Name: Epididim Beyaz Yağ Dokusu Kullanılarak Yağ Kaplı Adacık Nakli (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-05-25T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 39 s
Description: Öğrenin, yağ kaplı adacık nakli yöntemiyle beyaz yağ dokusuna adacık yerleşimini değerlendirin. Bu teknik, diyabet tedavisinde ve kanser modellerinde kolayca uygulanabilir.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma, Japonya Eğitim, Kültür, Spor, Bilim ve Teknoloji Bakanlığı'ndan Bilimsel Araştırma için Yardım Fonu (C) (19K09839, NS) tarafından finanse edilmiştir.

Aşağıdaki yordam üç adımda gerçekleştirilir. İlk adım, alıcı farelerde diyabetin indüksiyonunu ve donör adacıklarının izolasyonunu içerir. İkinci adım, transplantasyondan önce adacıkların hazırlanmasını içerir. Üçüncü adımda epididim yağ dokusuna adacık nakli ve yağ dokusu kullanılarak adacıkların örtülmesi gerçekleştirilir. Bundan sonra, terapötik etkiler değerlendirildi. Farelerin kullanımı ve bu çalışmada gerçekleştirilen deneysel prosedürler "Laboratuvar Hayvanları Bakımı İlkeleri" ne (Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı İçin Kılavuz, Ulusal Sağlık Enstitüleri yayını 8. baskı, 2011) uygundur ve deneysel protokol Fukuoka Üniversitesi Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi tarafından onaylanmıştır (onay numarası: 186018).
1. Cerrahi hazırlık
<ol><li>Diyabetin indüksiyonu: 0.1M sitrat tamponunda (180 mg / kg vücut ağırlığı) hazırlanan 18 mg / mL streptozotosin çözeltisinin intravenöz enjeksiyonu yoluyla 20-25 g vücut ağırlığında, 8-12 haftalık alıcı erkek farelerde diyabeti indükleyin. Kan şekeri seviyeleri 400 mg / dL'yi aşan fareler diyabetik olarak kabul edilir. Adacıkları örtmek için epididim beyaz yağ dokusunun aşırı atrofisinden önce diyabetik indüksiyondan sonraki 1 hafta içinde diyabetik fareler kullanın.</li>
	<li>Adacık izolasyonu: Adacık izolasyonu için Gotoh'un yöntem27'sini izleyerek transplantasyondan bir gün önce murin adacık izolasyonu yapın.</li>
	<li>Kısacası, kollajenaz çözeltisi kullanarak pankreas dokusunu sindirin. Uygun bir hücre ayırma çözeltisi kullanarak adacıkları yoğunluk gradyanı santrifüjleme ile izole edin. Daha sonra kültür adacıkları gece boyunca 22 ° C'de bir inkübatörde ve% 5 CO2'de (<37 ° C'de kültürün adacık ölümünü önlediği bildirilmiştir 28,29,30,31). NOT: Saflaştırılmış adacık kültürlerini bir güvenlik kabininde tutun. Adacık izolasyonu ve kültürü için kullanılan tüm çözeltileri 0,22 μm filtre kullanarak filtreleyerek sterilize edin.</li>
</ol>2. Transplantasyon için adacıkların hazırlanması
<ol><li>Şekil 1A'da belirtildiği gibi uygun alet ve malzemeleri toplayın.</li>
	<li>Amilaz ve lipaz gibi sindirim enzimleri, izole edilmiş ve nakledilen adacıkların yaralanmasına neden olabileceğinden ve kültür kabı içindeki kirletici fibröz dokularda sıkışıp kalmaktan dolayı adacık kaybı meydana gelebileceğinden, transplantasyondan önce, asinar ve fibröz dokular da dahil olmak üzere pankreastan herhangi bir adacık dışı bileşeni elle seçmek için forseps kullanın (Şekil 1B), diseksiyon mikroskobu altında. Seçtikten sonra, tek asinar hücreleri filtrelemek için bir hücre süzgeci kullanın.</li>
	<li>Filtrelenmiş adacıkları, adacıkların plastiğe yapışmasını önlemek için sığır serumu veya albümin ile desteklenmiş herhangi bir uygun kültür ortamı veya tampon çözeltisi (örneğin, düşük glikozlu DMEM, RPMI1640, CMRL1066 veya HBSS) içeren yeni bir kültür kabına aktarın ve adacıkları çanağın ortasına yerleştirmek için çanağı döndürün (Şekil 1C). Bir P200 mikropipeti ve mikroskop kullanarak, tek tek adacıkları uygun bir toplama tüpüne seçin (Şekil 1D).</li>
	<li>50 mL'lik plastik tüpün üzerine yeni, 40 μm hücre süzgeci yerleştirin (Şekil 1E sol ve orta) ve filtreyi taze ortamla yıkayın (Şekil 1E sağda).</li>
	<li>Adacıkları ve tek asinar hücreleri ayırmak üzere süzgeclere adacıkları eklemek için 1000 μL'lik bir pipet kullanın (Şekil 1 F1 ve Şekil 1F2). NOT: Hücre süzgeci üzerindeki saflaştırılmış adacıklar yaklaşık% 100 saf olacaktır.</li>
	<li>Süzgeci, kültür ortamı veya sığır serumu veya albümin ile desteklenmiş uygun bir tampon çözeltisi içeren yeni bir 60 veya 100 mm boyutunda işlenmemiş kültür kabı üzerinde ters çevirmek için forseps kullanın (Şekil 1 F3 ve Şekil 1F4). Adacıkları yeni bir kültür kabına yıkamak için taze orta / tampon kullanın. Ardından, yaklaşık 20 mL'lik toplam hacme ulaşmak için kültür kabına yeterli miktarda orta/tampon ekleyin.</li>
	<li>Adacıkları mikroskop altında sayın ve adacık sayısını, donör hayvanların sayısına göre bireysel 1,5 mL plastik santrifüj tüpleri arasında eşit olarak bölün (Şekil 1G). Örneğin, iki tüpün her birine iki fareden iki yüz, 100-200 μm adacık eşdeğeri (IEQ) eklenecektir.</li>
	<li>Adacıkları oda sıcaklığında 1 dakika içinde 2.100 x g'de santrifüj yapın ve süpernatanı atın. Yaklaşık 20-30 μL artık çözelti tipik olarak tüpte kalacaktır (Şekil 1H).</li>
</ol>3. Epididim yağ dokusuna adacık nakli ve epididim beyaz yağ dokusu ile örtülmesi
<ol><li>Ameliyattan önce küçük hayvanlar için anestezi makinesi, stereo mikroskop, ışık kaynağı, 200 μL mikropipet uçlu 50-200 μL mikropipet, pamuklu çubuklar, 4-0 dikiş seti ve dezenfekte edilmiş cerrahi aletler toplayın (Şekil 2A). Cooper makaslarını, oftalmik makasları, bezelye forsepslerini, cımbızlarını ve iğne tutucularını otoklav. Otoklavlamadan sonra, ekipmanı %1'lik bir povidon-iyot çözeltisine batırın (Şekil 2A). Epididim beyaz yağ dokusunun mobilizasyonu ve kanama durumlarında hemostaz için pamuklu çubuklar kullanın. Adacık nakli için 50-200 μL uçlu bir mikropipet kullanın.</li>
	<li>Diyabetik alıcı fareye, solunan anestezik bir ajan (oksijende% 2 izofluran) kullanarak anestezi verin. Kurumayı önlemek için her iki göze de oftalmik kayganlaştırıcı uygulayın. Ardından fareyi sırtüstü pozisyona getirin (Şekil 2B solda) ve saç kesme makineleri ve / veya tüy dökücü krem kullanarak enfeksiyonu önlemek için saçları karından çıkarın. Karın ve kasık bölgesini, bir povidon-iyot çözeltisinin en az üç alternatif turunu ve ardından% 70 etanol kullanarak dezenfekte edin (Şekil 2B sağda). Ameliyattan önce, ayak parmağı sıkışma refleksinin yokluğunda anestezi derinliğini onaylayın. Bir ısıtma yastığı kullanarak intraoperatif termal destek sağlayın ve steril cerrahi alanı sabitlemek için cerrahi bir örtü kullanın.</li>
	<li>Alt medyan bölgedeki cildi kesin (Şekil 2C solda). Yaklaşık 2 cm uzunluğunda bir cilt kesisi önerilir. Sol karın duvarını Pean forseps ile kelepçeleyin (atravmatik forseps veya retraktör de kullanılabilir) ve cerrahi alanı sabitlemek için dokuyu farenin sol tarafına çekin (Şekil 2C sağda). Laparotomiden sonra, anestezi bakımı için izofluran yüzdesini% 1.0-1.5'e düşürün.</li>
	<li>İnce ve kalın bağırsağı farenin sağ tarafına (yani operatörün sol tarafına) harekete geçirmek için pamuklu çubuk kullanın. Karın boşluğundaki sol epididim beyaz yağ dokusu sol kasık bölgesinde bulunur. Epididim beyaz yağ dokusunu ve sol testisi karın dışına doğru mobilize edin (Şekil 2D solda) ve dokuyu uzatın (2D sağda).</li>
	<li>200 μL pipet ucu ile donatılmış bir P200 mikropipet kullanarak 1,5 mL'lik bir tüpten adacıkların tüm hacmini nazik pipetleme ile toplayın (Şekil 2E solda), toplandıktan sonra tüpte adacık kalmamasına dikkat edin. Toplanan adacıkların yerçekimi ile pipetin ucuna yerleşmesine izin verin (Şekil 2E sağda).</li>
	<li>Mikropipet ucunu şişmiş yağ dokusunun üzerine hafifçe yerleştirin. Uçtaki ortamın / tamponun aşırı yıkanmasını önlemeye özen göstererek, adacıkları dikkatlice dokuya tohumlayın (Şekil 2F solda). Tohumlamadan sonra, adacıkların diseksiyon mikroskobu altında doğru bir şekilde yerleştirildiğini onaylayın (Şekil 2F sağda).</li>
	<li>Adacıkları epididim beyaz yağ dokusu ile örtün (Şekil 2G). Dikişlerin veya biyobağlayıcı ajanların kullanımına gerek yoktur.</li>
	<li>Sol testisi epididim beyaz yağ dokusunun altına yerleştirin ve dokuları intraperitoneal boşluğa geri döndürün (Şekil 2H). 4-0 dikiş kullanarak cildi iki kat halinde (periton, daha sonra kas ve cilt) kapatın (naylon veya emilebilir sütürler gibi herhangi bir dikiş kullanılabilir) (Şekil 2I). Asetilsalisilik asit enjekte edin (300 mg/kg; SQ) postoperatif analjezi için yaranın yakınında. Ardından fareyi bir ısı lambasının altına yerleştirin ve tamamen iyileşene kadar izleyin.</li>
</ol>4. Adacık nakli sonrası izleme (Özet)
<ol><li>Postoperatif günde kan şekeri, glukoz tolerans testi ve histolojik değerlendirmeyi izleyerek adacık transplantasyonunun terapötik etkilerini değerlendirin (POD) 28.<ol><li>Küçük bir glikoz ölçüm cihazı kullanarak glikoz tolerans testinde kan şekeri ölçümleri de dahil olmak üzere kan şekerini izleyin.</li>
		<li>Kuyruk damarından kan örneklerini (biraz mikrolitre) toplayın. Histolojik değerlendirme ile ilgili olarak, immünohistokimya ile geri kazanılan epididim yağ dokusunda nakledilen adacıklarda murin insülin (engraftasyonlu adacıkların saptanması için) ve von Willebrand faktörü (adacık engraftmanının bir kanıtı olan damarların tespiti için) saptandı.</li>
	</ol></li>
</ol>

<ol><li>Barton, F. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improvement+in+outcomes+of+clinical+islet+transplantation%3A+1999-2010%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes+Care%22%5BJournal%5D)">Improvement in outcomes of clinical islet transplantation: 1999-2010.</a> Diabetes Care. 35 (7), 1436-1445 (2012).</li>
<li>Balamurugan, A. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Islet+product+characteristics+and+factors+related+to+successful+human+islet+transplantation+from+the+Collaborative+Islet+Transplant+Registry+%28CITR%29+1999-2010%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Islet product characteristics and factors related to successful human islet transplantation from the Collaborative Islet Transplant Registry (CITR) 1999-2010.</a> American Journal of Transplantation. 14 (11), 2595-2606 (2014).</li>
<li>Collaborative Islet Transplant Registry. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Collaborative+Islet+Transplant+Registry.+Annual+Report%22">Collaborative Islet Transplant Registry. Annual Report</a>. , (2017).</li>
<li>Rajab, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Total+Pancreatectomy+and+Islet+Autotransplantation+Following+Treated+Hepatitis+C+Infection%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Total Pancreatectomy and Islet Autotransplantation Following Treated Hepatitis C Infection.</a> Cell Transplantation. 27 (10), 1569-1573 (2018).</li>
<li>Mellgren, A., Schnell Landstrom, A. H., Petersson, B., Andersson, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+renal+subcapsular+site+offers+better+growth+conditions+for+transplanted+mouse+pancreatic+islet+cells+than+the+liver+or+spleen%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetologia%22%5BJournal%5D)">The renal subcapsular site offers better growth conditions for transplanted mouse pancreatic islet cells than the liver or spleen.</a> Diabetologia. 29 (9), 670-672 (1986).</li>
<li>Hiller, W. F., Klempnauer, J., Luck, R., Steiniger, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progressive+deterioration+of+endocrine+function+after+intraportal+but+not+kidney+subcapsular+rat+islet+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">Progressive deterioration of endocrine function after intraportal but not kidney subcapsular rat islet transplantation.</a> Diabetes. 40 (1), 134-140 (1991).</li>
<li>Yasunami, Y., Lacy, P. E., Finke, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+site+for+islet+transplantation--a+peritoneal-omental+pouch%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">A new site for islet transplantation--a peritoneal-omental pouch.</a> Transplantation. 36 (2), 181-182 (1983).</li>
<li>Kin, T., Korbutt, G. S., Rajotte, R. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Survival+and+metabolic+function+of+syngeneic+rat+islet+grafts+transplanted+in+the+omental+pouch%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Survival and metabolic function of syngeneic rat islet grafts transplanted in the omental pouch.</a> American Journal of Transplantation. 3 (3), 281-285 (2003).</li>
<li>Kasoju, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioengineering+a+pre-vascularized+pouch+for+subsequent+islet+transplantation+using+VEGF-loaded+polylactide+capsules%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials+Science%22%5BJournal%5D)">Bioengineering a pre-vascularized pouch for subsequent islet transplantation using VEGF-loaded polylactide capsules.</a> Biomaterials Science. 8 (2), 631-647 (2020).</li>
<li>Sakata, N., Yoshimatsu, G., Kodama, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((White+Adipose+Tissue+as+a+Site+for+Islet+Transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantology%22%5BJournal%5D)">White Adipose Tissue as a Site for Islet Transplantation.</a> Transplantology. 1 (2), 55-70 (2020).</li>
<li>Osama Gaber, A., Chamsuddin, A., Fraga, D., Fisher, J., Lo, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Insulin+independence+achieved+using+the+transmesenteric+approach+to+the+portal+vein+for+islet+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Insulin independence achieved using the transmesenteric approach to the portal vein for islet transplantation.</a> Transplantation. 77 (2), 309-311 (2004).</li>
<li>Fujita, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Technique+of+endoscopic+biopsy+of+islet+allografts+transplanted+into+the+gastric+submucosal+space+in+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Technique of endoscopic biopsy of islet allografts transplanted into the gastric submucosal space in pigs.</a> Cell Transplantation. 22 (12), 2335-2344 (2013).</li>
<li>Sakata, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strategy+for+clinical+setting+in+intramuscular+and+subcutaneous+islet+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%2FMetabolism+Research+and+Reviews%22%5BJournal%5D)">Strategy for clinical setting in intramuscular and subcutaneous islet transplantation.</a> Diabetes/Metabolism Research and Reviews. 30 (1), 1-10 (2014).</li>
<li>Cantarelli, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transplant+Site+Influences+the+Immune+Response+After+Islet+Transplantation%3A+Bone+Marrow+Versus+Liver%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Transplant Site Influences the Immune Response After Islet Transplantation: Bone Marrow Versus Liver.</a> Transplantation. 101 (5), 1046-1055 (2017).</li>
<li>White, S. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+risks+of+total+pancreatectomy+and+splenic+islet+autotransplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Transplantation%22%5BJournal%5D)">The risks of total pancreatectomy and splenic islet autotransplantation.</a> Cell Transplantation. 9 (1), 19-24 (2000).</li>
<li>Itoh, T., Nishinakamura, H., Kumano, K., Takahashi, H., Kodama, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Spleen+Is+an+Ideal+Site+for+Inducing+Transplanted+Islet+Graft+Expansion+in+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">The Spleen Is an Ideal Site for Inducing Transplanted Islet Graft Expansion in Mice.</a> PLoS One. 12 (1), 0170899(2017).</li>
<li>Sakata, N., Yoshimatsu, G., Kodama, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Spleen+as+an+Optimal+Site+for+Islet+Transplantation+and+a+Source+of+Mesenchymal+Stem+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Molecular+Sciences%22%5BJournal%5D)">The Spleen as an Optimal Site for Islet Transplantation and a Source of Mesenchymal Stem Cells.</a> International Journal of Molecular Sciences. 19 (5), (2018).</li>
<li>Sakata, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+rat-to-mouse+bioartificial+pancreas+xenotransplantation+on+diabetic+renal+damage+and+survival%5BTitle%5D)+AND+%22Pancreas%22%5BJournal%5D)">Effect of rat-to-mouse bioartificial pancreas xenotransplantation on diabetic renal damage and survival.</a> Pancreas. 32 (3), 249-257 (2006).</li>
<li>Nagaya, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effectiveness+of+bioengineered+islet+cell+sheets+for+the+treatment+of+diabetes+mellitus%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Surgical+Research%22%5BJournal%5D)">Effectiveness of bioengineered islet cell sheets for the treatment of diabetes mellitus.</a> Journal of Surgical Research. 227, 119-129 (2018).</li>
<li>Weaver, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vasculogenic+hydrogel+enhances+islet+survival%2C+engraftment%2C+and+function+in+leading+extrahepatic+sites%5BTitle%5D)+AND+%22Science+Advances%22%5BJournal%5D)">Vasculogenic hydrogel enhances islet survival, engraftment, and function in leading extrahepatic sites.</a> Science Advances. 3 (6), 1700184(2017).</li>
<li>Dufour, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+an+ectopic+site+for+islet+transplantation%2C+using+biodegradable+scaffolds%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering%22%5BJournal%5D)">Development of an ectopic site for islet transplantation, using biodegradable scaffolds.</a> Tissue Engineering. 11 (9-10), 1323-1331 (2005).</li>
<li>Chen, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+epididymal+fat+pad+as+a+transplant+site+for+minimal+islet+mass%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">The epididymal fat pad as a transplant site for minimal islet mass.</a> Transplantation. 84 (1), 122-125 (2007).</li>
<li>Sakata, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanism+of+Transplanted+Islet+Engraftment+in+Visceral+White+Adipose+Tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Mechanism of Transplanted Islet Engraftment in Visceral White Adipose Tissue.</a> Transplantation. 104 (12), 2516-2527 (2020).</li>
<li>Navarro-Requena, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PEG+hydrogel+containing+calcium-releasing+particles+and+mesenchymal+stromal+cells+promote+vessel+maturation%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomaterialia%22%5BJournal%5D)">PEG hydrogel containing calcium-releasing particles and mesenchymal stromal cells promote vessel maturation.</a> Acta Biomaterialia. 67, 53-65 (2018).</li>
<li>Phelps, E. A., Headen, D. M., Taylor, W. R., Thule, P. M., Garcia, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vasculogenic+bio-synthetic+hydrogel+for+enhancement+of+pancreatic+islet+engraftment+and+function+in+type+1+diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Vasculogenic bio-synthetic hydrogel for enhancement of pancreatic islet engraftment and function in type 1 diabetes.</a> Biomaterials. 34 (19), 4602-4611 (2013).</li>
<li>Manzoli, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunoisolation+of+murine+islet+allografts+in+vascularized+sites+through+conformal+coating+with+polyethylene+glycol%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Immunoisolation of murine islet allografts in vascularized sites through conformal coating with polyethylene glycol.</a> American Journal of Transplantation. 18 (3), 590-603 (2018).</li>
<li>Gotoh, M., Maki, T., Kiyoizumi, T., Satomi, S., Monaco, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+method+for+isolation+of+mouse+pancreatic+islets%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">An improved method for isolation of mouse pancreatic islets.</a> Transplantation. 40 (4), 437-438 (1985).</li>
<li>Brandhorst, D., Brandhorst, H., Hering, B. J., Bretzel, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+survival%2C+morphology+and+in+vitro+function+of+isolated+pig+islets+under+different+culture+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Long-term survival, morphology and in vitro function of isolated pig islets under different culture conditions.</a> Transplantation. 67 (12), 1533-1541 (1999).</li>
<li>Noguchi, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Low-temperature+preservation+of+isolated+islets+is+superior+to+conventional+islet+culture+before+islet+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Low-temperature preservation of isolated islets is superior to conventional islet culture before islet transplantation.</a> Transplantation. 89 (1), 47-54 (2010).</li>
<li>Itoh, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Low+temperature+condition+prevents+hypoxia-induced+islet+cell+damage+and+HMGB1+release+in+a+mouse+model%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Low temperature condition prevents hypoxia-induced islet cell damage and HMGB1 release in a mouse model.</a> Cell Transplantation. 21 (7), 1361-1370 (2012).</li>
<li>Komatsu, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimizing+Temperature+and+Oxygen+Supports+Long-term+Culture+of+Human+Islets%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Optimizing Temperature and Oxygen Supports Long-term Culture of Human Islets.</a> Transplantation. 103 (2), 299-306 (2019).</li>
<li>Unger, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lipid+overload+and+overflow%3A+metabolic+trauma+and+the+metabolic+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Endocrinology%2C+Metabolism%22%5BJournal%5D)">Lipid overload and overflow: metabolic trauma and the metabolic syndrome.</a> Trends in Endocrinology, Metabolism. 14 (9), 398-403 (2003).</li>
<li>Mao, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+macroporous+heparin-releasing+silk+fibroin+scaffold+improves+islet+transplantation+outcome+by+promoting+islet+revascularisation+and+survival%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomaterialia%22%5BJournal%5D)">A macroporous heparin-releasing silk fibroin scaffold improves islet transplantation outcome by promoting islet revascularisation and survival.</a> Acta Biomaterialia. 59, 210-220 (2017).</li>
<li>Wang, K., Wang, X., Han, C. S., Chen, L. Y., Luo, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scaffold-supported+Transplantation+of+Islets+in+the+Epididymal+Fat+Pad+of+Diabetic+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Scaffold-supported Transplantation of Islets in the Epididymal Fat Pad of Diabetic Mice.</a> Journal of Visualized Experiments. (125), e54995(2017).</li>
<li>Wang, X., Wang, K., Zhang, W., Qiang, M., Luo, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+bilaminated+decellularized+scaffold+for+islet+transplantation%3A+Structure%2C+properties+and+functions+in+diabetic+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">A bilaminated decellularized scaffold for islet transplantation: Structure, properties and functions in diabetic mice.</a> Biomaterials. 138, 80-90 (2017).</li>
<li>Rios, P. D., Zhang, X., Luo, X., Shea, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mold-casted+non-degradable%2C+islet+macro-encapsulating+hydrogel+devices+for+restoration+of+normoglycemia+in+diabetic+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnology+and+Bioengineering%22%5BJournal%5D)">Mold-casted non-degradable, islet macro-encapsulating hydrogel devices for restoration of normoglycemia in diabetic mice.</a> Biotechnology and Bioengineering. 113 (11), 2485-2495 (2016).</li>
</ol>

Çıkar çatışmamız yok.

Yağ kaplı adacık nakli yöntemi, iki farklı nakil tekniğinden teknikler içerir: intraperitoneal adacık transplantasyonu ve intra-yağ dokusu adacık transplantasyonu. Epididim beyaz yağ dokusunun yüzey zarı, periton ile kaplanan ve epididimise bağlanan beyaz yağ dokusu olarak kabul edildiğinden, yağ kaplı adacık nakli yöntemi anatomik olarak intraperitoneal adacık transplantasyonu türü olarak kategorize edilebilir. Bununla birlikte, adacıkların alıcı hayvana teslim edildiği teknik, yağ içi doku adacık transplantasyonunda ku...

Adacık transplantasyonu, şiddetli diabetes mellituslu hastalar için hücresel bir replasman tedavisidir. Son raporlar, transplantasyondan sonraki üç yıl içinde insülin bağımsızlığı oranlarının %44'e kadar iyileştiğini1 ve 600.000'den fazla toplam adacık eşdeğeri alan alıcıların yaklaşık %80'inin insülin bağımsızlığına ulaştığını göstermiştir2. Ayrıca, en son İşbirlikçi Adacık Nakli Kayıt raporunda, açlık kan şekeri seviyelerinin, tek başına adacık nakli yapılan hastaların% 70'inden fazlasında 5 yıllık bir süre boyunca 60-140 mg / dL'de tutulduğu ortaya konmuştur. Çalışma ayrıca, tek başına adacık nakli veya böbrek nakli sonrası adacık nakli yapılan hastaların yaklaşık% 90'ının 5 yıldan fazla bir süredir ciddi hipoglisemik olaylar geliştirmediğini belirlemiştir3.
Bu tedavinin klinik sonuçları iyileşiyor olsa da, optimal bir nakil bölgesi oluşturma gerekliliği de dahil olmak üzere bazı sınırlamalar hala ele alınmalıdır. Karaciğer, klinik adacık nakli için tipik bir nakil bölgesidir, çünkü yüksek hacimli adacıkları barındırabilen en büyük organdır. Bununla birlikte, bazı hastalarda karaciğer kullanılamaz (örneğin, portal hipertansiyon, hepatit ve / veya siroz4 nedeniyle) ve bu nedenle renal subkapsüler boşluk5,6, omental kese 7,8,9,10, mezenter 11, gastrointestinal sistem 12, iskelet kası 13, deri altı doku 13, kemik iliği 14 ve dalak 15 dahil olmak üzere diğer bölgeler ,16,17, alternatif nakil bölgeleri olarak kabul edilmiştir.
İntraperitoneal adacık transplantasyonu lokal anestezi altında kolaylıkla yapılabilmesine rağmen, intraperitoneal boşluğu klinik adacık nakli için cazip bir bölge haline getirse de, nakil sırasında adacıklar tüm intraperitoneal boşluğa dağılarak adacık engraftmanının saptanmasını ve başarılı engraftman doğrulamasını zorlaştırır. Bu nedenle, intraperitoneal boşluk ideal bir klinik nakil bölgesi olarak yaygın olarak tanınmamaktadır. Bunun yerine, nakledilen kapsüllenmiş18 ve biyomühendislik adacıkları19'un etkinliğini araştırmak için klinik öncesi çalışmalar için sıklıkla bir kontrol modeli olarak kullanılmaktadır. Bununla birlikte, biyomühendislik ve kontrol adacıkları arasında kesin bir karşılaştırma yapmak, doğru bir engraftman değerlendirmesi gerçekleştirmedeki zorluklar nedeniyle zordur.
Buna karşılık, omental poşet8, mezenter ve diğer ekstrahepatik lokalizasyonlarda intraperitoneal beyaz yağ dokusunun kullanımı iyi bildirilmiştir 10,20,21,22,23 ve beyaz yağ dokusu kullanılarak nakledilen biyomühendislik adacıklarının işlevini araştıran çalışmaların çoğu, umut verici terapötik sonuçlar bildirebilmiştir 20,24,25, 26. Epididim yağ dokusu kullanımı nakledilen adacıkların saptanmasını kolaylaştırdığından, intraperitoneal adacık transplantasyonunun sınırlamalarını aşmak için epididim yağ dokusunu kullanan "yağ kaplı adacık transplantasyonu yöntemi" geliştirilmiştir. Bu yazıda epididim yağ dokusu kullanılarak yağ kaplı adacık transplantasyonu anlatılmaktadır.

<table><tbody><tr><td>4-0 Naylon</td><td>Alfresa</td><td>ER2004NA45-KF2</td><td>Kapanış karın</td></tr><tr><td>Alexa 488-konjuge eşek anti-kobay</td><td>Jackson Immunoresearch</td><td>706-546-148</td><td>İnsülin antikoru için ikincil antikor</td></tr><tr><td>Alexa 647-konjuge eşek anti-tavşan</td><td>Jackson Immunoresearch</td><td>711-606-152</td><td>Von Willebrand faktör antikoru</td></tr><tr><td>DMEM, düşük glikoz, piruvat</td> <td>için ikincil antikorThermoFisher Scientific</td><td>11885084</td><td>Adacıkların kültürlenmesi, adacıkların nakli</td></tr><tr><td>Eosin</td><td>Fujifilm Wako Chemicals</td><td>051-06515</td><td>Eozin</td></tr><tr><td>Eppendorf Güvenli Kilit Tüpleri, 1.5 mL</td><td>Eppendorf</td><td>30120086</td> ile doku boyama için kullanma <td>Adacıkların toplanması&nbsp;</td></tr><tr><td>Falcon 15 mL Konik Santrifüj Tüpleri</td><td>Corning</td><td>352095</td><td>Toplama adacıkları</td></tr><tr><td>Falcon 40 & m Hücre Süzgeci</td><td>Falcon</td><td>352340</td><td>Adacıkları diğer pankreas dokusundan ayırmak için kullanma</td></tr><tr><td>Falcon 50 mL Konik Santrifüj Tüpleri</td><td>Corning</td><td>352070</td><td>Aşırı orta/tampon</td></tr><tr><td>Gine domuzu anti-insülin atma</td><td>Agilent Technologies Japan, Ltd. (Dako)</td><td>IR002</td><td>Murin insülin için birincil antikor</td></tr><tr><td>Hematoksilen</td><td>Muto Pure Chemicals Co., Ltd.</td><td>30002</td><td>Hematoksilen İzodin çözeltisi ile dokuyu boyamak için kullanma</td></tr><tr><td>%10Shionogi</td> <td>& Co., Ltd.</td><td>katalog numarası yok</td><td>Dezenfeksiyon için kullanma</td></tr><tr><td>İzofluran</td><td>Fujifilm Wako Chemicals</td><td>095-06573</td><td>Anestezi için kullanım</td></tr><tr><td>Labcon 1000 & mikro; L ZapSilk Düşük Tutma Pipet Uçları</td><td>Labcon</td><td>1177-965-008</td><td>Adacıkları diğer pankreas dokularından ayırmak için kullanılır</td></tr><tr><td>Labcon 200 & mikro; L ZapSilk Düşük Tutma Pipet Uçları</td><td>Labcon</td><td>1179-965-008</td><td>Epididimal beyaz yağ dokusu üzerine adacıklar tohumlamak için kullanma</td></tr><tr><td>Mintsensor</td><td>Sanwa Kagaku Kenkyusho Co., Ltd.,</td><td>8AEB02E Kan</td><td>şekerini izlemek için kullanma</td></tr><tr><td>Pipetteman P-1000</td><td>Gilson</td><td>F123602</td><td>Adacıkları diğer pankreas dokusundan ayırmak için kullanılır</td></tr><tr><td>Pipetteman P-200</td><td>Gilson</td><td>F123601</td><td>Epididimal beyaz yağ dokusu üzerine adacıklar tohumlamak için kullanma</td></tr><tr><td>Tavşan anti-vWF</td><td>Abcam</td><td>ab6994</td><td>Murin von Willebrand faktörü için birincil antikor</td></tr></tbody></table>

epididim beyaz yağ dokusu kullanılarak yağ kaplı adacık nakli

Fat-Covered Islet Transplantation Using Epididymal White Adipose Tissue

Adacık transplantasyonu, şiddetli diabetes mellitus için hücresel bir replasman tedavisidir. İntraperitoneal boşluk tipik olarak bu prosedür için nakil bölgesidir. Bununla birlikte, intraperitoneal adacık transplantasyonunun, zayıf transplantasyon etkinliği, zor greft tespit yeteneği ve nakil sonrası analiz için greftektomi yeteneğinin eksikliği gibi bazı sınırlamaları vardır. Bu yazıda, biyomühendislik adacıklarının terapötik etkilerini değerlendirmek için epididim beyaz yağ dokusunu kullanan bir intraperitoneal adacık transplantasyonu yöntemi olan "yağ kaplı adacık transplantasyonu" kullanılmıştır. Yöntemin basitliği, adacıkların epididim beyaz yağ dokusuna tohumlanması ve dokuların adacıkları örtmek için kullanılmasında yatmaktadır. Bu yöntem intraperitoneal adacık transplantasyonu tekniği olarak sınıflandırılabilirken, intra-yağ dokusu adacık transplantasyonu ile ortak özellikler taşımaktadır. Bununla birlikte, yağ kaplı adacık transplantasyonu yöntemi, kan şekeri ve plazma insülin seviyelerinin iyileştirilmesi ve greft çıkarılması potansiyeli de dahil olmak üzere, yağ içi doku adacık transplantasyonundan daha sağlam terapötik etkiler göstermektedir. Beyaz yağ dokusuna adacık engraftmanının mekanizmalarını ve biyomühendislik adacıklarının terapötik etkilerini değerlendirmek için bu yöntemin benimsenmesini öneriyoruz.

Yağ kaplı adacık transplantasyonunun transplantasyon etkinliğini, intraperitoneal adacık transplantasyonundan sonrakiyle karşılaştırmak için, kontrol alıcısı diyabetik hayvanların sol parakolik boşluğundaki periton üzerine aynı sayıda adacık implante edildi. Yağ kaplı adacık nakli yapılan farelerin kan şekeri düzeylerinin, intraperitoneal adacık nakli yapılan farelere göre kademeli ve anlamlı olarak azaldığı gözlenmiştir (p = 0.0023; Şekil 3A). Transplantasyondan bir ay sonra, yağ kaplı adac...

Bu yağ kaplı adacık nakli yöntemi, intraperitoneal boşlukta engrafe adacıkların tespiti için uygundur. Özellikle, biyobağlayıcı ajanların kullanılmasını veya dikiş atılmasını gerektirmez.

Epididim Beyaz Yağ Dokusu Kullanılarak Yağ Kaplı Adacık Nakli

Islet transplantation is a cellular replacement therapy for severe diabetes mellitus. The intraperitoneal cavity is typically the transplant site for this ...

Bu protokol, adacık engraftasyonunun beyaz yağ dokusuna mekanizmasını değerlendirmeyi mümkün kılar. Bu yağ kaplı adacık nakli yönteminin en büyük avantajı, teknik olarak çoğaltılmasının kolay olmasıdır. Yöntem diğer hastalık modellerine uygulanabilir.Örneğin, bir fare kanser modeli oluşturmak için kullanılabilir. Prosedürü gösteren, Fukuoka Üniversitesi'nde Doçent olan Naoaki Sakata olacak. Diseksiyon mikroskobu altında, asinar ve fibröz dokular da dahil olmak üzere pankreas sindirimlerinden ekstra adacık bileşenlerini çıkarmak için bir P 200 mikro pipet kullanın.Ardından, tek asinar hücreleri filtrelemek için bir hücre süzgeci kullanın. Filtrelenmiş adacıkları, sığır serumu veya albümin ile desteklenmiş uygun kültür ortamı veya tampon çözeltisi içeren yeni bir kültür kabına aktarın ve adacıkları merkeze yerleştirmek için çanağı döndürün. Bir P 200 mikro pipet kullanarak, tek tek adacıkları uygun bir toplama tüpüne seçin.50 mililitrelik plastik tüpün üzerine yeni bir 40 mikrometre hücre süzgeci yerleştirin. Adacıkları ve tek asinar hücreleri ayırmak üzere adacıkları süzgecin içine eklemek için 1000 mikrolitrelik bir pipet kullanın. Süzgeci, kültür ortamı veya sığır serumu veya albümin ile desteklenmiş uygun bir tampon çözeltisi içeren yeni bir 60 veya 100 mililitre boyutunda işlenmemiş kültür kabı üzerinde ters çevirmek için forseps kullanın.Adacıkları yeni bir kültür kabına yıkamak için taze ortam veya tampon kullanın, ardından kültür kabına yaklaşık 20 mililitrelik toplam hacme ulaşmak için yeterli ortam veya tampon ekleyin. Adacıkları mikroskop altında sayın ve adacık sayısını, donör hayvanların sayısına göre bireysel 1,5 mililitrelik plastik santrifüj tüpleri arasında eşit olarak bölün. Adacıkları oda sıcaklığında bir dakika boyunca 2, 100 G'de santrifüj edin ve süpernatanı atın.Yaklaşık 20 ila 30 mikrolitre artık çözelti tipik olarak tüpte kalacaktır. Enfeksiyonu önlemek için saçları karından çıkardıktan sonra fareyi sırtüstü pozisyona getirin. Karın ve kasık bölgesi dezenfekte edildikten sonra alt medyan bölgede cildi keserek yaklaşık iki santimetre uzunluğunda bir cilt kesisi oluşturur.Sol karın duvarını forseps veya retraktörlerle sıkıştırın ve cerrahi alanı sabitlemek için dokuyu farenin sol tarafına çekin. İnce ve kalın bağırsağı farenin sağ tarafına hareket ettirmek için pamuklu çubuk kullanın. Karın boşluğundaki sol epidermal beyaz yağ dokusu sol kasık bölgesinde bulunur.Epidermal beyaz yağ dokusunu ve sol testisi karın dışına doğru harekete geçirin ve dokuyu gerin. Tüm adacık hacmini 1,5 mililitrelik bir tüpten toplamak için bir P 200 mikro pipet kullanın ve toplandıktan sonra tüpte adacık kalmamasına dikkat edin. Toplanan adacıkların pipetin ucuna yerçekimi ile yerleşmesine izin verin.Mikro pipet ucunu şişmiş yağ dokusunun üzerine hafifçe yerleştirin ve uçtaki ortamın veya tamponun aşırı yıkanmasını önlemeye özen gösterin. Adacıkları dikkatlice doku üzerine tohumlayın. Tohumlamadan sonra, adacıkların diseksiyon mikroskobu altında doğru yerleştirildiğini onaylayın.Adacıkları epidermal beyaz yağ dokusu ile örtün, ardından sol testisi epizomal beyaz yağ dokusunun altına yerleştirin ve dokuları intraperitoneal boşluğa geri döndürün. 4-o dikiş kullanarak cildi iki kat halinde kapatın. İşiniz bittiğinde, fareyi bir ısı lambasının altına yerleştirin ve tamamen iyileşene kadar izleyin.Yağ kaplı adacık transplantasyonunun transplantasyon etkinliğini, intraperitoneal adacık transplantasyonundan sonrakiyle karşılaştırmak için, kontrol alıcısı diyabetik hayvanların sol parakolik boşluğundaki periton üzerine aynı sayıda adacık implante edildi. Yağ kaplı adacık nakli yapılan farelerin kan şekeri düzeylerinin, intraperitoneal adacık nakli yapılan farelere kıyasla kademeli ve anlamlı olarak azaldığı gözlenmiştir. İntraperitoneal glukoz tolerans testi transplantasyondan bir ay sonra yapıldı.Yağ kaplı adacık transplantasyonu olan farelerde kan şekeri, intraperitoneal adacık nakli yapılan farelerde gözlenenden daha düşük seviyelerde tutulmuştur. Histolojik inceleme, epidermal beyaz yağ dokusuna adacık engraftmanını değerlendirmek için kullanıldı. Yağ kaplı adacık nakli alan hayvanlarda, hematoksilin eosen boyaması, epidermal beyaz yağ dokusu içinde adacıkların varlığını ortaya koymuştur.Ek olarak, insülin pozitif adacıkların floresan konjuge antikor boyaması, tüm alıcı farelerin epidermal beyaz yağ dokusu içinde von Willebrand faktör pozitif mikro damarların saptanmasını kolaylaştırmıştır. Bu prosedürde başarılı olmak için, adacıkların pipetin ucuna tamamen yerleşmesine izin verdiğinizden emin olun ve dökülmeden yağ dokusuna tohumlayın.

fat-covered-islet-transplantation-using-epididymal-white-adipose

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

Protokolü, temiz ve kolay bir adacık veya hücreleri farelerin böbrek kapsülü altında sunmak için geliştirildi. Hücreler, böbrek kapsül altında hücrelerinin nakli için kullanılan son tüp pelet içine yoğunlaşmıştır. Bu tekniğin kolaylığı hücreleri ve fare stresi azaltır.

Diyabetik Fare Böbrek Kapsül içine, Pankreas Islets Nakli

Izole adacık transplantasyonu tip 1 şeker hastalığı için potansiyel bir tedavi olarak öne sürülmüştür. Burada, fare pancreata adacıkları izole, ve böbrek subkapsüler alan nakli için bir yöntem açıklanmaktadır.

Murin Islet İzolasyon ve subkapsüler Böbrek Nakli Bir Yöntem

Bu protokol, murine iz izolasyonunu ve bir desellularize iskele üzerine tohumlamayı gösterir. İskele destekli adacıklar streptozotosin (STZ) ile indüklenen diyabetik farelerin epididimal yağ yastığı içine nakledildi. Isletler nakil alanından kurtuldu ve hiperglisemik durumu tersine çevirdi.

Diyabetik Farenin Epididimal Yağ Tabağında Iskelelerin İskele Destekli Nakli

Bir mouse adacıkları omental nakli için bir yöntem tanıttı. İzole adacıkları hidrojel ile karıştırılır ve karışımı bir diyabetik fare omental kese yerleştirilir. Daha sonra kan şekeri izlenir ve IMMUNO-histochemical çözümleme yapılır.

Adacık nakli için Mouse omentumun için bir yöntemi

Pankreas adacık nakli normoglycemia tip 1 diyabet için bir yoludur. Bu makale nakli tekniği normal glikoz düzeyleri diyabetik farelerde korumak için intraportal rota üzerinden üzerinde duruluyor.

İntraportal fare modeli pankreas adacıkları nakli

Burada, bir protokol adacık nakli örnek tarafından resimli hidrojel tabanlı hücre tedavisinin içinde vivo doğrulama için mevcut. (hOMING) implantasyon doldurma h Omental matris adacık hücre hidrojel karışımı kan damarları engraftment uygun metabolik ortamında en üst düzeye çıkarmak için yakın omental katmanlar arasında implantasyonu sağlar.

İçi Omental adacık nakli kullanarak h Omental matris adacık doldurma (posta)

Bu protokolde inguinal subkutan beyaz yağ dokusuna murine adacık izolasyonu ve transplantasyon yöntemi tanımlanmıştır. İzole syngeneic murine adacıkları bir murine alıcı içine bir bodrum membran hidrojel kullanılarak nakledilir. Alıcıların kan şekeri düzeyi izlenir ve adacık greftlerinin histoloji analizi yapılır.

Inguinal Subkutan Beyaz Yağ Dokusu (ISWAT) Transplantasyon Modeli Murine Adacıkları

Burada, farelerde klinik olarak ilgili ancak teknik olarak zorlayıcı bir cerrahi prosedür olan intraportal adacık transplantasyonunun başarılı bir şekilde gerçekleştirilmesi için rafine cerrahi prosedürler sunulmaktadır.

Farelerde İntrahepatik Adacık Transplantasyonu Sırasında İnfüzyon Sonrası Portal Ven Kanamasının En Aza İndirgenmesi

İnsan kök hücresinden türetilen pankreas kök hücresi adacıklarının immunodefisive farelere in vivo implantasyon ve sonraki analizler için kas içi nakli için minimal invaziv bir protokol sunuyoruz.

Farelerde İnsan Pluripotent Kök Hücresinden Türetilen Pankreas Endokrin Hücrelerinin Intramusküler Nakli

Doku mühendisliği kalp kapakçıklarında neotissue oluşumu ve darlık gelişimi altında yatan hücresel ve moleküler mekanizmaları anlamak için, heterotopik kalp kapakçığı nakli bir fare modeli geliştirilmiştir. Bir pulmoner kalp kapak heterotopik kalp nakli tekniği kullanılarak alıcıya nakil oldu.

Heterotopik Kalp Nakli bir Fare Modeli Kullanarak Pulmoner Vana Nakli

Öğrenin, yağ kaplı adacık nakli yöntemiyle beyaz yağ dokusuna adacık yerleşimini değerlendirin. Bu teknik, diyabet tedavisinde ve kanser modellerinde kolayca uygulanabilir.

Epididim Beyaz Yağ Dokusu Kullanılarak Yağ Kaplı Adacık Nakli

Daha fazla video keşfet