10 Temmuz 2020
Burada, bir cDNA ara ürünü olmadan kısa RNA'yı (çalışma başına <35 nt) dizilemek için doğrudan bir yöntem olarak ve tek bir çalışmada tek baz hassasiyetinde farklı nükleotid modifikasyonlarını dizilemek için genel bir yöntem olarak kullanılabilen LC-MS tabanlı bir dizileme yöntemi için ayrıntılı bir protokol açıklıyoruz.
Bu protokol, RNA örneğinin tek sarmallı, karışık veya modifiye edilmiş olmasına bakılmaksızın, RNA'yı doğrudan dizilemek için geliştirilen yeni yöntemi kullanırken gereken tüm temel adımları kapsar. Yöntem, enzimatik hatadan veya baz tamamlayıcılığından etkilenmez. Bir seferde belirli bir modifikasyon yerine farklı RNA modifikasyonlarını aynı anda sıralamayı mümkün kılan doğrudan bir iş akışı ve genel bir çözüm sağlar.
Bu teknoloji, insan hastalığıyla ilişkilendirmek için imza RNA segmentlerini belirlemek için bir tanı aracı ve epitranskriptomik düzeyde RNA modifikasyonlarını incelemek için doğru bir araç olarak geliştirilebilir. Yöntem, önceki herhangi bir sıralama yöntemine dayanmaz. Bunun yerine, bu tamamen yeni bir yaklaşımdır ve herhangi bir modifiye edilmiş RNA'yı dizilemek için başvurulacak yönteme geçmeyi amaçlıyoruz.
Bu protokolün bazı bölümleri, RNA LC-MS veri toplamanın 3'ünün etiketlenmesi ve MassHunter yazılımı tarafından veri analizi gibi görsel gösterimle daha doğru bir şekilde aktarılabilecek kritik yönleri içerir. Bu prosedürü göstereceğim ve LC-MS'yi kuracağım ve RNA örneklerimizi ölçeceğim. Tek adımlı bir etiketleme reaksiyonu gerçekleştirmek için, 2 mikrolitre 150 mikromolar AppCp-biotin, 3 mikrolitre 10x ligaz reaksiyon tamponu, 1.5 mikrolitre 100 mikromolar RNA örneği, 3 mikrolitre susuz DMSO, 10 ünite T4 RNA ligaz ve toplam 30 mikrolitre hacim için 19.5 mikrolitre DEPC ile muamele edilmiş su.
Reaksiyonu gece boyunca 16 santigrat derecede inkübe edin, ardından el yazması talimatlarına göre sütun saflaştırması gerçekleştirin. RNA'yı üç alikota böldükten ve eşit hacimde formik asit ekledikten sonra, reaksiyonları 40 santigrat derecede inkübe edin. Her reaksiyon bittiğinde, asit bozunmasını söndürmek için numuneyi hemen kuru buz üzerinde dondurun.
Numuneyi yaklaşık 30 dakika kurutmak için bir santrifüj vakum yoğunlaştırıcı kullanın. Kurutulmuş numuneleri 20 mikrolitre DEPC ile arıtılmış suda tekrar süspanse edin ve birleştirin. Numuneleri LC-MS ölçümüne kadar 20 santigrat derecede saklayın.
Mobil fazları hazırladıktan sonra RNA örneğini LC-MS örnek şişesine aktarın. Her enjeksiyon 100 ila 400 pikomol RNA ve 20 mikrolitre içermelidir. Verileri aldıktan sonra, kütle, bekletme süresi, hacim ve kalite puanı dahil olmak üzere bileşik bilgileri ayıklamak için moleküler özellik ayıklama iş akışını kullanın.
Küçük molekül ayarlarında centroid veri formatını kullanın. Tepe yüksekliğini en az 100, ancak 1.000'den az ve kalite puanını en az 50 olarak ayarlayın. Son olarak, verileri bir Excel dosyası olarak dışa aktarın.
3' merdivenin 5' merdivenden ayrılması ve diğer istenmeyen parçalar burada bir 2B kütle tutma süresi grafiğinde gösterilmiştir. Her RNA'da 5'biotin etiketi ile farklı uzunluklarda iki RNA ipliği içeren karışık numuneleri dizilemek de mümkündür. Üridini bir psödouridin'den ayırt etmek için, RNA, bir psödouridini bir CMC-psödouridin eklentisine dönüştüren CMC ile muamele edildi.
Adduktun, bir üridinde farklı bir kütleye sahiptir ve 2D-HELS MS Seq'de ayırt edilebilir. Reaksiyonu dönüştüren psödouridini CMC eklentisine dönüştüren ham ürünün HPLC profili, %42 olan dönüşüm yüzdesini hesaplamak için kullanıldı,% 42 olan beş farklı RNA zincirinin bir karışımı, 3'uç etiketleme ile 2D-HELS MS Seq yaklaşımı ile dizilendi ve çoklu RNA dizilerinin daha iyi görselleştirilmesi için normalleştirildi. Normalizasyon olmasaydı, beş RNA'nın dizileri için harf kodları bir araya toplanmış olurdu.
Bu prosedürü denerken, etiketli RNA örneklerinden yüksek verim elde etmek için etiketleme reaksiyonunu dikkatli bir şekilde ayarlayın. Ayrıca, güvenilir kütle merdivenleri oluşturmak için bozunma süresini dikkatlice izleyin ve 20 mikrolitre su ile maksimum miktarda kurutulmuş numune toplayın. Bu protokolü gerçekleştirdikten sonra sorulabilecek bir soru, sıralama yönteminin genişliğinin, uzunluğunun ve veriminin nasıl artırılacağıdır.
Daha iyi bir algoritma ve daha yüksek çözünürlük ve hassasiyete sahip daha gelişmiş bir cihaz yardımcı olabilir. Bu protokolün geliştirilmesinden sonra, CDA tabanlı RNA dizilimi ile ilgili herhangi bir hata olmaksızın hem kanonik hem de modifiye nükleotidleri içeren daha geniş bir RNA örneği yelpazesini doğrudan dizilemek mümkün hale geldi.
Tam transkripti görüntüleyin ve binlerce bilimsel videoya erişin
Bu makale, cDNA ara basamağına olan ihtiyacı ortadan kaldıran, kısa RNA'lar için yeni bir LC-MS tabanlı dizileme yöntemi sunmaktadır. Protokol, çeşitli RNA modifikasyonlarının tek baz hassasiyetiyle eş zamanlı olarak dizilenmesine olanak tanır.
LC-MS tabanlı bu RNA dizileme yöntemi, cDNA sentezi gerektirmeksizin modifiye edilmiş RNA karışımlarının doğrudan de novo dizilenmesini sağlayarak epitranskriptomik hedef doğrulamadaki temel bir darboğazı giderir. Kantitatif ve modifikasyon çözünürlüğüne sahip dizileme verileri sunarak, RNA tabanlı biyobelirteçlerin erken keşfini ve terapötik oligonükleotitlerin mekanistik risk analizini destekler. Bu yaklaşım, tarama ve assay geliştirme iş akışlarına doğrudan uygulanabilen, dizileme ile doğrulanmış ve modifikasyona özgü çıktılar sunarak lider bileşik tanımlamadaki öngörü güvenilirliğini artırır.
Bu yöntem, fonksiyonel tarama öncesinde sentetik veya endojen RNA hedeflerinin dizisini ve modifikasyon durumunu doğrulayarak öncü madde tanımlamaya katkı sağlayan, hipotez güdümlü RNA analizi için bir ön uç sekanslama aracı olarak erken keşif iş akışlarına entegre edilmektedir.