Name: Bitki Patojenlerinin Gizli Efektörlerinden RNA Susturucu Baskılayıcıların Taranması ve Tanımlanması (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-02-03T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 19 s
Description: Keşfedin, bitki patojenlerinin RNA susturucu baskılayıcılarını hızlı ve doğru bir şekilde taramak için geliştirilmiş bir yöntemi. Nicotiana bethamiana kullanarak Agrobacterium ile infiltrasyon tekniklerini öğrenin.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma Şangay Eğitim Geliştirme Vakfı ve Şangay Belediye Eğitim Komisyonu, Çin Ulusal Anahtar Ar-Ge Programı Ulusal Anahtar Ar-Ge Programı "Shuguang Programı" hibe tarafından desteklenmiştir ( 2018YFD0201500), Çin Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı (no. 31571696 ve 31660510), Çin Genç Profesyoneller için Bin Yetenek Programı ve Şangay Belediyesi Bilim ve Teknoloji Komisyonu (18DZ2260500).

NOT: Prosedürün tüm adımları oda sıcaklığında (RT) yapılmalıdır.
DİkKAT: Patojen mikroplar içeren tüm ortamların yanı sıra, tetkikte kullanılan bitki ve bitki dokusunu, atmadan önce uygun atık kaplarına ve otoklava yatırın.
1. Putatif efektörler içeren plazmid yapılarının hazırlanması
<ol><li>RNA dizilimi (RNA-Seq) tarafından ve daha nicel gerçek zamanlı PCR (qRT-PCR) tekniği ile belirlendiği gibi, enfeksiyon sırasında yüksek oranda ifade edilen putatif salgılanan efektörleri seçin.</li>
	<li>SignalP18gibi bir yazılım aracı kullanarak her efektörün sinyal peptid dekolte alanını belirleyin.</li>
	<li>Yüksek sadakatLI DNA polimeraz kullanarak ilgi nin efektörünün kodlayıcısını kodlayan geni yükseltmek için astar tasarla ve PCR gerçekleştirin. PCR ürün kontrol etmek için agarose jel elektroforez gerçekleştirin, sonra ligasyon içermeyen klonlama kiti kullanarak Ağ Geçidi giriş vektörpQBV3 içine amplicon klonlamak(Malzeme Tablosu), ve daha sonra hedef ifade vektör pEG100 içine LR rekombinasyon reaksiyonu kullanarak19.</li>
	<li>3−5 μL LR reaksiyon karışımını 100 μL yetkin E. coli hücresine dönüştürün (örneğin, TOP10, DH5α), luria-Bertani (LB) agar ortamına 50 μg/mL kanamisin ile takviye edilmiş dönüştürülmüş bakteri hücrelerini yayıtıp 37 °C'de 16−20 saat kuluçkaya yatırın. NOT: Pozitif transformatörler koloni PCR20 ile tespit edilebilir ve plazmid miniprep ve sıralama ile daha fazla analiz edilebilir.</li>
	<li>50−100 ng rekombinant plazmidi kimyasal olarak yetkin A. tumefaciens hücrelerinin 100 μL içine efektör protein taşıyan tanıtın, yavaşça karıştırın ve sonra sıvı nitrojen içinde 1 dakika boyunca dondurma.</li>
	<li>500 μL LB suyu ekleyin ve inkübat30 °C'de 4−6 saat boyunca hafif çetrenleme ile ve 50 g/mL kanamisin ve 50 μg/mL rifampisin ile desteklenen LB agar ortamındaki tüm tarım bakterihücrelerini 2 gün boyunca 30 °C'de aktarın ve yayın. NOT: Pozitif klonlar koloni PCR ile doğrulanabilir.</li>
	<li>Aksi belirtilmedikçe, tarımsal sızma deneyleri için tek bir dönüştürülmüş koloni kullanın. NOT: Bu araştırmada, test edilen efektör genlerin hiçbiri tahmin edilen intronlar içermesin; genlerin her biri doğrudan bir Phytophthora sojae izole genomik DNA'dan güçlendirilmiş oldu. Etiketsiz bir Ağ Geçidi bitkisi ifade vektörü önerilir, ancak gerekli değildir.</li>
</ol>2. N. benthamiana 16c bitkilerin hazırlanması
<ol><li>20 dk boyunca 120 °C'de %50 turba yosunu, %30 perlit ve %20 vermikülitten oluşan çömlekçilik toprak karışımları hazırlayın.</li>
	<li>Otoklavlı toprak karışımlarını bitki gübresi çözeltisi (1 g/L) ile ıslatın ve daha büyük bir tepside (540 mm x 285 mm x 60 mm) saklanan daha küçük tencerelere (80 mm x 80 mm x 75 mm) yerleştirin.</li>
	<li>Her potun toprak yüzeyine N. benthamiana 16c bir veya iki tohum ekin. Plastik bir kubbe ile tepsi kapağı ve tohumlar çimlenmesağlar.</li>
	<li>Tepsiyi 23−25 °C sıcaklık, %50−60 bağıl nem ve uzun gün fotoperamı (14 saat açık/10 h karanlık, aydınlatma 130−150 μE·m-2s-1sıcaklıkile hafif ve sıcaklık kontrollü büyüme odalarının altına yerleştirin.</li>
	<li>Tohumlar çimlandıktan sonra (3−4 gün) plastik kubbeyi çıkarın ve fidelerin çimlenme adımında kullanılan koşullarda büyümesini bekleyin.</li>
	<li>Her 2−3 günde bir, toprağı nemli ama ıslatmayan uygun miktarda su ekleyin; daha fazla büyüme teşvik etmek için her 10 günde gübre ekleyin. N. benthamiana 16c tesislerini kullanıma hazır olana kadar normal şartlaraltında koruyun; Bu aşamada bitki en az beş tam olarak geliştirilmiş gerçek yaprakları ve görünür aksilla veya çiçek tomurcukları olmalıdır, ve yaprakları sağlıklı bir yeşil görünüme sahip olmalıdır).</li>
	<li>Yerel RNA susturma tahlilleri için N. benthamiana 16c'nin 3−4 haftalık yapraklarını ve sistemik RNA susturma tahlilleri için genç N. benthamiana 16c bitkilerini (10−14 günlük) kullanın. NOT: Bitki büyüme koşulları ve tesisleri laboratuvarlar arasında farklılık gösterir; sızma için sağlıklı, iyi gelişmiş ve tamamen genişletilmiş yaprakları seçin.</li>
</ol>3. Sızma için Agrobacterium kültürünün hazırlanması
<ol><li>LB plakasından pozitif bir koloni seçin ve hücreleri 50 g/mL kanamisin ve 50 μg/mL rifampisin ile takviye edilmiş 5 mL LB orta içeren cam tüpe dönüştürün. Hücreleri 30 °C'de 24−48 saat boyunca 200 rpm'de sallayarak büyütün.</li>
	<li>Aynı antibiyotikler, 10 mM 2-(N-morfolino) etanesulfonik asit (MES; pH 5.6) ve 20 μM asetonipone (AS) ile birlikte 5 mL'lik LB ortamına 100 μL kültür aktarımı. 16−20 saat boyunca 200 rpm sallayarak 30 °C'de bakteri yetiştirin.</li>
	<li>10 dk için 4.000 x g santrifüj hücreleri supernatant dökün ve 10 mMMgCl 2 tampon 2 mL pelet resuspend.</li>
	<li>Antibiyotiklerin tam olarak çıkarılmasını sağlamak için adım 3.3 tekrarlayın.</li>
	<li>600 nm (OD600)optik yoğunluğu ölçerek Agrobacterium kültürünün yoğunluğunu belirleyin. 10 mM MgCl2 tamponile 1,5−2.0'lık Bir OD600'e ayarlayın.</li>
	<li>Son süspansiyon kültürlerine 10 mM MES (pH 5.6) ve 150 μM AS ekleyin ve hücreleri en az 3 saat sallayarak RT'de kuluçkaya yatırın. NOT: Son süspansiyon kültürlerini bir gecede bırakmayın.</li>
</ol>4. Co-infiltrasyon N. benthamiana yaprakları
<ol><li>35S-GFP içeren bir Agrobacterium kültürünün eşit hacimli lerini 35S- salatalık mozaik virüs bastırıcı 2b (CMV2b), putatif efektör veya boş vektör (EV) içeren bir Agrobacterium kültürüyle karıştırın.</li>
	<li>N. benthamiana 16c yapraklarının abaxial taraflarında 1 mL iğnesiz şırınga kullanarak karışık agrobacterium süspansiyonlara dikkatlice ve yavaşça sızın.</li>
	<li>Yumuşak doku silecekleri ile yapraklarıkalan bakteriyel süspansiyon çıkarın ve bir yapıcı kalem ile sızmış yamalar marjları daire.</li>
	<li>Aynı büyüme koşulları altında büyüme odasında sızmış bitkiler bırakın. NOT: Güvenlik ve sağlık nedenlerinden dolayı, sızma sırasında koruyucu göz gözlükleri ve maske takılmalıdır. Çapraz kontaminasyonu önlemek için eldivenler infiltrasyonlar arasında etanol ile değiştirilmeli veya sterilize edilmelidir. Normalde sızma için yaprak başına en az 1 mL agrobacterium süspansiyongereklidir. Sistemik susturma için, en az iki yaprak infiltrasyon için gerekli olacaktır.</li>
</ol>5. GFP görüntüleme analizi
<ol><li>Görme tüm bitkilerin yeni yetiştirilen yapraklarında GFP floresantespit 2 hafta post-infiltrasyon (sistemik RNA susturma için) veya yaprak toplama olmadan uzun dalga ultraviyole (UV) lamba kullanarak yaprakları 3−4 dpi sızmış yamalar.</li>
	<li>Uv ve sarı filtrelerle donatılmış bir dijital kamera ile toplanan bitkileri ve/veya müstakil yaprakların fotoğrafını çekin. NOT: Yerel susturma bastırma tahlilleri için, N. benthamiana 16c yaprakların sızmış yamaları araştırmak, sistemik susturma bastırma etkinliği için ise, yeni yetiştirilen yaprakları araştırmak. RNA susturma bastırma etkinliği bireysel efektörler arasında değişebilir. Bu nedenle, 3 dpi başlayan birkaç gün içinde yamalar veya yaprakları gözlemleyin. CMV2b ve EV'i sırasıyla pozitif ve negatif denetimler olarak kullanın.</li>
</ol>6. Sızmış yapraklarda GFP mRNA düzeylerinin kuzey leke analizi
<ol><li>RNA izolasyon reaktifi kullanılarak yaprak dokusundan toplam RNA izolasyonu (Malzeme Tablosu)<ol>
<li>4−7 dpi'de sızmış N. benthamiana 16c yamaları yaprak dokuları toplamak, ince bir toz sıvı azot pulverize, ve steril bir 2 mL tüp için toz aktarın.</li>
		<li>RNA izolasyon reaktifini (1 mL/100 mg doku) kaputtaki örneklenmiş tüpe hemen ekleyin, homojenate için şiddetle sallayın ve 5 dakika boyunca RT'de kuluçkaya yatırın.</li>
		<li>Bir kaputtaki her tüpe kloroform (200 μL/1 mL RNA izolasyon reaktifi) ekleyin, 15 s'lik bir kuvvetle sallayın ve RT'de 5 dk. 4 °C'de 15 dakika boyunca 12.000 x g homojenin inkübünü ekleyin.</li>
		<li>Supernatant'ı yeni bir RNase-free tüpüne aktarın ve peleti atın. Supernatant için 0,7 hacimli isopropanol ekleyin, nazikçe birkaç kez ters ve 10 dakika boyunca RT karışımı kuluçka.</li>
		<li>RNA peletini 4 °C'de 15 dakika boyunca 12.000 x g'de santrifüj ile çökeltin.</li>
		<li>Supernatant atın,% 70 etanol ile pelet yıkayın ve bir başlık pelet hava-kuru. RNA'yı 65 °C'lik bir su banyosunda 10−20 dakika kuluçkaya yatarak diethyl pyrocarbonate (DEPC) ile işlenmiş suda çözün.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Sızmış yapraklarda GFP mRNA seviyesinin kuzey leke analizi<ol>
<li>1x MOPS çalışan tampon bir% 1.2 formaldehit denaturing agarose jel hazırlayın.</li>
		<li>RNA 1:1'i RNA yükleme boyası ile karıştırın ve kuluçka ile denatüre 10 dakika boyunca 65 °C'de, denatüre edilmiş numuneleri 1 dakika boyunca buz üzerinde hemen soğutun.</li>
		<li>RNA iyi ayrılana kadar 50 dakika için 100 V jel ve elektroforse örnekleri yükleyin.</li>
		<li>Formaldehit kaldırmak ve 20x SSC tampon gecede kılcal transfer ile naylon membran jel transfer 20x tuzlu sodyum sitrat (SSC) tampon jel durulamak. Membranı 2x SSC'de ıslatın ve ıslak membranı UV çapraz bağlamaya maruz bırakarak RNA'yı membrana sabitle.</li>
		<li>Uygun miktarda hibridizasyon tamponu ekleyin (100 cm2 membranbaşına 10 mL; Malzeme Tablosu) bir hibridizasyon tüpü nde ve 60 °C'de bir melezleme fırınında çalkalayın.</li>
		<li>Membranı hibridizasyon tüpüne koyun ve 60 °C'de 60 dakika kuluçkaya yatırın. Önceden ısıtılmış hibridizasyon tamponu içeren hibridizasyon çözeltisine 5'DIG etiketli DNA probu (son konsantrasyon, 50 ng/mL) seyreltin.</li>
		<li>Prehibridizasyon arabelleği atın ve hemen DIG etiketli prob içeren önceden ısıtılmış hibridizasyon çözeltisi ile değiştirin. Lekeyi bir gecede 60 °C'de prob ile hafif bir ajitasyonla kuluçkaya yatırın.</li>
		<li>Hibridizasyondan sonra membranı her biri 20 dakika boyunca 60 °C'de artan sıkılık tamponlarında iki kez yıkayın. Ekstra yıkama tamponunu çıkarmak için membranı hafifçe silin ve kemilüminesan hibridizasyon ve algılama kitinde önerildiği gibi reaktifler ekleyin(Malzeme Tablosu).</li>
		<li>Görüntüleme sistemi ile birlikte kemilüminesans reaksiyonu ile hibrid sinyalleri tespit edin.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Waterfield, N. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+Virulence+Annotation+%28RVA%29%3A+identification+of+virulence+factors+using+a+bacterial+genome+library+and+multiple+invertebrate+hosts%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Rapid Virulence Annotation (RVA): identification of virulence factors using a bacterial genome library and multiple invertebrate hosts.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (41), 15967-15972 (2008).</li>
<li>Rovenich, H., Boshoven, J. C., Thomma, B. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Filamentous+pathogen+effector+functions%3A+of+pathogens%2C+hosts+and+microbiomes%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Plant+Biology%22%5BJournal%5D)">Filamentous pathogen effector functions: of pathogens, hosts and microbiomes.</a> Current Opinion in Plant Biology. 20, 96-103 (2014).</li>
<li>Varden, F. A., De la Concepcion, J. C., Maidment, J. H., Banfield, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Taking+the+stage%3A+effectors+in+the+spotlight%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Plant+Biology%22%5BJournal%5D)">Taking the stage: effectors in the spotlight.</a> Current Opinion in Plant Biology. 38, 25-33 (2017).</li>
<li>Lee, A. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identifying+Pseudomonas+syringae+Type+III+Secreted+Effector+Function+via+a+Yeast+Genomic+Screen%5BTitle%5D)+AND+%22G3%3A+Genes%2C+Genomes%2C+Genetics%22%5BJournal%5D)">Identifying Pseudomonas syringae Type III Secreted Effector Function via a Yeast Genomic Screen.</a> G3: Genes, Genomes, Genetics. 9 (2), 535-547 (2019).</li>
<li>Toruno, T. Y., Stergiopoulos, I., Coaker, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plant-Pathogen+Effectors%3A+Cellular+Probes+Interfering+with+Plant+Defenses+in+Spatial+and+Temporal+Manners%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Phytopathology%22%5BJournal%5D)">Plant-Pathogen Effectors: Cellular Probes Interfering with Plant Defenses in Spatial and Temporal Manners.</a> Annual Review of Phytopathology. 54, 419-441 (2016).</li>
<li>Baulcombe, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+silencing+in+plants%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">RNA silencing in plants.</a> Nature. 431 (7006), 356-363 (2004).</li>
<li>Pumplin, N., Voinnet, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+silencing+suppression+by+plant+pathogens%3A+defence%2C+counter-defence+and+counter-counter-defence%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Microbiology%22%5BJournal%5D)">RNA silencing suppression by plant pathogens: defence, counter-defence and counter-counter-defence.</a> Nature Reviews Microbiology. 11 (11), 745-760 (2013).</li>
<li>Csorba, T., Kontra, L., Burgyan, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Viral+silencing+suppressors%3A+Tools+forged+to+fine-tune+host-pathogen+coexistence%5BTitle%5D)+AND+%22Virology%22%5BJournal%5D)">Viral silencing suppressors: Tools forged to fine-tune host-pathogen coexistence.</a> Virology. 479-480, 85-103 (2015).</li>
<li>Johansen, L. K., Carrington, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Silencing+on+the+spot.+Induction+and+suppression+of+RNA+silencing+in+the+Agrobacterium-mediated+transient+expression+system%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiology%22%5BJournal%5D)">Silencing on the spot. Induction and suppression of RNA silencing in the Agrobacterium-mediated transient expression system.</a> Plant Physiology. 126 (3), 930-938 (2001).</li>
<li>Powers, J. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+versatile+assay+for+the+identification+of+RNA+silencing+suppressors+based+on+complementation+of+viral+movement%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Plant-Microbe+Interactions%22%5BJournal%5D)">A versatile assay for the identification of RNA silencing suppressors based on complementation of viral movement.</a> Molecular Plant-Microbe Interactions. 21 (7), 879-890 (2008).</li>
<li>Voinnet, O., Lederer, C., Baulcombe, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+viral+movement+protein+prevents+spread+of+the+gene+silencing+signal+in+Nicotiana+benthamiana%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">A viral movement protein prevents spread of the gene silencing signal in Nicotiana benthamiana.</a> Cell. 103 (1), 157-167 (2000).</li>
<li>Deleris, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hierarchical+action+and+inhibition+of+plant+Dicer-like+proteins+in+antiviral+defense%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Hierarchical action and inhibition of plant Dicer-like proteins in antiviral defense.</a> Science. 313 (5783), 68-71 (2006).</li>
<li>Li, W. X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interferon+antagonist+proteins+of+influenza+and+vaccinia+viruses+are+suppressors+of+RNA+silencing%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Interferon antagonist proteins of influenza and vaccinia viruses are suppressors of RNA silencing.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101 (5), 1350-1355 (2004).</li>
<li>Navarro, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+plant+miRNA+contributes+to+antibacterial+resistance+by+repressing+auxin+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">A plant miRNA contributes to antibacterial resistance by repressing auxin signaling.</a> Science. 312 (5772), 436-439 (2006).</li>
<li>Qiao, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oomycete+pathogens+encode+RNA+silencing+suppressors%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Genetics%22%5BJournal%5D)">Oomycete pathogens encode RNA silencing suppressors.</a> Nature Genetics. 45 (3), 330-333 (2013).</li>
<li>Yin, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+fungal+effector+from+Puccinia+graminis+suppressing+RNA+silencing+and+plant+defense+responses%5BTitle%5D)+AND+%22New+Phytologist%22%5BJournal%5D)">A novel fungal effector from Puccinia graminis suppressing RNA silencing and plant defense responses.</a> New Phytologist. 222 (3), 1561-1572 (2019).</li>
<li>Zhang, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+WY+domain+in+the+Phytophthora+effector+PSR1+is+required+for+infection+and+RNA+silencing+suppression+activity%5BTitle%5D)+AND+%22New+Phytologist%22%5BJournal%5D)">The WY domain in the Phytophthora effector PSR1 is required for infection and RNA silencing suppression activity.</a> New Phytologist. 223 (2), 839-852 (2019).</li>
<li>Petersen, T. N., Brunak, S., von Heijne, G., Nielsen, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SignalP+4.0%3A+discriminating+signal+peptides+from+transmembrane+regions%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">SignalP 4.0: discriminating signal peptides from transmembrane regions.</a> Nature Methods. 8 (10), 785-786 (2011).</li>
<li>Earley, K. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gateway-compatible+vectors+for+plant+functional+genomics+and+proteomics%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Journal%22%5BJournal%5D)">Gateway-compatible vectors for plant functional genomics and proteomics.</a> Plant Journal. 45 (4), 616-629 (2006).</li>
<li>Woodman, M. E., Savage, C. R., Arnold, W. K., Stevenson, B. Direct PCR of Intact Bacteria (Colony PCR). <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aWoodman%2C+ME+%22Current+Protocols+in+Microbiology%22">Current Protocols in Microbiology</a>. 42 (1), Appendix 3D 1-7 (2016).</li>
<li>Cao, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+an+RNA+silencing+suppressor+from+a+plant+double-stranded+RNA+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virology%22%5BJournal%5D)">Identification of an RNA silencing suppressor from a plant double-stranded RNA virus.</a> Journal of Virology. 79 (20), 13018-13027 (2005).</li>
<li>Burgyan, J., Havelda, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Viral+suppressors+of+RNA+silencing%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Plant+Science%22%5BJournal%5D)">Viral suppressors of RNA silencing.</a> Trends in Plant Science. 16 (5), 265-272 (2011).</li>
<li>Incarbone, M., Dunoyer, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+silencing+and+its+suppression%3A+novel+insights+from+in+planta+analyses%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Plant+Science%22%5BJournal%5D)">RNA silencing and its suppression: novel insights from in planta analyses.</a> Trends in Plant Science. 18 (7), 382-392 (2013).</li>
<li>Martinez-Priego, L., Donaire, L., Barajas, D., Llave, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Silencing+suppressor+activity+of+the+Tobacco+rattle+virus-encoded+16-kDa+protein+and+interference+with+endogenous+small+RNA-guided+regulatory+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22Virology%22%5BJournal%5D)">Silencing suppressor activity of the Tobacco rattle virus-encoded 16-kDa protein and interference with endogenous small RNA-guided regulatory pathways.</a> Virology. 376 (2), 346-356 (2008).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

RNA susturma viral, bakteriyel, oomycete ve mantar patojenleri ile mücadele için bitkiler tarafından kullanılan önemli bir savunma mekanizmasıdır. Buna karşılık, bu mikroplar antiviral susturma karşı susturucu proteinleri susturma evrimleşmiş, ve bu RSSs RNA susturma yolu farklı adımları ile müdahale22,23. RSSS10'utanımlamak için çeşitli tarama denemeleri geliştirilmiştir.
Burada, P. sojae tarafından sa...

Son yirmi yılda, bitki hastalıklarına neden olan mikroorganizmaların genom dizilimindeki ivme, dizi bilgileri ile kodlanmış proteinlerin biyolojik işlevleri arasında giderek artan bir bilgi boşluğuna yol açmıştır1. Sıralama projelerinin ortaya çıkardığı moleküller arasında doğuştan gelen bağışıklığı baskılayan ve konak kolonizasyonunu kolaylaştıran efektör moleküller; bu faktörler bakteriler, nematodlar ve ipliksi mikroplar da dahil olmak üzere yıkıcı bitki patojenleri tarafından salgılanır. Bu tehditlere yanıt vermek için, konak bitkiler bu efektörleri tanıyan yeni reseptörler gelişti, bağışıklık yanıtının restorasyonu sağlayan. Bu nedenle, efektörler çeşitli seçici baskılara tabidir, patojen soyları arasında efektör repertoireçeşitlenmesine yol açan2. Son yıllarda, bitki patojenleri putatif etkileri sinyal yollarının disregülasyonu da dahil olmak üzere çeşitli şekillerde mikroplar yararına konak hücresel süreçleri engelleyerek bitki doğuştan bağışıklık bozmak için gösterilmiştir, transkripsiyon, hücre içi ulaşım, sitoiskelet istikrar, vezikül ticareti, vezikül ticareti, ve RNA silele3,4,5. Ancak, patojen efektörlerin büyük çoğunluğu, özellikle filamentöz patojenler olanlar, esrarengiz kalmıştır.
RNA susturma ökaryotlar arasında korunan homoloji aracılı gen inaktivasyon makinalarıdır. Süreç uzun çift telli RNA (dsRNA) tarafından tetiklenir ve homolog tek iplikçikli RNA (ssRNA) bir dizi özgü bir şekilde hedefler ve antiviralsavunma6 dahil biyolojik süreçlerin geniş bir yelpazede manipüle. Konakçının doğuştan gelen bağışıklık tepkilerini aşmak için, bazı virüsler RNA'nın susturulmasını dengelemek için evrimleşmiştir, hücre içi bölmelerde çoğalma veya susturma yeniden organize edilmiş sinyalden kaçma yeteneği de dahil olmak üzere. Bununla birlikte, virüslerin genomlarını RNA susturma bağımlı gen fonksiyonu kaybına karşı korumaları en genel strateji, RNA'yı susturan spesifik proteinleri kodlamaktır7,8. Çeşitli mekanistik farklı yaklaşımlar ekran ve RNA susturucu viral bastırıcılar karakterize kurulmuştur (VSR), Agrobacterium tumefaciens kültürlerin co-infiltrasyon dahil, putatif bastırıcılar ifade transgenik bitkiler, aşılama ve hücre kültürü9,10,11,12,13.
Bu tahlillerin her biri avantajları ve dezavantajları vardır ve VsR'ları kendi farklı bir şekilde tanımlar. En yaygın yaklaşımlardan biri, Nicotiana benthamiana 16c bitkileri üzerinde potansiyel viral protein ve muhabir gen (genellikle yeşil floresan protein [GFP]) barındıran bireysel A. tmuefaciens kültürlerin eş-infiltrasyon dayanmaktadır eş selabahar mozaik virüs 35S organizatörü kontrolü altında GFP ifade. Aktif bir viral susturucu baskılayıcı yokluğunda, GFP konak hücreleri tarafından eksojen olarak tanımlanır ve 3 gün post-infiltrasyon (dpi) içinde susturulur. Buna karşılık, viral protein bastırma aktivitesi varsa, GFP ifade düzeyi 3−9 dpi9ötesinde sabit kalır. Bu ortak infiltrasyon tsay basit ve hızlı; ancak, ne son derece kararlı ne de hassas. Yine de, titreyen birçok RNA virüsleri çeşitli protein dizileri ve yapıları ile çok sayıda VSR tespit etmiştir7,8.
Son zamanlarda, hücresel RNA susturma aktivitesiinin inhibe edebilirsiniz çeşitli efektör proteinler bakteriyel karakterize edilmiştir, oomisin, ve mantar bitkisi patojenler14,15,16. Bu bulgular, RNA susturma bastırma çoğu krallıkta patojenler tarafından kullanılan enfeksiyonu kolaylaştırmak için ortak bir strateji olduğunu ima eder. Teoride, birçok, hepsi değilse de, efektörlerr rna susturucular (RSSs) kodlamak olabilir; ancak bugüne kadar, özellikle güvenilir ve genel tarama stratejisinin yetersizliği nedeniyle sadece birkaç ı tespit edilmiştir. Ayrıca, Bitki patojenlerinin büyük çoğunluğunda RNA susturucuları araştırılmamıştır17.
Bu raporda, tarımsal infiltrasyon testini kullanarak lokal ve sistemik RNA susturmalarını bastırabilen bitki patojen efektörlerini belirlemek için optimize edilmiş ve genel bir protokol sunacağız. Bu çalışmanın en önemli amacı protokolün temel yönlerini vurgulamak ve adımları ayrıntılı olarak açıklamak, böylece bitki patojenlerinin hemen hemen tüm etkileri için uygun bir tarama testsağlamaktı.

<table><tbody><tr><td>2-Morfolinoetansülfonik Asit (MES)</td><td>Biofroxx</td><td>1086GR500</td><td>Tampon</td></tr><tr><td>2xTaq Master Mix</td><td>Vazyme Biotech</td><td>P112-AA</td><td>PCR</td></tr><tr><td>3- (N-morfolino) propansülfonik asit (MOPS)</td> <td>Amresco</td><td>0264C507-1KG</td><td>MOPS Tampon</td></tr><tr><td>Asetosiringon (AS)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>D134406-5G</td><td>Agrobacterium Agar'ın</td></tr> <tr><td></td><td>İndüksiyonuSigma-Aldrich</td><td>A1296-1KG</td><td>LB orta</td></tr><tr><td>Agaroz</td><td>Biofroxx</td><td>1110GR100</td><td>Elektroforez</td></tr><tr><td>Amersham Hybond -N+</td><td>GE Sağlık</td><td>RPN303 B</td><td>Nothern leke</td></tr><tr><td>Amersham Görüntüleyici</td><td>GE Healthcare</td><td>Amersham Görüntüleyici 600</td><td>Görüntü</td></tr><tr><td>Bacto Tripton</td><td>BD Biosciences</td><td>211705</td><td>LB ortamı</td></tr><tr><td>Bacto Maya Ekstraksiyonu</td><td>BD Biosciences</td><td>212750</td><td>LB orta</td></tr><tr><td>Kamera</td><td>Nikon</td><td>D5100</td><td>Fotoğraf</td></tr><tr><td>ChemiDoc MP Görüntüleme Sistemi</td><td>Bio-Rad</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kemilüminesan algılama modülü dafa kitlerinin bileşeni</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>89880</td><td>Lüminesans algılama</td></tr><tr><td>Kloramfenikol</td><td>Amresco</td><td>0230-100G</td><td>Antibiyotikler</td></tr><tr><td>ClonExpress II Tek Adımlı Klonlama Kiti</td><td>Vazyme Biotech</td><td>C112-01</td><td>Ligasyon</td></tr><tr><td>DIG Easy Hyb</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>11603558001</td><td>Hibridizasyon tamponu</td></tr><tr><td>Easypure Plazmid Miniprep kiti</td><td>TransGen Biotech</td><td>EM101-02</td><td>Plazmit Ekstraksiyonu</td></tr><tr><td>EasyPure Hızlı Jel Ekstraksiyon Kiti</td><td>TransGen Biotech</td><td>EG101-02</td><td>Jel Ekstraksiyonu</td></tr><tr><td>EDTA disodyum tuzu dihidrat</td><td>Amresco/VWR</td><td>0105-1KG</td><td>MOPS Tampon</td></tr><tr><td>Elektroforez Güç Kaynağı</td><td>LiuYi</td><td>DYY6D</td><td>Nükleik asit elektroforezi.</td></tr><tr><td>FastDigest EcoRV</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>FD0304</td><td>Vektör sindirim</td></tr><tr><td>jeli Görüntü Sistemi</td><td>Tanon</td><td>Tanon3500</td><td>Görüntü</td></tr><tr><td>Gentamisin</td><td>Amresco</td><td>0304-5G</td><td>Antibiyotikler</td></tr><tr><td>Kanamisin Sülfat</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>K1914</td><td>Antibiyotikler</td></tr><tr><td>LR Klonaz II enzimi</td><td>İnvitrojen</td><td>11791020</td><td>LR reaksiyonu</td></tr><tr><td>Nitroselüloz Kurutma membranı 0.45um</td><td>GE Sağlık</td><td>10600002</td><td>Kuzey</td></tr><tr><td>KUZEY2güney Biotin Rastgele</td> Prime DNA Etiketleme <td>Kiti Thermo Fisher Scientific</td><td>17075</td><td>Biyotin etiketleme</td></tr><tr><td>PCR Termal Döngüleyiciler</td><td>Bio-Rad</td><td>T100</td><td>PCR</td></tr><tr><td>Turba yosunu</td><td>PINDSTRUP</td><td>Koyu Altın + kil</td><td>Bitkiler</td></tr><tr><td>Peters Suda Çözünür Gübre</td><td>ICE</td><td>Peter Profesyonel 20-20-20</td><td>Gübre</td></tr><tr><td>Phanta Max Süper Sadakat DNA Polimeraz</td><td>Vazyme</td><td>Biotech P505-d1</td><td>Enzim</td></tr><tr><td>Rifampisin</td><td>MP Biyomedikal</td><td>219549005</td><td>Antibiyotikler</td></tr><tr><td>RNA Jel Yükleme Boyası (2X)</td> <td>Thermo Fisher Scientific</td><td>R0641</td><td>RNA Jel Yükleme Boyası</td></tr><tr><td>Sodyum Asetat Hidrat</td><td>Amresco/VWR</td><td>0530-1KG</td><td>MOPS Tamponu</td></tr><tr><td>Sodyum Klorür</td><td>Amresco</td><td>0241-10KG</td><td>LB orta</td></tr><tr><td>Tri-Sodyum sitrat</td><td>Amresco</td><td>0101-1KG</td><td>SSC Tampon</td></tr><tr><td>Trizol Reaktif</td><td>İnvitrojen</td><td>15596018</td><td>RNA izolasyon reaktifi</td></tr><tr><td>UV lambası</td><td>Analizi Jena</td><td>UVP B-100AP</td><td>Gözlem</td></tr><tr><td>UVP Hybrilinker Fırın Analizi</td><td>Jena</td><td>OV2000</td><td>Kuzey</td></tr></tbody></table>

bitki patojenlerinin gizli efektörlerinden rna susturucu baskılayıcıların taranması ve tanımlanması

Screening and Identification of RNA Silencing Suppressors from Secreted Effectors of Plant Pathogens

RNA susturma ökaryotlarda evrimsel olarak korunmuş, diziye özgü gen düzenleme mekanizmasıdır. Çeşitli bitki patojenleri konak bitki RNA susturma yolu inhibe yeteneği ile proteinler gelişti. Virüs efektörü proteinlerinin aksine, sadece birkaç salgılanan efektör proteinbakteriyel, oomisel ve mantar patojenlerinde RNA susturma yeteneğini göstermiştir ve çoğu efektörmoleküler fonksiyonları büyük ölçüde bilinmemektedir. Burada, rna susturma gözlemlemek ve bitki patojenleri tarafından salgılanan efektör proteinleri karakterize etmek için genel bir yöntem olarak hizmet verebilecek ortak infiltrasyon tsay'ın biraz değiştirilmiş bir versiyonunu ayrıntılı olarak açıklıyoruz. Yaklaşımın temel adımları sağlıklı ve tam olarak gelişmiş yaprakları seçmek, bakteri kültürünü 600 nm'de uygun optik yoğunluğa (OD) ayarlamak ve sızmış olan da optimum zamanda yeşil floresan proteini (GFP) floresanını gözlemlemektir. zayıf bastırma aktivitesi ile etkileri atlayarak önlemek için bırakır. Bu geliştirilmiş protokol, RNA susturucu baskılayıcıların hızlı, doğru ve kapsamlı taranmasına katkıda bulunacak ve bu proteinlerin moleküler işlevlerini araştırmak için mükemmel bir başlangıç noktası olarak hizmet verecektir.

Yukarıda, P. sojae RxLR efektörlerinin RSS aktivitesini değerlendirmek için geliştirilmiş bir tarama tetkik için adım adım prosedürü açıklıyoruz. Deney toplamda 5−6 hafta sürer. Daha sonra, tetkik ile tanımlanan RSSs daha fonksiyon ve moleküler mekanizma açısından karakterize edilebilir. Yaklaşımımıza örnek olarak, enfeksiyon sırasında haustoria yoluyla salgılanan ve konak hücrelere teslim edilen RNA susturucu 1 'in (PSR1) P. sojae RxLR effecto Phytophthora bastırıcısını...

Burada, bitki patojenlerinde RNA susturucularını hızlı bir şekilde taramak için yaygın olarak kullanılabilecek değiştirilmiş bir tarama yöntemi salıyoruz.

Bitki Patojenlerinin Gizli Efektörlerinden RNA Susturucu Baskılayıcıların Taranması ve Tanımlanması

RNA silencing is an evolutionarily conserved, sequence-specific gene regulation mechanism in eukaryotes. Several plant pathogens have evolved proteins ...

Bu yöntem, bitki patojenleri tarafından salgılanan RNA susturucuları ekran hakkında anahtar soruları cevaplamak için yardımcı olabilir. Bu tekniğin en büyük avantajı, RNA susturucuları tanımlaması için hızlı, doğru ve kapsamlı bir tarama testi sağlamaktır. 20 dakika boyunca 120 santigrat derecede %50 turba yosunu, %30 perlit ve %20 vermikülit ve otoklavdan oluşan çömlekçilik toprak karışımlarını hazırlayın.Otoklavlı toprağın litrebaşına bir gram bitki gübresi çözeltisi ile karıştırılması ve daha büyük bir tepside saklanan daha küçük kaplara paketleyin. Her potun toprak yüzeyine Nicotiana bethamiana 16c bir veya iki tohum ekin. Plastik bir kubbe ile tepsi kapağı ve tohumlar çimlenmesağlar.Tepsiyi 23 ila 25 derece sıcaklık, %50 ila %60 bağıl nem ve uzun bir günlük fotoperi ile ışık ve sıcaklık kontrollü büyüme odalarının altına yerleştirin. 3-4 gün sonra tohumlar çimlenir. Plastik kubbeyi çıkarve fidelerin çimlenme adımında kullanılan koşullarda büyümesini bekleyin.Her 2-3 günde bir, uygun miktarda su ekleyin toprağı nemli tutarak ama ıslatmamayı. Her 10 günde bir, daha fazla büyüme teşvik etmek için gübre ekleyin. Bitkiler görünür aksilla veya çiçek tomurcukları ile en az beş tam gelişmiş gerçek yaprakları ve yaprakları sağlıklı bir yeşil görünüme sahip olana kadar normal şartlar altında Nicotiana bethamiana 16c bitkiler koruyun.Sistemik RNA susturma tahlilleri ve yerel RNA susturma tahlilleri için Nicotiana bethamiana 16c'nin 3-4 haftalık yaprakları için 10 ila 14 günlük Nicotiana bethamiana 16c bitkilerini kullanın. LB plaka olumlu bir koloni almak ve mililitre Kanamisin başına 50 mikrogram ve mililitre Rifampicin başına 50 mikrogram ile desteklenen LB orta beş mililitre içeren bir cam tüp içine hücreleri aşılamak için bir ipucu kullanın. 24 ila 48 saat boyunca 200 RPM sallayarak 30 santigrat derecede hücreleri büyütün.Aynı antibiyotikler ile desteklenen LB orta beş mililitre içine kültürün 100 mikrolitre transfer, pH 10 milimolar MES 5.6, ve 20 mikromolar AS. 16 ila 20 saat boyunca 200 RPM sallayarak 30 santigrat derecede bakteri büyümek. Hücreleri 4,000 kez g'de 10 dakika santrifüj edin. Supernatant atın ve 10 milimolar magnezyum klorür tampon iki mililitre pelet resuspend.Antibiyotiklerin tamamen çıkarılmasını sağlamak için yıkamayı tekrarlayın. 600 nanometre optik yoğunluğu ölçerek Agrobacterium kültürünün yoğunluğunu belirleyin. 10 milimolar magnezyum klorür tampon ile hücre kültürünü 1,5 ila 2,0 od 600 ayarlayın.Son süspansiyon kültürüne pH 5.6 ve 150 mikromolar AS'de 10 milimolar MES ekleyin ve hücreleri en az üç saat boyunca sallayarak oda sıcaklığında kuluçkaya yatırın. 35S yeşil floresan protein içeren bir Agrobacterium kültürünün eşit hacimli lerini 35S salatalık mozaik virüs bastırıcı 2b, putatif efektör veya boş vektör içeren bir Agrobacterium kültürü ile karıştırın. Bir mililitre iğnesiz şırınga kullanarak, dikkatle ve yavaş yavaş Nicotiana bethamiana 16c yapraklarının eksenel tarafında karışık Agrobacterium süspansiyonlar sızma.Yumuşak doku mendilleri ile yapraklarıkalan bakteriyel süspansiyon çıkarın ve bir marker kalem ile sızmış yamalar marjları daire. Üç ila dört gün post-infiltrasyon, görsel yaprakların sızmış yamalar GFP floresan tespit etmek için uzun bir dalga ultraviyole lamba kullanın. İki hafta sonra infiltrasyon, sistemik RNA susturma için tüm bitkinin yeni yetişen yaprakları tespit etmek için lamba kullanın.Toplam RNA'yı yaprak dokusundan 4-7 gün sonra infiltrasyondan izole etmek için, sızmış Nicotiana bethamiana 16c yamaları bir harç içine yaprak dokuları toplamak. Harç içine sıvı nitrojen yerleştirin ve bir taşlama çubuğu ile ince bir toz içine doku eziyet ve steril bir iki mililitretüp için toz aktarın. RNA izolasyon reaktifini 100 miligramlık doku başına bir mililitre hacmine bir başlıktaki örnek tüpe, homojenate girdap ve oda sıcaklığında beş dakika kuluçkaya yatırın.Kaputtaki her tüpe bir mililitre RNA izolasyon reaktifi başına 200 mikrolitre lik hacimde kloroform ekleyin, 15 saniye boyunca şiddetle çalkalayın ve oda sıcaklığında beş dakika kuluçkaya yatın. Homojeni 12,000 kez g'de 15 dakika 4 santigrat derecede santrifüj edin. Supernatant'ı yeni bir RNase-free tüpüne aktarın ve peleti atın.Supernatant için 0,7 hacimli isopropanol ekleyin, yavaşça birkaç kez ters, ve oda sıcaklığında karışımı kuluçka 10 dakika. RNA peletini 12,000 kez g'de 4 santigrat derecede 15 dakika santrifüj ile çökeltin. Supernatant atın.Peleti %70 etanol ile yıkayın ve peleti bir başlıkta hava kurutun. 10 ila 20 dakika boyunca 65 derece santigrat su banyosunda kuluçka yada katarak metil pirokarbonat arıtılmış suda RNA çözün. GFP messenger RNA düzeylerinin Kuzey leke analizini gerçekleştirmek için, 1X MOPS çalışan tampon bir% 1.2 formaldehit denaturing agarose jel hazırlamak.RNA'yı bire bir, RNA yükleme boyasıyla karıştırın ve RNA'yı 65 derecede 10 dakika kuluçkaya yatarak denatüre edin. Denatüre edilmiş örnekleri buzüzerinde bir dakika soğutun. Bir pipet ile, RNA iyi ayrılana kadar 50 dakika boyunca 100 volt jel ve elektroforkuyuiçine örnekleri yükleyin.Formaldehit kaldırmak için 20X tuzlu sodyum sitrat tampon içine jel durulamak. 20X tuzlu sodyum sitrat tampon, kağıt havlu bir tabaka, ıslak Whatman kağıt, jel bir tabaka, naylon membran bir tabaka, ıslak Whatman kağıt iki kat, kuru Whatman kağıt, bir cam plaka ve bir ağırlık iki kat kurarak bir gecede kılcal transfer gerçekleştirin. Sabah, jel RNA naylon membran aktarılır.Membranı 2X tuzlu sodyum sitratta ıslatın ve ıslak membranı UV crosslinking'e maruz bırakarak RNA'yı membrana sabitleyin. El yazmasına göre devam et. Üç ila dört haftalık Nicotiana bethamiana 16c bitkilerin tam gelişmiş yaprakları 35S GFP taşıyan Agrobacterium karışımları ile yamalar halinde co-sızmış edildi.Dört gün sonra infiltrasyon sonrası, sızmış alanın GFP floresan doğal ışık ve uzun dalga UV ışığı altında görüntülendi. Kuzey leke GFP messenger RNA 35S GFP artı 35S CMV2b veya 35S GFP artı 35S PSR1 ifade yaprakları 35S GFP artı EV ifade daha yüksek birikmiş olduğunu ortaya koymuştur. İki haftalık Nicotiana bethamiana 16c fidelerinin yapraklarındaki susturma sinyalinin yayılmasını değerlendirmek için tarımsal filtrasyon analizi yapıldı. 14 gün sonra infiltrasyon sonrası, EV fazla% 98 sistemik yapraklarıbelirgin GFP sinyal gösterdi.CmV2b ve PSR1 ise susturma sinyalinin sistemik yayılmasını etkin bir şekilde inhibe etti. GFP floresansı ortak sızmış bitkilerin yaklaşık %80'inde gözlendi ve yeni ortaya çıkan yapraklarda sadece birkaç kırmızı damar bulunan sızmış bitkilerin geri kalan %20'sinde gözlendi. Bu teknik, araştırmacıların birçok bitki patojeni tarafından salgılanan yeni RNA susturma baskılayıcılarını belirlemelerinin önünü açıyor.Bitkilerin kombinasyonu ve uygun OD bu prosedürü çalışırken hatırlanması gereken en önemli şeydir. Bu yordamı takiben, RNA susturucunun fonksiyonel karakterizasyonu, bu bastırıcıların ana bilgisayar RNA susturucuya nasıl bastığının ve çıktının ne olduğunu araştırmak için yapılabilir. Lütfen bitkilere sızdığınızda güvenlik gözlüklerini takın ve tüm deneme adımları sırasında lateks eldivenleri de giyin.

screening-identification-rna-silencing-suppressors-from-secreted

Research

JoVE Journal

Genetics

Genetik

Knock-down gen ekspresyonu için bir virüs kaynaklı gen susturulması (VIGS) yöntemi...

Virüs indüklenen gen susturma (VIGS) Nicotiana benthamiana Ve Domates

Kaynak: Shi, J. ve diğerleri. Bitki Patojenlerinin Salgılanan Efektörlerinden RNA Susturucu Baskılayıcıların Taraması ve Tanımlanması. J. Vis. Exp. (2020)Bu video, Nicotiana benthamiana 16c'de RNA susturmasını baskılayan patojen efektör proteinlerini tanımlamak için bir ortak infiltrasyon testini göstermektedir. Floresan bir raporlayıcı ve aday efektör gen, Agrobakteriya aracılığıyla bitki yapraklarına aktarılır. Normalde, RNA susturması raporlayıcı transkriptleri bozur ve floresansı azaltır.

Bitki RNA Susturmasını Bastıran Patojen Efektörlerinin Taraması için Ortak İnfiltrasyon Testi

Virüsün neden olduğu gen susturma, bitkilerin konakçı olmayan direncinde yer alan genleri tanımlamak için yararlı bir araçtır. Konakçı olmayan patojenlere duyarlı gen susturuculu bitkilerin tanımlanmasında GFPuv eksprese eden bakteriyel patojenlerin kullanımını gösteriyoruz. Bu yaklaşım kolay, hızlıdır ve büyük ölçekli taramayı kolaylaştırır ve diğer çeşitli bitki-mikrop etkileşimlerini incelemek için benzer bir protokol uygulanabilir.

Genler belirlenmesi için VIGS-aracılığı ile İleri Genetik Tarama konakçı olmayan Direnç ilgilendim

Burada, hipoksiye HIF1A aracılı hücresel tepkinin yeni ubikitin ve ubikitin benzeri regülatörleri belirlemek için bir hedef siRNA "ubiquitome" ekranı gerçekleştirmek için bir yöntem tarif eder. Bu raportör etkinliğinin üzerinden sağlam bir okuma kullanılabilir herhangi bir biyolojik yoluna uyarlanabilir.

Kültür Memeli Hücrelerde Biyolojik tanımında ubikitin ve Ubiquitin benzeri Sistemi Regülatörleri tanımak siRNA Eleme

Patojen büyümesinin niceliksel olarak belirlenmesi, çeşitli Arabidopsis thaliana (bundan böyle Arabidopsis olarak anılacaktır) bağışıklık tepkilerini karakterize etmek için güçlü bir araçtır. Burada açıklanan yöntem, Pseudomonas syringae pv'yi ölçmek için optimize edilmiş bir şırınga infiltrasyon testi sunar. maculicola ES4326 yetişkin Arabidopsis yapraklarında büyüme.

Kullanarak Bitki Savunma Yanıtları ince Karakterizasyonu için Bakteriyel Yaprak Sızma Deneyi<em&gt; Arabidopsis thaliana-Pseudomonas syringae</em&gt; Pathosystem

Burada, Arabidopsis thaliana yaprak mezofil protoplastlarına uygulanan bir etkileşimli yakalama protokolünü sunuyoruz. Bu yöntem kritik olarak in vivo UV çapraz bağlanmaya dayanır ve fizyolojik bir ortamdan bitki mRNA'ya bağlanan proteinlerin izole edilmesine ve tanımlanmasına izin verir.

Bitki Protoplastlarından mRNA İnteraktom Yakalama

Bir biyoinformatik boru hattı, yani miRDeep-P2 (kısaca miRDP2), güncellenmiş bitki miRNA kriterleri ve elden algoritması ile, doğru ve verimli bitkilerde mikroRNA transkripsiyon analiz edebilir, özellikle karmaşık ve büyük genomları olan türler için.

Bitkilerdeki MikroRNA Transkripsiyonlarını Doğru ve Verimli Bir Şekilde Analiz Eden Bir Biyoinformatik Boru Hattı

Patatesteki endojen mikroRNA'ları (miRNA'lar) işlevsel olarak karakterize etmek için patates virüsü X (PVX) bazlı mikroRNA susturma (VbMS) sistemi için ayrıntılı bir protokol sunuyoruz. İlgi çekici miRNA hedef mimik (TM) molekülleri PVX vektörüne entegre edilir ve hedef miRNA veya miRNA ailesini susturmak için patatesle geçici olarak ifade edilir.

Patates virüsü X bazlı mikroRNA Susturma (VbMS) Patateste.

Bu yöntem, toplam RNA ekstresinden miRNA'ları tespit etmek için kuzey hibridizasyon tekniğinin kullanımını göstermektedir.

Bitki MikroRNAlarının Saptanması ve Ölçülmesi için RNA Leke Analizi

Burada, gen fonksiyonlarının incelenmesini kolaylaştırmak için Bursaphelenchus xylophilus'ta RNA girişiminin ayrıntılı bir ıslatma yöntemini tanıtıyoruz.

RNA Girişiminin Çam Ağacı Nematodunda Uygulanması, Bursaphelenchus xylophilus

Arabidopsis bitkilerinin yaprak yüzeyinden ve apoplastından hücre dışı RNA'yı izole etmek için basit ama oldukça tekrarlanabilir bir yöntem tarif ediyoruz.

Arabidopsis rozetleri kullanılarak yaprak yüzeyi ve apoplastik RNA'nın izolasyonu ve analizi için aşamalı bir kılavuz

Keşfedin, bitki patojenlerinin RNA susturucu baskılayıcılarını hızlı ve doğru bir şekilde taramak için geliştirilmiş bir yöntemi. Nicotiana bethamiana kullanarak Agrobacterium ile infiltrasyon tekniklerini öğrenin.

Bitki Patojenlerinin Gizli Efektörlerinden RNA Susturucu Baskılayıcıların Taranması ve Tanımlanması

Daha fazla video keşfet