Name: Sessiz İnsan Hematopoetik Kök Hücrelerini Korumak İçin Bir Kültür Yöntemi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-05-17T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 14 s
Description: Keşfedin, sessiz insan hematopoetik kök hücrelerini kemik iliği mikroçevresini taklit ederek in vitro koruma yöntemini. Bu protokol, araştırmacıların HSC davranışlarını fizyolojik koşullara yakın ortamda incelemesine olanak tanır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Teknik destek ve laboratuvar yönetimi için M. Haraguchi ve S. Tamaki'ye ve fotoğraf çektirdiği için K. Shiroshita'ya teşekkür ederiz. HK kısmen MEXT/JSPS'den KAKENHI Hibesi (19K17847 hibesi) ve Ulusal Küresel Sağlık ve Tıp Merkezi tarafından desteklendi. KT kısmen MEXT/JSPS (hibe no. 18H02845 ve 18K19570), Ulusal Küresel Sağlık ve Tıp Merkezi (hibe no. 26-001 ve 19A2002), AMED (hibe no. JP18ck0106444, JP18ae0201014 ve JP20bm0704042), Ono Tıbbi Araştırma Vakfı, Kanzawa Tıbbi Araştırma Vakfı ve Takeda Bilim Vakfı.

Protokol, Ulusal Küresel Sağlık ve Tıp Merkezi'nin yönergelerine uyar. Fareler üzerinde yapılan tüm deneysel prosedürler Ulusal Küresel Sağlık ve Tıp Merkezi hayvan deney komitesi tarafından onaylanmıştır. NOT: Protokole genel bir bakış Şekil 1'de gösterilmiştir.
1. Lipid hazırlığı
<ol><li>Aşağıdaki lipitleri belirtilen konsantrasyonlarda cam tüplerde metanolde çözün: sodyum palmitat, 16 mg / mL; sodyum oleat, 30 mg/mL; ve kolesterol, 4 mg/ mL. Lipid çözeltisini -30 °C'de saklayın ve kullanmadan önce numuneyi çözün.</li>
	<li>1.1. adımda hazırlanan lipid çözeltilerini, 100 μg/mL palmitat, 100 μg/mL oleat ve 20 μg/mL kolesterolün son konsantrasyonunu elde etmek için gerekli dozlarda taze bir cam tüpte karıştırın. Örneğin, 10 mL kültür ortamı hazırlarken, cam tüpte 62,5 μL palmitat çözeltisi, 33 μL oleat çözeltisi ve 50 μL kolesterol çözeltisini karıştırın.</li>
	<li>Azot gazını lipit çözeltisi(Şekil 2A ve 2B)ile geçirerek metanol buharlaştırın. Azot gazı yoksa, pipet yardımı kullanarak çözeltiden hava geçirin.</li>
	<li>Cam tüpü 37 °C'de bir su banyosunda ısıtarak kalan metanolleri tamamenbuharlaştır (Şekil 2C). NOT: Kapalı alanda yüksek konsantrasyondaN 2 gazı kullanımı potansiyel olarak zararlıdır. Metanol buharlaşmak için protokolde kullanılan hacim sınırlı olmasına ve bu nedenle güvenli olarak kabul edilmesine rağmen, beklenmedik bir gaz sızıntısı meydana gelmesi durumunda odanın yeterince havalandırılması ve potansiyel olarak yüksek konsantrasyonlarda N2 gazının etiketlenme alanları önemlidir.</li>
</ol>2. Orta hazırlık
<ol><li>Dulbecco'nun modifiye Eagle orta (DMEM)/F12 ortamını (HEPES ve glutamin ile) hazırlayın. Orta ila son konsantrasyona sırasıyla 50 birim ve 50 μg/ mL'lik penisilin ve streptomisin sülfat ekleyin. Antibiyotik içeren DMEM/F12 ortamı en az 2 ay boyunca 4 °C'de saklanabilir.</li>
	<li>Dulbecco'nun modifiye Eagle ortamına (DMEM)/F12 ortamına (HEPES ve glutamin ile) %4 w/v sığır serum albümini (BSA) ekleyin.</li>
	<li>NaOH çözümünü kullanarak ortamın pH'ını pH 7.4-7.8'e ayarlayın, genellikle pH 7.6'ya ayarlayın.</li>
	<li>1. adımda hazırlanan cam boruya ortamı ekleyin. Maksimum çözünürlüğe sahip bir çözüm elde etmek için 3-15 mL ortam eklenmesi önerilir.</li>
	<li>Lipitleri sonication ile tamamen çözün (optimal: 20 dakikadan fazla sonication). BSA ve lipitler çözüldükten sonra, numune -80 °C'de saklanmalı ve 2 ay içinde kullanılmalıdır. Kullanmadan hemen önce çözün.</li>
	<li>DMEM/F12'ye insülin, transferrin, sodyum selenit ve etanol amin (ITS-X) karışımının 1/1.000'ini ekleyin. Karışık ortamı 0,22 μm filtre kullanarak filtreleyin ("kültür ortamı" olarak belirlenmiştir). Kullanmadan önce, kültür ortamına her biri 3 ng/mL'lik son konsantrasyonda insan kök hücre faktörü (SCF) ve insan trombopoietin (TPO) ekleyin. Sitokinler ve ITS-X ekledikten sonra ortam depolanamaz.</li>
	<li>Boyama tamponu: Ca ve Mg içermeyen fosfat tamponlu saline (PBS) %10 FCS ekleyin. Bu çözelti 2 hafta boyunca 4 °C'de saklanabilir.</li>
	<li>Çözülmüş ortam: DMEM/F12'ye %10 FCS ekleyin. Bu çözüm tek kullanımlıktır.</li>
	<li>Sitokin stok çözeltisi: Her bir insan SCF'sini veya insan TPO'larını PBS'de (Ca- ve Mg-free) 20 μg/ mL'de çözün. Bu çözelti -80 °C'de aktivite kaybı olmadan en az bir yıl saklanabilir. Çözdükten sonra, stok çözeltisini 4 °C'de saklayın ve 1 ay içinde kullanın. NOT: BSA'daki kirleticilerin değişimini önlemek için her satın alma işleminden sonra lotu inceleyin. Farklı BSA partileri ile aynı anda kültür HSC'leri ve aşağıda açıklandığı gibi 7. BSA toplu işlemi CD34+ hücrelerinin düşük bir sayısını veya sıklığını gösteriyorsa (örneğin, giriş hücresi sayısının yarısından az), bu toplu işlemi kullanmaktan kaçının.</li>
</ol>3. İnsan kemik iliği CD34+ hücrelerinin hazırlanması
<ol><li>İnsan CD34+ kemik iliği hücreleri satın alın ve hücreleri kullanıma kadar sıvı nitrojende saklayın. Alternatif olarak, sağlıklı bir gönüllüden veya taze kordon kan hücrelerinden alınan kemik iliği hücreleri, enstitü etik komitesinin onayı ve donör onayı ile kullanılabilir.</li>
	<li>37 °C'lik su banyosunda 15 mL konik tüpte 10 mL çözünme ortamı ısıtın.</li>
	<li>Donmuş hücreleri 2 dakika içinde 37 °C'lik bir su banyosunda şişelerde çözün. Kirleticileri gidermek için şişeyi% 70 etanol ile sildikten sonra, hücreleri adım 3.2'den önceden ısıtılmış ortamı içeren 15 mL konik tüpe aktarın.</li>
	<li>15 mL'lik tüpü oda sıcaklığında 15 dakika boyunca 200 × g'da santrifüjlayın. Peletin sağlam kalması için süpernatantı dikkatlice emiş edin (< 50 μL orta bırakır). Kalan ortamla hücreleri yeniden biriktirin ve buz üzerinde 1,5 mL'lik bir tüpe aktarın. NOT: Göz veya yaralı doku da dahil olmak üzere doğrudan mukozada insan kaynaklı örneklere maruz kalmak, bilinen veya bilinmeyen patojenler tarafından enfeksiyona neden olabilir; bu nedenle, insan hücrelerini kullanırken eldiven ve gözlük önerilir. Satın alınan CD34+ hücreleri hepatit B virüsü (HBV), hepatit C virüsü (HCV) ve insan immün yetmezlik virüsü 1 (HIV1) için negatif test etse bile, maruz kalma insidansı meydana gelirse kurumsal yönergelere göre dikkatli izleme yapılmalıdır. İnsan hücrelerine maruz kalan malzemeleri elden çıkarmak için kurumsal kurallara uyun.</li>
</ol>4. HSC'leri Sıralama
<ol><li>Hücreleri florokrom konjuge antikorlarla etiketle. 50 μL boyama tamponu artı 10 μL anti-CD34-FITC, 2 μL anti-CD38-PerCP-Cy5.5, 5 μL anti-CD90-PE-Cy7 ve 10 μL anti-CD45RA-PE karıştırın. Hücre peletini antikor karışımına yeniden koyun. Karanlıkta 4 °C'de hücreleri 30 dakika kuluçkaya yatırın.</li>
	<li>Antikorları yıkamak için 1 mL boyama tamponu ekleyin. Tüpleri 340 × g'da 4 °C'de 5 dakika santrifüj edin. Üstnatant atın.</li>
	<li>Hücre peletini 0,5 mL boyama tamponu + % 0,1 propidium iyodür içinde yeniden sunun. Süspansiyonu 40 μm filtre kullanarak 5 mL'lik bir tüpe aktarın.</li>
	<li>PI - CD34 + CD38-CD90+CD45RA- fraksiyonu içindeki FENotipik HSC'leri FACS Aria-IIIu kullanarak kapılayın ve hücreleri 500 μL kültür ortamıyla dolu 1,5 mL'lik bir tüpe ayırın (Şekil 3). Şekil 3'te gösterilen gating stratejisini kullanarak, CD34+ hücrelerinin ~%10'unun fenotipik HSC'ler olması beklenir. NOT: Gating stratejisi, sağlıklı bireylerden CD34 + CD38- fraksiyonundaki soy işaretleyicilerin düşük ifadesi göz önüne alındığında soy işaretleyici lekeleme atlanırken daha önce açıklandığı gibi16 olarak gerçekleştirilir17 .</li>
	<li>Sıralanmış hücreleri 340 × g'da 4 °C'de 5 dakika santrifüj edin ve süpernatantı atın. Peletin sağlam kalmasını sağlamak için süpernatantı dikkatlice emiş edin.</li>
	<li>Sıralanmış hücreleri kültüre kadar buzda saklayın. NOT: Spektral örtüşmenin floresan telafisi ilk deney sırasında yapılmalıdır.</li>
</ol>5. Hücre kültürü
<ol><li>2. adımda hazırlanan sitokinleri içeren kültür medyasının 200 μL'sini düz tabanlı 96 kuyu plakalarına aktarın.</li>
	<li>Ortamın buharlaşmasını önlemek için, kullanılmayan tüm kuyuları 100-200 μL PBS ile doldurun.</li>
	<li>Sıralanmış HSC'leri 60 hücre/μL'de sitokin olmadan kültür ortamlarında yeniden biriktirin.</li>
	<li>Her kuyuya Aliquot 600 HSC/kuyu (10 μL hücre süspansiyonu). Hücre numarası değiştirilebilir. 300'den az hücre daha büyük teknik varyasyona yol açacaktır ve bu nedenle biyolojik farklılıkları tespit etmek için durum başına daha fazla kuyuya ihtiyaç vardır. Sitokin/besin yoksunluğu veya elverişsiz sitokin/kemokin birikimi nedeniyle tek bir kuyuda 1000'den fazla hücrenin kültlenmesinden kaçınılmalıdır.</li>
	<li>Hücreleri% 5 CO2 ve% 1 O2 atmosferde 37 ° C'de nemlendirilmiş çok gazlı bir inkübatörde kültüre edin.</li>
	<li>7 günden büyük kültürler için, her 3-4 günde bir medya hacminin yarısının değiştirilmesi önerilir. Pipetleme ile 100 μL medyayı dikkatlice emiş ve her kuyuya sitokin içeren 100 μL yeni hazırlanmış kültür ortamı ekleyin. Kültür ortamı 37 °C'de önceden ısıtılmalıdır.</li>
</ol>6. Akış sitometrisi kullanılarak marker fenotiplerinin analizi
NOT: Hücrelerin 7 günlük kültürden sonra analiz edilmesi gerekirken, kültür süresi değiştirilebilir.
<ol><li>8 kanallı pipet kullanarak ortamın 170 μL'lik kısmını atın.</li>
	<li>Hücreleri antikor karışımı ile etiketleyin. 0,5 μL anti-CD34-FITC, 0,1 μL anti-CD38-PerCP-Cy5,5, 0,25 μL anti-CD90-PE-Cy7, 0,5 μL anti-CD45RA-PE ve kuyu başına 9 μL boyama tamponu karıştırın. Karışımın 10 μL'lik kısmını 96 kuyu plakasına ekleyin ve karanlıkta 4 °C'de 30 dakika boyunca hücreleri kuluçkaya yatırın.</li>
	<li>Antikorları yıkamak için kuyulara 100 μL boyama tamponu ekleyin ve plakaları düşük hızlanma ve orta yavaşlama kullanarak 4 °C'de 5 dakika boyunca 400 × g'da santrifüjleyin.</li>
	<li>Kuyuların altındaki hücreleri korumak için süpernatantın 100 μL'sini dikkatlice emiş, ardından hücreleri 200 μL boyama tamponunda + PI'nin% 0.1 v / v ' inde + floresan mikrokürelerin % 1 v / v'sinde (örneğin, Akış Kontrol Florosferleri) yeniden biriktirin.</li>
	<li>Akış sitometri aletini ayarlayın. 100 μL'lik karışık numune modu açık ve alım hacimleri ile numuneler için hızlı modda veri alın.</li>
	<li>Verileri FCS biçiminde dışa aktarın ve FlowJo gibi bir yazılım kullanarak analiz edin. Hücre numaraları floresan mikroküreci boncuk sayısı kullanılarak belirlenebilir. Örneğin, araştırmacı kuyu başına 2000 boncuk eklerse ve boncuk sayısı 700 ise, kuyudaki kesirin toplam hücre sayısını tahmin etmek için her kesirdeki hücre sayısını 2000/700 ile çarpın. NOT: Floresan mikroküreler formaldehit varlığı nedeniyle kültürlü hücreler için toksiktir. Bu, analiz sırasında hücre ölümüne neden olabilir. Önyargıyı önlemek için sürekli analiz edilen kuyu sayısını (<50 kuyu) en aza indirin.</li>
</ol>7. İnsan HSC'lerinin nakli
NOT: Kültürlü hücrelerin repopülasyon aktivitesi immün yetmez farelere nakil ile doğrulanır. Tüm prosedürler hayvan deney komiteleri veya eşdeğerleri tarafından onaylanmalıdır.
<ol><li>Donör olarak, yeterli sayıda 8-12 haftalık immün yetmezlik nod-SCID-Il2rg-null (NOG) fare hazırlayın. NOG fareleri enfeksiyona karşı oldukça hassas olduğundan, üreme kafeslerini mümkün olduğunca temiz tutun ve fareleri sterilize edilmiş bir diyet ve su ile besleyin.</li>
	<li>5. adımda açıklandığı gibi transplantasyon için yeterli sayıda HSC kültürü. Örneğin, 5000 HSC (0. gün eşdeğeri) 6 alıcı fareye nakledildiğinde, kültür 35.000-40.000 HSC'yi 96 kuyu plakasının 40 kuyusunda (kuyu başına 200 μL kültür ortamı) veya 24 kuyu plakasının 8 kuyusunda (kuyu başına 1 mL kültür medyası). %5 CO 2 ve %1O2 ile 37 °C'de nemlendirilmiş çok gazlı bir inkübatörde her 3-4 günde bir yarım ortam değişiklikleri ile hücreleri2 hafta boyunca kültürlendirin. Kültür süresi değiştirilebilir.</li>
	<li>NOG farelerini nakilden önce 6-24 saat 2.5 Gy'de ışınla.</li>
	<li>Kültürlü HSC'leri 1,5 mL tüplerde toplayın. Tüpleri 340 ×g'da 4°C'de 5 dakika santrifüj edin.</li>
	<li>Süpernatantları dikkatlice emiş edin ve steril buz gibi boyama tamponundaki hücreleri 200 μL başına 5000 HSC (gün 0 eşdeğeri) hücre yoğunluğunda yeniden depola. Boyama tamponu sterilize etmek için 0,22 μm filtre kullanarak filtreleyin.</li>
	<li>Transplantasyondan önce, fareleri sevofluran veya izofluran inhalasyonu ile uyuşturun.</li>
	<li>5000 kültürlü HSC'yi (0. gün eşdeğeri) nakletmek için, 1 mL şırınga ve 27-gauge iğne kullanarak 7.1 adımında ışınlanan NOG farelerinin kuyruk damarına veya retro orbital sinüsüne 200 μL hücre süspansiyonu enjekte edin. Yeni izole edilmiş veya çözülmüş kemik iliği HSC'leri kontrol olarak nakledilebilir. Eldivenler her işlem arasında %70 v/v etanol ile sterilize edilmelidir.</li>
</ol>8. Periferik kandaki insan kaynaklı hücrelerin sıklığının analizi
<ol><li>İnsan hücrelerinin yeniden çoğalmasını incelemek için, periferik kanı transplantasyondan 1, 2 ve 3 ay sonra toplayın.</li>
	<li>Periferik kanı toplamadan önce, fareleri sevoflurane inhalasyon ile uyuşturun.</li>
	<li>Heparinize cam kılcal tüpler kullanarak retro-orbital sinüsten 40-80 μL periferik kan toplayın ve bu örneği 1,5 mL tüplerde 1 mL PBS + heparin (1 U/mL) olarak askıya alın.</li>
	<li>Kan süspansiyonu 340 × g'da 4 °C'de 3 dakika santrifüj. Süpernatant atın ve peleti oda sıcaklığında 45 dakika boyunca 1 mL PBS + % 1,2 w/v dektran (200 kDa) olarak yeniden depolayın.</li>
	<li>Süpernatantı 3 dakika boyunca 340 × g'da başka bir 1,5 mL tüpe ve santrifüje aktarın.</li>
	<li>Kırmızı kan hücresi lizisi için, hücreleri 0.17 M NH 4 Cl'de5dakika boyunca yeniden biriktirin.</li>
	<li>Hücre süspansiyonu 4 °C'de 3 dakika boyunca 340 × g santrifüj. Hücreleri 0,3 μL anti-fare Fc bloğu içeren 50 μL boyama tamponunda yeniden kullanın. Bu numuneyi 4 °C'de 5 dakika kuluçkaya yatır.</li>
	<li>Yüzey işaretleyici boyama için aşağıdaki antikorları ekleyin: 0,3 μL fare CD45-PE-Cy7, 0,3 μL fare Ter-119-PE-Cy7, 0.3 μL insan CD45-BV421, 0.3 μL insan CD13-PE, 1.2 μL insan CD33-PE, 0.3 μL insan CD19-APC, 0.3 μL insan CD3-APC-Cy7. Hücreleri 4 °C'de 15 dakika kuluçkaya yatırın.</li>
	<li>4 °C'de 5 dakika boyunca 340 × g'da 1 mL boyama tamponu ve santrifüj ile bir kez yıkayın.</li>
	<li>Süpernatant atın ve hücreleri 200 μL boyama tamponu + %0,1 v/v PI'de yeniden biriktirin.</li>
	<li>Hücre süspansiyonu 96 kuyulu düz tabanlı bir plakaya aktarın ve mix numune modu açık ve 100 μL'lik bir alım hacmi ile akış sitometresini hızlı modda kullanarak veri elde edin.</li>
	<li>FlowJo gibi yazılımları kullanarak analiz için verileri FCS biçiminde dışa aktarabilirsiniz.</li>
	<li>Akış sitometresini kurun. Mix numune modu açık ve 100 μL'lik bir alım hacmi ile numuneler için verileri hızlı modda elde edin.</li>
	<li>FlowJo gibi yazılımları kullanarak analiz için verileri FCS biçiminde dışa aktarabilirsiniz.</li>
</ol>

<ol><li>Scala, S., Aiuti, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+dynamics+of+human+hematopoietic+stem+cells%3A+novel+concepts+and+future+directions%5BTitle%5D)+AND+%22Blood+Advances%22%5BJournal%5D)">In vivo dynamics of human hematopoietic stem cells: novel concepts and future directions.</a> Blood Advances. 3 (12), 1916-1924 (2019).</li>
<li>Trumpp, A., Essers, M., Wilson, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Awakening+dormant+haematopoietic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Immunology%22%5BJournal%5D)">Awakening dormant haematopoietic stem cells.</a> Nature Reviews Immunology. 10 (3), 201-209 (2010).</li>
<li>Laurenti, E., Gottgens, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((From+haematopoietic+stem+cells+to+complex+differentiation+landscapes%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">From haematopoietic stem cells to complex differentiation landscapes.</a> Nature. 553 (7689), 418-426 (2018).</li>
<li>Sun, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clonal+dynamics+of+native+haematopoiesis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Clonal dynamics of native haematopoiesis.</a> Nature. 514 (7522), 322-327 (2014).</li>
<li>Busch, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fundamental+properties+of+unperturbed+haematopoiesis+from+stem+cells+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Fundamental properties of unperturbed haematopoiesis from stem cells in vivo.</a> Nature. 518 (7540), 542-546 (2015).</li>
<li>Lee-Six, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Population+dynamics+of+normal+human+blood+inferred+from+somatic+mutations%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Population dynamics of normal human blood inferred from somatic mutations.</a> Nature. 561 (7724), 473-478 (2018).</li>
<li>Osorio, F. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Somatic+Mutations+Reveal+Lineage+Relationships+and+Age-Related+Mutagenesis+in+Human+Hematopoiesis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">Somatic Mutations Reveal Lineage Relationships and Age-Related Mutagenesis in Human Hematopoiesis.</a> Cell Reports. 25 (9), 2308-2316 (2018).</li>
<li>Rodriguez-Fraticelli, A. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clonal+analysis+of+lineage+fate+in+native+haematopoiesis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Clonal analysis of lineage fate in native haematopoiesis.</a> Nature. 553 (7687), 212-216 (2018).</li>
<li>Pineault, N., Abu-Khader, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advances+in+umbilical+cord+blood+stem+cell+expansion+and+clinical+translation%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Hematology%22%5BJournal%5D)">Advances in umbilical cord blood stem cell expansion and clinical translation.</a> Experimental Hematology. 43 (7), 498-513 (2015).</li>
<li>Wilkinson, A. C., Igarashi, K. J., Nakauchi, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Haematopoietic+stem+cell+self-renewal+in+vivo+and+ex+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Genetics%22%5BJournal%5D)">Haematopoietic stem cell self-renewal in vivo and ex vivo.</a> Nature Reviews Genetics. 21 (9), 541-554 (2020).</li>
<li>Wagner, J. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phase+I%2FII+Trial+of+StemRegenin-1+Expanded+Umbilical+Cord+Blood+Hematopoietic+Stem+Cells+Supports+Testing+as+a+Stand-Alone+Graft%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Phase I/II Trial of StemRegenin-1 Expanded Umbilical Cord Blood Hematopoietic Stem Cells Supports Testing as a Stand-Alone Graft.</a> Cell Stem Cell. 18 (1), 144-155 (2016).</li>
<li>Cohen, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hematopoietic+stem+cell+transplantation+using+single+UM171-expanded+cord+blood%3A+a+single-arm%2C+phase+1-2+safety+and+feasibility+study%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet+Haematology%22%5BJournal%5D)">Hematopoietic stem cell transplantation using single UM171-expanded cord blood: a single-arm, phase 1-2 safety and feasibility study.</a> Lancet Haematology. 7 (2), 134-145 (2020).</li>
<li>Laurenti, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CDK6+levels+regulate+quiescence+exit+in+human+hematopoietic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">CDK6 levels regulate quiescence exit in human hematopoietic stem cells.</a> Cell Stem Cell. 16 (3), 302-313 (2015).</li>
<li>Ito, K., Suda, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabolic+requirements+for+the+maintenance+of+self-renewing+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Molecular+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Metabolic requirements for the maintenance of self-renewing stem cells.</a> Nature Reviews Molecular Cell Biology. 15 (4), 243-256 (2014).</li>
<li>Mendelson, A., Frenette, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hematopoietic+stem+cell+niche+maintenance+during+homeostasis+and+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Medicine%22%5BJournal%5D)">Hematopoietic stem cell niche maintenance during homeostasis and regeneration.</a> Nature Medicine. 20 (8), 833-846 (2014).</li>
<li>Majeti, R., Park, C. Y., Weissman, I. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+a+hierarchy+of+multipotent+hematopoietic+progenitors+in+human+cord+blood%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Identification of a hierarchy of multipotent hematopoietic progenitors in human cord blood.</a> Cell Stem Cell. 1 (6), 635-645 (2007).</li>
<li>Xie, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+molecular+targets+on+the+surface+of+CD34%2BCD38-+bone+marrow+cells+in+myelodysplastic+syndromes%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry+A%22%5BJournal%5D)">Detection of molecular targets on the surface of CD34+CD38- bone marrow cells in myelodysplastic syndromes.</a> Cytometry A. 77 (9), 840-848 (2010).</li>
<li>Wilkinson, A. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+ex+vivo+haematopoietic-stem-cell+expansion+allows+nonconditioned+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Long-term ex vivo haematopoietic-stem-cell expansion allows nonconditioned transplantation.</a> Nature. 571 (7763), 117-121 (2019).</li>
<li>Bai, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expansion+of+primitive+human+hematopoietic+stem+cells+by+culture+in+a+zwitterionic+hydrogel%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Medicine%22%5BJournal%5D)">Expansion of primitive human hematopoietic stem cells by culture in a zwitterionic hydrogel.</a> Nature Medicine. 25 (10), 1566-1575 (2019).</li>
<li>Boitano, A. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aryl+hydrocarbon+receptor+antagonists+promote+the+expansion+of+human+hematopoietic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Aryl hydrocarbon receptor antagonists promote the expansion of human hematopoietic stem cells.</a> Science. 329 (5997), 1345-1348 (2010).</li>
<li>Fares, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cord+blood+expansion.+Pyrimidoindole+derivatives+are+agonists+of+human+hematopoietic+stem+cell+self-renewal%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Cord blood expansion. Pyrimidoindole derivatives are agonists of human hematopoietic stem cell self-renewal.</a> Science. 345 (6203), 1509-1512 (2014).</li>
<li>Kobayashi, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Environmental+Optimization+Enables+Maintenance+of+Quiescent+Hematopoietic+Stem+Cells+Ex+Vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">Environmental Optimization Enables Maintenance of Quiescent Hematopoietic Stem Cells Ex Vivo.</a> Cell Reports. 28 (1), 145-158 (2019).</li>
<li>Danet, G. H., Pan, Y., Luongo, J. L., Bonnet, D. A., Simon, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expansion+of+human+SCID-repopulating+cells+under+hypoxic+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Investigation%22%5BJournal%5D)">Expansion of human SCID-repopulating cells under hypoxic conditions.</a> Journal of Clinical Investigation. 112 (1), 126-135 (2003).</li>
<li>Kikushige, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+Flt3+is+expressed+at+the+hematopoietic+stem+cell+and+the+granulocyte%2Fmacrophage+progenitor+stages+to+maintain+cell+survival%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Human Flt3 is expressed at the hematopoietic stem cell and the granulocyte/macrophage progenitor stages to maintain cell survival.</a> Journal of Immunology. 180 (11), 7358-7367 (2008).</li>
<li>Ieyasu, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+All-Recombinant+Protein-Based+Culture+System+Specifically+Identifies+Hematopoietic+Stem+Cell+Maintenance+Factors%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">An All-Recombinant Protein-Based Culture System Specifically Identifies Hematopoietic Stem Cell Maintenance Factors.</a> Stem Cell Reports. 8 (3), 500-508 (2017).</li>
</ol>

Yazarlar bu çalışma ile ilgili herhangi bir çıkar çatışması beyanda bulunmamaktadır.

Son zamanlarda, HSC'leri minimum farklılaşma ile genişletmek için çeşitli yöntemler bildirilmiştir18,19,20,21. Bu yöntemler mükemmel olmasına rağmen, HSC'ler hücre döngülerini, HSC'lerin minimum bisiklet gösterdiği in vivo durumdan farklı olan yüksek sitokin seviyeleri varlığında etkinleştirmek zorunda kalırlar. Bu protokol, kemik iliği mikroçevrinimini yeniden yakalayarak HSC'leri in vivo olarak gözlemlendiği gibi sessiz tutmak için yararlıdır.
Düşük sitokin, lipid bakımından zengin ve hipoksik koşullar altında insan HSC'lerini kült haline getirirken, HSC'ler belirteç fenotiplerini korurken minimum bisiklete binme gösterdiler. Bu protokoldeki kritik adım, hipoksi altında yüksek konsantrasyonda yağ asitleri ve kolesterol ve düşük sitokin konsantrasyonları ve kültürü içeren ortamın hazırlanmasıdır (Adım 1, Adım 2 ve Adım 4). Kolesterol ve/ veya yağ asitleri olmadan, düşük sitokin konsantrasyonları altındaki HSC'lerin bakım oranı22azalır. Hücrelerin hipoksik koşullar altında kült örüldürürlüğü de daha önce bildirildiği gibiönemlidir 23.
Kültür koşulları, sitokin konsantrasyonları dışında murine HSC'ler için kullanılanlara benzerdi. Murine HSC'ler TPO olmadan hayatta kalırken, insan HSC'leri 3 ng/mL SCF 22 ile en az2ng/mL TPO gerektirir. TPO konsantrasyonu insan serumunda (~100 pg/mL) olduğundan, bu protokolde kullanılan koşullar insan HSC'lerinin hayatta kalmasını desteklemek için belirli faktörler eksik olabilir. FLT3 insan HSC'lerinde ifade edilir24. Ligand FLT3LG'nin eklenmesi, TPO'nun HSC22'yi koruma gereksinimini biraz azaltır.
İnsan HSC'leri, muhtemelen kolesterol sentezleyici enzimlerin ekspresyonunun ve yağ asitlerinin yüksek konsantrasyonları (>400 μg / mL) altında lipotoksisiteye duyarlılığın neden olamaması nedeniyle, murine HSC'lere kıyasla daha yüksek kolesterol konsantrasyonları gerektirir22. İnsan serumunda bolca bulunan palmitik, oleik, linoleik ve stearik asitlerin kombinasyonu test edilmiş olsa da, lipotoksisi azaltmak ve fonksiyonel HSC'leri koruma oranını artırmak için diğer lipit kombinasyonları değerlendirilmelidir.
Kültürlü insan HSC'lerinin iki haftalık kültürden sonra immün yetmez farelerde repopülasyon aktivitesi doğrulanmış olsa da22Bu kültür sistemi, HSC'lerin in vivo niş işlevlerini tam olarak yeniden yakalamaz. CD45RA ifadesinin arttığı bildirilmiştir ve yeniden depolama kapasitesi yeni sıralanmış HSC22'dendaha düşüktür. Bununla birlikte, ortama suprafizyolojik seviyelerde eklenen glikoz, amino asit, piruvat ve insülin gibi besin konsantrasyonları optimize edilebilir. BSA'daki kirleticiler de HSC18,25'in bakımınıtehlikeyeatabilir. Ek olarak, bazı kültürlü hücreler hücre ölümüne maruz, diğerleri ise hücre bölünmesine uğrar; bu nedenle, toplam hücre numarasının bakımı her hücrenin sessiz durumunu göstermeyebilir.
Bu sınırlamalara rağmen, bu çalışmada geliştirilen protokolde açıklanan kültür koşulları, özellikle fizyolojik koşullar altında HSC'lerin araştırma ve mühendisliğinin ilerletilmesine yardımcı olacaktır. HSC'leri minimum farklılaşma ve bisiklet aktivitesi ile koruyan kültür koşulları, özellikle HSC'ler üzerinde etkili olan biyolojik ve kimyasal bileşiklerin test edilmesi, LSC'lerin sap kaybı olmadan lentivirüs transdüksiyon veya genom düzenlemesi yoluyla manipüle edilmesi ve lösemi ile ilişkili genlerin neden olduğu dönüşümün ilk adımını aydınlatılması için uygun olacaktır.

Hematopoetik kök hücreler (HSC'ler) ve çok güçlü progenitör hücreler (MPP'ler), insanlarda yaşam boyunca hematopoez sağlamak için farklılaştırılmış hücrelerin sürekli yenilenmesi için koordineli bir rezervuar oluşturur1. Hücre döngüsü sessize almalarını, HSC'leriMPP'lerdenayıran önemli bir özelliktir 2 . Geleneksel olarak, HSC'lerin hematopoetik sistemin hiyerarşisinin tepe noktasında yer alan ve tüm farklılaştırılmış kan hücrelerini üreten olduğu düşünülmektedir. Bu hiyerarşik model çoğunlukla transplantasyon deneylerinden elde edildi3. Bununla birlikte, son çalışmalar HSC'lerin dinamiklerinin in vivo'da transplantasyon deneylerine göre farklılık gösterdiğini belirtmiştir4,5,6,7. Birkaç barkodlama sistemi kullanılarak yapılan soy izleme deneyleri, fenotipik murine HSC'lerin sabit durum hematopoezine katkıda bulunan benzersiz bir hücre tipi olmadığını ve transplantasyon ayarlarında sınırlı kendini yenileme aktivitesi gösteren MPP'lerin sürekli olarak olgun kan hücrelerini4,5,8sağladığını ortaya koydu. Buna karşılık, HSC'lerin olgun hücrelere katkısı kemik iliği yaralanmasından sonra geliştirilmiştir4. Bu, kemik iliği nakli de dahil olmak üzere kemik iliği ablasyonunu takiben mikroçevrinde ciddi değişikliklere bağlanabilir. Murin hücrelerinin insan hücrelerine soy izlemenin uygulanması zor olsa da, tek hücreli türevi koloni izolasyonu ve tüm genom dizilimini birleştiren filogenetik analiz, hemAtomopetik sistemin benzer bir özelliğini ortaya çıkardı, hem HSC'lerin hem de MPP'lerin olgun hücrelerin günlük üretiminden sorumlu olduğu7. Bu nedenle, murin veya insan HSC aktivitesinin incelenmesi için transplantasyon şart olsa da, HSC'lerin fizyolojik koşullar altındaki davranışlarını anlamak için diğer deneysel modellere ihtiyaç vardır.
HSC'ler için kült yöntemler, klinik uygulamalarını ve özelliklerini anlamak için ayrıntılı olarak incelenmiştir. İnsan HSC'leri sitokinlerin bir kombinasyonu, hücre dışı matrislerin yeniden uzlaştırılması, kendini yenileme antagonistlerinin uzaklaştırılması, mezenkimal veya endotel hücreleri ile ortak kültür, albümin veya değiştirilmesi, kendi kendini yenileme transkripsiyon faktörlerinin transdüksiyonu ve küçük moleküllü bileşiklerin eklenmesikullanılarakin vitro olarak genişletilebilir 9,10. SR111 ve UM17112küçük bileşiklerinin eklenmesi de dahil olmak üzere bu yöntemlerden bazıları, umut verici sonuçlarla klinik çalışmalarda test edilmiştir9. HSC'lerin sessiz doğası göz önüne alındığında, HSC'lerin minimum hücre döngüsü ile korunması, HSC davranışının in vitro olarak yeniden yakalanması için kritik öneme sahiptir. Sessiz ve çoğalan HSC'ler diferansiyel hücre döngüsü girişi13, metabolik durum14ve birden fazla gerilmelere karşı tolerans15 . İn vitro insan HSC'lerinin sessizliğini korumak için kullanılan yöntemler sınırlıdır.
Kemik iliğinin mikroçevrimi (hipoksik ve lipitler bakımından zengin) taklit edilerek ve sitokin konsantrasyonunun optimize edilmesiyle, insan HSC'leri kültür altında farklılaşmamış ve sessiz tutulabilir. HSC'lerin sessiz doğasının in vitro olarak yeniden ele alınması, HSC'lerin sabit durum özelliklerinin anlaşılmasını geliştirecek ve HSC'lerin deneysel manipülasyonunu sağlayacaktır.

<table><tbody><tr><td>İnsan kemik iliği CD34 + progenitör hücreler</td><td>Lonza</td><td>2M-101C</td><td></td></tr><tr><td>NOD / Shi-scid, IL-2R ve gama; KO Jic</td><td>In-Vivo Science Inc.</td><td></td><td></td>https://www.invivoscience.com/en/nog_mouse.html</tr><tr><td>Anti-insan CD34-FITC (klon: 581)</td><td>BD biyolojik bilimler</td><td>Cat# 560942; RRID: AB_10562559</td><td></td></tr><tr><td>Anti-insan CD38-PerCP-Cy5.5&nbsp;</td><td>BD biyolojik bilimler</td><td>Kedi # 551400; RRID: AB_394184</td><td></td></tr><tr><td>Anti-insan CD45RA-PE</td><td>BD biyolojik bilimler</td><td>Cat# 555489; RRID: AB_395880</td><td></td></tr><tr><td>Anti-insan CD90-PE-Cy7 (klon: 5E10)</td><td>BD biyolojik bilimler</td><td>Cat# 561558; RRID: AB_10714644</td><td></td></tr><tr><td>Anti-insan CD13-PE (klon: WM15)</td><td>BioLegend</td><td>Cat# 301703; RRID: AB_314179</td><td></td></tr><tr><td>Anti-insan CD33-PE (klon: WM53)</td><td>BD biyolojik bilimler</td><td>Cat# 561816; RRID: AB_10896480</td><td></td></tr><tr><td>Anti-insan CD19-APC (klon: SJ259)</td><td>BioLegend</td><td>Cat# 363005; RRID: AB_2564127</td><td></td></tr><tr><td>Anti-insan CD3-APC-Cy7 (klon: SK7)</td><td>BD biyolojik bilimler</td><td>Cat# 561800; RRID: AB_10895381</td><td></td></tr><tr><td>Anti-insan CD45-BV421 (klon: HI30)</td><td>BD biyolojik bilimler</td><td>Cat# 563880; RRID:AB_2744402</td><td></td></tr><tr><td>Anti-fare CD45-PE-Cy7 (klon: 30-F11)</td><td>BioLegend</td><td>Cat# 103114; RRID: AB_312979</td><td></td></tr><tr><td>Anti-fare Ter-119-PE-Cy7 (klon: TER-119)</td><td>BD biyolojik bilimler</td><td>Cat# 557853; RRID: AB_396898</td><td></td></tr><tr><td>Fc bloğu (anti-fare CD16/32) (klon: 2.4-G2)</td><td>BD Biosciences</td><td>Cat# 553142; RRID: AB_394657</td><td></td></tr><tr><td>Fosfat tamponlu tuzlu su</td><td>Nacalai Tesque Kedi</td><td># 14249-24</td><td></td></tr><tr><td>Fetal sığır serumu</td><td>Thermo Fisher Bilimsel</td><td>Kedi # 26140079</td><td></td></tr><tr><td>DMEM / F-12 orta</td><td>Thermo Fisher Bilimsel</td><td>Kedi # 11320-033</td><td></td></tr><tr><td>ITS-X</td><td>Thermo Fisher Bilimsel</td><td>Kedi # 51500056</td><td></td></tr><tr><td>Penisilin</td><td>Meiji Seika</td><td></td><td></td>PGLD755</tr><tr><td>Streptomisin sülfat</td><td>Meiji Seika</td><td>SSDN1013</td><td></td></tr><tr><td>Sığır serum albümini</td><td>Sigma Aldrich</td><td>Kedi # A4503</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum palmitat</td><td>Tokyo Chemical Industry Co., Ltd.</td><td>Kedi # P0007</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum oleat</td><td>Tokyo Kimya Sanayi A.Ş.</td><td>Kedi # O0057</td><td></td></tr><tr><td>Kolesterol</td><td>Tokyo Kimya Sanayi A.Ş.</td><td>Kedi # C0318</td><td></td></tr><tr><td>Amonyum Klorür</td><td>Fujifilm</td><td>Kedi # 017-2995</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum Hidrojen Karbonat</td><td>Fujifilm</td><td>Kedi # 191-01305</td><td></td></tr><tr><td>EDTA 2Na</td><td>Fujifilm</td><td>Kedi # 345-01865</td><td></td></tr><tr><td>Heparin Na</td><td>MOCHIDA ECZAİK CO., &nbsp; LTD.</td><td>Kedi # 224122557</td><td></td></tr><tr><td>Sevofluran</td><td>Fujifilm</td><td>Kedi # 193-17791</td><td></td></tr><tr><td>Dekstran</td><td>Nacalai Tesque Kedi</td><td># & nbsp; 10927-54</td><td></td></tr><tr><td>Rekombinant İnsan SCF</td><td>PeproTech</td><td>Kedi # 300-07</td><td></td></tr><tr><td>Rekombinant İnsan TPO</td><td>PeproTech</td><td>Kedi # 300-18</td><td></td></tr><tr><td>Rekombinant insan Flt3 ligand</td><td>PeproTech</td><td>Kedi # 300-19</td><td></td></tr><tr><td>Propidyum iyodür</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>Kedi # P3566</td><td></td></tr><tr><td>Akış Kontrollü Florosferler</td><td>Beckman Coulter</td><td>Kedi # 7547053</td><td></td></tr><tr><td>FlowJo sürüm 10</td><td>BD Biosciences</td><td>https://www.flowjo.com/solutions/flowjo</td><td></td></tr><tr><td>AutoMACS Pro</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>FACS Aria3u</td><td>BD Biosciences</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>VELVO-CLEAR VS-25 (sonikatör)</td><td>VELVO-CLEAR</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Azot gazı silindiri</td><td>KOIKE SANSHO CO., LTD</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Gaz regülatörü</td><td>Astec</td><td>Cat# IM-055</td><td></td></tr><tr><td>Çoklu gaz inkübatörü</td><td>Astec</td><td>Cat# SMA-30DR</td><td></td></tr><tr><td>Cam tüp, 16 mL</td><td>Maruemu şirketi</td><td>N-16</td><td></td></tr><tr><td>Cam tüp, 50 mL</td><td>Maruemu şirketi</td><td>NX-50</td><td></td></tr><tr><td>Millex-GP Şırınga Filtre Ünitesi, 0.22&nbsp; &mikro; m, polietersülfon, 33&nbsp; mm, gama sterilize</td><td>Merck Millipore SLGPR33RS</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

sessiz İnsan hematopoetik kök hücrelerini korumak İçin bir kültür yöntemi

A Culture Method to Maintain Quiescent Human Hematopoietic Stem Cells

İnsan hematopoetik kök hücreleri (HSC'ler), diğer memeli HSC'ler gibi, kemik iliğinde ömür boyu hematopoez tutar. HSC'ler, daha farklılaştırılmış ataların aksine, in vivo olarak sessiz kalır ve kemik iliği yaralanmasını veya in vitro kültürünü tedavi etmek için kemoterapi veya ışınlamadan sonra hücre döngüsüne hızla girer. Bol yağ asitleri, kolesterol, düşük sitokin konsantrasyonu ve hipoksi varlığında kemik iliği mikroçevrimini taklit ederek, insan HSC'leri sessiz in vitro korur. Burada, sessiz durumdaki in vitroda fonksiyonel HSC'lerin korunması için ayrıntılı bir protokol açıklanmıştır. Bu yöntem, insan HSC'lerinin fizyolojik koşullar altında davranışlarının çalışmasını sağlayacaktır.

Saflaştırılmış HSC'leri kültleştirdikten 7 gün sonra, hücrelerin% 80'ine kadar CD34+CD38 belirteç fenotipleri görüntülendi- (Şekil 4A). Toplam hücre sayısı sitokin konsantrasyonuna bağlı olarak (Şekil 4B). Hücre döngüsüne daha yüksek SCF ve TPO indüklenmiş giriş konsantrasyonları, çoğalma ve farklılaşma (Şekil 4B). CD34 + CD38-CD90+CD45RA'nın işaretleyici fenotipleri ilekarakterize edilen fenotipik HSC sayısı SCF veya TPO konsantrasyonları ile orantılı olarak artmıştır (Şekil 4B), toplam hücreler arasındaki sıklık azalırken (Şekil 4C). Toplam hücre sayısı 1,5 ng/mL SCF ve 4 ng/mL TPO ile 3 ng/mL SCF 3 ve 2 ng/mL TPO kombinasyonlarında eşitti ve bu da HSC'lerin minimal hücre döngüsü aktivasyonu sırasında sessiz olduğunu düşündürmektedir. Bireysel farklılıklar göz önüne alındığında, her kemik iliği donörü için sitokin titrasyonu önerilir.
Kültürlü erişkin kemik iliği HSC'lerinin 3 aylık naklinden sonra, rekonsyon insan CD45+ murine CD45- Ter119 hücrelerinin periferik kanında sıklığı olarak değerlendirilebilir. CD19+ B hücreleri, CD13/CD33+ miyeloid hücreler ve CD3+ T hücreleri dahil olmak üzere üç soy, yeni çözülmüş HSC'ler veya kültürlü HSC'lerle nakledilen NOG farelerinde yeniden inşa edildi (Şekil 5).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61938/61938fig01.jpg"> Şekil 1. Prosedüre genel bakış. Prosedürün grafiksel özeti, insan hematopoetik kök hücrelerinin (HSC) sıralandırılmasını, kült örüldürmesini ve analizini içeriyordu. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61938/61938fig01large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61938/61938fig02.jpg"> Şekil 2. Lipid çözeltisinden metanol buharlaştırma prosedürü. A) Gaz regülatörlü azot gazı silindiri. B) Azot gazının metanolde çözünmüş lipit çözeltisi üzerinden geçirilmesi prosedürü. C) Cam tüpün altına yaparak lipitler. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61938/61938fig02large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61938/61938fig03.jpg"> Şekil 3. HSC'leri sıralamak için gating stratejisi. Çizimler kapılı CD34+CD38-CD90+CD45RA- hücreleri gösterir. CD34+ hücrelerinin yaklaşık% 10'u fenotipik HSC'lerdi. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61938/61938fig03large.jpg" target="_blank"></a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61938/61938fig04.jpg"> Şekil 4. 7 günlük kültlemeden sonra temsili hücre numaraları. A) SCF (3 ng/mL) ve TPO'daki (2 ng/mL) HSC'leri kültledikten sonra temsili floresan aktif hücre sıralama grafiği. Fraksiyon 1 canlı hücreler için zenginleştirilmiş, fraksiyon 2 ölü hücreler için zenginleştirilmiş ve fraksiyon 3 enkaz için zenginleştirilmiştir. Pembe renkteki sayılar frekansı gösterir (%) kapılı kesir. B) Belirtilen sitokin koşulları altında600 HSC kültlemeden sonra tüm HSC sayısı,CD34+ CD38 - CD38 - CD90+CD45RA- hücreler. Kırmızı kesikli çizgiler giriş hücrelerinin ilk sayısını gösterir. S: SCF, T: TPO. Ortalama ± standart sapma, n = 4. S ve T'yi takip eden sayılar her sitokinin konsantrasyonunun (ng/mL) olduğunu gösterir. C) CD34+CD38frekansı - ve CD34+CD38-CD90+CD45RA- belirtilen sitokin koşulları altındaki hücreler. S: SCF, T: TPO. Ortalama ± standart sapma, n = 4. SCF (1 ng/mL) ve TPO (0 ng/mL) olarak kültürlenmiş hücrelerin hata çubukları, yüksek değerleri (sırasıyla 37,7 ve 47,9) nedeniyle atlanmıştır. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61938/61938fig04large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61938/61938fig05.jpg"> Şekil 5. 3 aylık transplantasyondan sonra donör farelerin temsili FACS planları. NOG farelerine toplam 5000 yeni çözülmüş (üst panel) ve 2 haftalık kültürlü HSC (3 ng/mL SCF ve 3 ng/mL TPO; alt panel) nakledildi. hCD19 insan B hücrelerini, hCD13 ve hCD33 insan miyeloid hücrelerini, hCD3 ise insan T hücrelerini işaretler. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61938/61938fig05large.jpg" style="font-size: 14px;" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>

Bu protokol, bol miktarda yağ asidi, kolesterol, daha düşük sitokin konsantrasyonları ve hipoksi kullanarak kemik iliği mikroçevrimini taklit ederek sessiz insan hematopoetik kök hücrelerinin in vitro olarak korunmasını sağlar.

Sessiz İnsan Hematopoetik Kök Hücrelerini Korumak İçin Bir Kültür Yöntemi

Human hematopoietic stem cells (HSCs), like other mammalian HSCs, maintain lifelong hematopoiesis in the bone marrow. HSCs remain quiescent in vivo, ...

Hücre döngüsü sessizesi hematopoetik kök hücrelerin önemli bir özelliğidir. Bu protokol, sessiz insan HSC'lerinin yakın fizyolojik koşullar altında in vitro davranışını anlamaya yardımcı olur. Bu protokolü kullanarak araştırmacılar, hücre döngüsü durumunu düzenleyen çeşitli bileşiklerin, besin maddelerinin veya proteinlerin etkisini ve HSC'lerin farklılaştırılmasını hayvan modelleri kullanmadan ölçeklenebilir bir şekilde test edebilir.Anti-kanser ilaçları, sessiz HSC'lerin ve bisiklet atalarının hayatta kalması üzerinde çeşitli etkilere sahiptir. Bu protokol, sessiz HSC'leri yedekleyen ajanları veya sessiz lökemik kök hücrelere seçici olarak zarar veren ajanları bulmayı mümkün kılar. Prosedürü gösteren kişi Takubo Laboratuvarı'ndan kıdemli bir araştırma görevlisi olan Hiroshi Kobayashi olacak.Başlamak için, mililitre sodyum palmitat başına 16 miligram, mililitre sodyum oleat başına 30 miligram ve cam tüplerdeki metanolde mililitre kolesterol başına dört miligram çözün. Lipit çözeltilerini negatif 30 santigrat derecede saklayın ve kullanmadan önce çözün. Taze bir cam tüpte, mililitre palmitat başına 100 mikrogram, mililitre oleat başına 100 mikrogram ve mililitre kolesterol başına 20 mikrogram son konsantrasyonu elde etmek için lipid çözeltilerini karıştırın.Azot gazını lipit çözeltisi ile geçirerek metanol buharlaştır. Cam tüpü 37 santigrat derecede bir su banyosunda ısıtarak kalan metanolleri tamamen buharlaştır. HEPES ve glutamin ile DMEM/F-12 ortamı hazırlayın.Mililitre başına sırasıyla 50 birim ve 50 mikrogramlık son konsantrasyon için penisilin ve streptomisin sülfat ekleyin. Ortam en az iki ay boyunca dört santigrat derecede saklanabilir. HEPES ve glutamin ile DMEM/F-12 ortamına BSA'nın %4'ünü ekleyin, ardından sodyum hidroksit çözeltisi kullanarak ortamın pH'ını 7,6'ya ayarlayın.Ortamı lipitlerle birlikte cam tüpe ekleyin. Lipitleri sonication ile tamamen çözün. Sonication sonra ortam opak ise, sonication süresini uzatın.BSA ve lipitler çözüldüğünde, numuneler eksi 80 santigrat derecede saklanmalı ve iki ay içinde kullanılmalıdır. DMEM/F-12'ye 0.001X insülin, transferrin, sodyum selenit ve etanol amin karışımı ekleyin ve ardından karışık ortamı 0.22 mikrometre filtre kullanarak filtreleyin. Kullanmadan önce, kültür ortamına her mililitre başına üç nanogramlık son konsantrasyonda insan kök hücre faktörü veya SCF ve insan trombopoietin veya TPO ekleyin.Sitokinlerle önceden hazırlanmış kültür medyasının 200 mikrolitresini düz alt 96 kuyu plakalarına aktarın. Ortamın buharlaşmasını önlemek için, kullanılmayan tüm kuyuları 100 ila 200 mikrolitre PBS ile doldurun. Sıralanmış hematopoetik kök hücreleri veya HSC'leri mikroliter başına 60 hücrede sitokin olmadan kültür ortamlarında yeniden biriktirin.Her kuyuya 600 hücre aliquot. 300'den az hücre daha büyük teknik varyasyona yol açacak ve besin yoksunluğu veya elverişsiz sitokinlerin veya kemokinlerin birikmesi nedeniyle tek bir kuyuda 1.000'den fazla hücrenin kültlenmesi önlenmelidir. Hücreleri% 5 karbondioksit ve% 1 oksijen atmosferinde 37 santigrat derecede nemlendirilmiş çok gazlı bir inkübatörde kültüre edin.Arınmış HSC'leri yedi gün boyunca kültleştirdikten sonra, hücrelerin% 80'ine kadar marker CD34 pozitif ve CD38 negatif fenotipler gösterdi. Toplam hücre sayısı sitokin konsantrasyonuna bağlı. Hücre döngüsüne daha yüksek SCF ve TPO indüklenen giriş konsantrasyonları, çoğalma ve farklılaşma.CD34 pozitif, CD38 negatif, CD90 pozitif ve CD45 RA negatif fenotipleri ile karakterize fenotipik HSC sayısı SCF veya TPO konsantrasyonları ile orantılı olarak artarken, toplam hücreler arasındaki sıklık azaldı. Kültürlü erişkin kemik iliği HSC'lerinin üç aylık naklinden sonra, rekonsyon, insan CD45 pozitif murin, CD45 negatif Ter119 negatif hücrelerinin periferik kanında sıklıklarının bir fonksiyonu olarak değerlendirilebilir. CD19 pozitif B hücreleri, CD13 negatif, CD33 pozitif miyeloid hücreler ve CD3 pozitif T hücreleri dahil olmak üzere üç soy, taze çözülmüş veya kültürlenmiş HSC'lerle nakledilen NOG farelerinde yeniden inşa edildi.Kültürü takiben, HSC'ler gerçek zamanlı PCR ve RNA dizilimi gibi gen ekspresyon profillemesine tabi tutulabilir. İmmün eksikliği olan farelere transplantasyon kullanılarak fonksiyonel doğrulama da yapılabilir. Araştırmacılar, sitokin konsantrasyonlarını ayarlayarak bisiklet ve sessiz HSC'leri tanımlanmış koşullar altında doğrudan karşılaştırabilirler.Bu, in vivo ayarlarını test etmesi zor olan sessiz HSC'ye özgü kendini yenileme programlarını, stres direnci mekanizmalarını ve metabolik özellikleri anlamaya yardımcı olacaktır.

a-culture-method-to-maintain-quiescent-human-hematopoietic-stem-cells

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Bu protokol, sağlıklı, farklılaşmamış insan embriyonik kök (ES) hücreleri korumak için nasıl kullanılacağını gösterir.

İnsan Embriyonik Kök Hücre Kültürü ve Bakım

Sitometrisi kemik iliği hematopoietik öncü dağıtımı yanı sıra verimli yalıtmak için son derece saf hematopoetik kök hücreleri (HKH'ler) analiz etmek için bir yöntem tarif edilir. İzolasyon ^ işleminde esas olarak hücresel ve moleküler çalışmalar için HKH'ler arındırmak için sıralama c-Kit + hücreleri ve hücre manyetik zenginleştirme dayanmaktadır.

Mürin Hematopoetik Kök Hücreler ve Lineage-kararlı progenitörlerin Fenotipik Analizi ve İzolasyon

Burada, ayrışmış tek hücrelerin koloni dışı tip tek tabakalı (NCM) büyümesine dayanan insan pluripotent kök hücre (hPSC) kültür protokollerini sunuyoruz. Rho ile ilişkili kinaz inhibitörleri veya laminin izoform 521 (LN-521) kullanan bu yeni yöntem, büyük miktarlarda homojen hPSC'lerin üretilmesi, genetik manipülasyon ve ilaç keşfi için uygundur.

İnsan Pluripotent için alternatif Kültürleri Hücre Üretim, Bakım ve Genetik Analizi Kök

Burada, bir besleyici ve Xeno-ücretsiz durumda insan pluripotent kök hücrelerinden hemogenik endotelyum tam olarak oluşturmak için bir protokol sunuyoruz. Bu yöntem hastalık modelleme ve terapötik bileşikler için tarama geniş uygulamalara sahip olacaktır.

Bir besleyici içinde ınsan pluripotent kök hücrelerinden hemogenik endotelyum farklılaşma-ve Xeno-ücretsiz tanımlı koşul

Mevcut protokol, gen düzenlenmiş hücrelerin in vivo olarak sağlam bir şekilde aşılanması için optimize edilmiş bir hematopoetik kök ve progenitör hücre (HSPC) kültür prosedürünü tanımlamaktadır.

CRISPR/Cas9 Gen Tedavisi Uygulamaları için Hematopoetik Kök ve Progenitör Hücrelerin Gen Düzenlemesi

Hoxb5 muhabir sistemini kullanarak uzun süreli hematopoetik kök hücrelerin (LT-HSC'ler) ve kısa süreli HSC'lerin (ST-HSC'ler) izolasyonu için adım adım bir protokol sunuyoruz.

Uzun Süreli ve Kısa Süreli Hematopoetik Kök Hücreler için İzolasyon Yöntemi

Burada, ex vivo polivinil alkol bazlı genişleme kullanarak fare hematopoetik kök hücre kültürlerini başlatmak, sürdürmek ve analiz etmek için bir protokol ve ayrıca lentiviral transdüksiyon ve elektroporasyon yoluyla genetik olarak manipüle etme yöntemleri sunulmaktadır.

Ex Vivo Polivinil Alkol Bazlı Kültürlerde Fare Hematopoetik Kök Hücrelerinin Genleşmesi ve Genetik Manipülasyonu

Burada, otomatik bir hücre kültürü sistemi için bir protokol sunuyoruz. Bu otomatik kültür sistemi, işçiliği azaltır ve indüklenmiş pluripotent kök (iPS) hücrelerin bakımından, çeşitli hücre tiplerine farklılaşmaya kadar, indüklenmiş pluripotent kök (iPS) hücrelerin işlenmesine aşina olmayan araştırmacılar da dahil olmak üzere kullanıcılara fayda sağlar.

İnsan kaynaklı pluripotent kök hücrelerin korunması ve ayırt edilmesi için otomatik bir kültür sistemi

Geleneksel iki boyutlu hücre kültür teknikleri genellikle farklılaşma belirteçleri, sitokinler ve büyüme faktörleri açısından değişmiş özellikleri. Extravillous trofoblast hücre hattı ile burada gösterildiği gibi dönen hücre kültür sistemi Üç boyutlu hücre kültürü (RCC), bu faktörlerin çoğunun ifade yeniden kurar.

İnsan Hücre Kültürü Döner Hücre Kültür Sistemleri: Bir Model Olarak İnsan trofoblast Hücreleri

Biz endoderm ve dopaminerjik (DA) nöronlara yayılması ve embriyonik kök hücrelerin farklılaşması için etkili bir 3D platform olarak bir mikroenkapsülasyon tekniği optimize etmiş. Ayrıca nakli sırasında ana hücreleri bağışıklık izolasyonu için bir fırsat sağlar. Bu platform, diğer hücre türleri için adapte edilebilir.

Farklı soy İnsan Embriyonik Kök Hücreleri (hESC) Yayılması ve Farklılaşma için 3D Platformu olarak aljinat Mikrokapsül

Keşfedin, sessiz insan hematopoetik kök hücrelerini kemik iliği mikroçevresini taklit ederek in vitro koruma yöntemini. Bu protokol, araştırmacıların HSC davranışlarını fizyolojik koşullara yakın ortamda incelemesine olanak tanır.

Sessiz İnsan Hematopoetik Kök Hücrelerini Korumak İçin Bir Kültür Yöntemi

Daha fazla video keşfet