Name: Hücre İçi Hızlı Fotokimyasal Oksidasyon ile Hücresel Proteinlerin Karakterizasyonu (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-03-11T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 3 s
Description: Öğrenin, hücre içi hızlı fotokimyasal oksidasyon (IC-FPOP) ile canlı hücrelerdeki protein yapısı ve etkileşimlerini karakterize etme yöntemini. Bu teknik, kanser ve genetik bozukluklarda protein davranışlarını anlamak için değerlidir.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma LMJ için NSF CAREER Award (MCB1701692) tarafından desteklenmiştir.

1. IC-FPOP akış sistemi kurmak
<ol><li>Akış sisteminin montajına başlamak için, erimiş silikayı bir dekolte taşı kullanarak kesin. IC-FPOP akış sistemi, 450 μm ve dış çapı (OD) 670 m, iki 24 cm ve 75 μm kimlikli bir 40 cm ve 360 μm'lik bir OD ile dört adet 12 cm ve bir adet 17 cm erimiş silika (ID) gerektirir. , ve son olarak 150 μm kimliği ve 360 μm bir OD ile iki 57 cm. NOT: Silika boruyu keserken poliimid kaplamayı hafifçe kazıyın ve en temiz kesimi elde etmek için bükün. Düz bir kesim olduğundan emin olun (bu hiçbir tıkanıklık veya sızıntı formu sağlamak için gereklidir).</li>
	<li>Nano-sıkı kollu (0,0155" ID X 1/16" OD 360 μm OD silika boru ve 0,027" ID X 1/16" OD 670 μ için m OD silika tüp) süper flangeless somun PEEK 1/4-28 düz alt için 1/16 "OD ve süper flangeless ferrule w / SST halka, Tefzel (ETFE), 1/4-28 düz alt, 1/16" OD için. Üreticiprotokolüne göre bağlantılar oluşturma(Şekil 1).</li>
	<li>Bir 500 μL şırınga 6 küçük silindirik mıknatıslar yerleştirin. Bu şırıngayı 500 μL şırınga ve iki 5 mL şırınga ile birlikte tamponla doldurun ve havayı çıkarın. Şekil 2A'dagösterildiği gibi şırınga pompası üzerinde pozisyon. NOT: 5 mL şırıngalar 500 μL şırıngalardan daha büyüktür, bu nedenle tüm şırıngaları aynı anda yerinde sıkmak için bir boşluk gereklidir(Şekil 2B).</li>
	<li>Şırınga pompası durdurucuyu sıkın, böylece hücre şırıngası motor durduğunda yaklaşık 50 μL sola sahiptir. Bu manyetik karıştırıcılar için yer bırakacaktır. (Şekil 2C-D). DİkKAT: Şırınga pompası mıknatıslara baskı yaparsa, şırıngayı bozar ve şırınganın kırılmasına neden olabilir.</li>
	<li>Luer adaptörü kullanarak, her şırıngaya bir manuel vana bağlayın. Şekil 3'tegösterildiği gibi silika borularını birleştirin. NOT: Hattı hücrelerle (+ H2O2 ile diğer tarafa doğru çapraz dan geçirin. Daha sonra 450 μm ID silika boru içine takın. 5 mL şırıngadaki kılıf tamponları hücrelerden ve H2O2'dendaha hızlı akacak. Her iki tarafta kılıf tamponları ile, hücreler hidrodinamik ışınlama için tek bir satır içine odaklanmış olacaktır.</li>
	<li>Lazerin yanındaki konum akış sistemi. Bir çakmak kullanarak, lazer ışınlama için bir pencere yapmak için 450 μm ID boru üzerinde silika kaplama yakmak.</li>
	<li>Altı mıknatısiçeren hücre şırıngası üzerinde bir manyetik karıştırıcı yerleştirin.</li>
	<li>1,083.3 μL/dk. Son akış hızı için şırınga pompasını 492,4 μL/dk'ya ayarlayın.</li>
	<li>Dışbüvek lens kullanarak silika boru üzerine excimer lazer odaklanın. Bir kez odaklanmış, silika boru arkasında küçük bir kağıt parçası yerleştirerek ışınlama penceresi test ve lazer açın. Işınlamadan yanmış bölgeyi ölçün. Sıfır bir dışlama fraksiyonu elde etmek için ışınlama penceresi ve akış hızı kullanarak gerekli lazer frekansını hesaplayın. NOT: IC-FPOP deneyi için önerilen lazer enerjisi ≥120 mJ'dir. 2,58 mm'lik ışınlama penceresi ve 1083,3 μL/dk akış hızı ile 0'ın dışlanma kısmını elde etmek için frekansın 44 olması gerekir. Işınlama penceresi, akış hızı ve dışlama fraksiyonu biliniyorsa, lazer frekansını hesaplamak için gereken denklemler aşağıda verilmiştir. <img src="/files/ftp_upload/60911/60911eq1.jpg"> w nL'de hacim, x mm'deki lazer nokta genişliği, y μm'deki silika boru kimliği, v μL'deki toplam hacim, b dışlama fraksiyonu, a μL/dk'daki akış hızı, f ise Hz.'deki frekanstır.</li>
</ol>2. Söndürme ve H2O2 olun
<ol><li>100 mM N-tert-Butil-alfa-fenilnitron (PBN) ve 100 mM N,N'-dimethylthiourea (DMTU) içeren söndürme yapın. Aliquot her numune için 50 mL konik bir tüp içine 11 mL söndürme.</li>
	<li>Seyreltik H2O2 ila 200 mM. Her numune 500 μL H2O2gerektirir. NOT: Söndürme bir gün önce yapılabilir ve ışıktan korundu, 4 °C'de bir gecede saklanabilir. H2O2 deney günü taze yapılmalıdır.</li>
</ol>3. Hücreleri topla
<ol><li>Bir T175 şişesindeki hücreleri p-90 oranında büyütün.</li>
	<li>Ortamı kaldırın ve arabellekle durulanın. NOT: Kullanılacak tipik tamponlar hücre kültürü sınıfı Dulbecco'nun fosfat tamponlu salini (DPBS) veya Hank'in dengeli tuz çözeltisi (HBSS) dir.</li>
	<li>Hücreleri tripsin-EDTA veya kazıyıcı kullanarak ayırın.</li>
	<li>Bir kez arabellek 10 mL içinde resuspend ayrılmış ve hücreleri saymak.</li>
	<li>Aşağı dön, arabelleği ve tripsin-EDTA'yı çıkarın ve 2 x 106 hücre/mL yapmak için yeniden askıya alın.</li>
	<li>Aliquot 500 μL her numune başına hücre. NOT: Her durum için en az 3 lazer örneği ve 3 lazer kontrolü yok.</li>
</ol>4. IC-FPOP Yapmak
<ol><li>İki 5 mL şırıngayı tamponla, mıknatısları içeren 500 μL şırıngayla ve son 500 μL şırıngayı H2O2 iledoldurun. Manyetik karıştırıcıyı aç.</li>
	<li>Dikmetil sülfoksit 220 μL (DMSO) söndürme bir aliquot, yavaşça karıştırın ve ışınlanmış örnekleri toplamak için akış sisteminin arkasına yerleştirin. DMSO eklenmesi endojen metiyonin sülfoksit redüktaz inhibe edecek.</li>
	<li>Lazeri açın, 7'leri bekleyin ve akış sistemini açın.</li>
	<li>Numune akışı bittikten sonra lazeri kapatın ve toplanan numuneyle söndürmeyi nazikçe karıştırın. 4.5 ve 4.6 adımlarını sırasında bunu kenara yerleştirin.</li>
	<li>Dört şırıngayı da hücrelerin askıya alınan tamponla doldurun ve akış sisteminden geçirin.</li>
	<li>Sistem kızarma işlemi bittikten sonra 4.1 ve 4.2 adımlarını tekrarlayın. Işınlama olmadan akışı başlatın. Bu hücrelerde arka plan oksidasyonu için hesap hiçbir lazer kontrolüdür.</li>
	<li>Bir sonraki numune çalışırken, önceki numuneyi 5 dk için 450-800 x g'de döndürün, çözücüü çıkarın ve radioimmunoçöken analiz (RIPA) tamponu gibi bir hücre lisis tamponunun 100 μL'sinde yeniden askıya alın.</li>
	<li>Numuneyi bir mikrosantrifüj tüpüne aktarın ve sıvı nitrojende flaş dondurma.</li>
	<li>Tüm numuneler çalışma tamamlandığında, temizleme için akış sistemini sökün. Kullanılan silika boruatın ve % 50 su 1 saat sonicating tarafından diğer tüm bağlantıları temizleyin: 50% metanol. Şırıngaları üreticinin talimatlarına göre temizleyin.</li>
</ol>5. Özet
<ol><li>Tüm hücre lisatını sindir. Numuneleri eriterek başlayın ve 95 °C'de 10 dakika ısı.</li>
	<li>Isıtma dan sonra, 15 dakika buz üzerinde lysate soğutun.</li>
	<li>DNA ve RNA'yı sindirmek için 25 ünite nükleaz ekleyin ve 15 dakika boyunca odada kuluçkaya yatın.</li>
	<li>4 °C'de 10 dk için 16.000 x g'de masa üstü santrifüj kullanarak spin örnekleri.</li>
	<li>Supernatant toplamak ve temiz bir mikrosantrifüj tüp aktarın.</li>
	<li>Protein elekt kiti kullanarak protein konsantrasyonu kontrol edin.</li>
	<li>20-100 μg numuneyi temiz bir mikrosantrifüj tüpüne aktarın ve 100 μL'ye getirin.</li>
	<li>20 mM dithiothreiotol (DTT) ile numuneleri 50 °C'de 45 dakika azaltın.</li>
	<li>Numuneleri oda sıcaklığında 15 dk soğutun.</li>
	<li>20 mM iodoacetamide (IAA) oda sıcaklığında 20 dk ışıktan korunan alkilat.</li>
	<li>1:4 oran proteinde önceden soğutulmuş aseton ekleyin: aseton. Örnekleri karıştırın ve -20 °C'ye bir gecede yerleştirin.</li>
	<li>Ertesi sabah, 4 °C'de 10 dakika boyunca 16.000 x g'de döndürme örnekleri.</li>
	<li>Supernatant çıkarın ve% 90 önceden soğutulmuş aseton 50 μL ekleyin. Numuneleri karıştırın ve 4 °C'de 5 dk için 16.000 x g'de aşağı doğru döndürün.</li>
	<li>Asetonu çıkarın ve mikrocentrifuge kapakları üst kapsayan bir tiftik ücretsiz silme ile açık bırakarak örnekleri kurumasını bekleyin. Numuneler kuruduktan sonra 10 mM Tris tampon pH 8 ile protein peletini yeniden askıya alın.</li>
	<li>10 mM Tris tampon pH'ın 40 μL'sinde 20 μg tripsin isini yeniden askıya alın. 2 μg tripsin ekleyin (kütle: 1 tripsin kütle oranı: 50 örnek). Bir gecede 37 °C'de kuluçka örnekleri.</li>
	<li>Ertesi sabah peptit tonu kullanarak peptit konsantrasyonu kontrol edin. Örnek peptit tahliliçin çıkarıldıktan sonra, numunelere formik asit ekleyerek tripsin sindirimini söndürün (son konsantrasyon %5 formik asittir).</li>
	<li>Son peptit konsantrasyonu belirlendikten sonra, her numuneden 10 μg temiz bir mikrosantrifüj tüpüne aktarın. Bu, her numunenin aynı miktarda analiz edilmesini sağlar. Bir vakum santrifüj kullanarak örnek kuru. 20 μL kütle spektrometresi ile kurutulduktan sonra %0.1 formik asit. Örnekleri otomatik numune şişelerine aktarın.</li>
</ol>6. Sıvı Kromatografi-Tandem Kütle Spektrometresi
<ol><li>FPOP modifikasyonları lokalize etmek için Sindirilmiş hücre lysate LC-MS/MS analizi kullanarak analiz.</li>
	<li>Suda %0.1 formik asit (A) ve asetonitrilde (B) %0,1 formik asit mobil fazları kullanın.</li>
	<li><li><li></li><li></li></ol><ol><li><li><li> </li><li><li> <img src="/files/ftp_upload/60911/60911eq2.jpg"> </li></ol>

<ol><li>Gau, B., Garai, K., Frieden, C., Gross, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mass+spectrometry-based+protein+footprinting+characterizes+the+structures+of+oligomeric+apolipoprotein+E2%2C+E3%2C+and+E4%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Mass spectrometry-based protein footprinting characterizes the structures of oligomeric apolipoprotein E2, E3, and E4.</a> Biochemistry. 50 (38), 8117-8126 (2011).</li>
<li>Li, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+structural+resolution+hydroxyl+radical+protein+footprinting+reveals+an+extended+Robo1-heparin+binding+interface%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">High structural resolution hydroxyl radical protein footprinting reveals an extended Robo1-heparin binding interface.</a> Journal of Biological Chemistry. 290 (17), 10729-10740 (2015).</li>
<li>Zhang, H., Gau, B. C., Jones, L. M., Vidavsky, I., Gross, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fast+photochemical+oxidation+of+proteins+for+comparing+structures+of+protein%E2%88%92+ligand+complexes%3A+the+calmodulin%E2%88%92+peptide+model+system%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Fast photochemical oxidation of proteins for comparing structures of protein− ligand complexes: the calmodulin− peptide model system.</a> Analytical Chemistry. 83 (1), 311-318 (2010).</li>
<li>Jones, L. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complementary+MS+methods+assist+conformational+characterization+of+antibodies+with+altered+S-S+bonding+networks%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Society+for+Mass+Spectrometry%22%5BJournal%5D)">Complementary MS methods assist conformational characterization of antibodies with altered S-S bonding networks.</a> Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 24 (6), 835-845 (2013).</li>
<li>Kiselar, J. G., Janmey, P. A., Almo, S. C., Chance, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+analysis+of+gelsolin+using+synchrotron+protein+footprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+%26+Cellular+Proteomic%22%5BJournal%5D)">Structural analysis of gelsolin using synchrotron protein footprinting.</a> Molecular & Cellular Proteomic. 2 (10), 1120-1132 (2003).</li>
<li>Vahidi, S., Stocks, B. B., Liaghati-Mobarhan, Y., Konermann, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mapping+pH-induced+protein+structural+changes+under+equilibrium+conditions+by+pulsed+oxidative+labeling+and+mass+spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Mapping pH-induced protein structural changes under equilibrium conditions by pulsed oxidative labeling and mass spectrometry.</a> Analytical Chemistry. 84 (21), 9124-9130 (2012).</li>
<li>Hambly, D. M., Gross, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+flash+photolysis+of+hydrogen+peroxide+to+oxidize+protein+solvent-accessible+residues+on+the+microsecond+timescale%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Society+for+Mass+Spectrometry%22%5BJournal%5D)">Laser flash photolysis of hydrogen peroxide to oxidize protein solvent-accessible residues on the microsecond timescale.</a> Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 16 (12), 2057-2063 (2005).</li>
<li>Espino, J. A., Mali, V. S., Jones, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+cell+footprinting+coupled+with+mass+spectrometry+for+the+structural+analysis+of+proteins+in+live+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">In cell footprinting coupled with mass spectrometry for the structural analysis of proteins in live cells.</a> Analytical Chemistry. 87 (15), 7971-7978 (2015).</li>
<li>Rinas, A., Mali, V. S., Espino, J. A., Jones, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+Microflow+System+for+In-Cell+Footprinting+Coupled+with+Mass+Spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Development of a Microflow System for In-Cell Footprinting Coupled with Mass Spectrometry.</a> Analytical Chemistry. 88 (20), 10052-10058 (2016).</li>
<li>Guan, J. Q., Almo, S. C., Reisler, E., Chance, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+Reorganization+of+Proteins+Revealed+by+Radiolysis+and+Mass+Spectrometry%3A+G-Actin+Solution+Structure+Is+Divalent+Cation+Dependent%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Structural Reorganization of Proteins Revealed by Radiolysis and Mass Spectrometry: G-Actin Solution Structure Is Divalent Cation Dependent.</a> Biochemistry. 42 (41), 11992-12000 (2003).</li>
<li>Xu, G., Chance, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hydroxyl+radical-mediated+modification+of+proteins+as+probes+for+structural+proteomics%5BTitle%5D)+AND+%22Chemical+Reviews%22%5BJournal%5D)">Hydroxyl radical-mediated modification of proteins as probes for structural proteomics.</a> Chemical Reviews. 107 (8), 3514-3543 (2007).</li>
<li>Kaur, U., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proteome-Wide+Structural+Biology%3A+An+Emerging+Field+for+the+Structural+Analysis+of+Proteins+on+the+Proteomic+Scale%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Proteome+Research%22%5BJournal%5D)">Proteome-Wide Structural Biology: An Emerging Field for the Structural Analysis of Proteins on the Proteomic Scale.</a> Journal of Proteome Research. 17 (11), 3614-3627 (2018).</li>
<li>Chea, E. E., Jones, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analyzing+the+structure+of+macromolecules+in+their+native+cellular+environment+using+hydroxyl+radical+footprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Analyst%22%5BJournal%5D)">Analyzing the structure of macromolecules in their native cellular environment using hydroxyl radical footprinting.</a> Analyst. 143 (4), 798-807 (2018).</li>
<li>Zhu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Elucidating+in+vivo+structural+dynamics+in+integral+membrane+protein+by+hydroxyl+radical+footprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+%26+Cellular+Proteomic%22%5BJournal%5D)">Elucidating in vivo structural dynamics in integral membrane protein by hydroxyl radical footprinting.</a> Molecular & Cellular Proteomic. 8 (8), 1999-2010 (1999).</li>
<li>Rinas, A., Jones, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fast+photochemical+oxidation+of+proteins+coupled+to+multidimensional+protein+identification+technology+%28MudPIT%29%3A+expanding+footprinting+strategies+to+complex+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Society+for+Mass+Spectrometry%22%5BJournal%5D)">Fast photochemical oxidation of proteins coupled to multidimensional protein identification technology (MudPIT): expanding footprinting strategies to complex systems.</a> Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 26 (4), 540-546 (2015).</li>
<li>Rinas, A., Espino, J. A., Jones, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+efficient+quantitation+strategy+for+hydroxyl+radical-mediated+protein+footprinting+using+Proteome+Discoverer%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+and+Bioanalytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">An efficient quantitation strategy for hydroxyl radical-mediated protein footprinting using Proteome Discoverer.</a> Analytical and Bioanalytical Chemistry. 408 (11), 3021-3031 (2016).</li>
</ol>

Lisa Jones hücre patenti için akış montajında bir mucittir (yayın numarası: 20180079998).

Protein yapısını ve protein-ligand komplekslerini tüm hücre veya hücre litatlarında proteom çapında bir şekilde incelemek için çeşitli kütle spektrometresi tabanlı teknikler geliştirilmiştir. Bu teknikler oksidasyon hızı (SPROX), termal proteom profilleme (TPP), kimyasal çapraz bağlama (XL-MS) ve hidroksil radikal protein ayak izi (HRPF) proteinlerinin stabilitesi ile sınırlı değildir. Her tekniğin birbirine göre benzersiz sınırlamaları ve avantajları vardır, hangi kapsamlı12gözden geçirilmiştir. Bu yöntemlerin her biri proteom geniş yapısal biyoloji için protein yapısını açıklamak ve sonuçta karmaşık hücresel ortamda işlev için kullanılmıştır. IC-FPOP oksidatif amino asitlerin solvent maruz yan zincirleri değiştirmek için hidroksil radikalleri kullanan bir HRPF tekniğidir, probing protein yapısı ve protein-ligand etkileşimleri canlı hücreler içinde13. IC-FPOP dakika zaman ölçeği14radikalleri oluşturmak için Fenton kimyası kullanılan canlı hücrelerde ilk HRPF için bir gelişmedir. Bu çalışmada, tamponun pH veya iyonik mukavemetinin düşürülmesine yanıt olarak integral membran proteinindeki yapısal değişiklikler protein genelinde iyi oksidasyon kapsamı ile başarıyla karakterize edilmiştir. Fenton kimyası ile karşılaştırıldığında, IC-FPOP çok daha hızlıdır, mikrosaniye zaman ölçeğinde proteinleri değiştirerek yerli protein konformasyonu üzerinde çalışılmasını sağlar.
IC-FPOP için önemli bir test H2O2maruz kaldıktan sonra hücrelerin canlılığını onaylamaktır. 40 cm'lik bir karıştırma hattı kullanılarak, hücreler ışınlamadan önce yaklaşık 3 s için H2O2'de kuluçkaya yatırılır. Bu süre bu silika boru uzunluğu değiştirerek ayarlanabilir. Hücre canlılığını test etmek için trypan mavisi kullanımının H2O2 kuluçkadan sonra hücrelerin bütünlüğünün sürdürüldüğünü göstermesine rağmen, hücrelerin H2O2ile etkileşime girebilen sinyal yollarını etkileyen stres altında olma potansiyeline sahip olması dikkat çekicidir. Neyse ki, kısa kuluçka süresi protein sentezinden daha hızlıdır ve mevcut proteinlerin H2O2ile indüklenmediğini sağlar.
Bir sonraki önemli adım akış sisteminin uygun montaj onaylamaktır. Monte edildikten sonra, sistemi istenilen arabellekle yıkdıktan sonra sızıntı olmadığından emin olun. Sızıntılar varsa, silika boru düzgün kesilmiş ve bir kez aşağı sıkılır uygun bir mühür yapmak için ferrule karşı floş olduğundan emin olun. Tüm parçalar elle sıkılır, bu nedenle hiçbir alet gerekli değildir. Her IC-FPOP deneyi sırasında, hücre şırıngasındaki manyetik karıştırıcıların hareket halinde kaldığından emin olun. Bu küçük ajitasyon şırınganın altına yerleşen ancak hücreleri yamaya yetecek kadar sert olmayan hücrelerin sayısını sınırlar. Bir koşudan sonra şırıngada yaklaşık 50 μL hücre koluşur. Her zaman bir sonraki deney üzerinde taşıyan hücre sayısını sınırlamak için bir durulama adımı ile bu seyreltmek için emin olun. Birden fazla hücre tedavileri karşılaştırıldığında ise taze bir hücre şırınga kullanılması tavsiye edilir. Test edilen hücreler için uygun bir arabellek seçmek de önemlidir. Bazı tamponlar proteinler üzerinde daha az değişiklik yol açan hidroksil radikal söndürmek. Xu ve ark. bazı yaygın olarak kullanılan tamponlar hidroksil radikal ömür boyu azaltmak göstermiştir11. DPBS ve HBSS, IC-FPOP deneyleri için kullanılan yaygın tamponlardır.
IC-FPOP'u takiben, gerekli parametrelere göre sindirim protokolünü optimize edin. FPOP geri dönüşümsüz kovalent modifikasyonlar ürettiğinden, etiketleme kapsamını kaybetmeden kapsamlı bir sindirim ve temizlik için yeterli zaman vardır. Her zaman test ve tek tip peptit konsantrasyonları tandem kütle spektrometresi için yüklenir böylece protein konsantrasyonu normalleştirmek. Son olarak, bir immünopresidit IC-FPOP ile birlikte yapılamaz dikkatli olun. Bir FPOP modifikasyonu etkileşim bölgesini hedeflerse antikor afiyeti azalır. FPOP modifikasyonlarının tanımlanmasını artırmak için, 2D-kromatografik ayırma adımları, tespit edilen oksitlenmiş peptid sayısının üç katından fazlasına kadar gösterilmiştir15.
Herhangi bir FPOP deneyinin zorluğu, ortaya çıkabilecek olası oksidasyon ürünleri nedeniyle karmaşık veri analizi düzeyidir. Bu hem hücre içi hem de in vitro için geçerlidir, ancak hücre lisatlarının analizinin karmaşıklığı ile büyük ölçüde artmaktadır. IC-FPOP daha fazla optimizasyon ile daha yüksek modifikasyon kapsama alanı ile daha fazla protein ortaya çıkmaktadır, böylece hızlı bir şekilde analiz daha zahmetli hale. Tek bir IC-FPOP deneyinden oluşturulan veri yaması, araştırmacıların yazılıma daha fazla güvenmelerine neden olan manuel doğrulama kullanımını sınırlar. Bu nedenle, Rinas ve ark. Proteome Discoverer (PD)16kullanarak HRPF için bir nicelik stratejisi geliştirdi. Bu yöntem, bir elektronik tablodaki nicel bir platformla birlikte PD'deki çoklu arama düğümü iş akışını kullanır. IC-FPOP platformunda daha fazla iyileştirme, FPOP modifikasyonları ile tanımlanan peptidlerin sayısını artırmak ve artan tekrarlanabilirlik ve nicel doğruluk la birlikte devam etmektedir.

Hidroksil radikal protein ayak izi (HRPF), hidroksil radikallerinden üretilen kovalent modifikasyonlarla bir proteinin solvent erişilebilirliğini araştıran bir yöntemdir. Protein yapısı veya protein etkileşimleri değiştiğinde, amino asitlerin solvent maruziyetini değiştirerek kalıntıların modifikasyonderecesini değiştirir. HRPF ile protein etkileşimleri1,2,3 ve protein konformasyonel değişiklikler4,5,6 in vitro başarıyla sorgulanmıştır. HRPF deneyleri için hidroksil radikalleri oluşturmak çeşitli yöntemler vardır, bir proteinlerin hızlı fotokimyasal oksidasyonu olmak (FPOP). FPOP Hambly ve Gross tarafından 2005 yılında geliştirilen ve hidrojen peroksit fotoliz yoluyla hidroksil radikalleri üretmek için 248 nm excimer lazer kullanır (H2O2)7.
Son zamanlarda, Espino ve ark canlı hücrelerde protein yapısını araştırmak için FPOP kullanımını genişletilmiş, hücre içi FPOP (IC-FPOP)8olarak adlandırdığı bir yöntem. In vitro çalışmaların aksine, hücrelerdeki proteinlerin incelenmesi, yapıyı etkileyebilecek çeşitli protein etkileşimleri ile birlikte moleküler kalabalıklığı da hesaba katsın. Buna ek olarak, proteome geniş yapısal biyoloji yi gerçekleştirmek için aynı anda çok sayıda sistem hakkında yapısal bilgi sağlama potansiyeline sahip tam proteomun anlık görüntüsünü sağlamanın avantajını sunar. Ayrıca, bu teknik in vitro çalışması zor proteinler için idealdir, membran proteinleri gibi.
IC-FPOP'un ilk çalışmaları, protein bolluğu ve hücresel lokalizasyon açısından 105 proteini başarıyla incelemifltir. IC-FPOP yöntemini geliştirmek için, Rinas ve ark. tek hücre akışı için bir mikroakış sistemi geliştirdi9. Orijinal akış sisteminin geliştirilmesi hücre toplamasınırlandırır ve ışınlama için kullanılabilir H2O2'yi artırır. İlk akış sisteminde, silika tüpünde kümelenmiş hücreler tıkanması ve düzensiz ışınlama ile sonuçlandı. Bir kılıf tampon iki akışları dahil hidrodinamik hücreleri odaklanır, onları tek tek lazer geçmiş akmasına izin. H2O2 için ayrı bir şırınga nın eklenmesi, daha kontrollü ve optimize edilebilir pozlama süresi sağlayarak yan etkileri olmadan daha yüksek H2O2 konsantrasyonları sağlar. Ayrıca, kuluçka süresini sınırlamak H2O2'nin endojen katalaz ile bozulmasını sınırlar. Bu yeni akış sistemini birleştirerek, FPOP modifikasyonu ile algılanan protein sayısı 13 kat artarak bu yöntemin yeteneklerini genişleterek canlı hücrelerdeki çok sayıda proteini araştırdı. Bu protokolde, IC-FPOP akış sisteminin montajına odaklanan genel bir IC-FPOP deneyi tanımlanmıştır.

<table><tbody><tr><td>15 mL Konik Santrifüj Tüpleri</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-959-53A</td><td>herhangi bir marka yeterlidir</td></tr><tr><td>5 mL Gaz Geçirmez Şırınga, Çıkarılabilir Luer</td><td>Lock SGE Analitik Bilim</td><td>008760</td><td></td></tr><tr><td>50 mL Konik Santrifüj Tüpleri</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-432-22</td><td>herhangi bir marka yeterlidir</td></tr><tr><td>500 &mikro; L SGE Gaz Geçirmez Şırıngalar: Sabit Luer-Lok Modelleri</td><td>Fisher Scientific</td><td>SG-00723</td><td></td></tr><tr><td>Aseton, HPLC Sınıfı</td><td>Fisher Scientific</td><td>A929-4</td><td>4 L miktar gerekli değildir</td></tr><tr><td>%0.1 Formik Asitli Asetonitril (h/h), LC/MS Sınıfı</td><td>Fisher Scientific</td><td>LS120-500</td><td></td></tr><tr><td>ACQUITY UPLC M-Sınıfı Simetri C18 Tuzak Sütunu, 100 &aring;, 5 &mikro; m, 180 ve mikro; m x 20 mm, 2G, V/M, 1/pkg</td><td>Sular</td><td>186007496</td><td></td></tr><tr><td>BERAAT UPLC M-Sınıfı Sistem</td><td>Sular</td><td>ACCİYET UPLC M-Class Sistem</td><td></td></tr><tr><td>Alüminyum</td><td>Folyo Fisher Scientific</td><td>01-213-100</td><td>her marka yeterlidir</td></tr><tr><td>Aqua 5 &micro; m C18 125 & Aring; ambalaj malzemesi</td><td>Phenomenex</td><td>04A-4299</td><td></td></tr><tr><td>Santrifüj</td><td>Eppendorf</td><td>022625501</td><td></td></tr><tr><td>Hassas Görev Silecekleri</td><td>Fisher Scientific</td><td>06-666A</td><td></td></tr><tr><td>Dithiothreiotol (DTT)</td><td>AmericanBio</td><td>AB00490-00005</td><td></td></tr><tr><td>DMSO, Susuz</td><td>İnvitrojen</td><td>D12345</td><td></td></tr><tr><td>EX350 excimer lazer</td><td>GAM Lazer</td><td>EX350 excimer lazer</td><td></td></tr><tr><td>FEP Boru 1/16 "OD x 0.020" ID</td><td>IDEX Sağlık & Bilim</td><td>1548L</td><td></td></tr><tr><td>Formik Asit, LC / MS Sınıfı</td><td>Fisher Scientific</td><td>A117-50</td><td></td></tr><tr><td>HV3-2 VALF</td><td>Hamilton</td><td>86728</td><td></td></tr><tr><td>Hidrojen Peroksit</td><td>Fisher Scientific</td><td>H325-100</td><td>herhangi bir% 30 hidrojen peroksit yeterlidir</td></tr><tr><td>İyodoasetamid (IAA)</td><td>ACROS Organics</td><td>122270050</td><td></td></tr><tr><td>Legato 210 şırınga pompası</td><td>KD Scientific</td><td>788212</td><td>4, 5 mL şırınga tutabilen, sıvıyı çekip dışarı atabilen ve motoru bayatlamanın bir yolu olan herhangi bir şırınga pompası çalışmalıdır</td></tr><tr><td>Luer Adaptörü Dişi Luer - 1 / 4-28 Erkek Polipropilen</td><td>IDEX Sağlık & Bilim</td><td>P-618L</td><td></td></tr><tr><td>Metanol, LC / MS Sınıf</td><td>Fisher Scientific</td><td>A454SK-4</td><td>4 L miktar gerekli değildir</td></tr><tr><td>Mikrosantrifüj</td><td>Thermo Scientific</td><td>75002436</td><td></td></tr><tr><td>N,N'-Dimetiltiyoüre (DMTU)</td><td>ACROS Organics</td><td>116891000</td><td></td></tr><tr><td>NanoTight Kılıf Yeşil 1/16" Kimlik x .0155" Kimlik x 1.6"</td> <td>IDEX Sağlık ve Science</td><td>F-242X</td><td></td></tr><tr><td>NanoTight Kılıf Sarı 1/16" OD x 0.027" ID x 1.6"</td> <td>IDEX Sağlık & Bilim</td><td>F-246</td><td></td></tr><tr><td>N-tert-Butil-&alfa;-fenilnitron (PBN)</td><td>ACROS Organics</td><td>177350250</td><td></td></tr><tr><td>Orbitrap Fusion Lumos Tribrid Kütle Spektrometresi</td><td>Thermo Scientific</td><td>Orbitrap Fusion Lumos Tribrid Kütle Spektrometresi</td><td>diğer yüksek çözünürlüklü cihazlar (örneğin Q exactive Orbitrap veya Orbitrap Fusion) kullanılabilir</td></tr><tr><td>PE50-C piroelektrik enerji ölçer</td><td>Ophir Optronics</td><td>7Z02936</td><td></td></tr><tr><td>Pierce Kantitatif Kolorimetrik Peptit Testi</td><td>Thermo Scientific</td><td>23275</td><td></td></tr><tr><td>Pierce Hızlı Altın BCA Protein Test Kiti</td><td>Thermo Scientific</td><td>A53225</td><td></td></tr><tr><td>Pierce Tripsin Proteaz, MS Sınıfı</td><td>Thermo Scientific</td><td>90058</td><td></td></tr><tr><td>Hücre Lizisi için Pierce Evrensel Nükleaz</td><td>Fisher Scientific</td><td>88702</td><td></td></tr><tr><td>Polymicro Yarma Taşı, 1 "x 1" x 1/32 "Molex</td><td></td> <td>1068680064</td><td>herhangi bir kılcal boru kesici yeterlidir</td></tr><tr><td>Polymicro Esnek Sigortalı Silika Kılcal Boru, İç Çap 150 ve mikro; m, Dış Çap 360 ve mikro; m, TSP150350</td><td>Polymicro Technologies</td><td>1068150024</td><td></td></tr><tr><td>Polymicro Esnek Sigortalı Silika Kılcal Boru, İç Çap 450 ve mikro; m, Dış Çap 670 & m, TSP450670</td><td>Polymicro Technologies</td><td>1068150025</td><td></td></tr><tr><td>Polymicro Esnek Sigortalı Silika Kılcal Boru, İç Çap 75 ve mikro; m, Dış Çap 360 ve mikro; m, TSP075375</td><td>Polymicro Technologies</td><td>1068150019</td><td></td></tr><tr><td>Potasyum Fosfat Monobazik</td><td>Fisher Scientific</td><td>P382-500</td><td></td></tr><tr><td>Proteome Discover 2.2 (aşağıdan yukarıya proteomik yazılımı)</td><td>Thermo Scientific</td><td>OPTON-30799</td><td></td></tr><tr><td>Döner Manyetik Tamburlu Karıştırıcı</td><td>V& P Bilimsel A.Ş.</td><td>VP 710D3</td><td></td></tr><tr><td>Döner Manyetik Tamburlu Karıştırıcı, Şırınga Pompaları V & ile kullanım için aksesuar kiti</td><td> P Bilimsel A.Ş.</td><td>VP 710D3-4</td><td></td></tr><tr><td>Süper Flanşsız Yüksük, SST Halkalı, Tefzel&trade; (ETFE), 1/4-28 Düz Tabanlı, 1/16" OD</td><td>IDEX Health & Science</td><td>P-259X</td><td></td></tr><tr><td>Süper Flanşsız Somun PEEK 1/4-28 Düz Tabanlı, 1/16" & 1/32" OD</td><td>IDEX Health & Science</td><td>P-255X</td><td></td></tr><tr><td>Süper Tamburlu Karıştırma Diski, 3,35 mm çap, 0,61 mm kalınlık</td><td>V& P Bilimsel A.Ş.</td><td>VP 722F</td><td></td></tr><tr><td>Thermo Scientific Pierce RIPA Tampon</td><td>Fisher Scientific</td><td>PI89900</td><td></td></tr><tr><td>Tris Base</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP152-500</td><td></td></tr><tr><td>Upchurch Scientific Düşük Basınçlı Haçlar: PEEK</td><td>Fisher Scientific</td><td>05-700-182</td><td></td></tr><tr><td>Upchurch Scientific Düşük Basınçlı Tees: PEEK</td><td>Fisher Scientific</td><td>05-700-178</td><td></td></tr><tr><td>UV Sigortalı Silika Plano-Dışbükey Küresel Lensler</td><td>THORLABS</td><td>LA4052</td><td></td></tr><tr><td>V& P Scientific IncTedarikçi Çeşitliliği Ortağı TUMBL KARIŞTIRMA DISKI PARYLENE 1000</td><td>V & P Bilimsel A.Ş.</td>360 ve mikro için <td>VP724F</td><td></td></tr><tr><td>VHP MicroTight Birliği; m OD</td><td>IDEX Sağlık & Bilim</td><td>UH-436</td><td></td></tr><tr><td>%0,1 Formik Asit İçeren Su (h/h), LC/MS Sınıfı</td><td>Fisher Scientific</td><td>LS118-500</td><td></td></tr><tr><td>Su, LC/MS Sınıfı</td><td>Fisher Scientific</td><td>W6-4</td><td></td></tr></tbody></table>

hücre İçi hızlı fotokimyasal oksidasyon ile hücresel proteinlerin karakterizasyonu

Characterizing Cellular Proteins with In-cell Fast Photochemical Oxidation of Proteins

Proteinlerin hızlı fotokimyasal oksidasyonu (FPOP), protein yapısını ve etkileşimlerini karakterize etmek için kullanılan hidroksil radikal protein ayak izi yöntemidir. FPOP hidroksil radikalleri üreten hidrojen peroksit fotolize için 248 nm excimer lazer kullanır. Bu radikaller oksidatif 20 amino asit19 solvent maruz yan zincirleri değiştirmek. Son zamanlarda, bu yöntem canlı hücrelerde (IC-FPOP) kendi doğal ortamda protein etkileşimleri çalışma için kullanılmıştır. Hücrelerdeki proteinlerin incelenmesi, in vitro çalışmalar da bozulan moleküler kalabalık ve çeşitli protein etkileşimlerini oluşturur. Özel bir tek hücre akış sistemi IC-FPOP sırasında hücre toplama ve tıkanma azaltmak için tasarlanmıştır. Bu akış sistemi hücreleri tek tek excimer lazer geçmiş odaklanır, böylece tutarlı ışınlama sağlanması. IC-FPOP, FPOP'tan üretilen oksidasyonun kapsamını kristal yapıdan hesaplanan proteinin çözücü erişilebilirliğiile karşılaştırarak, çözücüye erişilebilen proteinlerin yan zincirlerini doğru bir şekilde inceleyebilir.

IC-FPOP canlı hücrelerdeki protein etkileşimlerini sorgulamak için bir ayak izi yöntemidir. IC-FPOP akış sisteminde, H2O2 maruz kalma süresi kabaca 3 s ile sınırlıdır ve hücreler için zararlı sonuçlar doğurmadan daha yüksek H2O2 konsantrasyonları garanti eder. Akış sistemi aynı zamanda iki kılıf tampon uzerinden içerir, hidrodinamik olarak hücreleri borunun merkezine odaklar ve tek bir hücre aktarımını tek bir akışla üretir (Şekil 5)9. Ortogonal YZ yığılmış görüntülerin floresan görüntülemesi(Şekil 5A)kılıf tamponunun (FITC florofor içeren) hücre çözeltisinden (TMRM florofor içeren) net bir ayrıştırma olduğunu göstermektedir. Bu ayrımı vurgulamak için Şekil 5B ve Şekil 5C, iki çözeltinin en az karıştırılmasını gösteren kılıf tampon çözeltisinin veya hücre çözeltisinin üç boyutlu ortalama ısı haritalarını gösterir.
Tek hücreli akış sisteminin kullanımı oksidatif olarak modifiye edilmiş protein sayısını 13 kat arttırır(Şekil 6A)9. Bu yöntemde, hücresel bölmelerin çoğunda proteinler membran proteinleri, sitoplazmik proteinler ve çekirdek içindeki proteinler ile etiketlenir8,9. Proteinlerin bozulmamış hücreler içinde modifiye edilmesini sağlamak için H2O2 tedavisi ve ışınlama(Şekil 6B)8sonrasında CellROX tedavi edilen hücrelerin floresan görüntüleri yapılmıştır. Etiketleme işlemi boyunca hücrelerin stabilitesi ic-FPOP'un proteinleri kendi hücresel ortamlarında araştırmak için etkinliğini daha da doğrular. Tandem-kütle spektrometresi kullanılarak, bu değişiklikler bir protein üzerinde belirli amino asitler lokalize edilebilir. Şekil 7, ic-FPOP sırasında çıkarılan iyon kromatogramı ile birlikte gerçekleşen bir değişikliği temsil eder. Çıkarılan iyon kromatogramında gözlenen kayma, modifiye peptiddeki oksitlenmiş metiyonin in neden olduğu hidrofobiklik değişimine işaret eder.
FPOP modifikasyonlarının hücrelerin içinde solvent erişilebilirliğini araştırıp araştırmadığını test etmek için hücre içi etiketli aktin hem in vitro ayak izi çalışması hem de aktinin çeşitli kristal yapıları ile karşılaştırıldı (Şekil 8)8. Hücre içi etiketli aktin Şekil 8A'da gösterilmiştir Guan ve ark.10 (Şekil 8B)tarafından yapılan in vitro çalışmadan oksidasyonun karşılaştırılabilir dereceleri gösterilmektedir, sonuçlandırıcı aktin hem hücre içi hem de invitro çalışmalar için benzer çözücü erişilebilirliğine sahiptir. IC-FPOP'un aktinin çözücü erişilebilirliğini araştırdığı doğrulayabilmek için, FPOP modifikasyonlarının kapsamı, iki aktin kristal yapısından hesaplanan etiketli kalıntıların çözücü erişilebilirliği ile karşılaştırıldı(Şekil 8C). Bu korelasyon IC-FPOP'un monomerik proteinin solvent erişilebilirliğini iyi incelediğini göstermektedir.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60911/60911fig1.jpg"> Şekil 1: Ferules'ın düzgün bir şekilde nasıl inşa edilebildiğini. (A) Sıkmadan önce ferrules, silika boru ve kılıfı birbirine yerleştirin. (B) Tüm bileşenleri bir araya getirin. (C) Nihai ürün, kol üzerinde sıkılaştırılmış bir ferule üretecektir. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60911/60911fig1large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60911/60911fig2.jpg"> Şekil 2: IC-FPOP akış sisteminin kurulması. (A) Lazerin yanına yerleştirilmiş tam olarak monte edilmiş bir IC-FPOP akış sisteminin görüntüsü. (B) Tüm şırıngaları başarıyla sıkılaştırmak için 500°L şırınganın dış çapını artırmak için gereken bir uzayıcı örneği. (C) Manyetik karıştırıcılar için gerekli alanı gösteren temsili resimler. (D) Stoperler şırıngaları kırmadan şırınga pompasını oyalamak için gereklidir. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60911/60911fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60911/60911fig3.jpg"> Şekil 3: IC-FPOP için geliştirilen akış sisteminin şeması. Mavi çizgiler 450 μm ID ve 670 m OD ile silika boru temsil, kırmızı çizgiler 150 μm ID ve 360 μm OD ve turuncu çizgiler 75 μm ID ve 360 μm OD var. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60911/60911fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60911/60911fig4.jpg"> Şekil 4: FPOP modifikasyonlarını tespit etmek için kullanılan protein analiz yazılımı. Her düğümde aranan karşılık gelen değişiklikler içeren tipik bir iş akışı. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60911/60911fig4large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60911/60911fig5.jpg"> Şekil 5: Tek hücreakış sistemi hidrodinamik olarak hücreleri tek bir akışa odaklar. (A) Hücreli analitin 3D odaklama gösteren ortogonal YZ yığını (kırmızı, TMRM florofor) kılıf tampon (yeşil, FITC florofor) ile çevrili. Kılıf tamponunun üç boyutlu ortalama yoğunluklu ısı haritası (B) ve hücresel analit (C). Alt yoğunlukları mavi ve en yüksek kırmızı(B-C)vardır. Bu rakam Rinas ve ark.9'dan<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60911/60911fig5large.jpg" target="_blank">değiştirilmiştir.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60911/60911fig6.jpg"> Şekil 6: IC-FPOP Akış Sisteminin kullanımı, alım hücrelerinde FPOP modifiye edilmiş proteinleri önemli ölçüde artırır. (A) Akış sistemi ile ve akış sistemi olmadan tanımlanan oksitlenmiş proteinlerin karşılaştırılması. Akış sistemi 1391 FPOP modifiye proteini tespit ederken, sadece 105 protein 58 modifiye proteinle çakışma olmadan akış sistemi ile tanımlanmıştı. Bu rakam Rinas ve ark.9 (B)IC-FPOP'un oksidatif etiketlemeden sonra hücrelerin hala bozulmamış olduğunu göstermesinden sonra CellROX ile tedavi edilen hücrelerin floresan görüntülemesinden değiştirilmiştir. Hücreler Olympus Fluoview FV1000 MPE multifoton mikroskobu kullanılarak 665 nm'de görüntülendi. Gösterilen resim tek bir dilimdir. Bu rakam Espino ve ark.8'den<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60911/60911fig6large.jpg" target="_blank">değiştirilmiştir.</a>
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60911/60911fig7.jpg"> Şekil 7: IC-FPOP sırasında gerçekleşen tandem MS/MS spektrumları örnekleri. Ürün-iyon (MS/MS) bir (A) değiştirilmemiş peptid in spektrumu ve(B)oksidasyonu bu peptidüzerinde bulunan M8 kalıntısı üzerinde saptanır. Bir temsilcisi EIC (C) değiştirilmemiş peptid ve (D) modifiye peptid. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60911/60911fig7large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 8" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60911/60911fig8.jpg"> Şekil 8: IC-FPOP proteinlerin solvent erişilebilirliğini araştırmada etkilidir. (A) Aktinden oksidatif modifiye peptidler için modifikasyon ölçüde. Değerler ortalama artı ve eksi standart sapma (n = 3) olarak gösterilir. (B) Guan ve ark.10 (C)kalıntı FPOP modifikasyonlarının sasa ile sıkı (üçgenler, kesik eğilim çizgisi) ve açık (daireler, katı eğilim çizgisi) aktin durumlarında senkronize radyolizinin in vitro oksitlenmesine neden olan aktin peptidlerinin modifikasyonu. Bu rakam Espino ve ark.8'den<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60911/60911fig8large.jpg" target="_blank">değiştirilmiştir.</a>

Burada, canlı hücrelerdeki protein yapısını ve etkileşim alanlarını, proteinlerin hücre içi hızlı fotokimyasal oksidasyonu (IC-FPOP) olarak adlandırılan bir protein ayak izi tekniği ile karakterize ediyoruz.

Hücre İçi Hızlı Fotokimyasal Oksidasyon ile Hücresel Proteinlerin Karakterizasyonu

Fast photochemical oxidation of proteins (FPOP) is a hydroxyl radical protein footprinting method used to characterize protein structure and interactions. ...

Hücre içi FPOP kütle spektrometresi ile birleştiğinde protein protein etkileşimleri ve canlı hücrelerdeki protein yapısal değişiklikleri incelemek için kullanılan güçlü bir yeni tekniktir. Hücre içi FPOP ile, ilgi proteinleri izole etmek gerekmez, ama yerine kendi doğal ortamlarda onları inceleyebilirsiniz. Bu özellikle membran proteinleri için yararlıdır.Bu yöntemle, kanser ve genetik bozukluklar da dahil olmak üzere çeşitli hastalıklarda yapı ve protein protein etkileşimlerindeki değişiklikleri inceleyebilir, böylece onları daha iyi anlayabilir ve karakterize edebilirsiniz. Akış sisteminin montajına başlamak için, erimiş silika boruyu uygun boyutlarda kesmek için bir dekolte taşı kullanın. Sonra, bir 500 mikrolitre şırınga altı küçük silindirik mıknatıslar yerleştirin ve şırınga doldurun, ikinci bir 500 mikrolitre şırınga, ve kılıf tampon ile iki beş mililitreşli şırınga.Havayı çıkardıktan sonra, şırıngaları şırınga pompasına yerleştirin ve şırınga pompası durdurucuyu sıkın, böylece motor durduğunda yaklaşık 50 mikrolitre sol hücreşır. Bir yem adaptörü kullanarak, her şırınga için bir manuel vana bağlayın ve gösterildiği gibi silika boru monte, çapraz üzerinden hücre artı hidrojen peroksit silika hattı iplik emin olun ve doğrudan 450 ID silika hattına yerleştirin. Tüm borular bağlandığında, akış sistemini lazerin yanına yerleştirin ve lazer ışınlama için bir pencere açmak için 450 mikrometrelik iç çaplı borudaki silika kaplamayı yakmak için bir çakmak kullanın.Altı mıknatısiçeren hücre şırıngasının üzerine manyetik bir karıştırıcı yerleştirin ve dakikada 1083,3 mikrolitre lik son akış hızı için şırınga pompasını dakikada 492,4 mikrolitreye ayarlayın. Sistem floş için üç kez sistem üzerinden akış tampon, herhangi bir sızıntı için her bağlantı kontrol. Excimer lazeri silika boruya odaklamak için dışbüvek lens kullanın.Işınlama penceresini test etmek için, silika borunun arkasına küçük bir kağıt parçası yerleştirin ve lazeri açın. Daha sonra, ışınlama yanmış bölge ölçmek ve sıfır bir dışlama fraksiyonu elde etmek için gerekli lazer frekansı hesaplamak için ışınlama penceresi ve akış hızı kullanın. İşlem için hücreleri toplamak için, uygun bir hücre kültürü sınıf tuz çözeltisi ile% 70 ila% 90 confluent T175 şişe kültüründen hücreleri yıkayın.Saymak için tampon 10 mililitre hücreleri resuspend ve santrifüj ile hücreleri toplamak. Hücreleri, akış aşağı analizi için yeterli olduğundan emin olmak için saymak önemlidir, ancak akış sistemini toplamalarına ve tıkamalarına neden olacak çok fazla değildir. Daha sonra iki kez 10 kılıf tampon konsantrasyonu mililitre başına altıncı hücrelere hücreleri yeniden askıya ve örnek başına bir 500 mikrolitre hacmi içine hücreleri aliquot.Hücre içi FPOP için, taze kılıf tampon ile iki beş mililitreşöf şırınga doldurun, hücrelerin bir aliquot ile mıknatıslar içeren 500 mikrolitreşga, ve taze hazırlanmış ile son 500 mikrolitre şırınga 200 milimolar hidrojen peroksit. Manyetik karıştırıcıyı açın ve 220 mikrolitre dimetil sülfoksiti quench'in bir aliquot'una çevirin. Nazik karıştırma sonra, ışınlanmış örnekleri toplamak ve lazer açmak için akış sisteminin arkasına Quench yerleştirin.Yedi saniye sonra, akış sistemini açın. Numune akışı bittikten sonra lazeri kapatın ve Quench'i toplanan numuneyle hafifçe karıştırın. Ardından, dört şırıngayı da taze arabellekle doldurun ve tamponu akış sisteminden geçirin.Sistem kızarma bittikten sonra, hücreler içinde arka plan oksidasyonu için hiçbir lazer kontrolü olarak ışınlama olmadan hücre ve çözeltiler yeni bir aliquot ile işlemi tekrarlayın. Bir sonraki örnek çalışırken, ilk numuneyi santrifüj edin ve uygun bir hücre lisis tamponunun 100 mikrolitresinde peleti yeniden askıya alın. Daha sonra, sıvı nitrojen flaş dondurma için bir mikrocentrifuge tüp örnek aktarın.Tüm numuneler çalışma tamamlandığında, akış sistemini sökün ve kullanılan silika borularını atın. Daha sonra diğer tüm bağlantıları sonication ile %50 su %50 metanol çözeltisinde bir saat boyunca temizleyin. Standart protokollere göre hücre lysatından proteinleri izole edip sindirdikten sonra, fpop modifikasyonu protium çapında lokalize etmek için sindirilmiş hücre lisatını standart tandem LCMS protokollerine göre analiz edin.Daha sonra, verileri uygun bir protein analiz yazılımı programına yükleyin ve verileri ilgili protein veritabanı na ve ilgili sindirim enzimine karşı analiz edin. Dosyalar aramayı bitirdikten sonra, ilgi proteini üzerindeki FPOP oksidasyonunun kapsamını hesaplayın. Ortogonal YZ yığılmış görüntülerin floresan görüntüleme lazer ışınlama penceresi geçmiş akar gibi hücre çözeltisi kılıf tampon net bir ayrım gösterir.Kılıf tampon veya hücre çözeltisi üç boyutlu ortalama ısı haritaları iki çözeltinin en az karıştırma göstermek için oluşturulabilir. Tek hücreli akış sisteminin kullanımı oksidatif olarak modifiye edilmiş protein sayısını 13 kat arttırır. Bozulmamış hücrelerde ilgi proteinlerin modifikasyononaylamak için, floresan görüntüleme hidrojen peroksit tedavisi ve ışınlama sonrasında yapılabilir.Tandem kütle spektrometresi kullanılarak, bu değişiklikler daha fazla bir protein üzerinde belirli amino asitler lokalize edilebilir. Bu çıkarılan iyon kromatogramında gözlenen kayma, modifiye peptiddeki oksitlenmiş metiyonin in neden olduğu hidrofobiklik değişimine yol açmaktadır. Hücre içi etiketli aktinile in-vitro ayak izi ile karşılaştırıldığında oksidasyon benzer düzeylerde ortaya koymaktadır, aktin hem hücre içi hem de in-vitro çalışmalar için benzer bir çözücü erişilebilirlik olduğunu gösteren.Ayrıca, iki aktin kristal yapılarından hesaplanan etiketlenmiş artıklar, faiz modifikasyonlarının proteininin hızlı fotokimyasal oksidasyonunun solvent erişilebilirliğine göre karşılaştırılması, ilgi proteininin hücre içi hızlı fotokimyasal oksidasyonunun monomerik proteinin solvent erişilebilirliğini etkin bir şekilde araştırdığını göstermektedir. Bir 2D kromatografi, hücre altı fraksiyonu ve proteomik çoklama teknikleri de dahil olmak üzere alt bol FPOP modifikasyonları, tespitini artırmak için atabileceğiniz birkaç ek adım vardır. Hücre içi FPOP kullanımı ile, artık hücresel fonksiyon ile protein yapıları daha iyi bağlamak için proteomiyostrüel biyoloji gerçekleştirebilirsiniz.FPOP için gerekli olan 248 nanometre dalga boyu nedeniyle, yansıyan veya dağınık radyasyona istenmeyen maruziyeti önlemek için her zaman UV koruyucu gözlük ve uygun giysiler taktığından emin olun.

characterizing-cellular-proteins-with-cell-fast-photochemical

Research

JoVE Journal

Biochemistry

Biyokimya

Bu protokol bir konfokal lazer tarama mikroskobu, floresan proteinleri Fotoçevrim gerçekleştirmek için genel bir yaklaşım açıklar. Biz Fotoçevrim puried protein örneklerinin yanı sıra, mOrange2 ve Dronpa canlı hücreleri çift prob, optik vurgulama için prosedürler açıklanmaktadır.

Canlı Hücrelerde Floresan Proteinleri ve Çift prob Optik Vurgulama Saf, Fotoçevrim

Protein fonksiyonunun temel adımları, özellikle omurga konformasyonel değişiklikleri ve proton transfer reaksiyonları, genellikle mikrosaniye ila milisaniye zaman ölçeğinde gerçekleşir. Bu dinamik süreçler, özellikle işlevi ışık tarafından tetiklenen proteinler için, zaman çözümlü adım taramalı Fourier dönüşümü kızılötesi spektroskopisi ile incelenebilir.

Tarafından Işığa Proteinler Proton Transferi ve Protein Konformasyon Dynamics Zamanda çözülmüş kızılötesi spektroskopi Fourier-dönüşümü Step-tarama

Bu iletişim kuralı protein yarı-tek yaşam yapisan hücrelerde, hayatını darbe etiketleme ve floresan hızlandırılmış görüntüleme ek-etiket füzyon proteinlerin kullanarak belirlemek için bir yöntem açıklanır.

Tek hücreli miktar Protein yıkımı oranları hızlandırılmış Floresans mikroskobu yapisan hücre kültüründe tarafından

Biz nasıl sıkı BAĞLAMAK ve photoactivation gibi mikro - ve photomanipulation teknikleri hareketliliği parametreleri belirlenmesi etkinleştirmek ve proteinler geçiş içinde kronolojik zamanmekansal dinamikleri hücreleri tanımlamak. Deneysel veriler hücre altı dinamikleri ve ciro hareketliliği düzenleyiciler veya temel aktin sitoiskeleti içerir.

Morfogenetik dinamiklerini analiz ve hücre iskeleti düzenleyiciler ciro sağlayan Embriyolardan teknikleri

Bu iletişim kuralı hücre-hücre etkileşimleri, yani proteinler hücre kavşaklar, doğrudan canlı hücreler içinde lokalize arabuluculuk proteinler arasındaki etkileşimler araştırmaya floresans dalgalanma spektroskopisi temelli bir yaklaşım açıklar. Biz aleti kalibrasyon, veri toplama ve analizi, olası yapay doku kaynaklarına düzeltmeler dahil olmak üzere ayrıntılı yönergeler sağlar.

Bir floresan dalgalanma spektroskopisi tahlil Protein-Protein etkileşimlerinin hücre-hücre kişiler

Proteinlerin in vivo hızlı fotokimyasal oksidasyonu (IV-FPOP) kendi doğal ortamında protein yapısının haritalanması için izin veren bir hidroksil radikal protein ayak izi tekniğidir. Bu protokol, IV-FPOP mikroakışkan akış sisteminin montajını ve kurulumünü açıklar.

In Vivo Hidroksil Radikal Protein Ayak İzi Caenorhabditis elegans Protein Etkileşimleri Çalışması için

Bu protokol hücre içinde hücre altı bölmesi özgü redoks durumunun değerlendirilmesi açıklanır. Redoksduyarlı floresan prob bozulmamış hücrelerde uygun oranmetrik analiz sağlar.

Hücre altı kompartmana özgü Redoksduyarlı Yeşil Floresan Protein kullanılarak Hücresel Oksidasyonun Değerlendirilmesi

Proteinlerin hızlı fotokimyasal oksidasyonu proteinlerin yapısal karakterizasyonu için ortaya çıkan bir tekniktir. Farklı solvent katkı maddeleri ve ligandlar çeşitli hidroksil radikal atma özelliklerine sahiptir. Farklı koşullarda protein yapısını karşılaştırmak için reaksiyonda oluşan hidroksil radikallerinin gerçek zamanlı telafisi reaksiyon koşullarını normalleştirmek için gereklidir.

Protein Topografya Değişikliklerinin Belirlenmesinde Proteinlerin Hızlı Fotokimyasal Oksidasyonlarında Gerçek Zamanlı Telafinin Sağlanması

Bu protokol, sıralı radikal dozimetri ve flaş oksidasyon proteini ayak izi gerçekleştirmek için bir plazma ışık kaynağı kullanmak için bir yöntem sunar. Bu yöntem, protein çalışmalarının hızlı fotokimyasal oksidasyonunun tekrarlanabilirliğini basitleştirmek ve iyileştirmek için tehlikeli UV lazerin yerini alır.

Proteinlerin Daha Yüksek Sıralı Yapısal Analizini Gerçekleştirmek için Lazersiz Hidroksil Radikal Protein Ayak İzi

Proteinlerin hücre içi hızlı fotokimyasal oksidasyonu (IC-FPOP) adı verilen bir protein ayak izi tekniği kullanılarak yerel hücre ortamındaki protein yapısını ve etkileşim alanlarını karakterize etmek için yeni bir statik platform kullanılır.

Hareketli XY Stage ile Platform İnkübatörü: Proteinlerin Hücre İçi Hızlı Fotokimyasal Oksidasyonunu Uygulamak İçin Yeni Bir Platform

Öğrenin, hücre içi hızlı fotokimyasal oksidasyon (IC-FPOP) ile canlı hücrelerdeki protein yapısı ve etkileşimlerini karakterize etme yöntemini. Bu teknik, kanser ve genetik bozukluklarda protein davranışlarını anlamak için değerlidir.

Hücre İçi Hızlı Fotokimyasal Oksidasyon ile Hücresel Proteinlerin Karakterizasyonu

Daha fazla video keşfet