-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Developmental Biology
Yetişkin Fare Tadı Kök Hücrelerinden Elde Edilen Lingual Organoidlerin Üretimi ve Kültürü
Yetişkin Fare Tadı Kök Hücrelerinden Elde Edilen Lingual Organoidlerin Üretimi ve Kültürü
JoVE Journal
Developmental Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Developmental Biology
Generation and Culture of Lingual Organoids Derived from Adult Mouse Taste Stem Cells

Yetişkin Fare Tadı Kök Hücrelerinden Elde Edilen Lingual Organoidlerin Üretimi ve Kültürü

Full Text
4,865 Views
07:57 min
April 5, 2021

DOI: 10.3791/62300-v

Lauren A. Shechtman*1, Christina M. Piarowski*1, Jennifer K. Scott1, Erin J. Golden1, Dany Gaillard1, Linda A. Barlow1

1Department of Cell and Developmental Biology and the Rocky Mountain Taste and Smell Center,University of Colorado Anschutz Medical Campus

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Protokol, yetişkin farelerin arka tat papillasından izole edilmiş tat kök hücrelerinden elde edilen dil organoidlerini kültleme ve işleme için bir yöntem sunar.

Organoidler, ilaç taraması ve biyolojik süreçleri anlamak için kullanılan güçlü in vitro teknolojidir. Bu nedenle, dili modelleyen organoidler üretmek, tat hücresi gelişimini ve yenilenmesini incelemek için çok önemlidir. Geleneksel in vivo tat çalışmaları pahalı ve zaman alıcı olabilir.

Bu organoid protokolü, daha yüksek aktarım hızı denemelerine izin verirken bu zorlukları en aza indiren standartlaştırılmış, tekrarlanabilir bir alternatif sunar. Yetişkin bir fareyi ötenazi ettikten sonra, yanakları kesmek ve çeneyi kırmak için büyük steril diseksiyon makası kullanın. Daha sonra dili kaldırın ve dili ağız boşluğunun zemininden ayırmak için dil frenulumunun kesilmesini kesin.

Dili kesin ve kalsiyum ve magnezyum ile steril buz gibi dPBS'de toplayın. Bir diseksiyon mikroskobu altında, bir jiletle ara malar kardinalinin sadece ön kısmını keserek ön dili çıkarın ve atın. Daha sonra arka dilden herhangi bir saç ve fazla sıvı çıkarmak için hassas bir görev mendili kullanarak.

Daha sonra, bir mililitre şırıngayı 200 ila 300 mikrolitre enjeksiyon enzim çözeltisi ile doldurun ve sirkülat papillanın veya CVP'nin sadece ön kısmına kadar ara malar kardinalansın hemen üzerine 30 kalibre yarım inçlik bir iğne yerleştirin. Enzim çözeltisini CVP'nin altına ve yan kenarlarına epitel ve alttaki dokular arasına enjekte edin. Çözelti enjekte edilirken şırınnayı dilden yavaşça ve sürekli olarak çekin.

Dili kuluçkaya yatırın ve oda sıcaklığında steril kalsiyum magnezyum içermeyen dPBS'yi tam olarak 33 dakika boyunca kuluçkaya bırakın. Ekstra ince diseksiyon makası kullanarak, epitelde iki taraflı ve CVP'nin sadece ön kısmında küçük kesikler yapın. Daha sonra epitelleri ince epiplerle kaldırarak hafifçe soyun.

Hendek epitel alttaki bağ dokusundan arındırıldıktan sonra, FBS ile önceden kaplanmış iki mililitre mikrosantrifüj tüpüne yerleştirin. Soyulmuş CVP epitelini içeren tüplere ayrışma enzim kokteylini ekleyin ve her 15 dakikada bir kısa vorteksleme ile 45 dakika boyunca 37 santigrat derecelik bir su banyosunda kuluçkaya yatırın. Kuluçkanın son 15 dakikasında, su banyosunda% 0.25 Trypsin-EDTA ön ısıtma.

Kuluçkadan sonra, tüpleri bir dakika boyunca bir cam Pasteur pipetle tritüre edin. Doku parçaları yerleştikten sonra, ayrışmış hücrelerin ilk koleksiyonunu içeren süpernatantı yeni FBS kaplamalı 1,5 mililitre mikrosantrifüj tüplerine pipetleyin. Hücreleri peletmek için süpernatant'ı 370 kez G ve dört santigrat derecede beş dakika döndürün.

Elde edilen süpernatant çıkarın, sonra hücre peletini FACS arabelleğine yeniden saklayın ve buzda tutun. Orijinal iki mililitre mikrosantrifüj tüpünde kalan doku parçalarını ayrıştırmak için önceden ısıtılmış %0,25 Trypsin-EDTA ekleyin ve her 10 dakikada bir kısa girdap ile 37 santigrat derecede 30 dakika kuluçkaya yatırın. Ardından, doku parçalarını bir dakika boyunca bir cam Pasteur pipetle üçe bölün.

Doku parçaları yerleştikten sonra, süpernatantı FACS tamponunda daha önce toplanan ayrışmış hücreleri içeren 1,5 mililitre mikrosantrifüj tüplerine pipetleyin. Tüpleri ayrışmış hücrelerle döndürün. Üstnatant çıkarıldıktan sonra, hücre peletlerini FACS tamponunda yeniden çıkarın ve buzda tutun.

Daha sonra, metin el yazmasında açıklandığı gibi yeşil floresan protein kanalını kullanarak LGR5-GFP pozitif hücrelerini FACS aracılığıyla izole edin. İstediğiniz sayıda Lgr5 pozitif askıya alınmış hücreyi yeni bir mikrosantrifüj tüpüne aktarın. Hücreleri peletmek için tüpü 370 kez G ve dört santigrat derecede beş dakika döndürün.

Üst saltantayı çıkarın ve tüpü buza yerleştirin. Hücre peletini yumuşak pipetleme ile uygun miktarda matris jelinde hafifçe yeniden dürt. Daha sonra matris jelinin jelleşmesini önlemek için mikrosantrifüj tüpünü 50 mililitrelik konik bir tüpte buz üzerinde tutun.

48 kuyulu bir plakanın her kuyusunun ortasına hücre karışımına 15 mikrolitre matris jeli ekleyin. Hücrelerin eşit bir dağılımını sağlamak için, her üç kuyuyu kapladıktan sonra yukarı ve aşağı pipetleme yaparak matris jeli ve hücre karışımını karıştırın. Matris jelinin jellenmesine izin vermek için plakayı 37 santigrat derece, % 5 karbondioksit ve% 95 nemde bir inkübatöre 10 dakika yerleştirin.

Ardından, her kuyuya Y27632 kaya inhibitörü ile desteklenmiş 300 mikrolitre oda sıcaklığı WENRAS ortamı ekleyin ve plakayı inkübatöre geri verin. Kaplamadan iki gün sonra, bir mililitre pipet kullanarak veya vakum aspirasyonu ile ortamı her kuyudan çıkarın ve koşullar arasında çapraz kontaminasyon olmamasını sağlayın. Matris jelini bozmamaya ve plakayı inkübatöre geri döndürmeye dikkat ederek kuyunun kenarına 300 mikrolitre WENRAS ortamı ekleyin.

Lingual organoidler WENR ortamı kullanılarak kültürlendiğinde, verimli bir şekilde büyümezler. Bununla birlikte, bir TGF-beta sinyal inhibitörü olan A 83-01 ve SB202190, P-38 harita kinaz sinyal inhibitörü ekledikten sonra sağlam büyüme gözlenir. İlginçtir ki, bu inhibitörlerin altı gün sonra medyadan çıkarılması, genel tat reseptör hücre işaretleyicisinin daha yüksek ekspresyonlanmasıyla sonuçlanır, Kcnq1, A 83-01 ve SB-202190'ın tat hücresi farklılaşmasına engel olduğunu düşündürmektedir.

Böylece, WENRAS medyasında organoidlerin sıfırdan altıya ve WENR ortamlarının altıncı günden 12.güne kadar kültlenmesiyle optimal büyüme ve farklılaşma elde edilir. Olgun organoidler hem keratin-8 ile işaretlenmiş tat hücrelerini hem de keratin-13 ile işaretlenmiş tatsız epitel hücrelerini içerir. Ayrıca, keratin-13 her üç tat reseptör hücre belirteçlerinden daha yüksek seviyelerde ifade edilir ve organoidlerin ağırlıklı olarak tatsız epitel hücrelerden oluştuğunu düşündürmektedir.

Organoidler tüm tat reseptör hücre tiplerini ifade eder. Entpd2 ile işaretlenmiş tip 1 hücreler ve Gnat3 ile işaretlenmiş acı tip iki hücreler tat organoidlerinde yüksek oranda ifade edilirken, Car4 ile işaretlenmiş ekşi algılama tipi üç hücre daha az yaygındır. Tat reseptör hücreleri, in vivo olarak gözlenen ayrık tat tomurcuk yapılarında değil, organoidlerde rastgele dağıtılır.

Dili ağız boşluğundan parçalarken CVP'ye bazı doku posteriorları eklediğinizden emin olun. Ayrıca, epitel soyulurken her iki siperin de ortaya çıktığından ve elde edildiğinden emin olun.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Gelişimsel Biyoloji Sayı 170 gustasyon dil yetişkin kök hücreleri in vitro LGR5 FACS yenileme

Related Videos

İnsan Mantar şeklinde Lezzet papilla hücrelerinin izolasyonu ve Kültürü

08:46

İnsan Mantar şeklinde Lezzet papilla hücrelerinin izolasyonu ve Kültürü

Related Videos

14.8K Views

Murin Dil Epitel Hücrelerinin İzolasyonu ve Kültürü: Dil Epitel Hücrelerini Fare Modelinden İzole Etme ve Kültür Prosedürü

03:24

Murin Dil Epitel Hücrelerinin İzolasyonu ve Kültürü: Dil Epitel Hücrelerini Fare Modelinden İzole Etme ve Kültür Prosedürü

Related Videos

3.1K Views

Fare Modelinden Circumvallate Papilla (CVP) Epitelinin İzolasyonu: CVP Epitelini Fare Dilinden Ayırmak İçin Enzimatik Bir İşlem

03:38

Fare Modelinden Circumvallate Papilla (CVP) Epitelinin İzolasyonu: CVP Epitelini Fare Dilinden Ayırmak İçin Enzimatik Bir İşlem

Related Videos

3.1K Views

Yetişkin Fare insizör Diş Epitel Kök Hücreleri İzolasyon ve Kültür

08:14

Yetişkin Fare insizör Diş Epitel Kök Hücreleri İzolasyon ve Kültür

Related Videos

15.7K Views

Enfeksiyon Hastalıkları Modeli Olarak Organoids: Helicobacter Pylori ve İnsan Kültür ve kemirgen Mide Organoids ve Mikroenjeksiyon

10:30

Enfeksiyon Hastalıkları Modeli Olarak Organoids: Helicobacter Pylori ve İnsan Kültür ve kemirgen Mide Organoids ve Mikroenjeksiyon

Related Videos

36.1K Views

Mantar Formu, Sirkülasyon ve Damak Tat Tomurcuklarının Bütün Montajlı Boyama, Görselleştirme ve Analizi

07:40

Mantar Formu, Sirkülasyon ve Damak Tat Tomurcuklarının Bütün Montajlı Boyama, Görselleştirme ve Analizi

Related Videos

3.8K Views

Embriyonik Gün 12.5 ve 8 Haftalık Farelerin Dil Epitel ve Mezenkim/Bağ Dokusundan Hücre Ayrışması

06:56

Embriyonik Gün 12.5 ve 8 Haftalık Farelerin Dil Epitel ve Mezenkim/Bağ Dokusundan Hücre Ayrışması

Related Videos

4.9K Views

Trowell Tipi Organ Kültürünün Diş Kök Hücrelerinin Düzenlenmesini Incelemek İçin Kullanılması

06:22

Trowell Tipi Organ Kültürünün Diş Kök Hücrelerinin Düzenlenmesini Incelemek İçin Kullanılması

Related Videos

2.6K Views

Yetişkin Fare Damak Tadından Birincil Oral Keratinositlerin İzolasyonu ve Kültürü

06:28

Yetişkin Fare Damak Tadından Birincil Oral Keratinositlerin İzolasyonu ve Kültürü

Related Videos

6.8K Views

3D Organoidlerde Oral-Özofagus Skuamöz Hücreli Karsinomun Modellenmesi

10:43

3D Organoidlerde Oral-Özofagus Skuamöz Hücreli Karsinomun Modellenmesi

Related Videos

3.8K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code