Name: Neovaskülarizasyonun İlk Olayını Taklit Etmek için Mikroakışkan Model (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-04-10T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 1 s
Description: Öğrenin neovaskülarizasyonun ilk olaylarını taklit eden MIEN mikroakışkan modelini. Bu 3D in vitro sistem, endotel hücrelerinde kayma gerilimi ve VEGF gradyanlarını kontrol ederek damar oluşumunu incelemeyi sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma, Çin Ulusal Doğa Bilimleri Araştırma Vakfı Yardım Hibeleri tarafından desteklendi (hibe no. 11827803, 31971244, 31570947, 11772036, 61533016, U20A20390 ve 32071311), Çin Ulusal anahtar araştırma ve geliştirme programı (hibe no. 2016YFC11010101 ve 2016YFC1102202), 111 Projesi (B13003) ve Pekin Doğa Bilimleri Vakfı (4194079).

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Uzun zamandır, neovaskülarizasyonun gerçek zamanlı gözlemi bir sorun olmuştur. Son zamanlarda 22 ,32,40 ,46,54filizlenmesi için WC'lerle ve hücre dışı matrise bitişik perfüzyonlu kaplar oluşturmak için çeşitli yaklaşımlar geliştirilmiştir, ancak mekanik mikroçevrimini sürekli olarak sürdürmek hala zordur. Yüksek ışıklı kesme stresine ve düşük transendotelial a...

Neovaskülarizasyon, yetişkinlerde anjiogenez ve arteriogenez 5 olmak üzere iki ana süreci içeren birçok normal ve patolojik süreç1,2,3,4'te gerçekleşir. Vasküler endotel büyüme faktörü (VEGF)6gibi en iyi bilinen büyüme faktörlerinin yanı sıra, mekanik stimülasyonlar, özellikle kan akışı kaynaklı kesme stresi, neovaskülarizasyonun düzenlenmesinde önemlidir7. Bildiğimiz gibi, kesme stresinin büyüklüğü ve formları vaskülarürün farklı bölgelerinde önemli ölçüde ve dinamik olarak değişir ve vasküler hücreler üzerinde önemli etkilere neden olan 8,9,10,11,12. Önceki çalışmalar, kesme stresinin hücre fenotipik değişiklikler, sinyal transdüksiyon, gen ekspresyasyonu ve duvar hücreleri 13 , 14 , 15 , 16,17,18,19,20ile iletişim dahil olmak üzere VC'lerin çeşitli yönlerini etkileyebileceğini göstermiştir; bu nedenle, neovaskülarizasyonu düzenleyin21,22,23,24.
Bu nedenle, neovaskülarizasyonu daha iyi anlamak için, süreci doğal hücresel mikroçevrici in vitro olarakyeniden oluşturmak önemlidir. Son zamanlarda, mikro gıda ve mikroakışkan teknolojideki gelişmelerden yararlanarak mikro damarlar oluşturmak ve mikroçevre25,26,27'ninhassas kontrolünü sağlamak için birçok model kurulmuştur. Bu modellerde, mikro damarlar hidrojel28 , 29,polidimetilsiloksan (PDMS) mikroakışkan çipler30 , 31,32 veya 3D biyobaskı33,34ile üretilebilir. Işıklı kesme stresi22 , 23,35 , 36,transendotelial akış37,38,39,40, biyokimyasal gibi mikroçevrenin bazı yönleri anjiyojenik faktörlerin gradyani41,42, gerinim / streç43,44,45ve diğer hücre türleriyle birlikte kültürlenmiş32,46 taklit edilmiş ve kontrol edilmiştir. Genellikle, perfüzyonlu ortam sağlamak için büyük bir rezervuar veya şırınna pompası kullanılmıştır. Bu modellerde transendotelial akış rezervuar ve mikro tüp arasındaki basınç düşüşü ile oluşturulmuştur22,23,38,40. Bununla birlikte, mekanik mikroçevretmenin bu şekilde sürekli olarak sürdürülmesi zordu. Perfüzyon için yüksek kesme stresi olan yüksek bir akış hızı kullanılırsa transendotelial akış artacak ve daha sonra fizyolojik seviyeyi aşacaktı. Önceki çalışma, neovaskülarizasyonun ilk döneminde, genellikle 0.05 μm / s8'inaltında, bozulmamış WC'ler ve bodrum membran nedeniyle transendotelial akış hızının çok düşük olduğunu göstermiştir. Bu arada, vasküler sistemde parlak kesme stresi büyük ölçüde değişmekle birlikte, 5-20 dyn /cm 2,11,47ortalama değerleri ile nispeten yüksektir. Şimdilik, önceki çalışmalarda transendotelyal akışın hızı genellikle 0,5-15 μm /s22,38,39,40arasında tutulmuştur ve ışık kesme stresi genellikle 10 dyn/cm2 23'ünaltındadır. VC'leri sürekli olarak yüksek ışık yarıçapı stresine ve fizyolojik transendotelyal akış seviyesine aynı anda maruz bırakmak zor bir konu olmaya devam etmektedir. 
Bu çalışmada, neovaskülarizasyonun (MIEN) ilk olayını taklit etmek için bir in vitro 3D modeli tarif ediyoruz. Perfüzyon mikro tüpleri oluşturmak ve filizlenme sürecini simüle etmek için bir mikroakışkan çip ve otomatik kontrol, yüksek verimli sirkülasyon sistemigeliştirdik. MIEN modeli ile, neovaskülarizasyonun ilk döneminde uyarılan EC'lerin mikroçevrimi öncelikle yeniden kapsüllenir. WC'ler yüksek ışıklı kesme stresi, fizyolojik transendotelyal akış seviyesi ve aynı anda çeşitli VEGF dağılımı ile uyarılabilir. MIEN modelini oluşturma adımlarını ve dikkat edilmesi gereken önemli noktaları ayrıntılı olarak açıklıyoruz, diğer araştırmacılar için bir referans sağlamayı umuyoruz.

<table><tbody><tr><td>% 0.25 Tripsin-EDTA</td><td>Genview</td><td>GP3108</td><td></td></tr><tr><td>Kollajen I, sıçan kuyruğu</td><td>Corning</td><td>354236</td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D9542</td><td></td></tr><tr><td>Elektromanyetik sıkıştırma valfi</td><td>Wokun Teknolojisi</td><td>WK02-308-1 / 3</td><td></td></tr><tr><td>Endotel hücre ortamı (ECM)</td><td>Sciencell</td><td>1001</td><td></td></tr><tr><td>Fetal sığır serumu (FBS)</td><td>Her Yeşil</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Fibronektin</td><td>Corning</td><td>354008</td><td></td></tr><tr><td>FITC-dextran</td><td>Miragen</td><td>60842-46-8</td><td></td></tr><tr><td>Grafik programlama ortamı</td><td>Lab VIEW</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Görüntü düzenleme yazılımı</td><td>PhotoShop</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Görüntü işleme programı</td><td>ImageJ</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>İzopropanol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>91237</td><td></td></tr><tr><td>Litografi ekipmanı</td><td>Optik ve Elektronik Enstitüsü, Çin Bilimler Akademisi</td><td>URE-2000/35</td><td></td></tr><tr><td>Metanol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>82762</td><td></td></tr><tr><td>Mikro-peristaltik pompa</td><td>Kurşun Sıvısı</td><td>BT101L</td><td></td></tr><tr><td>Mikro şırınga pompası</td><td>Kurşun Sıvısı</td><td>TYD01</td><td></td></tr><tr><td>Oksijen plazması</td><td>MING HENG</td><td>PDC-MG</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehit</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P6148</td><td></td></tr><tr><td>PBS (10x)</td><td>Beyotime</td><td>ST448</td><td></td></tr><tr><td>Kalıcı epoksi negatif fotorezist</td><td>Microchem</td><td>SU-8 2075</td><td></td></tr><tr><td>Fenol Kırmızı sodyum tuzu</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P5530</td><td></td></tr><tr><td>Polidimetilsiloksan (PDMS)</td> <td>Dow Corning</td><td>Sylgard 184</td><td></td></tr><tr><td>Poli-D-lizin hidrobromür (PDL)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>P7886</td><td></td></tr><tr><td>Politetrafloroetilen</td><td>Teflon</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Program yazılımı</td><td>MATLAB</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Rekombinant İnsan VEGF-165</td><td>StemImmune LLC</td><td>HVG-VF5</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum hidroksit (NaOH)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>1.06498</td><td></td></tr><tr><td>Aşama üst inkübatör</td><td>Tokai Hit</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>SU-8 geliştirici</td><td>Microchem</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Trikloro (1H, 1H, 2H, 2H-perflorooktil) silan</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>448931</td><td></td></tr><tr><td>TRITC Phalloidin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P5285</td><td></td></tr></tbody></table>

neovaskülarizasyonun İlk olayını taklit etmek için mikroakışkan model

Microfluidic Model to Mimic Initial Event of Neovascularization

Neovaskülarizasyon genellikle mevcut normal bir vaskülatörden başlatılır ve ilk aşamada endotel hücrelerinin (VC) biyomekanik mikroçevrasyonu aşağıdaki neovaskülarizasyon sürecinden önemli ölçüde değişir. Neovaskülarizasyonun farklı aşamalarını simüle etmek için birçok model olmasına rağmen, normal vaskülür mikroçevronmentlerinin karşılık gelen stimülasyonları altında neovaskülarizasyonun ilk sürecini teslim eden bir in vitro 3D model hala eksiktir. Burada, neovaskülarizasyonun (MIEN) ilk olayını taklit eden bir in vitro 3D modeli yeniden inşa ettik. MIEN modeli bir mikroakışkan filizlenen çip ve otomatik kontrol, yüksek verimli sirkülasyon sistemi içerir. Endotel ile kaplanmış fonksiyonel, perf kullanılabilir bir mikrokanal oluştu ve mikroakışkan filizlenme çipinde filizlenme süreci simüle edildi. Neovaskülarizasyonun başlangıçtaki fizyolojik mikroçevresi, VC'lerin aynı anda yüksek ışıklı kesme stresine, fizyolojik transendotelyal akışa ve çeşitli vasküler endotel büyüme faktörü (VEGF) dağılımlarına maruz kalacağı mikroakışkan kontrol sistemi ile yeniden düzenlendi. MIEN modeli, neovaskülarizasyon mekanizmasının çalışmasına kolayca uygulanabilir ve ilaç taraması ve toksikoloji uygulamaları için düşük maliyetli bir platform olarak potansiyel bir vaatte bulunmaktadır.

Burada sunulan ilk neovaskülarizasyon (MIEN) olayını taklit eden in vitro 3D model, mikroakışkan filizlenen bir çip ve bir mikroakışkan kontrol sisteminden oluşuyordu. Mikroakışkan filizlenen çip önceki yayınlardan optimizeedilmiştir 22,23,37,40,51,52,53. Kısaca, üç kanal ve altı ba...

Burada, bir mikroakışkan çip ve neovaskülarizasyonun ilk mikroçevresini yeniden sağlayan, endotel hücrelerinin (VC' ler) yüksek luminal kesme stresi, fizyolojik transendotelyal akış seviyesi ve çeşitli vasküler endotelyal büyüme faktörü (VEGF) dağılımı ile aynı anda uyarılmasını sağlayan otomatik olarak kontrol edilen, yüksek verimli bir sirkülasyon mikroakışkan sistemi sağlıyoruz.

Neovaskülarizasyonun İlk Olayını Taklit Etmek için Mikroakışkan Model

Neovascularization is usually initialized from an existing normal vasculature and the biomechanical microenvironment of endothelial cells (ECs) in the ...

Neovaskülarizasyon, yeni kan damarlarının üretilmesi hem normal hem de patolojik olaylarda son derece düzenlenmiş bir süreçtir. Neovaskülarizasyonu daha iyi anlamak için, süreci doğal hücresel mikroçevrici in vitro olarak yeniden oluşturmak önemlidir. Mikroakışkan bir çip ve otomatik kontrol geliştirdik.Yüksek verimli dolaşımlar perfüzyon mikro tüpleri oluşturmak ve yeni vaskülerizasyonun ilk olayına geri dönmek için proteini kullanmak için simüle etmek için yapılır. Mikroakışkan filizlenen çip üç kanaldan oluşuyordu. Endotel hücre kültürü kanalı ile sıvı kanal geniş bir merkezi hidrojel kanal ile ayrıldı.Mikroakışkan kontrol sistemi bir mikrosyringe pompası ve elektromanyetik sıkıştırma vanası idi. Kabarcık tuzak çipi, mikroakışkan filizlenen çip, mikro-peristaltik pompa ve kültür orta rezervuarı. Mikroakışkan bir sistemle endotel hücreleri, yüksek ışıklı kesme stresi, transendotelyal akışın fizyolojik düzeyi ve çeşitli vasküler endotel büyüme faktörü dağılımları ile aynı anda uyarılabilir.Hücre kültürü kanalının bir ortam enjeksiyon portuna fibronektin mililitresi başına 125 mikrogram pipet 20 mikrolitre. Hücre kültürü kanalının bağlantı noktasına makasla uyacak şekilde bir pipet ucu kesin. Pipet ucunu hücre kültürü kanalının diğer ortam ekleme bağlantı noktasına yerleştirin.Daha sonra, fibronektin ile doldurmak için hücre kültürü kanalından hava boru. Cipsleri bir saat boyunca 37 santigrat derecede kuluçkaya yatır. Hücre tohumlamadan önce, pipet her ortam enjeksiyon portuna 20 mikroliter endotel hücre ortamı ve cipsleri 37 santigrat derecede 30 dakika kuluçkaya yatırın.Ardından, tüm medya enjeksiyon bağlantı noktalarındaki tüm medyayı pipetle dışarı atın. Daha sonra, hücre kültürü kanalının bir ortam enjeksiyon bağlantı noktasına beş mikroliter hücre süspansiyonu pipet. Daha sonra endotel hücreleri diferansiyel hidrostatik basınç altında hızla tüm kanala yayılır.Hidrostatik basıncı ayarlamak ve hücrenin hareket etmesini durdurmak için diğer bağlantı noktasına yaklaşık dört ila altı mikroliter ECM ortamı ekleyin. Çipleri hücre inkübatörüne uzaktan kumanda edin. Daha sonra, endotel hücreleri hücre kültürü kanalının iç yüzeyini kaplayana kadar her 30 dakikada bir çipleri ters çevirin, iki saat sonra.Enjeksiyon bağlantı noktalarındaki ekli hücreleri çok dikkatli bir şekilde çıkarmak için pipet ucu kullanın. Ardından, ortam enjeksiyon bağlantı noktalarına dört dikenli dişi Luer adaptörü yerleştirin ve ECM ortamıyla doldurun. Çipleri hücre inkübatörüne çıkarın, ECM medyasını ve Luer adaptörlerini her 12 saatte bir değiştirin.Mikroakışkan kontrol sistemini monte etmek için iki politetrafloroetilen tüp, iki kısa silikon tüp, üç uzun silikon tüp, bir dikenli dişi Luer adaptörü, bir Y tipi konektör ve ardından üç L tipi konektör hazırlayın. Şırınnayı önceden ısıtılmış 10 mililitre ECM ortamı ile doldurun. Dikenli dişi bir Luer adaptörü ile şırındağa bir politetrafloroetilen tüpü bağlayın.Ardından, politetrafloroetilen tüpün diğer ucunu bir Y tipi konektöre bağlayın. Ardından, iki uzun silikon tüpü Y tipi konektörün diğer iki ucuna bağlayın. Rezervuara bağlanmak için bir tüp ve kabarcık tuzak çipine bağlanmak için diğer tüpü kullanıyoruz.Rezervuara başka bir uzun silikon tüp bağlayın. Daha sonra, kabarcık tuzak çipinin üst katmanındaki tüm giriş ve çıkış deliklerini bağlamak için iki kısa silikon tüp kullanın. Çipin arka ucuna bir politetrafloroetilen tüpü bağlayın.Ardından, bir şırıngayı mikrosyringe pompasına sabitlayın. Elektromanyetik sıkıştırma vanasına iki uzun silikon tüp takın. Ardından, şırıngam ve rezervuar arasındaki boru hattını açmak için elektromanyetik sıkıştırma vanasını değiştirin.Tüpteki havayı tüketmek için mikrosyringe pompası kullanarak rezervuara ortam enjekte edin. Ardından, şırınna ve kabarcık tuzak çipi arasındaki boru hattını açmak için vanayı tekrar değiştirin. Kabarcık tuzak çipinin sıvı odasını ve arka uç tüpünü doldurmak için ortam enjekte edin.Endotel filizlenen çipleri hücre inkübatöründen çıkarın, ardından hücre kültürü tarafındaki Luer adaptörlerini çıkarın. Mikroakışkan filizlenen çipin hidrojel enjeksiyon portlarına iki boru fişi yerleştirin. Kabarcık tuzak çipinin arka uç tüpünü hücre kültürü kanalının bir bağlantı noktasına bağlayın.Diğer bağlantı noktasına bir T tipi konektör takın ve rezervuara bağlı uzun silikon tüpe bağlayın. Uzun silikon tüpü mikro peristaltik pompaya kırpın. Ardından, rezervuara bir hava filtresi yerleştirin.Ardından, mikroakışkan filizlenen çipi sahne üstü inkübatöre monte edin. Ardından, vakum pompasını bir TPU tüpü ile kabarcık tuzak çipinin alt tabakasındaki deliklere bağlayın. Mikrosyringe pompasını ve elektromanyetik sıkıştırma vanasını aynı anda kontrol eden özel programda karşıt sirkülasyon hacmi ve bir akış hızı ayarlayın.Ardından, mikro peristaltik pompanın akış hızını ayarlayın. Mikrosyringe pompasını açın. Daha sonra sirkülasyon kontrol sistemi kurulur.Modelimizdeki bazı mikro damarların bariyer fonksiyonunu 40 kDa F-I-T-C dekstrin difüzyonal geçirgenlik katsayısını ölçerek test ediyoruz. Şekilde gösterildiği gibi, hücre astarlı statik kültür çipinin difüzyonal geçirgenlik katsayısı saniyede 0,1 artı veya eksi 0,3 mikrometredir. Ve hücre astarı olmayan boş kanalın difüzyonal geçirgenlik katsayısı saniyede 5,4 artı veya eksi 0,7 mikrometredir.Endotel filizlenme tahlili, endotel hücrelerinin 24 saatlik statik kültlemeden sonra büyük ölçüde merkezi hidrojel içine filizlendiğini, ışıklı kesme stresinin artmasıyla filizlenme derecesinin önemli ölçüde azaldığını göstermiştir. Nicel olarak, luminal kesme stresi, filizlenme alanı, ortalama filizlenme uzunluğu ve en uzun filiz uzunluğu açısından endotel filizlenmesini önemli ölçüde azalttı. Sistemimizle, endotel hücreleri üzerindeki kesme stresi, transendotelyal akış fizyolojik düzeyde kalırken, deney sırasında isteğe bağlı olarak herhangi bir zamanda değiştirilebilir.Bu in vitro 3D biyomimetik model doğrudan neovasularizasyon mekanizmasının çalışmasına uygulanabilir ve ilaç taraması ve toksikoloji uygulamaları için düşük maliyetli bir platform olarak potansiyel sözü tutar.

microfluidic-model-to-mimic-initial-event-of-neovascularization

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Mikrovasküler ölçekli kanallar (&lt;30 um) ile bir mikroakışkan cihazın bütün iç yüzeyi boyunca kültürün 3B, endotel hücre mono tabakasında için bir yöntem tarif edilmiştir.

Hematolojik Hastalıklarında Mikrovasküler Etkileşimleri Öğrenmenin Endothelialized Mikroakiskan

Yenidoğan fare retina bir anjiyogenez modüle farklı genler ya da uyuşturucu rolleri soruşturma izin anjiyogenez bir iyi karakterize fizyolojik modeli...

Anjiyogenez Araştırma Yenidoğan Fare Retina Tüm Dağı Immunofluorescent Boyama<em&gt; In vivo</em

Bir mikro-on-a-chip platformu fotolitografik reflowable ışığa tekniği, yumuşak litografi ve Mikroakiskan kombinasyonu tarafından geliştirilmiştir. Endothelialized mikro platformu, in vivo mikrodamar içinde üç boyutlu (3D) geometrisi ile taklit eden sürekli perfüzyon kontrollü akış altında çalışan, yüksek kaliteli ve gerçek zamanlı görüntü sağlar ve mikrovasküler araştırma için uygulanabilir.

Çok derinlemesine Dairesel kesit Endothelialized mikro kanallar-on-a-chip Geliştirme Prosedürü

Protokol farelerde geliştirilen komea mikro-tahlili tarif eder.

Kornea mikrocep Testi: Fare Eye Angiogenezis Bir Model

Birincil insan göbek damarı endotel hücreleri (HUVEC'ler), bir mikroakışkan ağ cihazı içinde birleşecek şekilde büyütüldü. Endotel hücre bağlantısı ve F-aktin dağılımları gösterildi ve adenozin trifosfata (ATP) yanıt olarak hücre içi kalsiyum konsantrasyonu ve nitrik oksit üretimindeki değişiklikler, bireysel hücre seviyelerinde gerçek zamanlı olarak ölçüldü.

Gelişim ve karakterizasyonu<em&gt; İn Vitro</em&gt; Mikrodamar Ağ ve Endotel kantitatif ölçümleri [Ca<sup&gt; 2+</sup&gt;]<sub&gt; I</sub&gt; Ve Nitrik Oksit Üretimi

Bu protokol, poli(etilen glikol) diakrilat (PEGDA) hidrojellere gömülü vasküler türetilmiş, biyomimetik mikroakışkan ağları üretmek için görüntü kılavuzlu, lazer tabanlı hidrojel bozunmasının uygulanmasını ana hatlarıyla belirtir. Bu biyomimetik mikroakışkan sistemler, doku mühendisliği uygulamaları, in vitro hastalık modellerinin oluşturulması ve gelişmiş "çip üzerinde" cihazların üretilmesi için yararlı olabilir.

Vasküler kaynaklı mikroakışkan Ağların görüntü kılavuzluğunda, Lazer tabanlı Fabrikasyon

Protokol bir küresel perfusable vasküler ağlarda mühendisi açıklar. Küresel'ın çevresindeki microenvironment angiogenez teşvik ve küresel bir mikrosıvısal cihazın mikro bağlanmak için planlanmaktadır. Yöntemi uzun zamandır beklenen tekniktir üç boyutlu kültürlerde küresel perfüzyon sağlar.

Perfusable vasküler ağ özellikli bir doku içinde bir mikrosıvısal aygıt

Bu yöntem, standart mikroakışkan bir platformda 40 perfüze 3D mikrokap olarak iPSC kaynaklı endotel hücrelerinin kültürünü açıklar. Bu platform, anastomoz ve anjiyojenik filizlerin ölçeklenebilir ve yüksek iş lenme tarzında stabilizasyonu da dahil olmak üzere, degrade odaklı anjiyojenik filizlenmenin 3Boyutlu olarak incelenmesini sağlar.

IPSC türetilmiş Endotel Hücrelerinin Perfüzyonlu 3D Anjiyojenik Filizlenmesini İn Vitro Olarak İncelemek Için Standart ve Ölçeklenebilir Tsay

Bu protokolde, fizyolojik olarak ilgili bir mikrovasküler ortamı yeniden üretebilen ve tüm lökosit adezyon / migrasyon kaskadını yeniden üretebilen bir biyomimetik mikroakışkan testi, inflamatuar hastalıkta lökosit-endotel hücre etkileşimlerini incelemek için kullanılmaktadır.

Enflamasyon Sırasında Lökosit-Endotelyal Hücre Etkileşimini İnceleyen Mikrofizyolojik Bir Sistem

Bu protokol, yükleme, bakım ve değerlendirme prosedürlerinin bir açıklamasıyla birlikte yüksek verimli temel ve translasyonel insan kanseri araştırmaları, gelişmiş ilaç taraması, hastalık modellemesi ve kişiselleştirilmiş tıp yaklaşımları gerçekleştirmek için fizyolojik olarak ilgili bir çip üzerinde tümör modeli sunar.

Kanser Araştırmaları için Fizyolojik İnsan Vaskülarize Mikro-Tümör Modelinin Oluşturulması

Öğrenin neovaskülarizasyonun ilk olaylarını taklit eden MIEN mikroakışkan modelini. Bu 3D in vitro sistem, endotel hücrelerinde kayma gerilimi ve VEGF gradyanlarını kontrol ederek damar oluşumunu incelemeyi sağlar.

Neovaskülarizasyonun İlk Olayını Taklit Etmek için Mikroakışkan Model

Daha fazla video keşfet