Name: Aedes aegypti Sivrisineklerinde Hayvansal Türevli Kan ve Yapay Yemeklerin Beslenmesi ve Ölçülmesi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-10-22T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 42 s
Description: Keşfedin Aedes aegypti sivrisineklerinde hayvansal türevli kan ve yapay yemeklerin beslenmesi ve ölçülmesi yöntemini. Bu protokol, yüksek verimli ölçümlerle besin hacmini hassas şekilde belirleyerek vektör biyolojisi araştırmalarını destekler.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

El yazmaları hakkındaki yorumları için Nipun Basrur, Adriana K. Rosas Villegas, Nadav Shai ve Trevor Sorrells'e ve teknik yardım için Zhongyan Gong ve Kyrollos Barsoum'a teşekkür ederiz. Şekil 1'dekullanılan fotoğraflar için Alex Wild'a teşekkür ederiz. K.V., Boehringer Ingelheim Fonds doktora bursu tarafından desteklendi. V.J. kısmen NIH T32-MH095246 tarafından desteklendi. Bu çalışma kısmen Howard Hughes Tıp Enstitüsü'nden The Rockefeller Üniversitesi'ne James H. Gilliam İleri Çalışma Bursları programı aracılığıyla V.J.'ye verilen bir hibe ile desteklendi. Bu materyal, Ulusal Bilim Vakfı Lisansüstü Araştırma Burs Programı tarafından Hibe No. NSF DGE-1325261'den V.J.'ye Bu materyalde ifade edilen herhangi bir görüş, bulgu ve sonuç veya öneri yazar(lar)ın görüşleridir ve Ulusal Bilim Vakfı'nın görüşlerini yansıtmak zorunda değildir.

<ol><li>Bhatt, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+global+distribution+and+burden+of+dengue%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">The global distribution and burden of dengue.</a> Nature. 496 (7446), 504-507 (2014).</li>
<li>Rogers, D. J., Wilson, A. J., Hay, S. I., Graham, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+global+distribution+of+yellow+fever+and+dengue%5BTitle%5D)+AND+%22Advances+in+Parasitology%22%5BJournal%5D)">The global distribution of yellow fever and dengue.</a> Advances in Parasitology. 62 (05), 181-220 (2006).</li>
<li>Chouin-Carneiro, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+susceptibilities+of+Aedes+aegypti+and+Aedes+albopictus+from+the+Americas+to+Zika+virus%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Neglected+Tropical+Diseases%22%5BJournal%5D)">Differential susceptibilities of Aedes aegypti and Aedes albopictus from the Americas to Zika virus.</a> PLoS Neglected Tropical Diseases. 10 (3), (2016).</li>
<li>Guerbois, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Outbreak+of+Zika+virus+infection%2C+Chiapas+State%2C+Mexico%2C+2015%2C+and+first+confirmed+transmission+by+Aedes+aegypti+mosquitoes+in+the+Amercias%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">Outbreak of Zika virus infection, Chiapas State, Mexico, 2015, and first confirmed transmission by Aedes aegypti mosquitoes in the Amercias.</a> Journal of Infectious Diseases. 214 (9), 1349-1356 (2016).</li>
<li>Weaver, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+virus%3A+history%2C+emergence%2C+biology%2C+and+prospects+for+control%5BTitle%5D)+AND+%22Antiviral+Research%22%5BJournal%5D)">Zika virus: history, emergence, biology, and prospects for control.</a> Antiviral Research. 130, 69-80 (2016).</li>
<li>Attardo, G. M., Hansen, I. A., Raikhel, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nutritional+regulation+of+vitellogenesis+in+mosquitoes%3A+implications+for+anautogeny%5BTitle%5D)+AND+%22Insect+Biochemistry+and+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Nutritional regulation of vitellogenesis in mosquitoes: implications for anautogeny.</a> Insect Biochemistry and Molecular Biology. 35 (7), 661-675 (2005).</li>
<li>Duvall, L. B., Ramos-Espiritu, L., Barsoum, K. E., Glickman, J. F., Vosshall, L. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small-molecule+agonists+of+Ae.+aegypti+neuropeptide+Y+receptor+block+mosquito+biting%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Small-molecule agonists of Ae. aegypti neuropeptide Y receptor block mosquito biting.</a> Cell. 176 (4), 687-701 (2019).</li>
<li>Dimond, J. B., Lea, A. O., Hahnert, W. F., DeLong, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+amino+acids+required+for+egg+production+in+Aedes+aegypti%5BTitle%5D)+AND+%22The+Canadian+Entomologist%22%5BJournal%5D)">The amino acids required for egg production in Aedes aegypti.</a> The Canadian Entomologist. 88 (2), 57-62 (1956).</li>
<li>Guerrero, D., Cantaert, T., Missé, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aedes+mosquito+salivary+components+and+their+effect+on+the+immune+response+to+arboviruses%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Cellular+and+Infection+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Aedes mosquito salivary components and their effect on the immune response to arboviruses.</a> Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 10, 1-11 (2020).</li>
<li>Raquin, V., Lambrechts, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dengue+virus+replicates+and+accumulates+in+Aedes+aegypti+salivary+glands%5BTitle%5D)+AND+%22Virology%22%5BJournal%5D)">Dengue virus replicates and accumulates in Aedes aegypti salivary glands.</a> Virology. 507, 75-81 (2017).</li>
<li>Farjana, T., Tuno, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiple+blood+feeding+and+host-seeking+behavior+in+Aedes+aegypti+and+Aedes+albopictus+%28diptera%3A+Culicidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Medical+Entomology%22%5BJournal%5D)">Multiple blood feeding and host-seeking behavior in Aedes aegypti and Aedes albopictus (diptera: Culicidae).</a> Journal of Medical Entomology. 50 (4), 838-846 (2013).</li>
<li>Scott, T. W., Takken, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Feeding+strategies+of+anthropophilic+mosquitoes+result+in+increased+risk+of+pathogen+transmission%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Parasitology%22%5BJournal%5D)">Feeding strategies of anthropophilic mosquitoes result in increased risk of pathogen transmission.</a> Trends in Parasitology. 28 (3), 114-121 (2012).</li>
<li>Ross, P. A., Lau, M. J., Hoffmann, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Does+membrane+feeding+compromise+the+quality+of+Aedes+aegypti+mosquitoes%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Does membrane feeding compromise the quality of Aedes aegypti mosquitoes.</a> PLoS ONE. 14 (11), 1-19 (2019).</li>
<li>Ross, P. A., Axford, J. K., Richardson, K. M., Endersby-Harshman, N. M., Hoffmann, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Maintaining+Aedes+aegypti+mosquitoes+infected+with+wolbachia%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Maintaining Aedes aegypti mosquitoes infected with wolbachia.</a> Journal of Visualized Experiments. 2017 (126), 1-8 (2017).</li>
<li>Briegel, H., Hefti, M., DiMarco, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lipid+metabolism+during+sequential+gonotrophic+cycles+in+large+and+small+female+Aedes+aegypti%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Insect+Physiology%22%5BJournal%5D)">Lipid metabolism during sequential gonotrophic cycles in large and small female Aedes aegypti.</a> Journal of Insect Physiology. 48 (5), 547-554 (2002).</li>
<li>McMeniman, C. J., Corfas, R. A., Matthews, B. J., Ritchie, S. A. S., Vosshall, L. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multimodal+integration+of+carbon+dioxide+and+other+sensory+cues+drives+mosquito+attraction+to+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Multimodal integration of carbon dioxide and other sensory cues drives mosquito attraction to humans.</a> Cell. 156 (5), 1060-1071 (2014).</li>
<li>Pakes, S. P., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPakes%2C+SP+%22Guide+for+the+Care+and+Use+of+Laboratory+Animals%22">Guide for the Care and Use of Laboratory Animals</a>. , National Academic Press. Washington, DC, USA. (2011).</li>
<li>Deng, L., Koou, S. Y., Png, A. B., Ng, L. C., Lam-Phua, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+mosquito+feeding+system+for+routine+blood-feeding+of+Aedes+aegypti+and+Aedes+albopictus%5BTitle%5D)+AND+%22Tropical+Biomedicine%22%5BJournal%5D)">A novel mosquito feeding system for routine blood-feeding of Aedes aegypti and Aedes albopictus.</a> Tropical Biomedicine. 29 (1), 169-174 (2012).</li>
<li>Gunathilaka, N., Ranathunge, T., Udayanga, L., Abeyewickreme, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficacy+of+blood+sources+and+artificial+blood+feeding+methods+in+rearing+of+Aedes+aegypti+%28Diptera%3A+Culicidae%29+for+sterile+insect+technique+and+incompatible+insect+technique+approaches+in+Sri+Lanka%5BTitle%5D)+AND+%22BioMed+Research+International%22%5BJournal%5D)">Efficacy of blood sources and artificial blood feeding methods in rearing of Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) for sterile insect technique and incompatible insect technique approaches in Sri Lanka.</a> BioMed Research International. 2017, 3196924(2017).</li>
<li>Costa-da-Silva, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glytube%3A+a+conical+tube+and+parafilm+M-based+method+as+a+simplified+device+to+artificially+blood-feed+the+Dengue+vector+mosquito%2C+Aedes+aegypti%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Glytube: a conical tube and parafilm M-based method as a simplified device to artificially blood-feed the Dengue vector mosquito, Aedes aegypti.</a> PLoS ONE. 8 (1), 53816(2013).</li>
<li>Carvalho, D. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mass+production+of+genetically+modified+Aedes+aegypti+for+field+releases+in+Brazil%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Mass production of genetically modified Aedes aegypti for field releases in Brazil.</a> Journal of Visualized Experiments. 83 (83), 1-10 (2014).</li>
<li>Kogan, P. H. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Substitute+blood+meal+for+investigating+and+maintaining+Aedes+aegypti+%28Diptera%3A+Culicidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Medical+Entomology%22%5BJournal%5D)">Substitute blood meal for investigating and maintaining Aedes aegypti (Diptera: Culicidae).</a> Journal of Medical Entomology. 27 (4), 1-4 (1990).</li>
<li>Gonzales, K. K., Hansen, I. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Artificial+diets+for+mosquitoes%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Environmental+Research+and+Public+Health%22%5BJournal%5D)">Artificial diets for mosquitoes.</a> International Journal of Environmental Research and Public Health. 13 (12), (2016).</li>
<li>Baughman, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+highly+stable+blood+meal+alternative+for+rearing+Aedes+and+Anopheles+mosquitoes%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Neglected+Tropical+Diseases%22%5BJournal%5D)">A highly stable blood meal alternative for rearing Aedes and Anopheles mosquitoes.</a> PLoS Neglected Tropical Diseases. 11 (12), 0006142(2017).</li>
<li>Galun, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Feeding+stimuli+and+artificial+feeding%5BTitle%5D)+AND+%22Bulletin+of+the+World+Health+Organization%22%5BJournal%5D)">Feeding stimuli and artificial feeding.</a> Bulletin of the World Health Organization. 36, 590-593 (1967).</li>
<li>Galun, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Feeding+response+in+Aedes+aegypti%3A+stimulation+by+adenosine+triphosphate%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Feeding response in Aedes aegypti: stimulation by adenosine triphosphate.</a> Science. 142, 1674-1675 (1963).</li>
<li>Jové, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sensory+Discrimination+of+Blood+and+Floral+Nectar+by+Aedes+aegypti+Mosquitoes%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Sensory Discrimination of Blood and Floral Nectar by Aedes aegypti Mosquitoes.</a> Neuron. 108, 1-18 (2020).</li>
<li>Petersen, M. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+impact+of+the+age+of+first+blood+meal+and+Zika+virus+infection+on+Aedes+aegypti+egg+production+and+longevity%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">The impact of the age of first blood meal and Zika virus infection on Aedes aegypti egg production and longevity.</a> PLoS ONE. 13 (7), 1-15 (2018).</li>
<li>Sissoko, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Frequent+sugar+feeding+behavior+by+Aedes+aegypti+in+Bamako%2C+Mali+makes+them+ideal+candidates+for+control+with+Attractive+Toxic+Sugar+Baits+%28ATSB%29%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Frequent sugar feeding behavior by Aedes aegypti in Bamako, Mali makes them ideal candidates for control with Attractive Toxic Sugar Baits (ATSB).</a> PLoS ONE. 14 (6), 0214170(2019).</li>
<li>Houseman, J. G., Downe, A. E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+of+measuring+blood+meal+size+and+proteinase+activity+for+determining+the+effects+of+mated+state+of+digestive+processes+of+female+Aedes+aegypti+%28L.%29+%28Diperta%3A+Culicidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22The+Canadian+Entomologist%22%5BJournal%5D)">Methods of measuring blood meal size and proteinase activity for determining the effects of mated state of digestive processes of female Aedes aegypti (L.) (Diperta: Culicidae).</a> The Canadian Entomologist. 18, 241-248 (1986).</li>
<li>Redington, B. C., Hockmeyer, W. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+for+estimating+blood+meal+volume+in+Aedes+aegypti+using+a+radioisotope%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Insect+Physiology%22%5BJournal%5D)">A method for estimating blood meal volume in Aedes aegypti using a radioisotope.</a> Journal of Insect Physiology. 22 (7), 961-966 (1976).</li>
<li>Gonzales, K. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+SkitoSnack%2C+an+artificial+blood+meal+replacement%2C+on+Aedes+aegypti+life+history+traits+and+gut+microbiota%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">The effect of SkitoSnack, an artificial blood meal replacement, on Aedes aegypti life history traits and gut microbiota.</a> Scientific Reports. 8 (1), 1-14 (2018).</li>
<li>Klowden, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+endogenous+regulation+of+mosquito+reproductive+behavior%5BTitle%5D)+AND+%22Experientia%22%5BJournal%5D)">The endogenous regulation of mosquito reproductive behavior.</a> Experientia. 46 (7), 660-670 (1990).</li>
<li>Liesch, J., Bellani, L. L., Vosshall, L. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+and+genetic+characterization+of+neuropeptide+Y-like+receptors+in+Aedes+aegypti%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Neglected+Tropical+Diseases%22%5BJournal%5D)">Functional and genetic characterization of neuropeptide Y-like receptors in Aedes aegypti.</a> PLoS Neglected Tropical Diseases. 7 (10), 22486(2013).</li>
<li>Frances, S. P., Sithiprasasna, R., Linthicum, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laboratory+evaluation+of+the+response+of+Aedes+aegypti+and+Aedes+albopictus+uninfected+and+infected+with+Dengue+virus+to+Deet%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Medical+Entomology%22%5BJournal%5D)">Laboratory evaluation of the response of Aedes aegypti and Aedes albopictus uninfected and infected with Dengue virus to Deet.</a> Journal of Medical Entomology. 48 (2), (2011).</li>
<li>Dennis, E. J., Goldman, O. V., Vosshall, L. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aedes+aegypti+mosquitoes+use+their+legs+to+sense+DEET+on+contact%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Biology%22%5BJournal%5D)">Aedes aegypti mosquitoes use their legs to sense DEET on contact.</a> Current Biology. 29 (9), 1551-1556 (2019).</li>
<li>Harrington, L. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heterogeneous+feeding+patterns+of+the+Dengue+vector%2C+Aedes+aegypti%2C+on+individual+human+hosts+in+rural+Thailand%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Neglected+Tropical+Diseases%22%5BJournal%5D)">Heterogeneous feeding patterns of the Dengue vector, Aedes aegypti, on individual human hosts in rural Thailand.</a> PLoS Neglected Tropical Diseases. 8 (8), 3048(2014).</li>
<li>Hol, F. J., Lambrechts, L., Prakash, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((BiteOscope%2C+an+open+platform+to+study+mosquito+biting+behavior%5BTitle%5D)+AND+%22eLife%22%5BJournal%5D)">BiteOscope, an open platform to study mosquito biting behavior.</a> eLife. 9, 1-24 (2020).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Birçok laboratuvar uygulaması için yapay membran besleyiciler, araştırmacılara yemeğin içeriğini doğrudan manipüle etme olanağı sağlayarak canlı konakçılara kıyasla farklı faydalar sunar. Yapay membran besleme için birden fazla yöntem mevcut olsa da, burada açıklanan yöntem esneklik, maliyet ve verimde avantajlar sunar. Diğer ticari membran besleyicilere kıyasla, Glytube tahlili küçük bir yemek hacmi gerektirir, bu da onu 7,35gereken toplam hacmi en aza indirerek ilaçlar veya patojenler de dahil olmak üzere pahalı reaktifler için verimli bir teslimat mekanizmasıhalinegetirir. Hem protein içermeyen tuzlu su hem de yapay kan yemekleri engorgement'i teşvik ettiği için, bileşikler veya patojenler her iki öğüne de enjeksiyonlara yüksek verimli ve invaziv olmayan bir alternatif olarak eklenebilir. Ayrıca, Glytube'un her bileşeni, besleme cihazının çapraz kirlenmesi olmadan birden fazla yemek türünü teslim etmek ve ölçmek için kolayca yıkanabilir, değiştirilebilir veya ölçeklendirilebilir.
Sivrisinekler tarafından tüketilen yemek hacimlerini ölçmek için, floresan bazlı yöntem, sivrisinekleri beslenmeden önce ve sonra tartmaya göre daha hassas yemek boyutu nicelemesi sağlar. Bu yöntemin bir bitiş noktası tahlil olduğu unutulmamalıdır. Buna karşılık, tartım sivrisineklerin daha fazla deney için canlı tutulmasını sağlar. Bir plaka okuyucu kullanarak, floresan tabanlı yöntem, yüzlerce bireysel kadın tarafından tüketilen öğünlerin yüksek verimli nicelemesi için kolayca ölçeklendirilebilir.
Yüksek beslenme oranları elde etmek için, kadın konakçı arama davranışını etkinleştirmek ve dişileri besleyiciye çekmek için yeterli konak ipuçlarının bir kombinasyonu bulunmalıdır. Sivrisinekler Glytube'un altında kalabalık değilse, yemek düzgün ısıtılamayabilir veya CO2 teslimatı yeterli olmayabilir. Membran yüzeyine insan kokusu eklenmesi, yapay zarın çekiciliğini güvenilir bir şekilde arttırır. Sivrisinekler Glytube'un altında görülürse, ancak beslenemezse, yemek bileşimi hatalı olabilir. Dişiler, yemeğin kendisi sıcak değilse, kan çok eskiyse veya yemeğe katkı maddeleri özünde averatifse veya istenmeyen bir kimyasal reaksiyona neden olursa beslenmeyebilir36. Ek ATP ayrıca beslenme oranlarını güvenilir bir şekilde artırır ve sağlanan tariflerin her birinde 2 mM'lik son konsantrasyona kadar ölçeklendirilebilir. Parafilm Glytube kapağı boyunca gergin çekilmezse dişiler beslenmeyebilir; parafilm düzgün bir şekilde şeffaf olmalı ve tokalanmamalıdır, çünkü bu, dişinin parafilm'i tarzıyla etkili bir şekilde delebilmesini önler. Yemek Glytube'dan örgüye sızarsa, parafilm germe işlemi sırasında yırtılmış olabilir ve değiştirilmelidir.
Yemek bileşimini değiştirmek, araştırmacıların yemeği midgut'tan temizlemek için gereken süreyi ve sonraki konakçı arama davranışını manipüle etmelerine de izin verebilir. Burada sunulan yemekler, hayvansal türevi kana benzer 7 sindirim için24-36 saat gerektirir. Bu yemeklerden herhangi birini besledikten sonra, dişiler sindirim süresi boyunca konakçı arayışını bastıracaktır. Tuzlu yemek proteinden yoksun olduğundan, dişiler yemek temizlendikten sonra ev sahibi arayışına geri dönerler. Daha hızlı bir geri dönüş isteniyorsa, araştırmacılar yaklaşık 6 saat27içinde atılan alternatif "hızlı temizleme" tuzlu su öğünlerini seçebilirler. Burada sunulan tuzlu yemeğin bileşimi, sonuçları yapay kan unu ile doğrudan karşılaştırmak için eşleştirilirken, "hızlı temizleme" unu omurgalı kanda bulunan fizyolojik tuz seviyeleriyle daha yakından eşleşir.
Burada açıklanan yöntemler, araştırmacının deneysel hedeflerine en uygun tahlilleri seçmeden önce dikkate alınması gereken sınırlamalara sahiptir. Açıklanan floresan ölçümleri, sivrisineklerin ek deneyler için tekrar kullanılmasına izin vermez. Bununla birlikte, floresan tahlil kullanılarak öğün büyüklüğü ölçümü öncesinde ağırlık ölçümleri yapılabilir. Kilo ve yemek boyutu belirli bir yemek için birden fazla denemede tutarlıysa, ağırlık gelecekteki deneylerde proxy olarak kullanılabilir. Ayrıca, bu protokol konak aramadaki açıklarla kan besleme davranışı arasındaki ayrımı yapmaz; membran besleyicinin bulunmasında bozukluklar gösteren sivrisineklerin beslenme oranlarında ve/veya yemek boyutunda bir azalma olacaktır. Araştırmacılar, test boyunca davranışı kaydetmek için bir kamera ekleyerek, dişilerin Glytube'u bulup bulamadıklarını veya Glytube'u bulup bulamadıklarını, ancak beslenmediklerini belirleyebilirler.
Burada açıklanan test, sivrisineklerde beslenme davranışı ile ilgili birçok olağanüstü soruyu araştırmak için uyarlanabilir. Örneğin, belirli kan proteinlerinin katkısı, bileşen proteinlerin oranını veya yapay kan unundaki toplam protein konsantrasyonu değiştirilerek araştırılabilir. Birden fazla besleme etkinliğinden yemek boyutlarını değerlendirmek için, öğünleri benzersiz kaynaklardan ayırt etmek için farklı floresan spektrumlu boyalar eklenebilir37. Bu protokol ayrıca kanı algılayan ve yutulması için kullanılan iç ağız partilerini (yani stile) ve sivrisinek kan beslemeye başlamak için inerken cilde (yani labium, bacaklara) temas eden kemosentory ekleri ayrı ayrı uyarmak için de değiştirilebilir36. Örneğin, ligandlar doğrudan yemeğe eklenirse, membran sadece stylet tarafından delindiği için labium ve bacaklarla temas etmezler. Bunun yerine parafilm'in dış yüzeyine ligandlar eklenirse, yemekten ayrı kalırlar ve labium ve bacaklar ile temas edebilir36. Son olarak, kan besleme davranışının ayrıntılı kinetiği iyi anlaşılmamıştır ve burada sunulan yöntem, yüksek çözünürlüklü izlemeyi makine öğrenimi araçlarıyla birleştirerek hareket, duruş ve besleme dinamiklerinin davranışsal okumalarını çıkarmak içindeğiştirilebilir 38.
Bu protokol, sivrisinek kanı besleme ve kan sonrası besleme davranışlarını incelemek için farmakolojik ve genetik manipülasyonlar kullanan araştırmacılara hizmet etme yeteneği ile kullanıcı dostu ve uygun maliyetli olmayı amaçlamaktadır.

Değiştirilmiş kan yemeklerini yapay bir membran besleyici kullanarak Aedes aegypti sivrisineklerine beslemek ve her bir sivrisinek tarafından tüketilen yemek hacmini hassas bir şekilde ölçmek için bir protokol sunuyoruz. Bu protokol, yemeğin içeriğini değiştirmek veya farklı deneysel sivrisinek grupları tarafından tüketilen yemek hacmini karşılaştırmak için esnek bir şekilde uyarlanabilir.
Ae. aegypti sivrisinek, sarıhumma, dang humması, chikungunya ve Zika 1, 2 ,3,4,5gibi hastalıklara nedenolanpatojenleri yayarak küresel sağlığı tehdit eder. Ae. aegypti dişileri zorunlu kan besleyicilerdir; yumurta gelişimi için gerekli proteini elde etmek için omurgalı kan tüketmelidirler ve her bir yumurta debriyajı en az bir konak6, 7,8'dentam bir kan unu gerektirir. Dişi sivrisinek ilk olarak cildi stylet ile delerek ve konağın bağışıklık tepkisini tetikleyen bileşikler içeren tükürük enjekte ederek konağını ısırır9. Daha sonra midgut'una stile kan pompalayarak beslenir. Enfekte bir konaktan bir kan unu tüketirken, kan kaynaklı patojenleriyutabilir 6,8, daha sonra sivrisinek midgutundan tükürük bezlerine göç edebilir10. Bu şekilde enfekte olan dişi sivrisinekler, sonraki konakları ısırırken tükürükle birlikte patojen enjekte ederek hastalık yayabilir11,12. Kan besleme davranışının mekanizmalarını anlamak ve ölçmek, sivrisinek kaynaklı hastalıkların bulaşmasını kontrol etmede çok önemli adımlardır.
Sivrisinek yetiştirme ve deneyler için birçok laboratuvar protokolü, fareler, kobaylar veya insanlar dahil olmak üzere canlı hayvanları kan kaynağı olarak kullanır13,14,15,16. Canlı hayvanların kullanımı, etik kaygıların yanı sıra personel eğitimi, hayvan barınması ve bakımı ve Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (IACUC) politikalarına uyum için karmaşık gereksinimler getirmektedir. Ayrıca sivrisineklere teslim edilebilecek bileşik türlerini sınırlar, bu da gerçekleştirilebilecek çalışmaları kısıtlar17.
Tipik olarak konakçı cildi simüle etmek için bir membran sistemi kullanan yapay kan besleme aparatları, canlı konakçıların bakımı ihtiyacını atlatan kan besleme davranışlarını incelemek için yararlı araçlardır. Tam kan bir dizi satıcıdan satın alınabilir ve ısıtılmış, su ceketli yapay membran besleyiciler veya benzeri cihazlar kullanılarak sivrisineklere beslenebilir18,19. Bu protokolde, "Glytubes" olarak adlandırdığımız küçük, tek kullanımlık membran besleyicilerin kullanımını gösteriyoruz. Daha önce Costa-da-Silva ve ark. (2013)20tarafından yayınlanan bu membran besleyici, standart laboratuvar ekipmanlarından kolayca monte edilebilir, bu da kan yemeklerini ılımlı sayıda sivrisineklere ulaştırmak için idealdir ve daha büyük grupları veya birden fazla yemek formülasyonunu test etmek için ölçeklendirmek için basittir. Glytube, daha büyük yemek hacimleri gerektirebilecek ve tek bir öğün formülasyonunda büyük sivrisinek gruplarını toplu olarak beslemek için daha uygun olan diğer ticari yapay besleyicilere ucuz ve verimli bir alternatiftir21.
Bu protokol iki bölüm içerir: yapay yemeklerin hazırlanması/sunulması ve tüketimin ölçülmesi. İlk bölümde, Glytube'lar manipüle edilmiş diyetler sunmak için etkili bir araç olarak kullanılır. Bütün kan, bir kan unu yerine kan ikamelerinin etkilerini karşılaştırmak için tamamen yapay bir yemekle ikame edilebilir. Kogan (1990)22'den uyarlanan bir tarif burada sunulmaktadır, ancak birden fazla yapay yemek formülasyonu geliştirilmiştir23,24. Ayrıca, beslenme, farmakolojik bileşikleri enjeksiyondan daha az invaziv ve daha az zahmetli bir yöntemdir. Her öğün için gereken düşük toplam hacim (1-2 mL) nedeniyle, bu protokol pahalı reaktiflerin miktarlarını azaltmak için cazip bir teslimat yöntemi sağlar. Ae. aegypti dişiler kolayca adenozin ile tuzlu çözelti proteinsiz yemekler tüketin 5′-trifosfat (ATP)25,26, hangi tek öğün bileşenlerinin etkilerini ölçmek için bir taban çizgisi sağlar. Örneğin, Ae. aegypti'deki Neuropeptide Y benzeri reseptör 7 'nin (NPYLR7), protein bakımından zengin bir kan yemeğinden sonra konak arayan baskılamaya aracılık ettiği bilinmektedir ve NPYLR7 agonistleri proteinsiz bir tuzlu yemeğe eklendiğinde, dişi sivrisinekler tam kan tüketenlere benzer konak arayan baskılama sergilerler7.
İkinci bölümde, bireysel bir dişi sivrisinek tarafından tüketilen her yemeğin hacmini ölçmek için adımlar sunulmaktadır. Bu test floresan bazlıdır ve sadece karın distansiyonunun görsel değerlendirmesine dayanarak kadınların "beslenen" veya "beslenmemiş" olarak sınıflandırıldığı yöntemlerden daha yüksek çözünürlükte beslenme durumunu yakalar. Beslenmeden önce yemeğe floresan eklenerek, bireyler tarafından yutulan yemek hacimleri, her sivrisinek 96 kuyulu bir tabakta homojenleştirilerek ve floresan yoğunluğu okuma olarak ölçülerek ölçülebilir. Bu tahlil, yemek bileşimi veya sivrisineklerin genetik arka planı gibi değişkenlere yanıt olarak beslenme dinçliğindeki farklılıkları ölçebilir. Kesin niceleme ara öğün boyutları için kritik öneme sahiptir, örneğin kadınlara beslenme caydırıcıları içeren yetersiz yemekler sunulduğunda veya değişken boyutlarda sakkaroz yemekleri tükettiğinde27. Beslenen sivrisinekler, yemek büyüklüğü ölçülmesi sonrasında sonraki davranışsal tahliller için gerekliyse, bunun yerine anestezi edilmiş dişilerin gruplar halinde tartılması ve birey başına ortalama artan kütlenin tahmin edilmesiyle yemek büyüklüğü hesaplanabilir. Floresan işaretinden daha az kesin olmasına rağmen, tartım hala öğün hacminin toplu bir tahminini sağlar ve yemeğin doğurganlık veya sonraki konak cazibesi gibi aşağı akış süreçleri üzerindeki etkisinin incelenmesine izin verir. Kan unu boyutu değişkendir ve burada açıklanan yöntemlerle ölçülen11,28,29,yutmuş yemek boyutlarının sayısız faktöründen etkilenebilirken, önceki nicelemeler 7 ,30,31ile tutarlıdır.

<table><tbody><tr><td>15 mL konik tüpler</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-959-70C</td><td></td></tr><tr><td>3 mm çaplı borosilikat katı cam boncuk</td><td>MilliporeSigma</td><td>Z143928</td><td>Boncuk değirmeni homojenizatörü için kullanım için; Pelet havaneli öğütücü kullanılıyorsa gerekli değildir</td></tr><tr><td>32 oz. yüksek yoğunluklu polietilen (HDPE) plastik kap</td><td>VWR</td><td>89009-668</td><td>Gösterilen tahlilleri beslemek için kullanılan örnek sivrisinek kabı; Alternatif seçenekler kullanılabilir</td></tr><tr><td>50 mL konik tüpler</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-959-49A</td><td></td></tr><tr><td>96 oyuklu siyah polistiren plaka</td><td>ThermoFisher</td><td>12-566-09</td><td></td></tr><tr><td>96 oyuklu PCR plaka sızdırmazlık filmi</td><td>Bio-Rad</td><td>MSB1001</td><td>Alternatif seçenekler kullanılabilir</td></tr><tr><td>96 oyuklu PCR plakaları</td><td>Bio-Rad</td><td>HSP9621</td><td>Alternatif seçenekler kullanılabilir</td></tr><tr><td>Adenozin 5 ve prime;-trifosfat (ATP) disodyum tuzu hidrat</td><td>MilliporeSigma</td><td>A6419</td><td></td></tr><tr><td>Albümin (insan serumu)</td><td>MilliporeSigma</td><td>A9511</td><td></td></tr><tr><td>Alüminyum folyo</td><td>Fisher Scientific</td><td>01-213</td><td>Floresein kabına giren ışığı engellemek için alternatif seçenekler kullanılabilir</td></tr><tr><td>Balance</td><td>Fisher Scientific</td><td>01-911</td><td>Alternatif seçenekler kullanılabilir</td></tr><tr><td>Boncuk değirmeni homojenizatör</td><td>Qiagen</td><td>85300</td><td>Pelet havaneli öğütücü kullanılıyorsa gerekli değildir</td></tr><tr><td>Pamuk topu</td><td>Fisher Scientific</td><td>22456880</td><td>Nektar beslemesi için; alternatif seçenekler kullanılabilir</td></tr><tr><td>Defibrine koyun kanı</td><td>Hemostat Laboratuvarları</td><td>DSB100</td><td>Alternatif seçenekler kullanılabilir</td></tr><tr><td>Drosophila CO2 sineklik</td><td>Tritech Araştırma</td><td>MINJ-DROS-FP</td><td>Alternatif seçenekler kullanılabilir</td></tr><tr><td>Floresein</td><td>MilliporeSigma</td><td>F6377</td><td></td></tr><tr><td>Floresan plaka okuyucu</td><td>ThermoFisher</td><td>VL0000D0</td><td>Alternatif seçenekler kullanılabilir</td></tr>: <tr><td>Gamma-globulin (insan kanı)</td><td>MilliporeSigma</td><td>H7379</td><td></td></tr><tr><td>Gliserol</td><td>MilliporeSigma</td><td>G7893</td><td></td></tr><tr><td>Hemoglobin (insan)</td><td>MilliporeSigma</td><td>G4386</td><td></td></tr><tr><td>Laboratuvar sarma filmi - parafilm</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-374</td><td></td></tr><tr><td>Manyetik karıştırıcı</td><td>Fisher Scientific</td><td>90-691</td><td>Alternatif manyetik karıştırıcılar</td></tr> kullanılabilir <tr><td>96 oyuklu plaka için mikrosantrifüj</td><td>VWR</td><td>80094-180</td><td>Alternatif seçenekler kullanılabilir</td></tr><tr><td>Mikrosantrifüj Tüpleri</td><td>MilliporeSigma</td><td>2236412</td><td>Alternatif seçenekler kullanılabilir</td></tr><tr><td>Pelet havaneli öğütücü</td><td>VWR</td><td>KT749521-1500</td><td>Boncuk değirmeni homojenizatörü kullanılıyorsa gerekli değildir</td></tr><tr><td>Fosfat tamponlu çözelti (PBS)</td><td>Fisher Scientific</td><td>BW17-516F</td><td>Opsiyonel</td></tr><tr><td>Tıraş bıçakları</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-640</td><td>Kesimin daha iyi tutarlılığı için torna tezgahı gibi alternatif seçenekler kullanılabilir</td></tr><tr><td>Lastik bantlar</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Silikon boru</td><td>McMaster Carr</td><td></td><td>CO2 dağıtımı için bir sineklik kullanılıyorsa gereklidir</td></tr><tr><td>Sodyum bikarbonat (NaHCO3)</td><td>Fisher Scientific</td><td>S233</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum klorür (NaCl)</td><td>MilliporeSigma</td><td>S9888</td><td></td></tr><tr><td>Karıştırma çubukları</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-512</td><td>Alternatif manyetik karıştırma çubukları kullanılabilir</td></tr><tr><td>Çıkarılabilir kapaklı</td><td></td> <td>yarı saydam polipropilen saklama kutusu</td><td>Tahlilleri beslemek için kullanılan örnek kutu Vorteks</td></tr><tr><td>karıştırıcı</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Su banyosu</td><td></td><td></td><td>Alternatif ısıtma cihazı kullanılabilir</td></tr><tr><td>Beyaz 0,8 mm polyester cibinlik</td><td>Amerikan Ev & Alışkanlık A.Ş.</td><td>F03A-PONO-MOSQ-M008-WT</td><td>Alternatif seçenekler kullanılabilir</td></tr></tbody></table>

aedes aegypti sivrisineklerinde hayvansal türevli kan ve yapay yemeklerin beslenmesi ve Ölçülmesi

Feeding and Quantifying Animal-Derived Blood and Artificial Meals in Aedes aegypti Mosquitoes

Bazı sivrisinek türlerinin dişileri, yumurta gelişimi için gerekli protein bakımından zengin kan yemekleri elde etmek için omurgalı konakları ısırırken hastalıkları yayabilir. Laboratuvarda araştırmacılar, yemek kompozisyonunun manipülasyonuna izin veren membran besleyiciler aracılığıyla sivrisineklere hayvansal türevli ve yapay kan yemekleri teslim edebilir. Burada, Aedes aegypti sivrisineklerine kan ve yapay kan yemeklerini beslemek ve bireysel dişiler tarafından tüketilen hacmi ölçmek için yöntemler sunuyoruz.
Yapay / kan yemeklerinin hedefli beslenmesi ve nicelleştirilmesi, yemek bileşenlerinin sivrisinek davranışı ve fizyolojisi üzerindeki etkilerini test etmek, enjeksiyon olmadan farmakolojik bileşikler sunmak ve sivrisinekleri belirli patojenlerle enfekte etmek de dahil olmak üzere geniş kullanım alanlarına sahiptir. Beslenmeden önce yemeğe floresan boyası eklemek, sonraki öğün boyutunun ölçülmesini sağlar. Sivrisinekler tarafından tüketilen yemek hacmi, dişiler daha sonra davranış deneyleri için kullanılacaksa, ağırlıkla veya 96 kuyulu tabaklarda tek tek kadınları homojenleştirerek ve bir plaka okuyucusu test olarak bir plaka okuyucu kullanarak floresan seviyelerini ölçerek ölçülebilir. Yemek boyutu nicelemesi, yemek bileşenlerinin değiştirilmesinin yutlanan yemek hacmini değiştirip değiştirmediğini veya yemek tüketiminin sivrisinek suşları arasında farklılık gösterip değiştirmediğini belirlemek için kullanılabilir. Hassas yemek boyutu nicelemesi, konak cazibesi veya doğurganlık üzerindeki etkileri ölçenler gibi aşağı akış tahlilleri için de kritik öneme sahiptir. Burada sunulan yöntemler, günler boyunca yemek sindirimini izlemek veya her yemeğin tek bir sivrisinek tarafından tüketimini ölçmek için farklı öğünlere (nektar ve kan gibi) eklenen birden fazla ayırt edilebilir belirteç içerecek şekilde daha da uyarlanabilir.
Bu yöntemler, araştırmacıların yüzlerce bireysel sivrisinek tarafından tüketilen yemek hacmini karşılaştırmak için tek başına yüksek verimli ölçümler yapmalarına izin verir. Bu nedenle bu araçlar, çeşitli biyolojik soruları yanıtlamak için sivrisinek araştırmacıları topluluğu için geniş ölçüde yararlı olacaktır.

Şekil 1, Glytube'u monte etmek için bir şema sunarken, Şekil 2 burada açıklanan floresan bazlı tahlilleri kullanarak yemek boyutunu ölçmek için deneysel tasarıma genel bir bakış göstermektedir. Şekil 3, kan besleme deneyinden temsili floresan yemek boyutu ölçümleri sağlar. Şekil 4, Şekil 5ve Şekil 6, bu protokol kullanılarak ele alınabilecek biyolojik soruların bir örneğini göstermektedir. Protokolün uygulamaları geniş kapsamlıdır ve kan unu bileşimini değiştirmeyi, farmakolojik bileşikleri beslemeyi, en uygun alt kan yemeklerini veya daha küçük nektar öğünlerini hassas bir şekilde ölçmeyi ve sivrisinek genotipleri arasında beslenme davranışını karşılaştırmayı içerir.
Yemek hacmi hesaplamaları için standart bir eğri oluşturmak için, floresan okumaları, her biri beslenmemiş bir sivrisinek ve % 0.002 floresan içeren bilinen bir yemek hacmi içeren belirlenen referans kuyularından çizilir (Şekil 3A). Gıdasız sivrisineklerin negatif kontrol grubundan veya bir yemek sunan deneysel sivrisinek grubundan sivrisinekler içeren kalan kuyulardan gelen floresan okumaları, her sivrisinek tarafından tüketilen yemek hacmini (μL) ölçmek için bu standart eğri ile karşılaştırılır (Şekil 3B). Bu testteki temel okumaları doğrulamak için, kullanılmamış negatif kontrol grubundan sivrisineklere tüketilen μL pozitif bir değer atanmadığını teyit edilmelidir (Şekil 3B, sol). Deneysel gruptaki tüm kadınlara kan unu teklif edilse de, bazı sivrisinekler beslendi (Şekil 3B, orta) ve bazıları yapmadı (Şekil 3B, sağ). Bu sonuç, bu protokolden iki tür veri elde edilebileceğini göstermektedir: 1) belirli bir yemekle beslenen toplam dişilerin yüzdesi ve 2) belirli bir yemekle beslenen dişiler tarafından alınan hacim.
Bu protokol, çeşitli protein bileşimleri ile öğünleri sunmak ve ölçmek için kullanılabilir. Şekil 4A,B, ilave floresan içeren yemekler kullanılarak toplanan verileri gösterir. Beslenen sivrisineklerin oranı ve yutmuş oldukları yemek hacmi sırasıyla floresan okumalarından hesaplanmıştır. Bu okumalar son derece hassastır ve μL'nin hassas bir şekilde ölçülmesine izin verir, ancak sivrisineklerin gelecekteki canlı deneyler için kullanılamayacağı sınırlamasına sahiptir. Şekil 4C,D, floresansız yemekler sunulduktan sonra gözle beslenmiş veya beslenmemiş olarak puanlanan sivrisineklerle yapılan bağımsız bir deneyden toplanan verileri göstermektedir. Yemek büyüklüğü 5 sivrisinek grubundan ortalama ağırlık / dişi olarak hesaplandı. Bu ağırlık ölçümleri floresan ölçümlerinden daha az hassas olmasına rağmen, kadınların daha fazla canlı deney için kurtarılmasına ve kullanılmasına izin verir. Beslenen sivrisineklerin oranı, Şekil 4A ve Şekil 4C'ye yansıdığı gibi farklı deneysel günlerde değişebilir.
Şekil 5, sivrisinek konakçısı arama davranışını düzenleyen ilaçlar içeren öğünlerin tüketilen hacmini göstermektedir. Bu deneylerde, dişilere insan NPY Y2 reseptör agonisti TM30338'in 100 μM'si ile kan, salin + ATP veya salin + ATP yemekleri önerildi. Bu ilaç, Ae. aegypti NPY benzeri reseptörü 7'nin aktivasyonu yoluyla konak arama davranışını değiştirir. Yemek boyutlarının ölçülmesi, bu ilacın kan besleme sonrası davranış üzerindeki etkisini değerlendirmek için deneylerin yorumlanması için kritik öneme sahiptir, çünkü araştırmacının her kadın tarafından tüketilen dozu hesaplamasına izin verir.
Önceki örneklerde, dişiler kan veya yedek kan yemekleriyle beslendi ve bunların hepsi 3-5 μL öğünle sonuçlandı(Şekil 3, Şekil 4, Şekil 5). Bu floresan bazlı test, ortalama grup ağırlığı ölçümlerinden doğru bir şekilde ayırt edilemeyen daha küçük ve/veya daha değişken yemek boyutlarını ölçmek için de kullanılabilir. Şekil 6'da,Glytube'u% 0.002 floresan içeren% 10 sakkaroz ile doymuş bir pamuk topu ile değiştirerek nektar besleme davranışını ölçmek için aynı floresan nicelleştirme protokolü kullanılmıştır. Nektar şekerleri Glytube testinde sunulamaz, çünkü dişiler nektar şekerlerinin varlığını stylet ile tespit edemez ve beslemeye başlamaz27. Bu veriler, araştırmacının şeker yemeklerinin önceki çalışma34 (Şekil 6)ile uyumlu olarak kan yemeklerinden sürekli olarak daha küçük olduğunu belirlemesine izin verir.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61835/61835fig1v2.png"> Şekil 1: Sivrisineklere yemek yedirmek için kullanılan Glytube yönteminin kurulumu. (A) Sivrisineklere kan ve diğer öğünleri beslemek için kullanılan yapısız bir Glytube şeması. (B) Bir Glytube şeması, ağ kapaklı bir sivrisinek kabının üzerine sunuldu. Dişi sivrisinekler beslenmek için ağ kapağını delebilir. (C) Glytube tarafından verilen bir yemekte beslenmeden önce, sırasında ve sonra (alttan sağa) Glytube (üstte) ve dişi Aedes aegypti sivrisineklerinin fotoğrafları. Sivrisinekler, membran besleyiciye erişmek için kabını kaplayan ağdan delici olarak gösterilir. (D) Dişi Ae. aegypti sivrisineklerinin görünümünü gösteren fotoğraflar, suni kan unu (sağ, üst) veya salin + ATP yemeği (sağ, alt). Glytube yöntemi daha önce Costa-da-Silva ve ark. (C) ve (D) fotoğraflarında Alex Wild'ın izniyle çekilmiştir. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61835/61835fig1v2large.png" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61835/61835fig2v4.png"> Şekil 2: Glytube kan besleme protokolünden sonra yemek boyutunun nasıl ölçülecek şeması. (A) Sivrisineklere floresan (üst, deneysel grup) veya yemeksiz (alt, bozulmamış negatif kontrol grubu) bir yemek sunulmaktadır. (B) Besleme deneyi sonlandırıldıktan sonra 96 kuyulu bir tabağa tek tek sivrisinekler eklenir. (C) Standart eğri% 0.002 floresan içeren bilinen miktarda yemek kullanılarak oluşturulur. (D) Sivrisinekler tüketilen herhangi bir floresanı serbest bırakmak için homojenize edilir ve her kuyudaki floresan seviyeleri bir plaka okuyucu kullanılarak ölçülür. Bu floresan nicelleştirme yöntemi Liesch ve ark. (2013)34'ten değiştirilmiştir. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61835/61835fig2v4large.png" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61835/61835fig3v2.png"> Şekil 3: Floresan bazlı niceleme ile glytube kan besleme deneyi. (A) %0,002 floresan (y ekseni ölçeği = keyfi birimler) içeren bilinen bir öğün miktarına, el değmemiş kontrol grubundan bir sivrisineğin eklendiği kuyulardan elde edilen standart eğri ölçümleri. (B) Beslenmemiş kontrol grubundaki (sol, siyah, n = 40), kanla beslenen deney grubu (orta, kırmızı, n = 37) ve kanla beslenmeyen deney grubu (sağ, kırmızı, n = 23) için floresan okumaları kullanılarak hesaplanan yemek hacmi. Her nokta, tek bir dişiden gelen bir ölçümü temsil eder. Veriler aralıklı ortanca olarak gösterilir. Harfler istatistiksel olarak farklı grupları gösterir, Kruskal-Wallis Dunn'ın çoklu karşılaştırması ile test eder, p&lt;0.01. Bu veriler Jové ve ark. (2020)27. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61835/61835fig3v5large.png" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61835/61835fig4v2.png"> Şekil 4: Farklı protein bileşimine sahip öğünlerin nicelemesi. Dişilere koyun kanı (kırmızı), insan kanı proteinli yapay kan (Kogan (1990)22) (turuncu) veya proteinsiz salin + ATP yemeği (aqua)7yemekleri sunuldu. (A) Beslenen kadınların yüzdesi floresan okumaları kullanılarak puan aldı. Her puan 12-16 kadından oluşan bir grubu temsil eder. Veriler, aralıkları olan ortancalar olarak gösterilir, n = 12. (B) Floresan okumaları kullanılarak hesaplanan yemek hacmi. Her nokta, Şekil 4A'dantek bir denemede tek bir dişiden bir ölçümü temsil eder. Veriler, aralıkları olan ortancalar olarak gösterilir, n = 12. (C) Yapay membran beslemeden sonra tamamen saran kadınların yüzdesi, gözle puanlandı. Her nokta, 20-30 kadından oluşan gruplardan elde edilen kadınların yüzdesini temsil eder. Veriler, aralıkları olan ortancalar olarak gösterilir, n = 23. (D) Beslenme durumu göz göre göre puanlandıktan sonra kilo/kadın olarak puanlanan yemek ölçüleri. Ağırlıklar 5 sivrisinek grubunun ortalaması olarak hesaplandı. Veriler, aralıkları olan ortancalar olarak gösterilir, n = 23. A–D: Harfler istatistiksel olarak farklı grupları gösterir, Kruskal-Wallis Dunn'ın çoklu karşılaştırması ile test eder, p&lt;0.05. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61835/61835fig4v5large.png" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61835/61835fig5v2.png"> Şekil 5: Farmakolojik bileşiklerle öğünlerin nicelemesi. Dişiler aynı büyüklükteki koyun kanı (kırmızı), salin + ATP (aqua) ve salin + ATP + 100 μM doz insan NPY Y2 reseptör agonist TM30338 (koyu mavi) tüketir. Floresan okumalar kullanılarak hesaplanan yemek hacmi. Her nokta, tek bir dişiden gelen bir ölçümü temsil eder. Veriler, aralıkları olan ortancalar olarak gösterilir, n = 12. Harfler istatistiksel olarak farklı grupları gösterir, Kruskal-Wallis Dunn'ın çoklu karşılaştırmasıyla test eder, p&lt;0.05. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61835/61835fig5v5large.png" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61835/61835fig6v2.png"> Şekil 6: Daha küçük nektar yemeklerinin nicelemesi. (A) Nektar besleme tahlil şeması. (B) Vahşi tip kadınlar için floresan okumaları kullanılarak hesaplanan yemek hacmi, nektar besleme testinde her biri% 0.002 floresan içeren su (mavi, n = 36) veya% 10 sakkaroz (yeşil, n = 53) yemekleri sundu. Her nokta, tek bir dişiden gelen bir ölçümü temsil eder. Veriler aralıkları olan ortancalar olarak gösterilir. Harfler istatistiksel olarak farklı grupları gösterir, Mann-Whitney testi, p&lt;0.05. Bu veriler Jové ve ark. (2020)27. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61835/61835fig6v5large.png" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td colspan="4">Yapay Kan Unu</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>Stok Çözeltisinin Konsantrasyonu (mg/mL)</td>
			<td>Yemekte Stok Çözeltisinin Hacmi (μL/mL)</td>
			<td>Son Öğün Konsantrasyonu (mg/mL)</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="4">Protein Bileşenleri*</td>
		</tr>
<tr>
<td>γ-Globulinler</td>
			<td>50</td>
			<td>300</td>
			<td>15</td>
		</tr>
<tr>
<td>Hemoglobin</td>
			<td>35</td>
			<td>230</td>
			<td>8</td>
		</tr>
<tr>
<td>Albümin</td>
			<td>300</td>
			<td>340</td>
			<td>102</td>
		</tr>
<tr>
<td>Toplam Protein</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>125</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="4">Protein Olmayan Bileşenler</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>Stok Çözeltisinin Konsantrasyonu (mM)</td>
			<td>Yemekte Stok Çözeltisinin Hacmi (μL/mL)</td>
			<td>Son Öğün Konsantrasyonu (mM)</td>
		</tr>
<tr>
<td>Nacl</td>
			<td>γ-globulin stokunda</td>
			<td>-</td>
			<td>5-10</td>
		</tr>
<tr>
<td>NaHCO3
</td>
			<td>γ-globulin stokunda</td>
			<td>-</td>
			<td>120</td>
		</tr>
<tr>
<td>Atp</td>
			<td>200</td>
			<td>5</td>
			<td>1</td>
		</tr>
<tr>
<td>Su</td>
			<td>-</td>
			<td>125</td>
			<td>-</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="4">*Protein bileşenleri, 400 mM NaHCO3'te çözünen ve değişken miktarda NaCl (%2-4) içeren γ-Globulinler hariç, çift damıtılmış suyun stok çözeltisinde hazırlanır. üründe.</td>
		</tr>
</tbody></table>Tablo 1: Yapay kan yemekleri hazırlama tarifi (Kogan'dan uyarlanmıştır (1990)22). Yapay kan, insan kanında düzenli olarak bulunan protein ve protein dışı bileşenlerden oluşur ve bu bileşenlerin oranlarını değiştirme seçeneği sunar. Sivrisinekler yapay kanla besledikten sonra yumurta üretebilir7,22.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td colspan="4">Tuzlu Su Yemeği</td>
		</tr>
<tr>
<td>Bileşen</td>
			<td>Stok Çözeltisinin Konsantrasyonu (mM)</td>
			<td>Yemekte Stok Çözeltisinin Hacmi (μL/mL)</td>
			<td>Son Öğün Konsantrasyonu (mM)</td>
		</tr>
<tr>
<td>Nacl</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
		</tr>
<tr>
<td>NaHCO3
</td>
			<td>400</td>
			<td>300</td>
			<td>120</td>
		</tr>
<tr>
<td>Atp</td>
			<td>200</td>
			<td>5</td>
			<td>1</td>
		</tr>
<tr>
<td>Su</td>
			<td>-</td>
			<td>695</td>
			<td>-</td>
		</tr>
</tbody></table>Tablo 2: ATP ile tuzlu yemek tarifi (Duvall ve ark. (2019) 7'den uyarlanmıştır). Protein içermeyen tuzlu su yemekleri, kan beslemeden sonra meydana gelen karın distansiyonunu taklit ederken, ancak proteinler yutulduğunuzda ortaya çıkan yumurta gelişimini tetiklemeden sivrisineklere ilgi bileşikleri sunmak için kullanılabilir.

Bu protokolün amacı, yapay bir membran besleyici aracılığıyla Aedes aegypti sivrisineklerine hayvansal türevli ve yapay kan yemekleri sunmak ve yutturılan yemek hacmini tam olarak ölçmektir.

Aedes aegypti Sivrisineklerinde Hayvansal Türevli Kan ve Yapay Yemeklerin Beslenmesi ve Ölçülmesi

Females of certain mosquito species can spread diseases while biting vertebrate hosts to obtain protein-rich blood meals required for egg development. In ...

Bu teknik, araştırmacıların yüzlerce bireysel sivrisinek tarafından tüketilen yemek hacimlerini karşılaştırmak için beslemelerine ve tek başlarına yüksek verimli ölçümler yapmalarına olanak tanır. Yemeğin içeriğini değiştirmek veya farklı deney grupları tarafından tüketilen hacmi karşılaştırmak için uyarlanabilir olabilir. Bu protokolün kullanıcı dostu ve düşük maliyetli olması amaçlanmıştır.Farmakolojik ve genetik manipülasyonlar için, sivrisinek kanıyla beslenmeyi ve sel sonrası beslenme davranışını incelemek. Organizasyon bu protokol için kritik öneme sahiptir. Kurulumu ve reaktifleri önceden hazırlayın, böylece yemekleri sivrisineklere hızlı bir şekilde teslim edebilirsiniz.Başlamak için, 1.98 ila iki mililitre defibrine koyun kanını 15 mililitrelik konik bir tüpe aktarın. Yemek boyutunun floresan bazlı miktar tayini yapılıyorsa, floresein çözeltisini% 0.002'lik bir nihai konsantrasyona ekleyin, kan hacmini eklenen floresein ile aynı miktarda azaltın. Referans standart eğrisini oluşturmak için son yemek formülasyonunun bir mililitresini saklayın.Floresein içeren tüm yemekler ve solüsyonlar alüminyum folyoya sarılmalı veya karanlıkta tutulmalıdır. Proteinsiz tuzlu yemekler hazırlamak için, 600 mikrolitre 400 milimolar sodyum bikarbonatı 15 mililitrelik konik bir tüpte 1.39 mililitre çift damıtılmış su ile birleştirin. Yemek boyutunun floresan bazlı miktar tayini daha sonra gerçekleştirilecekse, floresein çözeltisini% 0.002'lik bir nihai konsantrasyona ekleyin.Referans standart eğrisini oluşturmak için% 0.002 floresein içeren son yemek formülasyonunun en az bir mililitresini saklayın. Hazırlanan yemekleri teslim etmeye hazır olana kadar bir kenara koyun. Floresein içeren tüm yemekler ve solüsyonlar alüminyum folyoya sarılmalı veya karanlıkta tutulmalıdır.Deney dişi sivrisinek grubunu bir kabın içine yerleştirin ve üzerlerini ağ ile örtün. Bu dişilerin beslenme odasına alışmasına izin verin. Yemek verilmeyecek olan beslenmemiş sivrisineklerden oluşan bir kontrol grubunu bir kenara koyun.Bir GLI tüpü oluşturmak için 50 mililitrelik konik bir tüpü 40 mililitre% 100gliserol ile doldurun. Sızıntı olasılığını en aza indirmek için açık konik boruyu iki parça parafilm ile kapatın. İsteğe bağlı olarak, parafilmi lastik bantlar kullanarak yerinde tutun.Delik veya boşluk olmadığından emin olmak için tüpü ters çevirin. Yemek dağıtım cihazını oluşturmak için, keskin bir tıraş bıçağı veya bir lave kullanarak konik tüpün vidalı kapağında ortalanmış 2,5 santimetrelik bir delik açın. Bir parça parafilmi eşit şekilde gerin, böylece kabaca iki katına çıkar.Parafilm, sivrisineklerin kolayca delebileceği kadar ince olmalı, ancak sızıntı olmamalıdır. Deliği tamamen kapatmak için vidalı kapağın dış yüzeyini parafilm ile kapatın ve kapağı bir kenara koyun. Hem kapalı gliserol tüpünü hem de kan ve tuzlu yemekleri ve 42 ila 45 santigrat derece su banyosunu en az 15 dakika ısıtın.Isıtılmış yemeğe ATP ekleyin ve iyice girdaplayın. Isıtılmış yemekten iki mililitreyi vidalı kapağın iç haznesine pipetleyin ve ters ısıtılmış gliserol dolgulu konik tüpü yavaşça üzerine yerleştirin. Kısmen, yemekle birlikte kapağı, yemeğin veya gliserolün sızmasını önleyecek kadar gliserol dolu tüpe vidalayın.Monte edilmiş gly tüpünü sivrisinek kabının üzerine yerleştirin, karbondioksit uygulayın ve maksimum besleme oranlarına ulaşmak için sivrisineklerin en az 15 dakika beslenmesine izin verin. Beslemeden sonra, GLI tüp kapağı biyolojik tehlike atığı olarak atılabilir veya düşük yüzdeli bir ağartıcı solüsyonuna batırıldıktan ve suda iyice durulandıktan sonra yeniden kullanılabilir. Bir referans standart eğrisi oluşturmak için, deney sivrisinek grubuna sunulan% 0.002 floresein içeren aynı yemeğin seri bir seyreltmesini hazırlayın.Standart eğrinin ilk çözümünü yapmak için, 950 mikrolitre PBS'ye% 0.002 floresein içeren 50 mikrolitre yemek ekleyin ve iyice girdaplayın. Standart eğri çözeltilerinin geri kalanı için iki kat seyreltme gerçekleştirin ve her seyreltmeden önce iyice girdap yapın. Standart eğri çözeltilerinin her birinden 100 mikrolitreyi, 96 oyuklu bir PCR plakasının ilk sütunundaki sekiz oyuğun her birine pipetleyin.Aynı sekiz kuyucuğun her birine anestezi uygulanmış veya donmuş beslenmemiş kontrol sivrisineği ekleyin. Tekrarlanan bir ölçüm için plakanın ikinci sütununda tekrarlayın. Beslenmemiş kontrol ve deney grupları için kalan her kuyuya 100 mikrolitre PBS ekleyin.Negatif bir kontrol olarak, plakanın sonraki iki sütunundaki her bir oyuğa beslenmemiş bir sivrisinek ekleyin. Yemek sunulan deney gruplarından kalan kuyucuklara kuyu başına bir sivrisinek ekleyin. Boncuk değirmeni homojenizatörü ile dokuyu bozuyorsanız, her kuyucuğa üç milimetre borosilikat katı cam boncuk ekleyin.Plakayı dikkatlice kapatın ve dokuyu bozun, ardından lizatı toplamak için plakayı 2000 RPM'de bir ila iki dakika santrifüjleyin. Her kuyucukta 180 mikrolitre PBS bulunan 96 oyuklu siyah bir plaka hazırlayın. Daha sonra, her bir kuyucuğa 20 mikrolitre lizat ekleyin ve karıştırın.485 uyarma ve 520 emisyon kanalına sahip bir plaka okuyucu kullanarak floresein yoğunluğunu ölçün. Bilinen yemek hacmini karşılık gelen floresan yoğunluğu ölçümüne göre çizerek referans standart eğrisini oluşturun. Oluşturulan referans standart eğriyi kullanarak, deney grubu sivrisineklerinin her biri tarafından yutulan yemek hacmini tahmin edin.Temel doku otofloresansını düzeltmek için beslenmemiş negatif kontrol grubunun ortalama floresan yoğunluğu okumasını, her bir deney grubu bireyinin floresan yoğunluğu okumasından çıkarın. Bir kan besleme deneyinden floresein yemek boyutunu ölçmek için, beslenmemiş bir sivrisinek ve% 0.002 floresein içeren bilinen bir yemek hacmini içeren belirlenmiş referans kuyularından floresan okumaları çizilerek standart bir eğri oluşturuldu. Beslenmeyen negatif kontrol grubundan sivrisinekler içeren kalan kuyulardan veya bir yemek sunulan deney sivrisinek grubundan elde edilen Floresan Okumaları, tüketilen yemek hacmini ölçmek için bu standart eğri ile karşılaştırılır.Deney grubundaki tüm dişilere kan yemeği verilmesine rağmen, bazı sivrisinekler beslendi, bazıları beslenmedi. Bu protokol, çeşitli protein bileşimlerine sahip yemekleri iletmek ve miktarını belirlemek için kullanılabilir. Florisin eklenmiş yemekler kullanılarak toplanan veriler burada gösterilmektedir.Sivrisineklerin florisin içermeyen yemekler sunulduktan sonra gözle beslenen veya beslenmeyenler olarak puanlandığı bağımsız bir deney de yapıldı. Bu protokol, sivrisinek konakçılarının arama davranışını düzenleyen ilaçlarla tüketilen öğün hacmini belirlemek için kullanıldı. Bu deneylerde, dişilere bir insan NPY iki reseptör agonisti ile tuzlu bir ATP yemeği önerildi.Bu teknik aynı zamanda, gly tüpünü %0.002 floresein içeren %10 sakaroz ile doyurulmuş bir pamuk topuyla değiştirerek nektar besleme davranışını ölçmek için de kullanıldı ve grup ağırlığı ölçümlerinden doğru bir şekilde ayırt edilemeyen daha küçük veya daha değişken yemek boyutlarını ölçmek için kullanılabileceğini gösterdi. Bu protokolü gerçekleştirirken dikkat edilmesi gereken en önemli şey, numuneleri etkinlikler halinde düzenlemek ve standart eğriyi oluşturmak için beslenmemiş sivrisinekleri ve her öğünden bir ML'yi bir kenara bırakmaktır. Bu prosedürü takiben, hayvanların kanla beslendikten sonraki davranışları gözlemlenebilir ve sindirim izlenebilir.Bu yöntem, araştırmacıların genetiği değiştirilmiş sivrisineklerde yemek tüketimindeki değişiklikleri değerlendirmelerine olanak tanır. Ayrıca, ilaçları sivrisineklere vermek ve davranış üzerindeki etkilerini test etmek için basit, hızlı ve invaziv olmayan bir yol sağlar.

feeding-quantifying-animal-derived-blood-artificial-meals-aedes

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Dang virüsü için potansiyel refrakter olarak bir gen tespit edildikten sonra, bu sivrisinek içinde viral enfeksiyonların önlenmesinde rolü için değerlendirilmesi gerekmektedir. Bu protokol, dang sivrisinek enfeksiyonların ölçüde test nasıl göstermektedir. Kültür, membran beslenmesi sivrisinek insan kanı virüs büyüyor ve sivrisinek midgut viral titreleri assaying teknikler gösterilmiştir.

Dang Enfeksiyonlar Sivrisinekler (A. aegypti) ve Enfeksiyon Fenotip belirlenmesi için protokol

Alphavirus uyum sistemlerini kullanarak in vitro ve erişkin sivrisinek floresan gazetecilere ifade etmek için yöntemler açıklanmıştır. Bu teknik, yerine ya da ek olarak bir muhabir ilgi herhangi bir protein ifade etmek için adapte olabilir.

Alphavirus uyum Sistemi: Sivrisinek Vektörler Enfeksiyon görselleştirme için Araçlar

Bu video, dişi sivrisinekler üzerinde yeni etki modlarına sahip test bileşiklerinin mortalitesini ve doğurganlığını değerlendirmek için bir kanla besleme testini göstermektedir. Bu teknik, dirençli sivrisinek popülasyonunu öldürmek ve hastalığın yayılmasını kontrol etmek için yeni böcek ilacı sınıflarının taranmasına yardımcı olur.

Sivrisinek Besleme Deneyi: Yetişkin Dişi Sivrisineklerin Mortalitesi ve Doğurganlığı Üzerindeki Test Bileşiği Etkilerini Değerlendirmek İçin Bir Yöntem

Virüs iletim kaynaklı sivrisinek verimli kontrol ilgili sivrisinekler vektör potansiyelini bilgisine özel ilgi içindir. Biz zorla salya vektör yetkinlik Aedes albopictus ve üç farklı Culex takson Zika virüs iletimi için analiz etmek için bir yöntem olarak tanımlamak.

Salya vektör yetkinlik sivrisinek analiz etmek için bir yöntem olarak zorla

Bu iletişim kuralı biz standart ve birkaç yıl boyunca belirli miktarda nükleik asitler, sivrisinekler ve evi sinekler hemolymph doğrudan teslim etmek için kullanılan bir mikroenjeksiyon metodoloji açıklar. Bu iletişim kuralı en az enjeksiyon mortalite sonuçları ve ilişkili doz ölçümleri verimlilik sağlar.

Tekrarlanabilir dsRNA mikroenjeksiyon ve Oviposition Bioassay sivrisinekler ve evi sinekler

Anopheles sivrisineklerini esaret altında beslemek için kansız yapay diyet formülasyonu için bir protokol sunulmuştur. Bu diyet omurgalı kan benzer bir performansa sahiptir ve oogenez ve yumurta olgunlaşma tetikler ve canlı yetişkin döl üretir.

A Blood-Free Diyet Arka Anopheline Sivrisinekler için

Sunulan protokol, Aedes aegypti sivrisinek popülasyonlarının Zika gibi belirli bir virüs için vektör yeterliliğini bir muhafaza ortamında belirleyebilir.

Zika Virüsü Kullanan Aedes aegypti Sivrisineklerinde Vektör Yetkinlik Analizleri

Açıklanan, yumurtaları saymak ve 24 kuyu doku kültürü plakası kullanarak bireysel sivrisineklerin kuluçka oranlarını belirlemek için zaman ve yerden tasarruf sağlayan bir yöntemdir, bu da doğurganlık ve doğurganlık testlerinin ölçeğini ve hızını önemli ölçüde artırabilir.

24 Kuyu Doku Kültürü Plakası (EAgaL Plakaları) kullanılarak Aedes aegypti için Geliştirilmiş Doğurganlık ve Doğurganlık Tahlilleri

Standart membran besleme testi (SMFA), potansiyel sıtma önleyici bileşiklerin değerlendirilmesi ve tanımlanması için altın standart olarak kabul edilir. Bu yapay besleme sistemi, bu tür bileşiklerin Plasmodium falciparum parazitinin yoğunluğu ve prevalansı üzerindeki etkilerini daha fazla değerlendirmek için sivrisinekleri enfekte etmek için kullanılır.

Anofellerde Plasmodium falciparum Enfeksiyonunun Tespiti için Standart Membran Besleme Testi

Oral beslenme ve intratorasik enjeksiyon enfeksiyonunu içeren bu metodoloji, midgut ve / veya tükürük bezi bariyerlerinin arbovirüs enfeksiyonu üzerindeki etkisini etkili bir şekilde değerlendirebilir.

Yetişkin Sivrisineklerde Oral Beslenme ve Mikroenjeksiyon ile Deneysel Viral Enfeksiyon

Mevcut protokol, Aedes aegypti sivrisineklerinde doğurganlık, kanat boyutu, doğurganlık, cinsiyet oranı, canlılık, gelişme süreleri, erkek katkısı ve yetişkin ömrü dahil olmak üzere ortak yaşam parametresi verilerinin nasıl ölçüleceğini açıklamaktadır. Bu ölçümler, transgenik sivrisineklerin uygunluğunu değerlendirmek için kullanılabilir.

Transgenik Aedes aegypti Sivrisineklerinde Kondisyon Maliyetlerinin Ölçülmesi

Keşfedin Aedes aegypti sivrisineklerinde hayvansal türevli kan ve yapay yemeklerin beslenmesi ve ölçülmesi yöntemini. Bu protokol, yüksek verimli ölçümlerle besin hacmini hassas şekilde belirleyerek vektör biyolojisi araştırmalarını destekler.

Aedes aegypti Sivrisineklerinde Hayvansal Türevli Kan ve Yapay Yemeklerin Beslenmesi ve Ölçülmesi

Daha fazla video keşfet