yollarla ulaşılamayan keşiflere yol açmıştır. Başlangıçta, genetik çalışmalar yakından insan durumunu taklit etmek için kabul edilir spontan meydana gelen bozuklukların ve fenotiplerin analizi üzerinde duruldu1. Genetik mühendislik yöntemlerinin geliştirilmesi, belirli genlerin istenilen fenotipi elde etmek için tanıtılmasına veya silinmesine olanak sağlamıştır. Bu nedenle, transgenik hayvanların üretimi, canlı organizmalarda gen fonksiyonunun incelenmesine olanak sağlayan modern araştırmalarda temel bir teknik olarak kabul edilmektedir.
Transgenik hayvan teknolojisi deneysel embriyoloji ve moleküler biyolojideki başarıların bir kombinasyonu ile mümkün olmuştur. 1960'larda, Polonyalı embriyolog A. K. Tarkowski geliştirme nin erken aşamalarında fare embriyo manipülasyon u ilk çalışma yayınladı2. Buna ek olarak, moleküler biyologlar, yabancı DNA'nın hayvanın genomuna diğer adıyla girişi için DNA vektörleri (yani taşıyıcılar) oluşturmak için teknikler geliştirdiler. Bu vektörler, yapılan araştırmanın türüne bağlı olarak seçilen genlerin yayılmasına ve uygun modifikasyonlarına izin verir. Terim "transgenik hayvan" Gordon ve Ruddle3tarafından tanıtıldı.
Nörobiyoloji, fizyoloji, farmakoloji, toksikoloji ve biyolojik ve tıbbi bilimlerin diğer birçok alanda kullanılan ilk yaygın olarak kabul edilen türler Norveç sıçan, Rattus norvegicus4oldu. Ancak, fare embriyoları manipüle zorluk nedeniyle, ev fare Mus musculus genetik araştırma5baskın hayvan türleri haline gelmiştir. Bu tür araştırmalarda farenin önceliğinin bir diğer nedeni de bu tür için nakavt hayvanlar üretmek için embriyonik kök hücre teknolojisinin kullanılabilirliğiydi. Transgenezin en yaygın kullanılan tekniği (transgenik yavruların tüm doğan hayvanlara göre %2-10'u) DNA parçalarının döllenmiş bir yumurtanın pronüklesine mikroenjeksiyonudur. 1990 yılında, ilk farelerde tanıtılan bu yaklaşım, sıçanlar için uyarlanmıştır6,7. Pronükleer enjeksiyon ile sıçan transgenezi daha düşük verimlilik ile karakterizedir8 fareler ile karşılaştırıldığında, hangi kesinlikle elastik plazma ve pronükleer membranların varlığı ile ilgilidir9. Manipülasyon sonrası embriyoların sağkalım% 40-50 farelerde daha düşük olmasına rağmen, bu teknik genetik olarak modifiye sıçanların üretiminde bir standart olarak kabul edilir10. Enjekte edilen zigotların verimli transgen birleşmesini ve daha yüksek sağkalım oranlarını garanti eden alternatif yaklaşımlar araştırılmıştır.
Kararlı transgen ekspresyonu ve döle iletiminin temel belirleyicisi konak hücre genomuna entegrasyonudur. Lentiviruses (LVs) hem bölücü hem de bölücü olmayan hücreleri enfekte edebilmek ayırt edici bir özelliğe sahiptir. Heterolog genlerin embriyolara dahil edilmesi için bir araç olarak kullanılmaları son derece verimli olduğu kanıtlanmıştır11, ve transgenik bireyler dahil DNA parçasının kararlı ifadesi ile karakterizedir. Lentiviral vektörlerin etkinliği farelerin genetik modifikasyonu için teyit edilmiştir12,13, sıçanlar12,14, ve diğer türler11. Bu yöntemde, LV süspansiyon iki pronüklei aşamasında embriyozon pellucida altında enjekte edilir. Oolemma etkilenmemiş kalır, çünkü bu teknik aslında embriyoların% 100 sağkalım garanti eder. Yüksek kaliteli ve nispeten yüksek konsantrasyonlu LV süspansiyonların üretimi önemli faktörlerdir. Ancak, LV süspansiyonlar düşük konsantrasyonlarda tekrarlanan enjeksiyonlar ile aşılabilir11, membran entegrasyonu etkilemezken yumurta yüzeyinde viral parçacıkların miktarını artırır. Perivitellin uzaya tekrarlanan enjeksiyonlara maruz kalan embriyolar daha da gelişir ve transgeni mikrop hattı yoluyla transgeni iletebilirler. Lentiviral transgenezi ile transgenik sıçan oluşumunun etkinliği %8012'yekadar çıkabilir.
Burada, veziküler stomatit virüsü (VSV) G zarf proteini ile psödotiplenmiş HIV-1-türetilmiş rekombinant lentivirus üretimini açıklıyoruz. İkinci nesil ambalaj sistemi VSV psödotipinin kullanımı viral parçacıkların geniş enfekteliğini belirler ve ultrasantrifüj ve kriyoopreserved ile konsantre edilebilir son derece kararlı vektörlerin üretimine olanak sağlar. Titer doğrulama sonra, vektörler albino Wistar sıçan zigotlar içine transgen teslim için bir araç olarak kullanılmak üzere hazır. Enjeksiyonlar bir dizi sonra, embriyolar bir gecede kültürlü ve anneleri beslemek için iki hücreli aşamada transfer edilebilir. Bu noktada, iki alternatif yaklaşımlardan biri düşünülebilir. Standart prosedür embriyo alıcıolarak sözde hamile kadın kullanır. Ancak, vazektomi yapılan erkeklerle çiftleştikten sonra gebelik oranı düşük olduğunda, embriyolar koyu kürk renginde (örn. Kahverengi Norveç [BN] sıçanlar gibi doğurgan erkek sıçanlarla çiftleştirilmiş hamile Wistar/Sprague-Dawley (SD) dişilere yerleştirebilir. Kürk rengi transfer manipüle embriyolar kaynaklanan yavrulardan doğal gebelik yavrularının ayrım sağlar.

<table><tbody><tr><td>7500 Gerçek Zamanlı PCR Sistemi</td><td>Uygulanan Biyosistemler</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Havaran (izofluran)</td><td>Baxter</td><td>FDG9623</td><td></td></tr><tr><td>Kalibre edilmiş mikrokılcal pipetler için aspiratör tüpü tertibatları</td><td>Sigma</td><td>A5177-5EA</td><td></td></tr><tr><td>Atipam 5 mg/ml</td><td>Eurovet Hayvan Sağlığı BV</td><td>N/A</td><td>0.5 mg/kg</td></tr><tr><td>Baytril 25 mg/ml (enrofloksacin)</td><td>Bayer</td><td>N/A</td><td>5-10 mg / kg</td></tr><tr><td>Filamentli borosilikat cam kılcal damarlar GC100TF-15</td><td>Harvard Apparatus Limited</td><td>30-0039</td><td>enjeksiyon kılcal</td></tr><tr><td>Bupivakain 25 mg/ml</td><td>Advanz Pharma</td><td>N/A</td><td>%0,25 in&nbsp;% 0,9 NaCl</td></tr><tr><td>Butomidor 10 mg/ml (butorphanol&nbsp; tartarat)</td><td>Orion Pharma</td><td>N/A</td><td>1 mg/kg</td></tr><tr><td>CELLSTAR Doku Hücre Kültürü Kabı 35 mm</td><td>Greiner Bio-One</td><td>627160</td><td></td></tr><tr><td>CELLSTAR Doku Hücre Kültürü Kabı 60 mm</td><td>Greiner Bio-One</td><td>628160</td><td></td></tr><tr><td>CellTram Yağı</td><td>Eppendorf</td><td>5176 000.025</td><td></td></tr><tr><td>Cepetor (Medetomidin) 1 mg/ml</td><td>cp-pharma</td><td>N/A</td><td>0.5 mg/kg</td></tr><tr><td>Korelon, İnsan Koryonik Gonadotropin&nbsp;</td><td>Intervet</td><td>N/A</td><td>150 IU/ ml ml %0.9 NaCl</td></tr><tr><td>DMEM düşük glikoz</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D6048</td><td></td></tr><tr><td>DNase, RNaz içermeyen</td><td>A& A Biyoteknoloji</td><td>1009-100</td><td></td></tr><tr><td>EmbryoMax Filtreli Hafif Mineral Yağ</td><td>Sigma</td><td>ES-005-C</td><td></td></tr><tr><td>lentiviral vektörler için zarf protein kodlayan plazmid (VSVg plazmid)&nbsp;</td><td>ADDGENE</td><td>14888</td><td></td></tr><tr><td>FemtoJet</td><td>Eppendorf</td><td>4i /5252 000.013</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Sığır Serumu</td><td>Sigma Aldrich</td><td>F9665-500ML</td><td></td></tr><tr><td>Folligon, Hamile Kısrak ' s Serum Gonadotropin&nbsp;</td><td>İntervet</td><td>N/A</td><td>125 IU/ml .9% NaCl</td></tr><tr><td>HEK 293T hücrelerinde&nbsp;</td><td>ATCC</td><td>ATCC CRL-3216</td><td></td></tr><tr><td>Sığır Testisinden Hyaluronidaz&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>H4272-30MG</td><td>M2 ortamında 0.5 mg / ml</td></tr><tr><td>Ters Mikroskop&nbsp;</td><td>Zeiss</td><td>Axiovert 200</td><td></td></tr><tr><td>Ketamin 100mg/ml</td><td>Biowet Pulawy</td><td>N/A</td><td>50 mg/kg</td></tr><tr><td>Sıvı Parafin</td><td>Merck Millipore</td><td>8042-47-5</td><td></td></tr><tr><td>M16 orta EmbryoMax</td><td>Sigma</td><td>MR-016-D</td><td></td></tr><tr><td>M2 orta</td><td>Sigma</td><td>M7167</td><td></td></tr><tr><td>Magnezyum Klorür 1M</td><td>Sigma Aldrich</td><td>63069-100ML</td><td></td></tr><tr><td>Microforge</td><td>Narishige</td><td>MF-900</td><td></td></tr><tr><td>Mineral Yağ</td><td>Sigma</td><td>M8410-500ML</td><td></td></tr><tr><td>NaCl %0.9</td> <td>POLPHARMA OTC</td><td>N/A</td><td>steril, 5ml ampul</td></tr><tr><td>Ameliyat mikroskobu&nbsp;</td><td>Inami Oftalmik Aletler</td><td>Deca-21</td><td></td></tr><tr><td>Lentiviral vektörler için plazmid kodlayan paketleme sistemi&nbsp; (delta R8.2 plazmiti)</td><td>ADDGENE</td><td>12263</td><td></td></tr><tr><td>PEI reaktifi (Polietilenimin, Mw ~ 25.000,),</td> <td>Polysciences, Inc</td><td>23966-1</td><td></td></tr><tr><td>Penisilin-streptomisin</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P0781-100ML</td><td></td></tr><tr><td>Fosfat Tamponlu Salin, pH 7.4, sıvı, steril filtreli, hücre kültürü için uygun</td><td>Sigma Aldrich</td><td>806552-500ML</td><td></td></tr><tr><td>Çektirme&nbsp;</td><td>Sutter Enstrüman A.Ş.</td><td>P-97</td><td></td></tr><tr><td>Refleks Klips Aplikatörü/Refleks Klipsleri</td><td>Dünya Hassas Aletleri</td><td>500345/500346</td><td></td></tr><tr><td>Safil, poliglikolik asit, örgülü, kaplamalı, emilebilir iplikler</td><td>B.Braun Cerrahi</td><td>1048029</td><td></td></tr><tr><td>Stereomikroskop</td><td>Olympus</td><td>SZX16</td><td></td></tr><tr><td>Cerrahi Dikiş İpliği</td><td>B.Braun&nbsp;</td><td></td><td></td>C1048040</tr><tr><td>SYBR Yeşil PCR Master Mix</td><td>Uygulanan Biyosistem</td><td>4334973</td><td></td></tr><tr><td>Tolfedin% 4 (tolfenamik asit)</td> <td>Vetokinol</td><td>N / A</td><td>2 mg / kg</td></tr><tr><td>TransferMan NK2</td><td>Eppendorf</td><td>N / A</td><td></td></tr><tr><td>Tripsin EDTA çözeltisi</td><td>Sigma Aldrich</td><td>T3924-500ML</td><td></td></tr><tr><td>Ultrasantrifüj</td><td>Beckman Coulter</td><td>Optima L-100 XP&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>VacuTip</td><td>Eppendorf</td><td>5175108.000</td><td>tutucular kılcal</td></tr><tr><td>Vita-POS</td><td>Ursapharm</td><td>N/A</td><td>göz merhemi</td></tr><tr><td>Isınma Plakası</td><td>Semic</td><td>N/A Saatçi</td><td></td></tr><tr><td>Forseps</td><td>VWR</td><td>470018-868</td><td></td></tr></tbody></table>

lentiviral vektör yaklaşımı kullanarak transgenik sıçanların Üretimi

Generation of Transgenic Rats using a Lentiviral Vector Approach

Transgenik hayvan modelleri modern biyomedikal araştırmalar için temelde önemlidir. Yabancı genlerin erken fare veya sıçan embriyolarına dahil edilmesi canlı organizmalarda gen fonksiyon analizi için paha biçilmez bir araçtır. Standart transgenez yöntemi, döllenmiş bir yumurtanın pronüklesine yabancı DNA parçalarının mikroenjekte edilmesine dayanır. Bu teknik farelerde yaygın olarak kullanılır ancak diğer hayvan türlerinde nispeten verimsiz ve teknik olarak zorlayıcı dır. Transgen aynı zamanda lentiviral enfeksiyon yoluyla tek hücreli embriyolar içine girişlenebilir, standart pronükleer enjeksiyonlar için etkili bir alternatif sağlayan, özellikle tür veya daha zorlu bir embriyo yapısı ile suşları. Bu yaklaşımda, lentiviral vektörler içeren bir süspansiyon, teknik olarak daha az talep ve daha yüksek bir başarı oranına sahip bir döllenmiş sıçan embriyosu perivitellin uzayiçine enjekte edilir. Lentiviral vektörlerin, kararlı transgenik çizgilerin oluşumunu belirlemek için transgeni genoma etkin bir şekilde dahil etmek için gösterilmiştir. Bazı sınırlamalar rağmen (örneğin, Biyogüvenlik Düzey 2 gereksinimleri, DNA parça boyutu sınırları), lentiviral transgenez hızlı ve etkili bir transgenez yöntemidir. Ayrıca, farklı bir baskın kürk rengi ile doğurgan bir erkek zorlanma ile çiftleştirilmiş dişi sıçanlar kullanarak sözde hamile koruyucu anneler oluşturmak için bir alternatif olarak sunulmaktadır.

Burada açıklanan protokol kullanılarak Syn-TDP-43-eGFP yapısını taşıyan lentiviral vektörler üretildi (fiziksel LV titresi = 3.4 x 108/l) ve daha sonra tek hücreli embriyo subzonal enjeksiyonları için kullanılabilir. Sadece iki görünür pronüklei olan embriyolar prosedüre tabi tutuldu. Viral süspansiyonların enjeksiyon sayısı deneysel olarak belirlendi. Yüksek implantasyon verimi ve aynı anda transgenik yavruların eksikliği başarılı transdüksiyon için yetersiz sayıda viral partikülün göstergesi olarak kabul edi...

Bu makalede, zigot perivitellin uzaya bir virüs süspansiyon birden fazla enjeksiyon kullanarak sıçan embriyolarında lentiviral transgenez için metodoloji sağlamayı amaçlamaktadır. Farklı bir baskın kürk rengi ile doğurgan bir erkek zorlanma ile çiftleştirilmiş dişi sıçanlar sözde hamile koruyucu anneler oluşturmak için kullanılır.

Lentiviral Vektör Yaklaşımı Kullanarak Transgenik Sıçanların Üretimi

Transgenic animal models are fundamentally important for modern biomedical research. The incorporation of foreign genes into early mouse or rat embryos is ...

Transgenik hayvanlar, canlı organizmalarda gen fonksiyonunun incelenmesine izin verdikleri için modern biyomedikal araştırmaların temelini atmaktadır. Hayvan çalışmalarında çeşitli genetik modifikasyon yöntemleri uygulanmıştır. Burada, lentiviral vektörleri bir sıçan embriyosunun genomuna transgen dahil etmek için bir araç olarak kullanan yaygın olarak erişilebilir ve etkili bir teknik salıyoruz.Insan koryonik gonadotropin yönetiminden sonra, beş haftalık Wistar dişi sıçanları cinsel açıdan doğurgan üç ila 10 aylık Wistar erkekleriyle bire bir çiftleştirin. Sabah 8-10 .m. ertesi sabah, vajinal fiş varlığı için dişikontrol edin ve en geç 10 a.m tarafından bir miyeslik fişi ile dişilerden oviducts hasat.önceden ısıtılmış M2 ortamı içeren bir toplama kabına dönüştürül. Tüm oviducts toplandığında, sığır testislerinden hyaluronidase mililitre başına 0.5 miligram ile takviye önceden ısıtılmış M2 orta içeren 35 milimetrelik bir çanak içine dokuları aktarın ve bir stereo mikroskop altında çanak yerleştirin. Oviduct duvarlarını açmak için ince forceps kullanın ve embriyolar serbest bırakılı kadar ampulla basın.Embriyoların kümülüs hücrelerinden salınımını kolaylaştırmak için, ağızla çalışan bir aspiratör tüpüne bağlı cam transfer pipetini kullanarak embriyoları yavaşça yukarı ve aşağı pipetlendirin. Tüm embriyolar serbest bırakıldı, hyaluronidase ve hücresel enkaz kaldırmak için taze M2 orta birkaç kez hücreleri yıkayın. 60 milimetrelik bir çanak mineral yağ ile kaplı önceden dengeli M16 orta bireysel 50 mikrolitre damla içine embriyolar aktarın.Daha sonra, enjeksiyonuna kadar %5 karbondioksit atmosferi olan nemlendirilmiş 37 derece lik bir inkübatöre çanak yerleştirin. Tek hücreli evre embriyoların zona pellucida altında lentiviral vektör mikroenjeksiyon için, bir filament ile mikroenjeksiyon borosilicate cam kılcal hazırlamak için bir pipet puller kullanın. Filament her değiştirildikten veya yeni bir cam kılcal damar kullanıldığından sonra, en uygun parametreleri ayarlamak için rampa testi çalıştırın.Daha sonra, biyogüvenlik laminar akış başlığı altında mikroenjeksiyon pipet başına taze çözülmüş lentiviral çözelti yaklaşık iki mikrolitre yüklemek için bir mikroyükleyici ucu kullanın. 60 milimetrelik Petri kabından kapağın ortasına 100 mikrolitrelik m2 orta damlası ekleyin. Orta yı mineral yağ ile kaplayın ve tutma pipetini ve virüs yüklü mikroenjeksiyon kılcal damarını bir mikromanipülatöre monte edin.Mikroenjeksiyon kabını ters bir mikroskop altına yerleştirin ve 15 ila 20 hücreli tek hücreli embriyoyu mikroenjeksiyon kabındaki M2 damlasına aktarın. Tutma pipet ile bir embriyo yakalamak ve virüs teslim edildikten sonra bir an için zona pellucida altında kapiller tutan perivitelline uzaya zona pellucida altında lentiviral çözelti enjekte etmek için 400 kez büyütme ve cam kapiller kullanın. Tüm embriyolar enjekte edildiğinde, enjekte edilen hücreleri kültür yemeğine geri döndürmek için ince bir pipet kullanın ve implantasyona kadar kabı hücre kültürü kuluçka makinesine geri döndürün.Embriyo transferi için koruyucu anneler hazırlamak için, vazektomi erkekler ile cinsel olgun Sprague-Dawley kadın çiftleşmek ve vajinal fiş için ertesi sabah kadın kontrol edin. Uygun bir fiş ile anestezi kadınlarda pedal refleks yanıt eksikliği doğruladıktan sonra, hayvanın gözlerine merhem uygulamak ve her hayvanın arkasından kürk tıraş. Cerrahi bir mikroskop altında bir ısıtma yastığı üzerinde temiz bir yüzeye eğilimli pozisyonda ilk sıçan yerleştirin.Alt sırt üzerinde kesilmiş küçük bir delik ile steril bir perde ile sıçan kapak ve lomber vertebral sütuna paralel yaklaşık iki santimetre lik deri kesi yapmak. Karın duvarında bir kesim yapmak ve bir yumurtalık yağ yastığı kavramak için forceps kullanmak için keskin makas kullanın. Yumurtalık ve oviduct%0.9 sodyum klorür gazlı bez batırılmış bir parça üzerine karın boşluğundan çekin.Yük M2 orta, hava üç kabarcıklar, ve embriyolar bir transfer kılcal içine. Infundibulum ve ampulla arasında oviduct içine küçük bir kesi yapmak için mikroskarya kullanın ve kesi içine transfer pipet ucu ekleyin. Yavaşça oviduct içine embriyolar ve hava kabarcıkları dışarı, sonra karın boşluğuna geri üreme yolu yerleştirmek için künt forceps kullanın.Poliglikolik asit emilebilir dikişler ile karın duvarı dikiş ve yara klipleri ile cilt kesi kapatın ve tam recumbency kadar izleme ile bir ısınma plaka üzerinde temiz bir kafes içinde hayvan yerleştirin. Potansiyel eşleri vazektomik etmek için, gösterildiği gibi ameliyat için erkek sıçan hazırladıktan sonra, testisler üzerinde cilt dezenfekte etmek için% 70 etanol ve cerrahi scrub kullanın. Yavaşça skrotal kese testisleri ortaya çıkarmak için karın basın ve cerrahi site üzerinde küçük bir delik ile steril bir perde ile sıçan kapağı ve kese ortasında 0,5 santimetrelik bir kesi yapmak için skrotal makas kullanın.Dikkatle sola testis itin ve tek bir kan damarı ile beyaz bir kanal olarak testis ve orta hat arasındaki vas deferens bulmak. Vas deferens'i skrotal keseden yavaşça çıkarmak ve kabı forceps ile tutmak için saatçi nin püsyonu kullanın, kanaldan bir santimetrelik parçayı çıkarmak için ince makas kullanın. Sadece gösterildiği gibi ikinci testis için prosedürü tekrarlayın ve poliglikolik asit emilebilir dikişler ile cildi kapatın.Sonra tam recumbency kadar izleme ile bir ısınma plaka üzerinde temiz bir kafes içine sıçan yerleştirin. Tek embriyoların birden fazla kez enjekte edildiği bu temsili deneyde, iki kez enjekte edilen embriyolardan sekiz sıçan doğdu ve bunlardan üçü transgeni taşıdığı doğrulandı. Kuruculardan biri transgeni yavrulara aktarmadı ve her deneysel kurulumiçin üç dişi kullanıldı.Seçilen yaklaşım merkezi sinir sistemi boyunca bir organizatör nöronal sinaps kontrolü altında TDP-43-eGFP füzyon proteinifade istikrarlı transgenik sıçan hatları üretimi ne izin verdi. Lentivirus tabanlı transgenezis, kantitatif PCR'nin gösterdiği gibi transgenin tek bir kopya eklenmesiyle sonuçlandı. Bu yöntem diğer lentiviral vektörler için kullanıldığında yaklaşık %90 sağkalım oranı gözlendi.Pronükleer enjeksiyonlardan kurtulan embriyoların yüzdesi önemli ölçüde daha düşüktü. Genel olarak, bu sonuçlar hamile kadın sıçanlar karşılaştırılabilir bir verimlilik ile koruyucu anne olarak kullanılabilir öneririz. Özellikle, mikroenjeksiyon bireysel turlar için analiz edilen sayısal veriler, implantasyonun etkinliğinin doğrudan bir embriyoya yapılan enjeksiyon sayısına ve dolaylı olarak viral yüke bağlı olduğunu göstermiştir.Lentiviral vektörlerin kullanımı transgenin genomik entegrasyonunu ve iletimini garanti eder ve birden fazla subdermal enjeksiyon yapıldığında bile mikromanipüle edilen embriyoların yüksek sağkalım oranını kolaylaştırır. Bu prosedür diğer türlere etkili bir şekilde uygulanabilir ve konvansiyonel transgenez için bir alternatif olarak düşünülebilir.

generation-of-transgenic-rats-using-a-lentiviral-vector-approach

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Lentiviral ifade vektörlerinin stably memeli hücreleri ve tüm organizma bölünmesi ve non-bölünmesi farklı efektör moleküller ya da reporter yapıları ifade etmek için en etkili araçlardır. Burada pseudoviral parçacıklar lentivector ifade yapıları paketlemek için ve pseudoviral parçacıkları kullanarak hedef hücreleri transdüksiyonu için nasıl bir protokol sağlar.

Ambalaj HIV veya FIV tabanlı Lentivector İfade Yapıları &amp; VSV-G Pseudotyped Viral Parçacıklarının İletimi

Bu protokolü biz üretim, saflaştırma ve lentiviral vektörlerin titrasyonu açıklar. Biz primer kültürlerinde nöronlar ve astrositlerde lentiviral vektör aracılıklı gen aktarımının bir örnek oluşturmaktadır. Bizim yöntemleri diğer hücre türleri için de geçerli...

Merkezi sinir sisteminin transducing Hücreleri için lentiviral Vektörler Üretimi

Bu video, lentiviral vektörlerin döllenmiş bir fare embriyosunun perivitellin boşluğuna pronükleer enjeksiyonunu açıklar. Lentivirüs, döllenmiş embriyonun genomuna dahil edilen ve sonunda transgenik farelere yol açan transgeni içerir.

Lentiviral Vektör Bazlı Perivitellin Enjeksiyonu: İlgilenilen Geni Döllenmiş Tek Hücreli Fare Oositlerine Dönüştürmek İçin Bir Yöntem

Kaynak: Keefe, K. M., et al. Bir lentiviral vektörün doğrudan enjeksiyonu, sıçan omuriliğindeki çoklu motor yolakları vurgular. J. Vis. Uzm. (2019).Bu video, nöronal yolları izlemek için sıçan omuriliğine yüksek verimli bir retrograd taşıma (HiRet) viral vektörünün enjeksiyonunu göstermektedir. Virüs, sinaptik giriş için glikoproteinlere ve floresan protein kodlayan bir gene sahiptir. İğne omuriliğe yerleştirilir ve virüs süspansiyonu kontrollü bir hızda uygulanır. Viral difüzyon için yeterli...

Retrograd Nöronal İzleme için Sıçan Omuriliğine Viral Vektör Enjeksiyonu

Genler yetişkin hayvanlarda davranış veya nöropatoloji sonraki çalışmalar için nöronal bağlantı hızlı ve hedeflenen değişiklikleri mümkün kılmak için, E16 de utero elektroporasyon (IUE) in ile korteks veya sıçanın hipokampusun gelişimi sırasında manipüle edilebilir. IUE başarı kontrolü için in vivo görüntüleme doğum sonrası ko-transfekte edilmiş lusiferaz aktive biyolüminesans ile gerçekleştirilir.

Topikal Transgenik Rats nesil tarafından<em&gt; Utero</em&gt; Elektroporasyon ve<em&gt; In vivo</em&gt; Biyoparlaklık Eleme

Bu el yazması, viral vektör aracılı yerel gen iletiminin, merkezi sinir sistemindeki transgenleri ifade etmek için nasıl çekici bir yol sağladığını açıklamaktadır.  Protokol, Parkinson hastalığı için viral vektör tabanlı bir hayvan modeli geliştirmek için sıçanın substantia nigra'sında bir viral vektör enjeksiyonu gerçekleştirmek için tüm önemli adımları özetlemektedir.

Bir rekombinant adeno-ilişkili viral vektörün stereotaktik enjeksiyon yoluyla Parkinson Hastalığı için bir alfa-sinüklein Bazlı Fare Modeli Geliştirme

Fareyi bir geniş ölçekli merkezi sinir sistemi gen teslimi için yöntemleri kaplıdır. Bu örnekte, amacı tüm omurilik etkileyen bir hastalık taklit etmektir. Yaygın iletim bir terapötik protein MSS için bir kerelik, Çevre Yönetimi'nden teslim etmek için kullanılabilir.

Yöntemleri ve merkezi sinir sistemi iletim değerlendirilmesi ve Adeno ilişkili virüs fareler için intravenöz Yönetim için ipuçları

Burada, lentiviral bir vektör perivitelline alanda bir döllenmiş yumurta, basit bir iğne ile transgene entegrasyon ve kurucusu transgenik fareler ile yüksek etkinlik üretimini teşvik için bir protokol mevcut.

Lentiviral aracılı transgenik fareler üretimi: doğrudan eğitim kurucuları basit ve son derece etkili bir yöntem

Bu iletişim kuralı retrogradely taşınabilir bir viral vektör enjeksiyon sıçan spinal kord doku içine gösterir. Vektör sinaps kapladığı ve hedef nöron hücre gövdesi nakletti. Bu model önemli spinal yolları veya gen terapisi uygulamaları için hedefleme hücrelerin retrograd izleme için uygundur.

Birden fazla Motor yolları sıçan Spinal Kord Lentiviral bir vektör direkt enjeksiyon vurgulamaktadır

Bu protokol, ekokardiyografi rehberliğinde virüsün doğrudan intramiyokard enjeksiyonu ile sıçan ve fare kalplerinde transgen ekspresyonu yöntemlerini açıklamaktadır. İzole, Langendorff perfüze edilmiş kalplerin programlanmış elektriksel stimülasyonu ile kalplerin ventriküler aritmilere duyarlılığının değerlendirilmesi için yöntemler de burada açıklanmaktadır.

Kemirgen Kalplerde Viral Transgen Ekspresyonu ve Kardiyak Aritmi Riskinin Değerlendirilmesi

Bu protokol, genetiği değiştirilmiş sıçan modelleri üretmek için optimize edilmiş bir yaklaşım sunar. Adeno-ilişkili virüs (AAV), bir DNA onarım şablonu sunmak için kullanılır ve elektroporasyon, 2 hücreli embriyoda genom düzenleme işlemini tamamlamak için CRISPR-Cas9 reaktiflerini iletmek için kullanılır.

CRISPR-Cas9 Adeno-İlişkili Virüs (AAV) ve 2 Hücreli Embriyo Elektroporasyonu Kullanılarak Sıçan Embriyolarının Genom Düzenlemesi

Öğrenin, lentiviral vektörler kullanarak sıçan embriyolarına transgen yerleştirme yöntemini. Bu teknik, gen fonksiyonlarını canlı organizmalarda çalışmak için etkili ve erişilebilir bir protokol sunar.

Lentiviral Vektör Yaklaşımı Kullanarak Transgenik Sıçanların Üretimi

Daha fazla video keşfet