Name: Protein-Lipid Etkileşimlerini Ölçmek için Mikro Ölçekli Termoforez Kullanımı (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-02-10T12:30:00.000+00:00
Duration: 4 min 45 s
Description: Öğrenin, mikro ölçekli termoforez ile Vam7 ve fosfatidik asit arasındaki protein-lipid etkileşimlerinin bağlanma afinitesini nasıl ölçebilirsiniz. Bu yöntem, biyokimyasal etkileşimler için hızlı ve düşük maliyetli KD belirlemesi sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu araştırma, Ulusal Bilim Vakfı'ndan (MCB 1818310) RAF'a verilen bir hibe ile desteklenmiştir. Bu çalışma kısmen H. Lee Moffitt Kanser Merkezi'ndeki Kimyasal Biyoloji Çekirdek Tesisi / Protein Kristalografi Birimi (NIH / NCI: P30-CA076292) tarafından desteklenmiştir.

1. Malzemelerin hazırlanması
<ol><li>Fosfat tamponlu salin (PBS) hazırlayın: 137 mM NaCl, 2,5 mM KCl, 10 mM NaH2PO4 ve 2 mM KH2PO4, pH 7,41.</li>
	<li>NTA-Atto 647 N boyasını hazırlayın. Stok NTA-Atto 647 N boyasını %100 DMSO çözeltisinden 100 nM'ye kadar ara olmadan PBS'ye seyreltin.</li>
	<li>Express Vam7-His8 – E. coli'de bir füzyon proteini olarak protein ve Ni-NTA ve boyut dışlama kromatografisi kullanarak saflaştırın8.</li>
	<li>PBS arabelleğindeki analiteyi titre edin. Analit farklı bir tampondaysa, etiketli MST, analit tamponunun içeriği etiketli protein ile etkileşime girmedikçe, DMSO gibi moleküllerden küçük tampon farklılıklarına özellikle duyarlı değildir.</li>
</ol>2. MST cihazının hazırlanması
<ol><li>Cihazın arkasındaki güç düğmesini açın.</li>
	<li>Kontrol yazılımını açın ve dizüstü bilgisayarın açık ve cihaza bağlı bilgisayarda bağlı durumda olduğundan emin olun.</li>
	<li>Bu deney için floresan ve MST ayarlarını girin. MST'yi 3 sn'ye, MST'yi 30 sn'ye ve 1 sn'den sonra Floresan geri kazanımını (Fluo.) ayarlayın. İlk floresan ölçümlerinden önce ve uzun süre gerektirmez; MST, ısı indüksiyonundan sonra dengeye ulaşılması gereken gerçek süredir.</li>
	<li>
Kılcal Damarlar Tablosu: Her kılcal boru için hedefin adını (ligand), ligandın adını (analit), hedefin konsantrasyonunu ve en yüksek titrasyon konsantrasyonunu girin ve otomatik doldurma titrasyon oranını kullanın. Örneğin, Vam7-His8'in hedef konsantrasyonu için 50 nM, hedef adı için Vam7-His8, ligand adı için (1,2-dioctanoyl fosfatidik asit) Di-C8 PA ve ligandın en yüksek konsantrasyonunu 1:1'i seçip 2-16 yuvalarına sürükleyerek girin.</li>
	<li>Hedef proteinin sinyaline göre uygun LED'i (%20 LED (ön ayar)) seçmek için bir Cap Scan çalıştırın ve etiketli MST için 200 ila 2000 floresan birimi arasında ayarlama yapın. Kapak Taramaları düzgün yuvarlak çan şeklindeki tepeleri göstermelidir.</li>
	<li>Bir dizi MST gücü seçin ve en sağlam bağlama uyumunu test etmek için her biri için değerler girin ve Test edilen belirli etkileşim için en iyi çalışma koşullarını belirlemek üzere farklı değerleri tarayarak Kapak Taramasını Başlat + Ölçüm'e basın.</li>
	<li>Analiz yazılımını ve Tjump ile termoforez için ön ayarı kullanarak MST gücünü en uygun şekilde belirleyin. En düşük ve en yüksek konsantrasyon arasındaki çoğu floresan ayrımına göre, en uygun MST gücüne kıyasla uyumları analiz edin ve çoğaltma denemeleri için MST gücünü seçin.</li>
	<li>Analiz yazılımına gidip analizi uzman moduna geçirerek birinci ve ikinci çalıştırma arasında fotobeyazlatmanın gerçekleşip gerçekleşmediğini belirleyin. Ardından, analiz için termoforez yerine floresan seçin. Uzman modunu ve ardından fotobeyazlatmayı seçin.</li>
</ol>3. Etiketli MST için numunelerin hazırlanması
<ol><li>Vam7-His8 çözeltisini PBS'de Ara olmadan 200 nM konsantrasyona getirin.</li>
	<li>NTA-Atto 647 boyasını Arasız PBS'de 100 nM'ye getirin.</li>
	<li>Vam7-His8 ve NTA-Atto 647 boyasını 1:1 hacimsel oranda karıştırın ve 30 dakika boyunca ışıkla kaplı oda sıcaklığında oturmaya bırakın. Bölüm 2.5'te olduğu gibi hedef proteinin uygun konsantrasyonunu belirleyin (videoda gösterildiği gibi Ni-NTA boyasının KD'sinin kullanımına ilişkin eke bakınız ).</li>
	<li>NTA-Atto 647 N boya ve protein karışımının karanlık bir odada 10 dakika boyunca yaklaşık 8.161 x g'de bir masa üstü santrifüj kullanılarak santrifüj edilmesi.</li>
	<li>Deneyden sonra karışımı 4 ° C'de veya deney sırasında proteinin denatüre olmasını önlemek için gerekirse birkaç saat içinde tekrar kullanılmak üzere buz üzerinde saklayın.</li>
	<li>Titrasyonla ilgili gereken konsantrasyon aralığını belirlemek için NT konsantrasyon bulucuyu kullanın.</li>
	<li>Di-C8 PA'yı suda uygun maksimum konsantrasyona getirin.</li>
	<li>PBS tamponunda 1:1 seri seyreltme kullanarak önceki adıma göre 16 konsantrasyon için analiti titre ettirin. SPR'den farklı olarak, termoforez tampon farklılıklarına karşı hassas değildir.</li>
</ol>4. Örneklerin MST'si
<ol><li>Cihazı ve bağlı dizüstü bilgisayarı açın.</li>
	<li>Makinenin önündeki yukarı oka basın ve kılcal rafı dışarı kaydırın.</li>
	<li>Kılcal damarları rafa 1. konumda en yüksek konsantrasyonla yükleyin.</li>
	<li>Kontrol yazılımında, NTA-Atto 647 N'ye karşılık gelen Kırmızı Kanalı seçin.</li>
	<li>Kılcal Damarlar Tablosuna her kılcal damar için konsantrasyon, konum ve isim bilgilerini girin.</li>
	<li>Start Cap Scan (% 20 LED'de (ön ayar) tuşuna basarak kılcal bir tarama yapın ve LED yoğunluk ayarlarını veya ligand konsantrasyonunu (etiketli protein) kullanarak 200 ila 2000 floresan ünitesine göre ayarlayın.</li>
	<li>Bir MST gücü aralığı seçin.</li>
	<li>Cap Scan + MST Ölçümü'nü başlatın.</li>
	<li>Analiz yazılımını kullanarak analiz edin.</li>
</ol>5. MST verilerinin analizi
NOT: Nanotemper tarafından sağlanan analiz yazılımı tescillidir ve M.O. Affinity Analysis kullanılarak gerçekleştirilir. Floresan veya termoforeze dayalı bağlanma afinitelerini ölçmenin farklı yolları vardır. Bu yazılımın daha yeni sürümleri, termoforez kullanarak verileri otomatik olarak değerlendirmek için önceden ayarlanmıştır ve her iki ölçümden de yararlanarak Tjump ile Termoforezi kullanmak üzere önceden ayarlanmıştır. Alternatif olarak, tek başına Tjump veya tek başına Termoforez seçilebilir. Ek olarak, analiz yazılımı ilk floresan kullanılarak tahmini afinite ölçümlerine izin verir. Bu ayarlara yalnızca uzman modunda erişilebilir.
<ol><li>Veri Seçimi ekranında bir veri kümesinin yanındaki şimşek kutusunu tıklatarak analiz yazılımındaki değerlendirme stratejisini uzmana ayarlayın. Analiz Yazılımı, MST Analizini analiz etmek için önceden ayarlanmıştır; Bununla birlikte, bir araştırmacı Yeni Analiz Oluştur'u seçebilir ve ilk floresana dayalı bağlanma afinitelerini tahmin etmek için İlk Floresan Analizi'ni seçebilir. İlk floresan için uzman modu da mevcuttur. Aşağıda açıklanan analizde, doğal substratı olan lipid fosfatidik asit ile Vam7-His8'in sunulan KD'sini belirlemek için termoforez ve Tjump kullanılmıştır.</li>
</ol>

<ol><li>Jerabek-Willemsen, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MicroScale+Thermophoresis%3A+Interaction+analysis+and+beyond%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Molecular+Structure%22%5BJournal%5D)">MicroScale Thermophoresis: Interaction analysis and beyond.</a> Journal of Molecular Structure. 1077, 101-113 (2014).</li>
<li>Chapman, D., Hochstrasser, R., Millar, D., Youderia, nP. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+proteins+without+primary+sequence+tryptophan+residues%3A+mutant+trp+repressors+with+aliphatic+substitutions+for+tryptophan+side+chains%5BTitle%5D)+AND+%22Gene%22%5BJournal%5D)">Engineering proteins without primary sequence tryptophan residues: mutant trp repressors with aliphatic substitutions for tryptophan side chains.</a> Gene. 163 (1), 1-11 (1995).</li>
<li>Duff, M. R., Grubbs, J., Howell, E. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isothermal+titration+calorimetry+for+measuring+macromolecule-ligand+affinity%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Isothermal titration calorimetry for measuring macromolecule-ligand affinity.</a> Journal of Visualized Experiments. (55), (2011).</li>
<li>Jerabek-Willemsen, M., Wienken, C. J., Braun, D., Baaske, P., Duhr, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+interaction+studies+using+microscale+thermophoresis%5BTitle%5D)+AND+%22Assay+and+Drug+Development+Technologies%22%5BJournal%5D)">Molecular interaction studies using microscale thermophoresis.</a> Assay and Drug Development Technologies. 9 (4), 342-353 (2011).</li>
<li>Wienken, C. J., Baaske, P., Rothbauer, U., Braun, D., Duhr, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein-binding+assays+in+biological+liquids+using+microscale+thermophoresis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Protein-binding assays in biological liquids using microscale thermophoresis.</a> Nature Communications. 1, 100(2010).</li>
<li>Khavrutskii, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+purification-free+method+of+binding+affinity+determination+by+microscale+thermophoresis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Protein purification-free method of binding affinity determination by microscale thermophoresis.</a> Journal of Visualized Experiments. (78), (2013).</li>
<li>Seidel, S. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Label-free+microscale+thermophoresis+discriminates+sites+and+affinity+of+protein-ligand+binding%5BTitle%5D)+AND+%22Angewandte+Chemie+International+Edition+English%22%5BJournal%5D)">Label-free microscale thermophoresis discriminates sites and affinity of protein-ligand binding.</a> Angewandte Chemie International Edition English. 51 (42), 10656-10659 (2012).</li>
<li>Starr, M. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phosphatidic+acid+induces+conformational+changes+in+Sec18+protomers+that+prevent+SNARE+priming%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Phosphatidic acid induces conformational changes in Sec18 protomers that prevent SNARE priming.</a> Journal of Biological Chemistry. 294 (9), 3100-3116 (2019).</li>
<li>Miner, G. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Central+Polybasic+Region+of+the+Soluble+SNARE+%28Soluble+N-Ethylmaleimide-sensitive+Factor+Attachment+Protein+Receptor%29+Vam7+Affects+Binding+to+Phosphatidylinositol+3-Phosphate+by+the+PX+%28Phox+Homology%29+Domain%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">The Central Polybasic Region of the Soluble SNARE (Soluble N-Ethylmaleimide-sensitive Factor Attachment Protein Receptor) Vam7 Affects Binding to Phosphatidylinositol 3-Phosphate by the PX (Phox Homology) Domain.</a> Journal of Biological Chemistry. 291 (34), 17651-17663 (2016).</li>
<li>Collins, M. D., Gordon, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Short-chain+phosphoinositide+partitioning+into+plasma+membrane+models%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Short-chain phosphoinositide partitioning into plasma membrane models.</a> Biophysical Journal. 105 (11), 2485-2494 (2013).</li>
<li>Zhao, H., Lappalainen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+guide+to+biochemical+approaches+for+analyzing+protein-lipid+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Biology+of+the+Cell%22%5BJournal%5D)">A simple guide to biochemical approaches for analyzing protein-lipid interactions.</a> Molecular Biology of the Cell. 23 (15), 2823-2830 (2012).</li>
<li>Kaufmann, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stress+proteins%3A+virulence+factors+of+intracellular+disease+agents%5BTitle%5D)+AND+%22Immunitat+und+Infektion%22%5BJournal%5D)">Stress proteins: virulence factors of intracellular disease agents.</a> Immunitat und Infektion. 17 (4), 124-128 (1989).</li>
<li>le Maire, M., Champeil, P., Moller, J. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interaction+of+membrane+proteins+and+lipids+with+solubilizing+detergents%5BTitle%5D)+AND+%22Biochimica+et+Biophysica+Acta%22%5BJournal%5D)">Interaction of membrane proteins and lipids with solubilizing detergents.</a> Biochimica et Biophysica Acta. 1508 (1-2), 86-111 (2000).</li>
<li>Corradi, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Emerging+Diversity+in+Lipid-Protein+Interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Chemical+Reviews%22%5BJournal%5D)">Emerging Diversity in Lipid-Protein Interactions.</a> Chemical Reviews. 119 (9), 5775-5848 (2019).</li>
<li>Rainard, J. M., Pandarakalam, G. C., McElroy, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+Microscale+Thermophoresis+to+Characterize+Hits+from+High-Throughput+Screening%3A+A+European+Lead+Factory+Perspective%5BTitle%5D)+AND+%22SLAS+Discovery%22%5BJournal%5D)">Using Microscale Thermophoresis to Characterize Hits from High-Throughput Screening: A European Lead Factory Perspective.</a> SLAS Discovery. 23 (3), 225-241 (2018).</li>
<li>Sparks, R. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+small-molecule+competitive+inhibitor+of+phosphatidic+acid+binding+by+the+AAA%2B+protein+NSF%2FSec18+blocks+the+SNARE-priming+stage+of+vacuole+fusion%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">A small-molecule competitive inhibitor of phosphatidic acid binding by the AAA+ protein NSF/Sec18 blocks the SNARE-priming stage of vacuole fusion.</a> Journal of Biological Chemistry. 294 (46), 17168-17185 (2019).</li>
</ol>

Yazarlar potansiyel bir çıkar çatışması olmadığını beyan ederler.

Vam7-His8'in DiC8-PA'ya bağlanmasının belirlenmesi, verilen etkileşim için sağlam bir KD sağladı; bu, Vam7-His8'in ölçülen KD'sinden PA lipozomlarına (yayınlanmamış) biraz daha düşük afinitedir. Bu fark büyük olasılıkla membran eksikliğinden kaynaklanmaktadır, bu da genellikle membrana özgü lipit bağlanma etkileşimleri için daha düşük afinite ile sonuçlanır ve bu nedenle lipozom membran iskelesinin bu etkileşime olan rolünü gösterir11.
...

Mikroölçekli termoforez, biyokimyasal olarak ilgili ligandlar arasındaki ayrışma sabitlerinin (KD) ve inhibisyon sabitlerinin (IC50) belirlenmesinde nispeten yeni bir tekniktir. MST'nin önde gelen ticari perakendecisi (örneğin, NanoTemper) iki popüler MST teknolojisi sunmaktadır: 1) Floresan etiketi gerektiren etiketsiz MST ve 2) her proteinde bulunan aromatik kalıntıların sayısına bağlı olarak proteinlerin doğal floresansını kullanan etiketli termoforez1. Etiketsiz termoforezin bir dezavantajı, çoğu durumda, protein-protein etkileşimlerinin ölçülmesine izin vermemesidir. Bununla birlikte, etiketsiz termoforezde2 kullanılmak üzere triptofan gibi aromatik amino asitler olmadan proteinlerin mühendisliği mümkün olabilir.
MST, şu anda mevcut teknolojilerde kızılötesi lazer tarafından başlatılan mikroskobik sıcaklık alanlarının indüksiyonuna yanıt olarak parçacıkların hareketini ölçer1. MST, protein-protein etkileşimlerini, protein-lipit etkileşimlerini, protein-küçük molekülü, rekabet deneylerini ve hatta yeterli sinyal ayrımı üretebildiği sürece küçük moleküller arasındaki etkileşimleri ölçmek için kullanılabilir. Ek olarak, MST, lipozomlara veya nanodisklere gömülü membran-protein bazlı etkileşimlerin ölçülmesine izin verir. Etiketli termoforez, ligand ve analit arasındaki sinyalin kimyasal olarak kontrol edilebilir bir şekilde ayrılmasını sağlayan floresan etiketli etiketlerin kullanılmasından yararlanır. KD değerleri, düşük nanomolar konsantrasyonlarda protein bağlanmasını içeren etkileşimler için termoforez kullanılarak elde edilebilir; bu, çoğu durumda izotermal kalorimetri (ITC) için gerekli olandan çok daha düşük bir protein konsantrasyonudur3. Ek olarak, MST'nin yüzey plazmon rezonansı (SPR)4 için gerekli olan katı tamponlama gereksinimleri yoktur ve etiketli termoforez, genetik olarak yerleştirilmiş floresan etiketleriyle6 tam olarak saflaştırılmamış protein çözeltilerinden5 ilgili proteinlerin bağlanma sabitlerini ölçmek için bile kullanılabilir. MST'nin bir dezavantajı, kinetik parametrelerin SPR2'de olduğu gibi MST için kolayca elde edilememesidir.
Termoforez ölçümleri, bir çözeltinin yerel sıcaklık farkına bağlıdır. Bu ısı kızılötesi lazerden üretilebilir. MST cihazı, kızılötesi (IR) ışına bağlı bir floresan dedektörüne sahiptir ve IR lazerin hedeflendiği noktada floresan moleküllerinin yerel konsantrasyon değişikliklerinden floresandaki değişiklikleri alabilir. MST cihazı, doğrudan çözeltide ısının üretildiği aynı noktaya odaklanmış bir floresan dedektörüne bağlı IR hedefli bir lazer kullanır. Bu, IR lazer tarafından üretilen ısı noktasında moleküllerin tükenmesine karşılık gelen sıcaklıktaki değişikliklerin sağlam bir şekilde algılanmasını sağlar. Ölçülen floresan genellikle sıcaklık artışlarına yanıt olarak IR lazere daha yakın azalır. Sonuç olarak ölçülen farklılıklar, yük, boyut veya çözme entropisi gibi çoklu faktörlerden kaynaklanabilir. Bu farklılıklar, ısı indüksiyonuna veya moleküllerin kılcal damarın sıcaktan soğuk kısımlarına hareketine yanıt olarak floresandaki değişiklikler olarak ölçülür.
Bir kılcal damarı belirli bir çözelti ile yüklerken, kılcal damarın her iki ucunda hava bırakmak ve kılcal damarı tamamen doldurmamak önemlidir. Ticari kılcal damar yaklaşık 10 μL çözelti tutar. Çözelti kılcal damarın merkezine manipüle edildiği sürece, 5 μL çözelti ile doğru ölçümler elde edilebilir, hava kabarcıkları yoktur (kılcal damar yüklenmeden önce potansiyel olarak gazdan arındırılır) ve biri, çözeltiyi kızılötesi lazerin hedeflendiği kılcal damarın merkezinden itmemek için rafı yüklerken dikkatli olur. Lazer çözelti ile tam olarak temas etmezse, sonuç büyük olasılıkla bu konsantrasyon için üç kullanılamaz çıkıştan biri olacaktır: 1) hiç veya düşük floresan algılama, 2) daha yüksek floresan algılama (potansiyel olarak pürüzlü tepe noktasıyla) veya 3) verilen titrasyondan diğer değerler içinde floresan algılama, ancak pürüzlü ve yuvarlanmamış bir tepe noktasıyla.
Etiketli termoforez için, 200'ün üzerinde ve 2000 floresan ünitesinin altında bir floresan sinyaline sahip olmak en uygunudur7. MST cihazı, 200'ün üzerinde veya 2000'in altında bir sinyal elde etmek için seçilebilen 0 ila 100 arasında bir dizi LED yoğunluğu kullanır. Alternatif olarak, floresan sinyalini optimum seviyeye getirmek için etiketli ligandın farklı konsantrasyonları kullanılabilir. Verileri analiz ederken referans olarak belirli bir MST ölçümüne sahip bir kapak taraması çalıştırmak önemlidir, çünkü zayıf bir kapak taraması genellikle daha sonra aykırı değer olarak belirlenebilecek bir noktaya neden olabilir. Bir kapak taraması ile tek bir MST gücü ölçülürse her çalıştırma yaklaşık 30 dakika sürmelidir. Ticari cihazlar MST gücünde değişikliklere izin verir. Eski yazılım sürümlerinde bu, 0'dan 100'e kadar ayarlanabilir; ve sonraki sürümlerde düşük, orta veya yüksek MST seçilebilir. Sağlam izler elde etmek için, bir araştırmacının bunların her birini denemesi ve hangi MST ayarının belirli bir etkileşim için en sağlam verilerle sonuçlandığına karar vermesi gerekebilir.

<table><tbody><tr><td>Cy5 Maleimid Mono-Reaktif Boya</td><td>GE Sağlık</td><td>PA23031</td><td>Protein etiketleme için</td></tr><tr><td>Graphpad Prsim</td><td>Graphpad yazılımı</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Monolith NT.115 Kılcal damarlar (1000 sayım)</td><td>Nanotemper</td><td>MO-K022</td><td>MST</td></tr><tr><td>Monolith NT.115 makinesi</td> için <td>Kılcal Damarlar Nanotemper</td><td></td><td>Üniversite ekipmanları</td></tr><tr><td>NTA-Atto 647 N</td><td>Sigma</td><td>Etiketleri için</td> <td>2175</td> etiket</tr><tr><td>Fosfatidilinositol 3-fosfat diC8 (PI(3)P diC8)</td><td>Echelon</td><td>P-3008</td><td>Bağlama deneyleri için lipid</td></tr></tbody></table>

protein-lipid etkileşimlerini Ölçmek için mikro Ölçekli termoforez kullanımı

Use of Microscale Thermophoresis to Measure Protein-Lipid Interactions

Lipitlerin proteinlere bağlanma afinitesini belirleme yeteneği, membran kaçakçılığı, sinyal iletimi ve sitoiskelet yeniden modellemesinde protein-lipid etkileşimlerini anlamanın önemli bir parçasıdır. Bu tür etkileşimleri ölçmek için klasik araçlar arasında yüzey plazmon rezonansı (SPR) ve izotermal titrasyon kalorimetrisi (ITC) bulunur. Güçlü araçlar olsa da, bu yaklaşımların aksilikleri vardır. ITC, büyük miktarlarda saflaştırılmış proteinin yanı sıra pahalı ve üretilmesi zor olabilen lipitler gerektirir. Ayrıca, ITC ve SPR çok zaman alıcıdır ve bu da bu deneyleri gerçekleştirmenin maliyetine önemli ölçüde katkıda bulunabilir. Bu kısıtlamaları atlamanın bir yolu, nispeten yeni mikro ölçekli termoforez (MST) tekniğini kullanmaktır. MST, belirli bir bağlanma olayı için bir doygunluk eğrisi elde etmek için az miktarda numune kullanarak hızlı ve uygun maliyetlidir. Şu anda iki tür MST sistemi mevcuttur. Bir MST türü, mavi veya kırmızı spektrumda bir florofor ile etiketlemeyi gerektirir. İkinci sistem, UV aralığındaki aromatik amino asitlerin içsel floresansına dayanır. Her iki sistem de kızılötesi lazerden lokalize ısı indüksiyonuna yanıt olarak moleküllerin hareketini algılar. Her yaklaşımın avantajları ve dezavantajları vardır. Etiketsiz MST, etiketlenmemiş doğal proteinleri kullanabilir; Bununla birlikte, farmasötikler de dahil olmak üzere birçok analit, UV aralığında floresan yapar ve bu da doğru KD değerlerinin belirlenmesine müdahale edebilir. Buna karşılık, etiketli MST, UV'nin aksine görünür aralıkta ölçülebilir absorbanslara sahip ligandlara tutturulmuş floresan etiketli problar kullanılarak ölçülebilir çift yönlü etkileşimlerin daha fazla çeşitliliğine izin verir ve analitlerden gelen sinyallere müdahale etme potansiyelini sınırlar.

Bu, benzeşim analizini kullanan örnek bir çıktıdır. Etiketli MST, Vam7-His8'in doğal substratlarından birinin çözünür dioktanoyl (DiC8) PA'sına bağlanma sabitini belirlemek için kullanıldı9. Şekil 1, 50 nM Vam7-His8'e karşı 500 μM'den başlayan 1:1 DiC8 PA titrasyonunun bir denemesinden elde edilen termoforetik izleri sunmaktadır. İlk floresan (kızılötesi lazer açılmadan önceki zaman), Tjump (başlangıçta kızılötesi lazer açıldıktan sonraki zaman) ve termoforez (parçacı...

Mikro ölçekli termoforez, düşük malzeme maliyetiyle bağlanma sabitlerini hızlı bir şekilde elde eder. Etiketli veya etiketsiz mikro ölçekli termoforez ticari olarak temin edilebilir; Bununla birlikte, etiketsiz termoforez, floresan etiketler kullanılarak gerçekleştirilebilecek etkileşim ölçümlerinin çeşitliliğini sağlayamaz. Etiketli termoforez ölçümleri için bir protokol sağlıyoruz.

Protein-Lipid Etkileşimlerini Ölçmek için Mikro Ölçekli Termoforez Kullanımı

The ability to determine the binding affinity of lipids to proteins is an essential part of understanding protein-lipid interactions in membrane ...

Etiketli mikro ölçekli termoforez, çeşitli biyokimyasal etkileşimlerin ayrışma sabitlerini veya KD'lerini verimli bir şekilde elde eder. Bu protokol ve eşlik eden video, mayadaki tek çözünür SNARE proteini olan Vam7'nin fosfatidik aside yaklaşık afinitesini verir. Bu, Vam7'nin diğer proteinlerle etkileşime girmeden önce iki zarla ilişki kurma şeklidir.Bu yöntem, düşük maliyetle, yüksek tekrarlanabilirlikle ve minimum protein maliyetiyle çeşitli biyokimyasal etkileşimler için KD'leri hızla elde eder. Bu teknik, potansiyel kurşun bileşiklerini belirlemek için kolayca elde edilebilen KD'lere izin veren birinci aşama farmasötik geliştirme için uygundur. Bir analize başlamadan önce, MST cihazının arkasındaki güç düğmesini açın ve kontrol yazılımını açın.Bilgisayarın aygıta bağlı ve bağlı durumda olduğunu doğrulayın ve MST Önce'yi 3 saniye, MST'yi 30 saniye ve Floresan Kurtarma'yı 1 saniye sonra olarak ayarlayın. Her kılcal boru için, otomatik doldurma titrasyon oranını kullanarak hedef ligandın adını, ligand analitinin adını, hedefin konsantrasyonunu ve en yüksek titrasyon konsantrasyonunu girin. Bir dizi MST gücü seçin ve en sağlam bağlama uyumunu test etmek için her güç için değerler girin.Etiketli MST örnekleri hazırlamak için, her ikisi de PBS'de olmak üzere bir Vam7-oktahistit çözeltisini 200 nanomolar konsantrasyona ve NTA-Atto 647 boyasını 100 nanomolar konsantrasyona seyreltin. Vam7-oktahistidin ve NTA-Atto 647 boyasını 1: 1 hacimsel oranda karıştırın ve karışımın 30 dakika boyunca ışıktan korunan oda sıcaklığında oturmasına izin verin. Kuluçkanın sonunda, boya ve protein karışımını santrifüj edin ve çözeltiyi kullanımdan birkaç saat öncesine kadar 4 santigrat derecede saklayın.Ardından, numuneyi hazırlayın, boyalı ligand alın ve analite maruz bırakın. Numunenin mikro ölçekli termoforezi için, cihazı açın ve kılcal rafı dışarı kaydırın. Numune kılcal damarlarını birinci konumda en yüksek konsantrasyona sahip rafa yükleyin ve kontrol yazılımında Kırmızı kanalı seçin.Ardından, rafı cihaza yükleyin. Ardından bir MST gücü aralığı seçin ve Cap Scan MST Ölçümünü başlatın ve vites değiştirme tepkisini değerlendirin. Vam7 etiketli 50 nanomolar NTA-Atto 647 alanına karşı 500 mikromolden başlayan 1:1 DiC8 PA titrasyonunun bir denemesinden elde edilen termoforetik izler burada gösterilmiştir.İlk floresan, zaman sıçraması ve termoforez gözlemlenebilir ve KD'nin bu ölçümlerin herhangi birinden veya bir kombinasyonundan hesaplanmasına izin verilir. Bu sonuçlardan, örneğin grafikte gösterildiği gibi, zaman atlama çıkışına sahip termoforez için bir doygunluk eğrisi çizilebilir. Genel olarak, MST sonuçları, KD modelini seçerek ve protein konsantrasyonunu girerek bağlanma afinitesini belirlemek için protein konsantrasyonunu dikkate alarak, log ölçeği kullanılarak belirlenir.Bu protokolü uygularken, çözeltinin kılcal damarın merkezinde olduğundan ve hava kabarcığı olmadığından ve kılcal damarın dışında toz veya çözelti bulunmadığından emin olun. İzotermal titrasyon kalorimetrisi veya yüzey plazmon rezonansı, elde edilen deneysel KD'yi doğrulamak için kullanılabilir. Potansiyel işbirlikçi bağlama varsa, ITC, kaynaklar göz önüne alındığında gerçekleştirilen bir sonraki mantıksal yöntem olacaktır.Bu teknik, geleneksel biyoloji araştırmacılarının biyofiziksel tarama tekniklerini yol ilişkilerini belirlemek için araştırmalarına dahil etmelerini sağlamıştır. Bu tekniğin bir örneği, GFP etiketinin geleneksel bir pull-down testi yapmanın yeni bir yolu olduğu endojen olarak ifade edilen hedef proteine sahip hücre lizazıdır.

use-of-microscale-thermophoresis-to-measure-protein-lipid-interactions

Research

JoVE Journal

Biochemistry

Biyokimya

Bu video, protein-lipid etkileşimini incelemek için mikro ölçekli termoforezi göstermektedir. Tahlil, bir sıcaklık gradyanına yanıt olarak floresan etiketli proteinlerin termoforetik hareketini ölçerek moleküller arasındaki etkileşimi tespit eder. Floresan molekülü, floresan olmayan lipid moleküllerinin farklı konsantrasyonları ile karıştırılır ve çözeltideki moleküllerin karışımı kılcal damarlara yüklenir. Kılcal damarlardaki numunelere bir sıcaklık gradyanı uygulanır ve floresan molekülünün...

Çözeltideki protein-lipid etkileşimlerini incelemek için mikro ölçekli termoforez

Bu video, proteinlerin lipid çift katmanlarına bağlanmasını araştırmak için enerji tüketen bir mikrogravimetri tekniğini göstermektedir. Bir mikroterazinin kuvars sensörünün yüzeyini kaplamak için küçük tek parçalı veziküller eklenir. Hedef fosfolipid bağlayıcı proteinin çift tabakaya kalsiyum iyonuna bağlı bağlanması kullanılarak, protein-lipid çift tabaka bağlanmasının doğasını belirlemek için sensörün salınım frekansındaki değişiklikler ve salınımın dağılımı izlenir.

Protein-Lipid Çift Tabaka Etkileşimini İncelemek için Dağıtıcı Mikrogravimetri Tekniği

Bu videoda, mikroakışkan platform adı verilen, desteklenen bir lipid çift tabakasının fosfatidiletanolamin lipidine etiketlenmiş pH'a duyarlı floresan boya kullanarak, pH modülasyon testini kullanarak mikroakışkan bir modelde protein-fosfoinositid etkileşimlerini gösteriyoruz. Proteinin fosfolipide bağlanmasından sonra pH'daki modülasyonlar floresan söndürmeye neden olur.

Protein-Fosfoinositid Etkileşimlerini Tespit Etmek için Desteklenen Lipid Çift Katmanları Üzerinde pH Modülasyon Testi

Mikro Termoforosis (MST) yaygın olarak hücre lizatlarından hedef proteinin arıtılmadan bağlanma afinitesinin belirlenmesinde kullanılabilir. Protokol, GFP-kaynaşık proteini, denatüre edici olmayan koşullar hücre parçalama ve ligand arasında değişen konsantrasyonlarda varlığında MST sinyalinin tespiti arasında aşırı içerir.

Mikro Termoforosis tarafından Bağlama Affinity belirlenmesi Protein Saflaştırma-ücretsiz Yöntemi

Diferansiyel taramalı florimetri, proteinlerle etkileşimler için küçük molekül kütüphanelerini taramak için yaygın olarak kullanılan bir yöntemdir. Burada, küçük bir molekül ile protein ortağı arasındaki ayrışma sabitinin bir tahminini sağlamak için bu analizleri genişletmek için basit bir yöntem sunuyoruz.

Diferansiyel Taramalı florimetri Kullanarak Protein-ligand Etkileşimleri belirlenmesi

Yüzey Plazmon Rezonansı (SPR) gerçek zamanlı biyomoleküler etkileşimlerini tespit etmek için bir etiket içermeyen bir yöntemdir. Burada, bir membran proteini için bir protokol: tekniğin artılarını ve eksilerini tartışırken reseptör etkileşimi deney, tarif edilmektedir.

Membran Protein Gerçek zamanlı ölçümler: Reseptör Etkileşimleri Yüzey Plazmon Rezonans Kullanma (SPR)

MicroScale Thermophoresis (MST), aptamer-hedef etkileşimlerini karakterize etmek için hassas bir teknolojidir. Bu el yazması, aptamer-küçük molekül etkileşimlerini karakterize etmek için bir MST protokolünü açıklamaktadır.

Mikro Termoforesis kullanarak ATP bir aptamer Bağlama Sitesi Haritalama

Burada, üretim ve arıtma etiketlenir proteinlerin için bir protokol kararlı izotop ve protein-protein etkileşimleri nükleer manyetik rezonans (NMR) spektroskopisi ve MicroScale kullanarak sonraki karakterizasyonu ile mevcut Thermophoresis (MST) deneyler.

Nükleer manyetik rezonans spektroskopisi (NMR) ve Microscale Thermophoresis (MST) tarafından küresel ve ipliksi protein etkileşimleri ölçme

Bu makalede lipid membranlarının nötron spin eko (NSE) çalışmalarında örnek hazırlama, veri azaltma ve veri analizi protokolleri açıklanmaktadır. Lipitlerin judicious döteryum etiketlemesi, üzerinde hayati biyolojik süreçlerin meydana geldiği mezoskopik uzunluk ve zaman ölçeklerinde farklı membran dinamiklerine erişim sağlar.

Lipid Membran Dinamiği ve Membran-Protein Etkileşimleri için Benzersiz Bir Prob Olarak Nötron Spin Eko Spektroskopisi

Bu protokol, düşük afiniteli protein-protein etkileşimlerini araştırmak için kütle fotometrisini yeni bir mikroakışkan sistemle birleştirir. Bu yaklaşım, düşük afiniteli ölçümleri mümkün kılan ve kütle fotometrisinin uygulanabilirliğini genişleten çözelti içindeki yüksek konsantrasyonlu komplekslerin hızlı bir şekilde seyreltilmesine dayanmaktadır.

Mikroakışkanların Kütle Fotometrisi ile Birleştirilmesiyle Mikromolar Derişimlerde Protein Kompleksi Oluşumunun Analizi

Öğrenin, mikro ölçekli termoforez ile Vam7 ve fosfatidik asit arasındaki protein-lipid etkileşimlerinin bağlanma afinitesini nasıl ölçebilirsiniz. Bu yöntem, biyokimyasal etkileşimler için hızlı ve düşük maliyetli KD belirlemesi sağlar.

Protein-Lipid Etkileşimlerini Ölçmek için Mikro Ölçekli Termoforez Kullanımı

Daha fazla video keşfet