Name: Tavuk Embriyolarının Retinasından Koni Zenginleştirilmiş Kültürler Çubuktan Koni Hücresel Etkileşimlerine (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-03-20T14:15:00.000+00:00
Duration: 8 min 4 s
Description: Öğrenin, tavuk embriyolarından koni fotoreseptörleri elde etme yöntemini. Bu protokol, retinal dejenerasyon tedavileri için koni hücre canlılığı faktörlerini taramak ve fotoreseptör metabolizmasını incelemek için kullanılır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar Jacques Bellalou, Lorelei Fournier, Emmanuelle Clérin, Frédéric Blond ve entreprise agricole à responsabilité limitée'ye (EARL Morizeau Dangers, Fransa) paha biçilmez yardımları için teşekkür ediyor. Bu çalışma Inserm, Sorbonne Üniversitesi, Agence Nationale pour la Recherche (ANR, Labex Lifesenses), Foundation Fighting Blindness (ABD) ve IHU FOReSIGHT [ANR-18-IAHU-0001] tarafından Investissements d'Avenir programı dahilinde ANR tarafından yönetilen Fransız devlet fonları tarafından desteklendi.

Protokol, Pierre ve Marie Curie Üniversitesi Hayvan Deneyleri Etik Komitesi ve Fransız Araştırma Bakanlığı tarafından onaylandı (İzin Numarası: APAFIS#1028 2015070211275177). Hayvan deneyleri aşağıdaki yetkiyle gerçekleştirildi: "Certificat d'autorization d'expérimenter sur les animaux vertébrés A-75-1863. Préfecture de Police de Paris (9 Kasım 2011-8 Kasım 2016)".
1. Döllenmiş yumurtaların kuluçkalanması
<ol><li>Endüstriyel bir kuluçkahanede doğal olarak elde edilen haftalık döllenmiş yumurtaları (strain I 657, kırmızı etiket) toplayın.</li>
	<li>Döllenmiş yumurtaları tavuk tarafından "bırakıldıktan" sonra laboratuvarda 17 °C'de (biyolojik sıfırları) saklar.</li>
	<li>Her kültür için, yedi döllenmiş yumurtayı 20 ° C'de 24 saat ve daha sonra 37 ° C'de 136 saat boyunca, yumurtaların eğiminin aralıklı olarak geri döndürülmesiyle (bir taraftan tersine 2 saat boyunca aşamalı bir hareket, 4 saatlik bir döngü) nemlendirilmiş bir odada kuluçkaya yatırın.</li>
</ol>2. Tavuk embriyolarının geri kazanımı
<ol><li>Yedi yumurtanın yüzeyini dezenfektanla yıkayın (örneğin, Pursept A express).</li>
	<li>Yumurta kabuğunu kırmak için, kabuğun üst kısmında büyük düz pense ile bir delik açın. Daha sonra şapkayı yumurtadan yumuşak haşlanmış bir yumurta olarak çıkarmak için kabuğu kesin.</li>
	<li>Her embriyoyu kavisli kümeslerle yumurta kabuğundan hafifçe çıkarın ve daha önce 37 °C'ye ısıtılmış steril fosfat tampon salin (PBS) içeren bir Petri kabına aktarın. Yavaşça, embriyoları çevreleyen zarfı (koroyon veya chorioallantoic membran) çıkarın.</li>
	<li>Hamburger ve Hamilton42ile görsel karşılaştırma ile her embriyonun gelişim aşamasını doğrulayın.</li>
	<li>Gelişimin29. Kanatlar dirseklerden bükülür. Yaka gözle görülür şekilde göze çarpıyor. Tasarı28.</li>
	<li>Seçilen bu embriyoların gözlerini enüklee ederek CO2-bağımsızortamda (Yaşam teknolojileri) transfer eder. DİkKAT: Embriyonun 28 veya 30. bu yüzden sonunda sadece iki tane kullanılacak olsa bile en az 7 yumurtayı kuluçkaya yatırmak gerekir. Korozyon çok incedir, ayırt edilmesi çok zordur, ancak embriyodan çok yakındır, bu nedenle embriyoya dokunmadan çıkarılması gerekir.</li>
</ol>3. Retinaların diseksiyonu
<ol><li>Seçilen embriyoların kafasını kavisli kümes uçlarıyla deplate edin ve enükle edin.</li>
	<li>Dört gözü CO2-bağımsız ortama aktarın. Bu ortam 0.9 mM CaCl2 ve 0.65 mM MgCl2içerir.</li>
	<li>Gözü kornea yüzüstü, optik sinir deneyciye bakacak şekilde konumlandırın. İki düz emiş kullanarak optik sinirde bir delik açın.</li>
	<li>Retina ve pigment epitel arasına her bir eparın bir dalını yerleştirin (Şekil 2). Her bir epansı çekin ve epiteli retinadan ayırmak için gözü döndürün. Korneayı ve ardından lensi ve vitreusları çıkarın.</li>
	<li>Dört retinayı pH 7.2'de Ringer'ın ortasını içeren bir Petri kabına aktarın. DİkKAT: Sadece retinanın kaldığından emin olun ve vitreus ve kalan retina pigmentli epitel izlerini giderin.</li>
</ol>4. Retina hücre süspansiyonu hazırlama
<ol><li>dört retinayı iki düz pense kullanarak çok küçük parçalar halinde kesin.</li>
	<li>Retina parçalarını Ringer'ın ortamıyla iki kez yıkayın.</li>
	<li>Ringer'ın ortamıyla ikinci yıkamadan sonra, retina parçalarının tüpün altına düşmesine izin verin ve Ringer'ın ortasını çıkarın. Retina parçalarını 37 °C'de 20 dakika boyunca tripin çözeltisi (%0,25 w/v) ile tedavi edin.</li>
	<li>Çözeltiyi 10 dakika sonra art arda emişle dağıtın. Pasteur pipet kullanarak deşarj edin ve retina parçalarının ayrışıp ayrışma olup olmadığını kontrol edin. %10 inaktive foetal baldır serumu ile desteklenmiş kültür medyası ekleyerek reaksiyonu durdurun.</li>
	<li>Hücre süspansiyonunu 0,05 mg DNase I ile kuluçkaya yayalım.</li>
	<li>Retina hücresi süspansiyonunun kimyasal tanımlı kültür ortamı (CDCM) ile iki kez yıkanması: 100 μg/mL linoleik asit/BSA ile desteklenmiş Eşit miktarda Dulbecco Modifiye Kartal Orta ve M199 ortamı, 0,86 μM insülin, 0,07 μM transferrin, 2,0 μM progesteron, 0,28 μM prostaglandin, 0,29 μM Na2SeO3, 182 μM putrescine, 3 mM taurin, 4.7 μM sitotokin 5′-difosfokolin, 2.7 μM sitotokrin 5′-difosphoethanolamine, 0.55 μM hidrokortizon, 0.03 μM triiodothyronine, 1 mM sodyum piruvat ve 20 μM gentamycin.</li>
</ol>5. Retina hücre tohumlama
<ol><li>Şeffaf tabanlı iki siyah 96 kuyulu kültür plakayı 37 °C'de 2 saat boyunca 32,25μg/cm 2'de poli-L-lizin ile tedavi edin.</li>
	<li>Bu plakaları M199 kültür ortamı ile iki kez durulayın. Hücre peletini 1 mL CDCM'de yeniden sunun.</li>
	<li>Canlı hücreleri lekelamak için hücre süspansiyonunun 10 μL'lik bir aliquot'una maviyi deneyin. Hücrelerin süspansiyon örneğini bir hemmositometreye (Malassez hücre sayım odası) ekleyin.<ol>
<li>Mikroskop altında, hemositometrenin dört satırı (yani 40 kare) için lekeli hücreleri sayın ve sonra bir satır için ortalama hücre numarasını hesaplayın. Aşağıdaki yöntemi uygulayarak süspansiyonun hücrelerinin konsantrasyonunu hesaplayın: Süspansiyonun hücre/mL sayısı = bir satırdaki ortalama hücre sayısı (10 kare) x 10 hemoteratometre x seyreltmenin toplam kare sayısı trypan mavi x 1.000 (sonucu hücre/mL olarak ifade etmek için).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Hücre süspansiyonu CDCM kullanarak iki kaplama yoğunluğuna (1 x 10 5 hücre/cm 2 ve 2 x10 5 hücre/cm2) karşılık gelen iki konsantrasyona (5,6 x10 4 hücre/mL ve 1,12 x 10 5 hücre/mL) getirin.</li>
	<li>İki hücre süspansiyonunun tohum 50 μL'si, önceden işlemden geçmiş iki siyah 96 kuyu kültür plakasına. Plakalardaki hücreleri plakanın sağından sola doğru çok kanallı bir pipetle dağıtın, her sütun arasında homojenleşerek hücrelerin dağılımı homojendir.</li>
	<li>Önceden tanımlanmış bir desen kullanılarak taranmak üzere molekül kitaplığının 50 μL'lik kısmını ekleyin(örneğin,bir cDNA kitaplığındaki koşullandırılmış ortam, aşağıya bakın).</li>
	<li>Plakaları 37°C'de % 5 CO2'nin altında yedi gün boyunca ortam değişikliği olmadan kuluçkaya yatırın.</li>
</ol>6. Uygulanabilir hücreleri sayma
<ol><li>Plakanın her kuyusuna 2,7 μM kalsein ve 0,3 mM ethidyum homodimer ekleyin. NOT: Calcein, ethidyum homodimer olarak büyük moleküllere geçirimsiz hücrelere nüfuz eder. Canlı hücrelerin sitoplazmında, kalsein endojen esterazlar tarafından hidrolize edilir, 485 nm'de heyecanlandığında 520 nm'de yayılarak floresan olur. Ethidyum homodimer ölü hücrelerde DNA'ya bağlanır. Ethidyum DNA-homodimer bağlama, 520 nm'de heyecanlandıktan sonra 635 nm'de kırmızı floresanların yayılmasına neden olur.</li>
	<li>Işık yokluğunda tabakları oda sıcaklığında 1 saat kuluçkaya yatırın.</li>
	<li>485 ve 520 nm'de iki ekscitasyon filtresi, 520 ve 635 nm'de iki emisyon filtresi, bir amaç (x10), bir işlemci ve şarj bağlantılı bir cihaz kamerası (CCD) tarafından kontrol edilen motorlu bir sahne ile donatılmış ters bir mikroskopla donatılmış bir mikroskoptaki floresan okuyun. Bu sayım platformu Metamorph yazılımı tarafından kontrol edilir19. 96 kuyu plakasının her kuyusunda aynı anda canlı hücrelerin ve ölü hücrelerin floresan görüntülerini elde etmeyi mümkün kılar, kuyulardan başlayarak A1'den kuyu A12'ye, daha sonra B12'den B1'e doğru, C1 C1'e doğru ve benzeri (Tablo I).</li>
	<li>Negatif denetimlerin 18 kuyusunun(Tablo I)kullanılarak tek bir hücrenin ortalama A alanını hesaplayın.</li>
	<li>Plakanın her kuyusundaki hücreleri sayın ve hücre çiftlerinin (iki hücrenin gruplandırması) sayılmasını önlemek için aşağıdaki ampirik formül A x 29 / 20.7'yi uygulayın. Konilerin moleküllere göre koruyucu etkisini, molekülü test ettiğimiz 4 kuyudaki ortalama hücre sayısı ile negatif kontrolün 18 kuyusundaki ortalama hücre sayısı arasındaki oran olarak puanlandırın (bkz. Tablo 1 ve Tamamlayıcı Şekil 1).</li>
	<li>1 x 105 hücre/cm2'de tohumlanan plakanın sonuçlarını, taranan her molekül tarafından potansiyel korumayı (canlılık oranı) değerlendirmek için 2 x10 5 hücre/cm2'de tohumlanmış plaka ile birleştirin.</li>
</ol>

TL, J-AS ve VF retina dejenerasyonlarını tedavi etmek için EdCVF kullanımına ilişkin bir patente sahiptir [WO2009071659 (A1). 12 Haziran 2007].

Tavuk embriyolarından koni ile zenginleştirilmiş bir kültürün üretimini sınırlandırabilecek birçok parametre arasında, ilk kritik adım, yumurtadan çıkan yumurtalardaki embriyoların gelişim aşamasını doğru bir şekilde tanımlamaktır. ED8'deki (34. evre) embriyoların retinalarından hücre kültürünün sadece% 35 fotoreceptör ürettiği ve geri kalan%65'inin diğer nöronlardan yapıldığı görülmüştür4. Yumurtadan çıkan yumurtaları almak için uygulanan lojistik ne olursa olsun, sıcaklığı ve kuluçka süresini hassas bir şekilde ayarlamak ve embriyoları gelişimin tüm aşamalarının referans resimlerine kıyasla dikkatlice incelemek gerekir42,45.
Başlangıçta, koni ile zenginleştirilmiş kültür sistemi White Leghorn strain4kullanılarak geliştirilmiştir. Bu türün yumurtalarının beyaz rengi Özellikle Fransa'da takdir edilmiyor, bu yüzden kahverengi yumurta üreten bir tavuk türü kullandık. Ja57 tavuğu 5 ile I 66 horozları geçerek yapılan I 657 suşunukullandık. Orijinal kültürlerin özelliklerini yeniden üretebildik. Bu, tavuğun genetik arka planının koni ile zenginleştirilmiş kültürler elde etmek için kritik olmadığını göstermektedir.
Kültür ortamında takviyelerin bireysel olarak çıkarılmasının etkisini test etmedik, ancak insülinin, otozomal resesifRP 46modeli olan rd1 faresinde konilerin hayatta kalması üzerindeki etkisine uygun olarak kritik bir rol oynadığını gözlemledik. Triiyodotironin (T3) ayrıca tavuk embriyosunun retina öncül hücrelerinin gelişim sırasında retina hücre kaderinde tiroid hormon reseptörü rolüne göre konilere farklılaşmasına katılabilir40. Sonuç olarak, koni ile zenginleştirilmiş kültür sistemi, ifade klonlama ile insülin tanımlamak için kullanılamaz46.
Koni ile zenginleştirilmiş kültür sistemi birincil nöron kültürüne dayanır ve hücre hattı 661W24 , 25,26 olarak ölümsüzleştirilmiş hücrelerin kullanımına dayanan çok daha uygun tha yöntemleridir.
Burada açıklanan yöntem plazmid DNA20ile önceden elektroporasyon yapılarak değiştirilebilir. Retina hücre süspansiyonu hazırlanmadan önce, tüm retina, 10 mM Tris-HCl pH 8.0, 1 mM EDTA'da 120 μL 0.5 μg / μL plazmid DNA'sı ile özel yapım bir elektroporatör odasına yerleştirilir. Her biri 50 ms için 15 V'lik beş darbe, 950 ms aralık22ile ayrılmıştır. Koni ile zenginleştirilmiş kültürlere çoğaltma yetkin kuş splice (RCAS) retrovirüslerini kullanarak müdahaleci RNA (RNAi) sunma girişimleri başarısız oldu47. Bunun nedeni kesinlikle serumun yokluğunda ve düşük yoğunluklu kültürlerde, retina öncül hücrelerin çoğalıcı olmaması, retrovirüslerin yayılması için bir gerekliliktir.
İfade klonlama kullanarak koni sağkalımını destekleyen trofik faktörleri tanımlamak için koni ile zenginleştirilmiş kültür sistemini geliştirdik19. Mümkün kılmak için, 100 klonluk havuzlardan şartlandırılmış ortam kullanarak yüksek içerik taramasının ilk adımını gerçekleştirdik. Cos-1 hücrelerinin transfeksiyonundan sonra kütüphaneden gelen cDNA'lar güçlü bir CMV promotörünün kontrolü altında ifade edilse bile, bireysel cDNA'lar tarafından kodlanan tüm proteinlerin canlılık testine göre pozitif olarak puanlanacak kadar bir konsantrasyona ulaşması garanti vermez. Bu büyük bir sınırlamadır. Bu anlamda, herhangi bir tarama gerçekten kapsamlı değildir. Ek olarak, membranöz proteinler şartlandırılmış ortamdan çıkarılmamış olsa bile, tahlil yapılandırması difüzif olmayan faktörlerin tanımlanması için elverişsizdir. Bir alternatif, aynı aday proteinin birçok kez test edilmesindeki çoğaltmaları önlemek için cDNA'ların sırasını elde ettikten sonra tek tek klonları taramak olacaktır. Bu, kullandığımız retinal cDNA kütüphanelerinin sıralanarak başlatıldı43. Rasyonel olmakla birlikte, bu yaklaşımın da sınırlamaları vardır. CDNA dizilerinin biyoinformatik analizi, artıklığın azaltılmasının yanı sıra, bilgiye dayalı belirli klonların taranma önceliklendirilmesini karşı konulmaz bir şekilde dayatacaktır. Bu, son olarak, tüm kütüphanenin yapılması için gereken süre önemli ölçüde uzatılsa bile taranması durumunda zararlı olmayacaktır. Ama her zaman, dizinin kimliği sonuçlara bakış şeklimizi etkileyecektir. Dizinin yorumlanması doğal olarak deneysel verilerle rekabet halinde olacağından bu nötr olmayacaktır.
EdCVF'nin tanımlanması, yüksek içerik taramasının teknik sınırlamalar gerektirdiğini de göstermektedir. Taramanın ilk turundan itibaren, yüksek aktiviteye sahip iki havuz belirledik (Tamamlayıcı Şekil 1). Havuz 0073, EdCVF'nin başarılı bir şekilde tanımlanmasına yol açarken, havuz 0080 bu bulguya uymuyor. Alt havuzların hazırlanması sırasında aktif klonun kaybından kaynaklanan sorunu çözemedik. Alternatif olarak, istatistiksel olarak elverişli olmasa bile, havuz 0080'in cDNA'ları arasında iki proteinin sinerjik olarak hareket ettiği ve aktivitelerinin bireysel klonlar olarak gözlemlenemediği hariç tutulmaz.
Küçük molekülleri tarayarak konileri koruyan moleküllerin tanımlanması, koni ile zenginleştirilmiş kültür sisteminin gelecekteki bir uygulamasıdır. Bu tür moleküller, gen tedavisinin yaşa bağlı makula dejenerasyonu olarak en uygun yaklaşım olmadığı retina patolojilerinin tedavisi için paha biçilmez olacaktır.

Omurgalı türlerin retinası, loş ışık görüşü için çubuk fotoreceptörler ve gün ışığı, renk ve keskinlik görüşü için koni fotoreceptörleri ile çifttir. Primat görme keskinliği retinanın merkezinde, konilerde zenginleştirilmiş fovea adı verilen bir bölgeye dayanır, ancak genel olarak koniler tüm fotoreceptörlerin sadece% 5'ini temsil eder. Sonuç olarak, primat retinadaki konilerin analizi ve özellikle koni kültürü teknik olarak zordur. Diğer tüm memeli türlerinin foveası yoktur ve retina araştırmalarında en sık kullanılan kemirgenler için konilerin yüzdesi düşüktür. Bu, konilerin bu iyi gören kuş türlerinin retinasına hakim olduğu kuş türleri için böyle değildir. Memeliler evrim sırasında ilk ortaya çıktığında ekosisteme hakim olan dinozorlar, kuşların filogenetik kökenindedir1. Dinozorlar ve erken memeliler arasındaki bu rekabetin bir sonucu olarak, memeliler çoğunlukla çubukların hakim olduğu retinalarla gecedir. Ancak daha sonra evrim sırasında, primatların ait olduğu bazı memeli türlerinin diurnal görüşü evrimsel bir avantaj haline geldi. Bununla birlikte, ata dönemi, memeli görüşünün evriminde gece darboğazının bir atavizmi olarak kalır2,3.
Adler ve Hatlee, retina hücre farklılaşması üzerinde çalışırken, fotoreceptörlerin embriyonik gün (ED) 6 veya evre 294'tetavuktan elde edilen kültürlerde retina farklılaştırılmış hücrelerin yaklaşık% 70'ini temsil ettiğini göstermiştir. Tavuk retinasındaki konilerin yaygınlığı nedeniyle, ED6 tavuk embriyolarından retina hücrelerinin kültürleri koni ile zenginleştirilmiş kültürler olarak geliştirilmiştir5.
Koni aracılı görme keskinliğinin insan için önemi bir truizmdir. Koni fonksiyonunu değiştiren genetik veya yaşlanma hastalıklarından etkilenen insanlar büyük ölçüde özürlüdür. Bu, kalıtsal retina dejenerasyonları (IRD) üzerinde bu kör edici hastalıklar için tedaviler bulmak amacı ile çok geniş bir çalışma gövdesini teşvik etti6,7. IRD Leber konjenital amaurozun (LCA) şiddetli bir formunun tedavisi için rekombinant adeno ilişkili bir vektör (AAV) kullanılarak elde edilen ilk başarı, gen tedavisi için bir kavram kanıtıdır8. Mutasyonları IRD'yi tetikleyen genlerin tanımlanması, gen tedavisi kullanılarak bu hastalıkların tedavi etme olasılığını açar. Bununla birlikte, bu hastalıklar 200'den fazla farklı gendeki mutasyonlardan kaynaklanmaktadır9. IRD'nin otozomal resesif formları söz konusu olduğunda bile, morbid genin normal kopyasının yeniden tanıtılması görsel işlevi geri getirebildiğinde, her bir gelişmenin ekonomik maliyeti, daha az yaygın olanlara ve genetik kökeninin bilinmediği kişilere zarar vermede en yaygın olanları tercih eder. Bu gerçek, araştırmacıları daha genel tedaviler hakkında düşünmeye yönlendirdi. Apoptotik hücre ölümü ortak bir yol olarak ortaya çıktı ve otozomal dominant formlar da dahil olmak üzere fotoreceptörlerin dejenerasyonu ile ilerleyen bu hastalıkların terapötik bir hedefi10,11. Ancak, böyle bir yaklaşımın başarıları eksiktir. IRD'nin en yaygın formu olan retinitis pigmentosa (RP) için, ortak yol ikincil fonksiyon kaybı ve ardından konilerin dejenerasyonu12,13. Koni fonksiyonu kaybını önlemek, foveanın merkezi görüşünü etken mutasyonlardan bağımsız olarak koruyacaktır14.
RP'nin erken aşamasında, çubukların kaybı, çubuklar ve koniler arasındaki metabolik ve redoks sinyalini kesen nükleoredoksin benzeri 1 (NXNL1) geni tarafından kodlanan çubuk türevi koni canlılık faktörünün (RdCVF) ifadesinde bir azalmayı tetikler15. NXNL1 geninin iki ürününü, trofik faktör RdCVF'yi ve tiyoredoksin enzimi RdCVFL'yi kodlayan bir rekombinant AAV'nin yönetimi, teorik olarak RP16'nıntüm genetik formlarında koni görme kaybını önleyebilir. NXNL1 gen ürünü RdCVFL'nin tavuk konisi ile zenginleştirilmiş kültürlerde ifade edildiğini gösterdik17 ve koruyucu bir rol oynadığı18. RdCVF ve NXNL1 geni, koni ile zenginleştirilmiş bir kültürden hücrelerin hayatta kalması kullanılarak retinal cDNA kütüphanesinin yüksek içerik taraması ile19olarak tanımlanmıştır. Her klon için 8 paralel test kullanarak kütüphanenin 210.000 bireysel klonunun eşdeğerini taradık. Bu, biyolojik materyale, tavuk embriyolarının retinalarına kolay erişim gerektiren çok sayıda testi temsil eder. Embriyolu tavuk yumurtalarını haftalık olarak elde etmenin nispeten kolay olduğunu gördük, çünkü yumurta yumurtlayan tavuklar ve et üreten tavuklar için tarım endüstrisi için yaygın olarak üretiliyorlar. Koni ile zenginleştirilmiş kültürlerin dikkatli bir şekilde standartlaştırılmasından sonra, sistem koni canlılığını koruma yetenekleri için binlerce molekülü test etmenin kolay, sağlam ve tekrarlanabilir bir yolunu sağlar. Bu hücreler ayrıca sinyal transdüksiyonu çalışmasına ve biyokimyasal analizlere fayda sağlayan genetik manipülasyonlar20'ye ve biyokimyasal analizlere de elverişlidir21,22,23.
Retina araştırmacıları koni hücre hattı 661W24 , 25,26olarak alternatif yöntemlergeliştirmiştir. Bununla birlikte, bu hücre hattının kimliği tartışmalı olmaya devam ediyor27,28. 661W hücreler, insan interphotoreceptor retinol bağlayıcı protein promotörünün kontrolü altındaki SV40 büyük T antijenini ifade eden transgenik bir fare hattının retina tümörlerinden klonlandı. SV40 büyük T antijeni hücresel dönüşüme ve ölümsüzleşmeye aracılık eder. Sonuç olarak, 661W hücreler kullanılarak tanımlanan sinyal yolu, yerinde konilerden birçok yönden farklı olan dönüştürülmüş ve ölümsüzleştirilmiş bir hücre hattı bağlamına bildirilmelidir. Bu bakımdan, koni ile zenginleştirilmiş kültür sistemi, fizyolojik olarak daha alakalı koniler olan birincil nöronlardan oluşur.
Fare retinasının vibratom kesitini kullanarak saf bir fotoreceptör kültürü elde etmek mümkün olsa da, kemirgenlerin dış retinasındaki konilerin çok düşük yüzdesi, bu yaklaşımı koni ile zenginleştirilmiş kültürler üretmek için uygun hale getirir29. Domuz retinası fovea içermez, ancak konilerde çok zenginleştirilmiş area centralis adı verilen bir bölgeye sahiptir30. Arvicanthis ansorgei ve Psammomys obsesus31,32gibi retina diurnal kemirgenlerdeki konilerin yüksek oranı olası bir çözüm sunar, ancak bu tür egzotik türlerin üremesini gerektirir. Yerel mezbahalardan toplanan yetişkin domuz gözleri, fotoreceptör sağkalımını incelemek için kullanılan çubuk ve konilerin karışık bir kültürünü üretmek için kullanılabilir33. Zarif bir çözüm, konileri seçici olarak konilere bağlayan fıstık agglutinin (PNA) lektin ile tavalama kullanarak domuz retinasından önceden arındırmaktır34. Bununla birlikte, bu yöntemin karmaşıklığı nedeniyle büyük ölçekte uygulanması zordur.
İnsan kaynaklı pluripotent kök hücreler (iPS), retina nakli için kullanılabilecek ancak koni ile zenginleştirilmiş kültüre de uyarlanabilen bir koni fotoreceptör hücre popülasyonu elde etmek için en umut verici yaklaşımı sunar35,36. Transkripsiyon faktörü NRL çubuk fotoreceptörler için gerekli olduğundan37, Nrl-/- fare kısa dalga konilerinin (S-konileri) hakim olduğu bir retinaya sahiptir. İnaktivasyon, insanın iPS38,39'danfarklılaştırılmasıyla S-koni ile zenginleştirilmiş preparat üretmek için kullanılabilir. Başka bir olası yaklaşım tiroid hormon sinyali kullanarak koni farklılaşma teşviketmektir 40. İnsan iPS'lerinden koni ile zenginleştirilmiş kültürler üretmek için yeni yöntemler ortaya çıkarken, tavuk embriyoları mevcut kanıtlanmış bir yöntem sağlar19.
Koni ile zenginleştirilmiş kültür, RdCVF'nin19ifade klonlama ile tanımlanmasında etkili oldu. Bu sistem ayrıca, RdCVF'nin glikoz alımını ve metabolizmasını aerobik glikoliz22. Ayrıca, NXNL1 geni23'ünikinci ürünü olan RdCVFL'nin koruyucu rolünü doğrulamak için koni ile zenginleştirilmiş kültür kullanılmıştır. Daha yakın zamanda, bu sistem OTX241ile transdüklenmiş retina pigmentli epitel hücreleri tarafından salgılanan koruma moleküllerinin varlığını göstermek için kullanılmıştır.

<table><tbody><tr><td>96 siyah plaka (Kapaklı Şeffaf Düğme, Doku kültürü tedavi edildi)</td><td>Corning</td><td>3603</td><td></td></tr><tr><td>Calcein</td><td>Thermo-Fisher scientific</td><td>C1430</td><td></td></tr><tr><td>CCD Kamera</td><td></td><td>Fotometri CoolSnap&nbsp; FX HQ</td><td></td></tr><tr><td>CDPC (Sitidin 5 & prime; -difosfokolin sodyum tuzu dihidrat)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>C0256</td><td></td></tr><tr><td>CO2 Bağımsız</td><td>Thermo-Fisher scientific</td><td>18045-054</td><td></td></tr><tr><td>Kavisli forseps</td><td>Dutscher</td><td>005093</td><td></td></tr><tr><td>DMEM Media</td><td>Thermo-Fisher scientific</td><td>41966-029</td><td></td></tr><tr><td>DNAse</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D4263</td><td></td></tr><tr><td>Yumurta kuluçka makinesi</td><td>FarmLine</td><td>M08 01 3100</td><td></td></tr><tr><td>Etidyum Homodimer</td><td>Thermo-Fisher bilimsel</td><td>E1169</td><td></td></tr><tr><td>F & oelig; tal sığır serumu</td><td>Thermo-Fisher scientific</td><td>10270-098</td><td></td></tr><tr><td>Gentamisin</td><td>Thermo-Fisher scientific</td><td>15710-049</td><td></td></tr><tr><td>Hidrokortizon</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H0880</td><td></td></tr><tr><td>ITS (insülin Transferin selenyum)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>I1884</td><td></td></tr><tr><td>büyük düz pense</td><td>Dutscher</td><td>005074</td><td></td></tr><tr><td>Linoleik asit</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L8384</td><td></td></tr><tr><td>M199 orta</td><td>Thermo-Fisher scientific</td><td>31150-022</td><td></td></tr><tr><td>Metamorf yazılımı</td><td>Metamorf</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mikroskobu</td><td>NIKON</td><td>Eclipse TE2000</td><td></td></tr><tr><td>Motorlu sahne</td><td>Martzauzer</td><td>Mutlicontrol 2000</td><td></td></tr><tr><td>Optik filtre anahtarı</td><td>Deklanşör Enstrüman şirketi</td><td>Lambda 10-2</td><td></td></tr><tr><td>PBS 1X</td><td>Thermo-Fisher bilimsel</td><td>14190-086</td><td></td></tr><tr><td>Poli-L-lizin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P6282</td><td></td></tr><tr><td>Progesteron</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P7556</td><td></td></tr><tr><td>Pursept A ekspres</td><td>Fisher bilimsel</td><td>11814110</td><td></td></tr><tr><td>Putriscine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P5780</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum piruvat</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S8636</td><td></td></tr><tr><td>düz forseps</td><td>Dutscher</td><td>005092</td><td></td></tr><tr><td>Taurin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8691</td><td></td></tr><tr><td>Triiyodotironin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T6397</td><td></td></tr><tr><td>Tripan mavisi</td><td>Thermo-Fisher bilimsel</td><td>15250-061</td><td></td></tr><tr><td>Tripsin% 0.25</td> <td>Termo-Fisher bilimsel</td><td>25200-056</td><td></td></tr></tbody></table>

tavuk embriyolarının retinasından koni zenginleştirilmiş kültürler Çubuktan koni hücresel etkileşimlerine

Cone-Enriched Cultures from the Retina of Chicken Embryos to Study Rod to Cone Cellular Interactions

İnsan gündüz görüşü, retinanın merkezindeki koni fotoreceptörlerinin işlevine dayanır, fovea. Kalıtsal retina dejenerasyonu en yaygın formu olan retinitis pigmentosa muzdarip hastalar, rod fotoreceptörlerinin mutasyona bağlı kaybı nedeniyle gece görüşünü kaybederler, bu fenomenin ardından körlüğe yol açan konilerin ilerleyici bir fonksiyon kaybı ve ölümü. Genetikçiler bu hastalığa neden olan mutasyonlarla birçok gen tanımladılar, ancak tanımlanan ilk mutasyonlar ikincil koni dejenerasyonunun mekanizmalarını ve sadece çubuklarda ifade edilen görsel pigment için rodopsin gen kodlamasındaki baskın bir mutasyonun koni dejenerasyonunu nasıl tetikleyebileceğini sorguladı.
Hastalığın genetik bir modelinde yapılan nakillerin bu sonucu, çubuklar ve koniler arasındaki hücre etkileşimleri ve retinitis pigmentosa'nın tüm genetik formlarındaki konilerin hücre dışı otonom dejenerasyonu kavramına yol açmıştır.
Koniler insanlardaki tüm fotoreceptörlerin% 5'ini ve farede sadece% 3'ünü oluşturur, bu nedenle çalışmaları bu türlerde zordur, ancak koniler kuş türlerinde çubuk sayısından daha fazladır. 96 kuyu plakalarını, gelişimlerinin 29. Bu birincil kültürlerde koniler in vitro farklılaşmadan sonra hücrelerin % 80'ini temsil eder. Hücreler serum yokluğunda bir haftalık bir süre içinde dejenere eder. Burada yöntemleri ve standardizasyonunu açıklıyoruz.
Bu koni ile zenginleştirilmiş kültür sistemi, sıçan retina pigmentli epitel normalleştirilmiş cDNA kütüphanesinin yüksek içerikli taraması ile epitel türevi koni canlılık faktörünü (EdCVF) tanımlamak için kullanılmıştır. Rekombinant EdCVF konilerin dejenerasyonunu önler.

Koni ile zenginleştirilmiş kültür sisteminin proteinleri koruyan yeni konileri tanımlamak için nasıl kullanılabileceğini burada açıklıyoruz. Bu protokolü, 8 haftalık Long-Evans sıçanlarının 400 gözünden koroid ve retina pigmentli epitelden yapılmış normalleştirilmiş bir cDNA kütüphanesini taramak için kullandık43.
Bu kitaplık, birimleri (CFO) oluşturan6,0 x 10 6 bağımsız koloni içerir ve ortalama klonlanmış kesici uç boyutu 2,1 kilobase (kb) dir ve rekombinant klonların% 99'undan fazladır. Bu kütüphaneden 100 klondan oluşan havuzlar geçici olarak COS-1 hücrelerine (0.1 μg plazmid DNA) transktriğe geçirildi ve COS-1'in şartlı ortamı (CM) DMEM'de serumsuz 48 saat kuluçkadan sonra hasat edildi. Membranlar veya ekzomlar ultrasantrifüjleme ile çıkarılmadı. Her CM'nin elli mikrolitresi iki 96 kuyu plakasının 4 kuyusuna eklendi: biri 2 x 105 hücre / cm2'detohumlanmış, diğeri 4 x 105 hücre / cm2. Kütüphaneyi oluşturmak için kullanılan boş vektör pcDNA3.1 ile transfecteded COS-1 hücrelerinden CM negatif kontrol olarak kullanılmıştır (Tablo 1). Dört kültür kuyusunda ve koni ile zenginleştirilmiş kültürlerin iki tohumlama koşulu için 211.200 bireysel klona karşılık gelen toplam 2.112 set 100 klon değerlendirildi. İki koşul, toplam 1.689.600 kültür kuyusu için koruyucu aktiviteyi daha hassas bir şekilde değerlendirmeyi mümkün kılan iki farklı aşılama yoğunluğuna karşılık gelir.
2'den büyük oranlı 42 klon havuzu arasında, 0080 ve 0073 havuzları, 7 günlük kültürden sonra canlılık oranı 16 ve 14 kat daha yüksektir, pcDNA3.1 (Tamamlayıcı Şekil 1). Bu analiz, ilgi alanlarını belirlemek için gereklidir. Seçilen her 100 klon havuzu, gliserol stoklarından 16 set 10 klona bölündü. Bu alt havuzlar ikinci tur taramada (yani toplam 3.200 kültür kuyusu) aynı yönteme göre hazırlanmış ve test edilmiştir. Alt havuz 0073-09 en güçlü canlılık oranını verdi (Tamamlayıcı Şekil 2A) ve koni ile zenginleştirilmiş kültürler üzerinde üçüncü turda test edilen 16 bireysel klon üretmek için alt bölümlere ayrıldı. Klon 0073-09-37 klonu, 2,5'e eşit bir canlılık oranıyla diğerlerinden açıkça sıyrılır (Tamamlayıcı Şekil 2B). Tohumlama yoğunluğu Ek şekil 2A'dan aynı olsa bile y ekseni farklı bir ölçeğe sahiptir. Bunu, tahliller aylarca haftalık olarak tekrarlandığında yaygın olarak gördük. Analizden sonra, bu sonuçlar klon 0073-09-37'nin koni sağkalımında sağlam ve tekrarlanabilir bir etkiye sahip olduğunu doğrulamaktadır. Test bağımsız olarak tekrarlandı (Şekil 3A) ve 1.8 kb'lık kesici uç sıralandı (Şekil 3B).
Biyoinformatik bir analiz, klonun 0073-09-37, epitel türevi koni canlılık faktörü (EdCVF) olarak adlandırdığımız, üç açık okuma çerçevesi (ORF) içerir, en yukarı akış (ORF1) sıçan proteininin C-terminal kısmının C-terminal kısmının 84 kalıntısı için kodlar çinko parmak proteini-180 (ZFP180, NP_653358) 727 amino asit44. Diğer iki ORF (ORF2 ve ORF3) farelerde çok daha az korunur ve diğer memelilerde yoktur. Bağımsız olarak test edildiğinde, sadece ORF1 koniler üzerinde koruyucu bir etki uygular (Ek Şekil 3). ORF1 glutatyon S-transferaz (GST) füzyon proteini olarak üretilmiştir (Şekil 4A). EdCVF proteini saflaştırılmış ve GST etiketi kaldırılmıştır (Şekil 4B). EdCVF, koni ile zenginleştirilmiş kültür sisteminde koni dejenerasyonunu önleyebilir (Şekil 4C).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61998/61998fig01.jpg"> Şekil 1: 28. ,29.ve 30. Oklar W: kanat, C: yaka ve B: fatura. Ölçek çubuğu 1 cm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61998/61998fig01large.jpg" target="_blank">Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61998/61998fig02.jpg"> Şekil 2: Tavuk embriyosunun retinasının diseksiyonu <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61998/61998fig02large.jpg" target="_blank">Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61998/61998fig03.jpg"> Şekil 3: Epitel türevi koni canlılık faktörü (EdCVF), klon 0073-09-37. A. Koni ile zenginleştirilmiş kültürde daha fazla canlılık. B. cDNA klonunun sırası 0073-09-37. Altı çizili sıra GAATTC, kitaplığı oluşturmak için kullanılan EcoRI kısıtlama sitesidir. Kalın gtg iki codons vektör kaynaklı EdCVF için nadir çeviri başlatma siteleridir. Öğrencinin teste göre istatistiksel analizi. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61998/61998fig03large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61998/61998fig04.jpg"> Şekil 4: Rekombinant EdCVF aktivitesi. A. Glutatyon S-transferaz (GST) ile füzyonda EdCVF dizisi. B. Saflaştırılmış rekombinant EdCVF proteini. C. Kültürde koni üzerinde GST-EdCVF trofik aktivitesi. Tukey'in testini kullanarak istatistiksel analiz. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61998/61998fig04large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
Ek Şekil 1: CDNA havuzu için ortalama hücre sayısının oranı ve negatif kontrol, taramanın ilk turunda boş vektör pcDNA3.1 ile trans enfekte cos-1 hücrelerinin koşullandırılmış ortamı. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61998/Supplemntary_File_1_12_11_2020.pdf" target="_blank">Bu dosyayı indirmek için lütfen tıklayınız.</a> 
Tamamlayıcı Şekil 2: Canlı hücre sayısı. A. 0073 havuzunun alt havuzları ile ikinci tur tarama. B. İzole klonlarla üçüncü tur tarama. CN: COS-1 hücrelerinin koşullandırılmış ortamı boş vektör ile transfected, pcDNA3.1. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61998/Supplementary_Figure_2_12_11_2020.pdf" target="_blank">Bu dosyayı indirmek için lütfen tıklayınız.</a> 
Ek Şekil 3: İzole klonun üç açık okuma çerçevesinin trofik aktivitesi 0073-09-37. Dunnett'in testini kullanarak istatistiksel analiz. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61998/Supplementary_figure_3.pdf" target="_blank">Bu dosyayı indirmek için lütfen tıklayınız.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td></td>
			<td>1</td>
			<td>2</td>
			<td>3</td>
			<td>4</td>
			<td>5</td>
			<td>6</td>
			<td>7</td>
			<td>8</td>
			<td>9</td>
			<td>10</td>
			<td>11</td>
			<td>12</td>
		</tr>
<tr>
<td>A</td>
			<td>1</td>
			<td>1</td>
			<td>1</td>
			<td>1</td>
			<td>2</td>
			<td>Nc</td>
			<td>2</td>
			<td>2</td>
			<td>2</td>
			<td>3</td>
			<td>3</td>
			<td>Nc</td>
		</tr>
<tr>
<td>B</td>
			<td>Nc</td>
			<td>3</td>
			<td>3</td>
			<td>4</td>
			<td>4</td>
			<td>4</td>
			<td>Nc</td>
			<td>4</td>
			<td>5</td>
			<td>5</td>
			<td>5</td>
			<td>5</td>
		</tr>
<tr>
<td>C</td>
			<td>6</td>
			<td>Nc</td>
			<td>6</td>
			<td>6</td>
			<td>6</td>
			<td>7</td>
			<td>7</td>
			<td>Nc</td>
			<td>7</td>
			<td>7</td>
			<td>8</td>
			<td>8</td>
		</tr>
<tr>
<td>D</td>
			<td>8</td>
			<td>8</td>
			<td>Nc</td>
			<td>9</td>
			<td>9</td>
			<td>9</td>
			<td>9</td>
			<td>10</td>
			<td>Nc</td>
			<td>10</td>
			<td>10</td>
			<td>10</td>
		</tr>
<tr>
<td>E</td>
			<td>11</td>
			<td>11</td>
			<td>11</td>
			<td>Nc</td>
			<td>11</td>
			<td>12</td>
			<td>12</td>
			<td>12</td>
			<td>12</td>
			<td>Nc</td>
			<td>13</td>
			<td>13</td>
		</tr>
<tr>
<td>F</td>
			<td>13</td>
			<td>13</td>
			<td>14</td>
			<td>14</td>
			<td>Nc</td>
			<td>14</td>
			<td>14</td>
			<td>15</td>
			<td>15</td>
			<td>15</td>
			<td>Nc</td>
			<td>15</td>
		</tr>
<tr>
<td>G</td>
			<td>16</td>
			<td>16</td>
			<td>16</td>
			<td>16</td>
			<td>17</td>
			<td>Nc</td>
			<td>17</td>
			<td>17</td>
			<td>17</td>
			<td>18</td>
			<td>18</td>
			<td>Nc</td>
		</tr>
<tr>
<td>eroin</td>
			<td>18</td>
			<td>18</td>
			<td>19</td>
			<td>19</td>
			<td>19</td>
			<td>19</td>
			<td>Nc</td>
			<td>20</td>
			<td>20</td>
			<td>20</td>
			<td>Nc</td>
			<td>20</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="13">NC negatif kontrolleri</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="13">Havuzların 1-20 pozisyonu dört katına test edildi</td>
		</tr>
</tbody></table>Tablo 1: Yüksek içerik taraması için 96 kuyu plakasının planı

Tavuk embriyolarının retinasından koni fotoreceptörlerinin birincil kültürlerini elde etmek için bir yöntem ve yüksek içerik taraması için kullanımını açıklıyoruz.

Tavuk Embriyolarının Retinasından Koni Zenginleştirilmiş Kültürler Çubuktan Koni Hücresel Etkileşimlerine

Human daytime vision relies on the function of cone photoreceptors at the center of the retina, the fovea. Patients suffering from the most prevalent form ...

Bu yöntem, gün ışığı görüşü için gerekli olan koni reseptörlerini incelemek için kullanılır. Yöntemlerin avantajı, kolay erişilebilir ve birincil koni kültürlerinin tek kaynağı olan döllenmiş tavuk yumurtası kullanmasıdır. Protokol, kalıtsal retina dejenerasyonu için gelecek vaat eden bir tedavi olan Çubuk Türetilmiş Koni Canlılık Faktörü'nü tanımlamak için kullanıldı.Ayrıca, protokol koni fotoreceptör metabolizmasını incelemek için kullanılmıştır. Açıklanan protokole dikkatle uyarak, uzmanlığı birincil hücre kültüründe olan bir birey, sadece birkaç denemeden sonra koni zenginleştirilmiş kültür elde edebilmelidir. Endüstriyel bir kuluçkahaneden haftalık döllenmiş yumurta toplayarak başlayın.Döllenmiş yumurtaları laboratuvarda 17 santigrat derecede koruyun. Her kültür için, yedi döllenmiş yumurtayı 20 santigrat derecede 24 saat ve daha sonra 37 santigrat derecede 136 saat, eğimin aralıklı olarak geri çevrilmesi ile nemli bir odada kuluçkaya yatırın. Tavuk embriyolarını kurtarmak için, yumurtaların yüzeyini dezenfektanla yıkayın, kabuğun üst kısmında büyük düz pense ile bir delik açarak yumurta kabuğunu kırın, ardından şapkayı yumurtadan çıkarmak için kabuğu kesin.Her embriyoyu kavisli önps ile yumurta kabuğundan yavaşça çıkarın ve daha önce 37 santigrat dereceye ısıtılmış steril PBS içeren bir Petri kabına aktarın. Embriyoları çevreleyen zarfı dikkatlice çıkarın. Hamburger ve Hamilton ile görsel karşılaştırma yaparak her embriyonun gelişim aşamasını doğrulayın ve gelişimin 29.Karbondioksitsiz ortamda çalışarak, kornea aşağı bakacak şekilde dört göz ve deneyciye bakan optik siniri konumlandırın. İki düz emiş kullanarak optik sinirde bir delik açın. Retina ve pigment epitel arasına her bir epanstan bir dal yerleştirin, ardından epiteli retinadan ayırmak için gözü çekin ve döndürün.Korneayı çıkarın, ardından lensi ve vitreus. Dört retinayı pH 7.2'de Ringer'ın ortasını içeren bir Petri kabına aktarın. dört retinayı iki düz pense kullanarak çok küçük parçalara bölün ve parçaları Ringer'ın ortamıyla iki kez yıkayın.İkinci yıkamadan sonra, retina parçalarının tüpün dibine düşmesine izin verin ve ortamı çıkarın. Retina parçalarını 37 santigrat derecede 20 dakika boyunca bir Trypsin çözeltisi ile tedavi edin. 20 dakika sonra, %10 inaktive fetal baldır serumu ile desteklenmiş kültür medyası ekleyerek reaksiyonu durdurun.Hücre süspansiyonu 0.05 mg DNase 1 ile kuluçkaya yaslanın, ardından bir pipetle yukarı ve aşağı pipetle aşağı yukarı pipetle hücre kümelerini ve DNA'yı hemen ayırın. Retina hücre süspansiyonu kimyasal olarak tanımlanmış kültür ortamı veya CDM ile iki kez yıkayın. Şeffaf tabanlı iki siyah 96 kuyulu kültür plakalarını 37 santigrat derecede iki saat boyunca polilizin ile tedavi edin.Bittiğinde, plakaları M199 kültür ortamı ile iki kez durulayın. Canlı hücreleri lekelamak için hücre süspansiyonunun 10 mikrolitrelik bir aliquot'una Trypan mavisi ekleyin. Daha sonra hücre süspansiyon örneğini bir hemositometreye ekleyin.Hücreleri saydıktan sonra, hücre süspansiyonu CDM kullanarak uygun konsantrasyonlara getirin. Önceden tanımlanmış bir desen kullanılarak taranacak molekül kitaplığının 50 mikrolitresini ekleyin. İki hücre süspansiyonunun 50 mikrolitresini önceden işlemden geçmiş iki siyah 96 kuyu kültür plakasına tohumlayın.Plakalardaki hücreleri, plakanın sağından sola doğru çok kanallı bir pipetle dağıtın ve her sütun arasında homojenleşin. Daha sonra plakaları yedi gün boyunca 37 santigrat derecede, % 5 karbondioksitin altında, ortam değişikliği olmadan kuluçkaya yatırın. Uygulanabilir hücreleri saymak için, plakanın her kuyusuna 2,7 mikromoler kalsein ve 0,3 milimoler ethidyum homodimer ekleyin.Işık yokluğunda tabakları oda sıcaklığında bir saat kuluçkaya yatırın. 485 ve 520 nanometrede iki ekscitasyon filtresi, 520 ve 635 nanometrede iki emisyon filtresi ve şarj bağlantılı bir cihaz kamerası ile donatılmış ters mikroskopla donatılmış bir ters mikroskop içeren otomatik bir plaka okuyucusunda floresan okuyun. Bu protokol, sekiz haftalık Long-Evans Rats'in 400 gözünden koroid ve retina pigmentli epitelden yapılmış normalleştirilmiş bir cDNA kütüphanesini taramak için kullanıldı.211, 200 bireysel klona karşılık gelen toplam 2.112 set 100 klon değerlendirildi. İkiden büyük oranlı 42 klon havuzu arasında, 0080 ve 0073 havuzları, yedi günlük kültürden sonra negatif kontrolden 16 ve 14 kat daha yüksek bir canlılık oranına sahipti. Seçilen 100 klondan her biri gliserol stoklarından 16 set 10 klona bölündü.0073-09 alt havuzu en güçlü canlılık oranını verdi ve koni ile zenginleştirilmiş kültürler üzerinde üçüncü turda test edilen 16 bireysel klon üretmek için alt bölümlere ayrıldı. 0073-09-37 klonu 2,5 canlılık oranıyla dikkat çekti. Daha fazla analiz, bu klonlamanın koni sağkalımında sağlam ve tekrarlanabilir bir etkiye sahip olduğunu doğruladı.Test bağımsız olarak tekrarlandı ve 1.8 kilobases ekleme sıralandı. Biyoinformatik bir analiz, Epitel Türevi Koni Canlılık Faktörü olarak adlandırılan 0073-09-37 klonunu veya EdCVF'nin üç açık okuma çerçevesi içerdiğini ortaya koydu. Bağımsız olarak test edildiğinde, sadece ORF1 koniler üzerinde koruyucu bir etki uyguladı.ORF1 glutatyon S-transferaz proteini olarak üretildi. Epitel türevi koni canlılık faktörü saflaştırıldı ve GST etiketi kaldırıldı. Trofik aktivitenin analizi, EdCVF'nin koni ile zenginleştirilmiş kültür sisteminde koni dejenerasyonunu önleyebildiğini göstermiştir.Bu prosedürü denerken, koni ile zenginleştirilmiş kültürleri elde etmek için embriyoların gelişim aşaması dikkatlice kontrol edilmelidir. Bu protokolden sonra, hücreler RdCVF gibi herhangi bir sağkalım faktörünün moleküler mekanizmalarını incelemek için plazmid DNA ile elektropore edilebilir. Bu teknik, koni sağkalımının matematiksel modellerinin geliştirilmesi de dahil olmak üzere metabolik araştırmaların önünü açmaktadır.

cone-enriched-cultures-from-retina-chicken-embryos-to-study-rod-to

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

Bu makale, tavşan retina ve parçacık GFP veya retina ganglion hücrelerinin içine Subselüler belirteçleri çeşitli kodlama plazmid aracılı gen transferi diseksiyonu ve inkübasyon göstermektedir.

Yetişkin Tavşan Retina Organotipik Kültürü

Biz bir emme elektrot kullanarak tek bir fare kozalakları flaş cevaplarını kaydetmek için nasıl gösterecektir.

Tek hücreli fare Koni fotoreseptörlerin Emiş Kayıtlar

Bu makale, fare izole retinal hazırlanması incelemek ve kaydetmek için nasıl bir açıklama sağlar. Özellikle, floresan etiketli ganglion hücre popülasyonu ışık yanıtlarını kaydetmek ve daha sonra belirlemek ve morfolojisi analiz nasıl açıklar.

Genetik Etiketli Retina Ganglion Hücreleri Işık Tepkisi Record İzole Retina Hazırlık

Biz sağlam fare retinadan çubuk ve koni photoresponses elde etmek için transretinal elektroretinogram (ERG) kayıtları nispeten basit bir yöntem sunduk. Bu yaklaşım ışığında cevaplar ayırmak ve izole düz monte retina arasında yer alan elektrotlar kullanarak bunları kaydetmek için fotoreseptör gelen sinaptik iletim bloğu yararlanır.

Fare Retina gelen Transretinal ERG Kayıtlar: Rod ve Koni Photoresponses

Bu videonun genel amacı hedef retina enjeksiyon nasıl gerçekleştirileceği göstermek için...

Embriyonik Chick Retina Ovo Elektroporasyon

Video, zebra balığı embriyolarından primer retinal ganglion hücrelerinin kültürlenmesi için bir yöntemi göstermektedir. Erken evre embriyolar, gözleri izole etmek için diseksiyona tabi tutulur ve daha sonra mekanik olarak retinal ganglion hücrelerinin bir süspansiyonuna ayrışır. Bu hücre süspansiyonu, akson gelişimini kolaylaştırmak için yapışkan proteinlerle kaplanmış lameller üzerinde kültürlenir.

Zebra Balığı Embriyolarından Primer Retinal Ganglion Hücre Kültürlerinin Üretilmesi

8 gün yaşlı bir fare Sinir retina% 4 jelatin bloğunun üstünde olduğunu. Vibratome ile fotoreseptör tabakası (200 um), izole edildikten sonra, fotoreseptör kültür mekanik ve enzimatik ayrışma sonrasında tohumlanır. fotoreseptör moleküler ve biyokimyasal analizler ya da transplantasyon için kullanılabilir.

Vibratome Kesit Fare Retina fotoreseptör Kültürler hazırlayın

Embriyonik civciv retinal hücre kültürleri fotoreseptör biyoloji çalışma için değerli araçlar oluşturmaktadır. Biz kültür öncesinde retina plazmid elektroporasyon ovo ex dayalı etkin gen transferi tekniğini geliştirdi. Bu teknik önemli ölçüde bu sistem için uygun genetik manipülasyon yaparak, mevcut protokoller üzerinde transfeksiyon verimliliği artırır.

Primer Hücre Kültürü Araştırmaları Chick retina Verimli Gen Transferi: Bir Eski-ovo Elektroporasyon Yaklaşımı

Biz fare retinanın ex-vivo dilim hazırlık kullanarak koni fotoreseptörlerin akson terminallerinde Ca 2 + dinamiklerini izlemek için bir protokol açıklar. Bu protokol önemli bir memeli model sisteminde koni Ca 2 + sinyalizasyon kapsamlı çalışmalar, fare verir.

Görüntüleme Ca<sup&gt; 2+</supFare Retina Koni fotoreseptör Akson Terminalleri içinde&gt; Dinamikleri

Bu protokol, teşrih deneysel işlemek ve tavuk embriyo kültür bütün retinal eksplantlar için bir yöntem tarif eder. Yüksek başarı oranı, etkinlik ve tekrarlanabilirlik elektroporasyon ve / veya reaktif maddelerin, örneğin, enzimatik inhibitörleri için plasmidlerin etkilerini test etmek için gerekli olduğunda eksplant kültürleri yararlıdır.

Elektroporasyon ve Kimyasal Reaktif tedaviler için Tavuk Embriyolar gelen bütün Retina Eksplantlarındaki

Bu protokol, tam montajlı retinal organoidlerin tam hacimli konfokal görüntülemesi için optik temizleme ve immün etiketlemeyi birleştirir. 3D yapıyı koruyarak, temel nöronal yolların ayrıntılı görselleştirilmesini sağlar, retina olgunlaşması, mekansal organizasyon ve hastalık modellemesi ve kişiselleştirilmiş tıptaki potansiyel uygulamalarının incelenmesini geliştirir.

Hücresel Çözünürlük ile Tam Montajlı Retinal Organoid Görselleştirme

Öğrenin, tavuk embriyolarından koni fotoreseptörleri elde etme yöntemini. Bu protokol, retinal dejenerasyon tedavileri için koni hücre canlılığı faktörlerini taramak ve fotoreseptör metabolizmasını incelemek için kullanılır.

Tavuk Embriyolarının Retinasından Koni Zenginleştirilmiş Kültürler Çubuktan Koni Hücresel Etkileşimlerine

Daha fazla video keşfet