Name: Yüzey Aktif Madde Tükenmesi, Akut Solunum Sıkıntısı Sendromunun (ARDS) Tekrarlanabilir Bir Modeliyle Birlikte Yaralanmalı Havalandırma ile Birleşti (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-04-07T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 22 s
Description: Keşfedin, yüzey aktif madde tükenmesi ve yaralanmalı havalandırma ile domuzlarda ARDS modeli oluşturma yöntemini. Bu model, yoğun bakım için yeni ventilasyon stratejilerinin araştırılmasına olanak tanır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Birgit Brandt'in mükemmel teknik yardımını minnetle kabul ediyoruz. Bu çalışma Almanya Federal Eğitim ve Araştırma Bakanlığı'nın (FKZ 13GW0240A-D) hibesi ile desteklendi.

Deneyler Charité - University Medicine, Berlin, Almanya Deneysel Tıp Bölümü'nde (EN DIN ISO 9001:2000'e göre onaylanmıştır) yapılmış ve deneylerden önce Almanya'nın Başkenti Berlin'de hayvan araştırmaları için federal makamlar tarafından onaylanmıştır (G0229/18). Laboratuvar hayvan bakımı ilkeleri tüm deneylerde kullanılmış ve Avrupa ve Alman Laboratuvar Hayvanları Bilimleri Derneği'nin yönergelerine uygundur.
1. Laboratuvar hayvanları ve hayvan refahı
<ol><li>Tüm deneyleri 3-4 aylık vücut ağırlığı (bw) 30-40 kg olan derin uyuşturullanmış erkek domuzlarda (Alman Landrace × Büyük Beyaz) yapın.</li>
</ol>2. Anestezi, entübasyon ve mekanik ventilasyon
<ol><li>Domuzların tok karnına önlemek için anesteziden önce 12 saat boyunca kuru yiyecek sağlamayın. Stresi en aza indirmek için suya ve saman/samana ücretsiz erişime izin verin.</li>
	<li>Azaperone (3 mg/kg bw), atropin (0.03 mg/kg bw), ketamin (25 mg/kg bw) ve ksilazinin (3.5 mg/kg bw) kombinasyonunun intramüsküler enjeksiyonu ile domuzun boyun kas yapısına önceden planlanırken, hayvanlar stresi en aza indirmek için hala barınma tesislerinde tutulur. NOT: Deneyden önce birkaç şeker küpü beslerken hayvanın boynunu okşamak ve şeker küplerini eğitimli bir şekilde beslerken enjeksiyonu uygulamak günlük eğitim, sorunsuz bir ön düzeltmeyi kolaylaştıracak ve stresi daha da azaltacaktır.<ol>
<li>Hayvanı bir sedyeye yerleştirin ve yeterli anestezi seviyesine ulaşıldıktan sonra gözleri taşımak için bir bezle kapatın.</li>
		<li>Domuzu cerrahi tiyatroya aktarın ve her zaman yeterli spontan nefes almayı sağlayın.</li>
		<li>Barınma tesisleri laboratuvara bitişik değilse, domuzları taşırken ek oksijen sağlamak için bir oksijen tüpü, bağlantı tüpü ve maske alın.</li>
		<li>Domuzu eğilimli konuma getirin ve yüksek oksijen akışı (örneğin, 10 L / dk) kullanarak hayvanın snout'una uyan bir maske ile preoksijene edin.</li>
	</ol></li>
	<li>Venöz erişim elde etmek için periferik bir damar kateteri (genellikle 18 veya 20 G) kullanın. Periferik ven kateterini alkol takası ile silme işleminden sonra kulak damarlarından birine yerleştirin.<ol>
<li>Dengeli bir kristaloid çözelti ile bir infüzyon başlatın ve daha sonra anestezi infüzyonu için kateterin doğru yerleştirilmesini sağlayın.</li>
		<li>Bolus i.v. olarak 500 mL dengeli kristaloid çözelti ve ardından sıvı desteği için 4 mL/kg/s sürekli infüzyon demleyin.</li>
		<li>SpO2-Sensörü kulaklardan birine veya kuyruğa sabitleyerek periferik oksijen doygunluğunu (SpO2)izlemeye başlayın.</li>
	</ol></li>
	<li>Orotrakeal entübasyon için propofol enjekte ederek anesteziye neden olur (yaklaşık 5-10 mg / kg - tam doz premedikasyonun etkisine bağlıdır ve hayvandan hayvana farklılık gösterir). NOT: Bir opioidin önceden enjekte edilmesi entübasyonu daha da kolaylaştıracaktır, ancak hayvanın erken bir apnesini önlemek için geniş bir deneyim gerektirir. Propofol enjekte etmeden önce spontan solunum hızı yaklaşık 20/dk'ya kadar yavaşlayana kadar 100 μg fentanil (fentanil sitrat, 100 μg/mL) enjeksiyonu tekrarlanabilir.</li>
	<li>Hayvanı kelepçeli bir endotrakeal tüp (7,5 - 8,0 mm ID) ve büyük hayvanlar için tasarlanmış bir laringoskop (yaklaşık 25 cm uzunluğunda düz bıçak) ile entübe edin. NOT: Entübasyon, Theisen ve ark.8tarafından ayrıntılı olarak açıklandığı gibi eğilimli konumda en kolayıdır.<ol>
<li>CO2 -monitörde (capnograph) sona erme sırasında CO2'nin tipik dalga biçimini gözlemleyerek endotrakeal tüpün yerleşimini doğrulayın.</li>
		<li>Eşit ikili nefes seslerini kontrol etmek için auscultation kullanın. NOT: Domuzlar, başarısız veya gecikmiş entübasyon durumunda oksijeni yüksek bir akışla sağlarken, göğüs kafesinin her iki taraftan manuel olarak sıkıştırılmasıyla mekanik olarak havalandırılabilir.</li>
	</ol></li>
	<li>İlham alan oksijenin (FIO2)fraksiyonunu 1,0'a, solunum frekansını 15-20/dk'ya, gelgit hacmini 8-9 mL/kg bw'ye, ilham vericiyi son kullanma oranına (I:E) 1:1,5'e ayarlayın ve mekanik havalandırmayı başlatmak için 5 cmH2O'luk pozitif bir son ekspiratuar basınç (PEEP) uygulayın. Ayarları, 35-40 mmHg'lik bir karbondioksitin (PetCO2)son ekspiratör kısmi basıncını ve % 95'in üzerinde bir SpO2'yi hedeflemek için ayarlayın.<ol>
<li>Anesteziyi korumak için sürekli bir i.v. tiyopenton (20 mg/kg/h) ve fentanil (7 μg/kg/h) infüzyonu kullanın. NOT: Gerekli dozaj hayvandan hayvana ve deneysel ayarlar arasında değişebilir. Deney sırasında hayvan refahı ve bilimsel nedenlerle yeterli anestezi derinliğinin korunması esastır.</li>
		<li>Enstrümantasyon sırasında hayvanı stres/ağrı reaksiyonları (kalp atış hızı, kan basıncı veya solunum hızında artış gibi) için yakından izleyin. NOT: Anestezi derinliği yeterliyse kas gevşetici uygulanmadan enstrümantasyon mümkün olmalıdır.</li>
		<li>Deney için kas gevşemesi gerekiyorsa (örneğin, yüzey aktif madde tükenmesinden önce, zararlı ventilaion akciğer uyum ölçümlerinden önce) bir kas gevşetici verin, örneğin panküronyum bromür (0,15 mg/kg bw i.v. bolus, ardından 0,15 mg/kg bw/h veya tekrarlanan bolus enjeksiyonları) sürekli infüzyon.</li>
	</ol></li>
	<li>Enstrümantasyon teknikleri<ol>
<li>Hayvanı sırtüstü pozisyona getirin.</li>
		<li>Hayvanı çevirirken endotrakeal tüpü ve yani hattı sabitleyin.</li>
		<li>Cildi planlanan kesi alanlarının üzerine germek için bandaj kullanarak bacakları geri çek.</li>
		<li>Çalışma alanlarını alkol ve iyot % 1 çözeltisi gibi uygun bir cilt dezenfektanı ile sterilize edin.</li>
	</ol></li>
	<li>Dış juguler damarı merkezi bir venöz kateterle kanüle edin ve ek olarak, pulmoner arteriyel kateterin (PAC) indeksleyici kılımını aynı damara sokun.<ol>
<li>Mandibula ile sternumu (sol veya sağ taraf mümkün) bağlayan hatta 10 cm'lik bir deri kesiği gerçekleştirin.</li>
		<li>Anestezi derinliğini her zaman yeniden değerlendirir ve gerekirse doznemi ayarlayın.</li>
		<li>Braşiyofalik ve sternofalik kaslar görünene kadar deri altı dokusunu ve platysmayı doku periptopu ve cerrahi makasla ayırın.</li>
		<li>Dış şahdamarı görünene kadar fasyayı kaslar arasında ayırmak için künt bir kesme işlemi ile devam edin.</li>
		<li>Pac'in daha sonra yerleştirilmesi için dış juguler damarı merkezi venöz kateter ve indeksleyici kılıbı ile yalıtmak için Seldinger tekniği9'u kullanın. NOT: Perkütan bir yaklaşım durumunda yapıldığı gibi damarı bir dilatörle genişletmeyin. Bu damarı yırtar. Standart dikişlerle kapatın. Kılının boyutları seçilen PAC'nin boyutuna bağlıdır. Tipik olarak 30-40 kg vücut ağırlığındaki domuzlarda 6F indirgeyici kılıf (10 cm uzunluğunda) ve 75 cm uzunluğunda 5F PAC kullanılır.</li>
	</ol></li>
	<li>kan basıncını izlemek için femoral arteri kanüle edin.<ol>
<li>Bir arteriyel çizgi yerleştirmek için arka bacağın gracilis ve sartorius kası arasındaki kıvrımı tanımlayın (sol veya sağ mümkündür). NOT: Femoral arterin nabzı kolayca hissedilebilir olmalıdır.</li>
		<li>Seldinger tekniği ile atardamarı perkütan olarak kanüle edin9.</li>
		<li>Arter kolayca palpe değilse doğrudan bir yaklaşım kullanın.<ol>
<li>5 cm uzunluğunda bir kesi ile deriyi kesin ve deri altı dokusunu doku diksepleri ve cerrahi makas ile ayırın.</li>
			<li>Kaslar arasındaki fasyayı femoral arter seviyesine ayıran künt bir kesme prosedürü kullanın. NOT :D öz damarları kesme prosedürünü kranial yaparak yaralamayın.</li>
			<li>Uyluk atardamarının etrafına bir bağ takın, böylece delinme bölgesinde kanama durumunda damar kapatılabilir. Arka bacağa kan akışını tehlikeye attığı için mümkün olduğunca bu adımdan kaçının.</li>
			<li>Seldinger tekniği ile atardamarı kanüle edin9.</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
	<li>Transdüserleri atmosfere (sıfır) ve 200 mmHg (arteriyel hat) veya 50 mmHg'ye (merkezi venöz hat) göre kalibre edin ve izlemeye başlamak için arteriyel katetere ve merkezi venöz hatta bağlayın.<ol>
<li>Basınç dönüştürücülerini toraksın yüksekliğinin yaklaşık yarısı kadar sağ kulakçık konumuna yerleştirin.</li>
	</ol></li>
	<li>İdrar kesesinin katlerizasyonu için mesanenin üzerindeki deriden küçük (4-5 cm) bir kesi gerçekleştirin.<ol>
<li>Deri altı dokusunu künt aletler kullanarak ayırın.</li>
		<li>Mesane duvarına bir çanta-ip dikişi (1-2 cm çapında) yerleştirin. NOT: Dikişler mesane duvarının tüm katmanlarına nüfuz etmemeli, bu da delinmeler yoluyla idrar kaybına neden olacaktır.</li>
		<li>Dikişin ortasında küçük bir kesi gerçekleştirin ve idrar kateterini tanıtın.</li>
		<li>Hemen, balonu 10 mL damıtılmış su ile engelleyin ve hafif bir direnç hissedilene kadar kateteri mesane duvarına doğru çekin.</li>
		<li>Kateterin etrafındaki çanta ipli dikişi kapatın. Standart dikişleri kullanarak cildi kapatın.</li>
	</ol></li>
</ol>3. Pulmoner arter kateterinin (PAC) tanıtımı
<ol><li>Kateterin büyüklüğüne bağlı olarak PAC balonunun açıklığını 0,5-1 mL hava ile kontrol edin ve balonu tekrar söndür.</li>
	<li>PAC'yi basınç dönüştürücü sistemine bağlayın ve dönüştürücüsü atmosfere (sıfır) ve 100 mmHg'ye göre kalibre edin.</li>
	<li>PAC'yi 10-15 cm boyunca sönmüş bir balonla indirgeyici kılıftan geçirin (kılıf uzunluğuna bağlı olarak).<ol>
<li>Balonu kılıfı bıraktıktan sonra şişirin ve basınç monitördeki basıncı ve tipik dalga formlarını izlerken PAC'yi daha da ilerletin.</li>
		<li>Dalga formları sağ kulakçık, sağ ventrikül tipik olarak ortaya çıkarken PAC'yi ileri itin ve pulmoner kılcal kama basıncı (PCWP) dalga formu görüldüğünde PAC'yi ilerletmeyi bırakın.</li>
		<li>PCWP'yi son kullanma tarihinde kaydedin ve balonu söndürün (ilgili eğriler için Şekil 1'e bakın). NOT: Balonun sönmesi sonrasında PCWP dalga formu kaybolmalı ve pulmoner arteriyel basınç dalga formu görünür olmalıdır. Pulmoner arteriyel basınç dalga formu görülemiyorsa, kateter büyük olasılıkla pulmoner artere çok fazla yerleştirilir ve otomatik kama pozisyonuna ulaşmıştır. Bu, pulmoner bir damarın kalıcı tıkanmasıyla sonuçlanır ve kateterin pulmoner arteriyel basınç dalga formu tekrar ortaya çıkıp böylece komplikasyonları önleyene kadar geri çekilerek düzeltilmelidir, örneğin pulmoner damarın yırtılması10. PAC kateterleri genellikle domuzlardaki alt kaval damarı aracılığıyla yanlışlıkla karaciğer damarlarına ilerletilir. Böylece yaklaşık 30 - 50 cm sonra doğru ventrikül basınç sinyaline ulaşılmazsa kateteri geri çekin ve her şeye yeniden başlayın.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. Hemodinamik ölçümler için pulmoner arter termodilüsyon tekniği
<ol><li>Termodilüzasyon tekniği ile kardiyak çıkışı (CO) ölçün11.<ol>
<li>Thermistor'u ve gövdeden geçen bir akışı PAC'in ilgili lümenine bağlayın.</li>
		<li>Ardından, hemodinamik monitörü PAC'nin distal sıcaklık portu (kırmızı kapak) ile bağlayın.</li>
		<li>Kateter boyutunu, kateter uzunluğunu, enjekte edilen hacmi ve enjekte edilen salin çözeltisinin sıcaklığını telafi etmek için hemodinamik monitörü gerekli moda ayarlayın.</li>
		<li>Uygun hacim olan %0,9'luk salini mümkün olduğunca çabuk enjekte edin (genellikle 4 °C sıcaklıkla % 0,9 salinin 5 veya 10 mL'si).</li>
		<li>Ölçüm tamamlanana kadar bekleyin.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Ventilatörün solunum döngüsü boyunca beş ölçümü hızlı bir şekilde rastgele hale verin.<ol>
<li>En yüksek ve en düşük değerleri silin ve ortalamayı hesaplamak için kalan üç değeri kullanın.</li>
		<li>Bu ortalama değeri kardiyak çıkış olarak not edin.</li>
		<li>Kateter balonunu şişirerek PCWP'yi daha sonra ölçün ve ölçümden sonra söndür.</li>
		<li>Tüm hemodinamik hesaplamalar için ortalama arteriyel basınç (MAP), pulmoner arteriyel basınç (PAP), merkezi venöz basınç (CVP), PCWP ve CO kullanın. NOT: Ölçümlerden önce serumun hacmi ve sıcaklığın monitöre girilmesi gerekir. Doğru ölçümler için normal salin aynı sıcaklıkta (genellikle <5 °C) tutulmalıdır. Kateterin boyutu ve uzunluğu da girilmelidir. Bazı monitörler bir düzeltme faktörünün girilmesini gerektirir.</li>
		<li>Elektrolit dengesinin kesin ölçümlerini içeren çalışmalar için% 0.9 salin yerine% 5 glikoz çözeltisi kullanın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Tüm parametreleri kaydettiğizden emin olun. Pulmoner sağdan sola şantın hesaplanmasını sağlamak için CO ölçümlerinden kısa bir süre önce veya sonra eşzamanlı arteriyel ve karışık venöz kan örnekleri alın.<ol>
<li>Veri kümesini tamamlamak için gereken tüm solunum ayarlarını ve ölçümlerini kaydedin, örneğin tepe, plato ve son ekspirasyon basıncı. NOT: Anestezi, entübasyon ve tam enstrümantasyon indüksiyonu, araştırmacıların deneyimine ve sayısına bağlı olarak 1,5 saat gerektirebilir.</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. Yüzey aktif madde tükenmesi
<ol><li>Hayvanı 1.0'ın FIO2'si ile havalandırın.<ol>
<li>Hayvanı solunum cihazından çıkarın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Akciğerleri önceden ısıtılmış % 0,9 salin (37 °C, 35 mL/kg) ile endotrakeal tüpe bağlı bir huni ile doldurun.<ol>
<li>Bunun için huniyi hayvanın yaklaşık 1 m üzerine kaldırın. NOT: Hidrostatik basınç salini tüm pulmoner bölümlere tahsis edecektir.</li>
		<li>MAP <50 mmHg'nin altına düştüğünde doldurmayı derhal durdurun.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Lavaj sıvısını boşaltmak için huniyi zemin seviyesine küs. Hayvanı oksijenlenme için solunum cihazına yeniden bağlayın.</li>
	<li>Hayvan iyileşene kadar bekleyin ve gerekirse lavajı mümkün olan en kısa sürede tekrarlayın. NOT: Daha fazla lavaj için gereklilik PaO2/FIO2 oranı ile tanımlanır.<ol>
<li>Her lavajı takiben 5 dakika sonra arteriyel kan gazı örneği alın.</li>
		<li>PaO 2 /F I O 2 oranı (Horowitz indeksi)FIO21.0 ve PEEP > 5cmH2 O'da en az 5 dakika boyunca100 mmHg'nin altına inene kadar lavajları tekrarlayın. NOT: Hemodinamik dekomlanmayı önlemek için arteriyel pH'ı 7,25'in üzerinde tutacak lavajlar döneminde solunum hızı ayarlanmalıdır.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Bu hayvan modelinin yüzey aktif madde tükenmesi ve VILI kombinasyonuna dayandığını unutmayın. NOT: Lavajlar, PaO 2 /FIO2oranı 100'ün altında kaldıktan sonra durdurulacaktır 60 dakika sonra VILI5olmadan yüzey aktif madde yıkama modeli için daha önce yayınlandı.<ol>
<li>Hedeflenen P aO 2 /FIO2'yeulaşıldıktan sonra yüksek Tv/düşük PEEP havalandırma ile başlayın. NOT: Aksi takdirde, VILI ile birlikte aşırı agresif bir yüzey aktif madde tükenmesi çoklu organ yetmezliğine neden olur ve deneyi tehlikeye atacaktır. Tanımlanan birPA O2/FIO 2hedefli olduğundan, yüzey aktif madde tükenme süresi hayvanlar arasında değişir. 45 dakika ila 1,5 saat sürebilir.</li>
	</ol>
</li>
</ol>6. Yüksek gelgit hacmi / düşük PEEP (yüksek Tv / düşük PEEP) ile zararlı havalandırma
<ol><li>1.0'ın FIO 2'si olsun.</li>
	<li>Ventilatörü hacim garantili, basınç kontrollü bir havalandırma moduna ayarlayın.</li>
	<li>Pik inspiratuar basınç için alarm eşiğini 60 mbar'a çıkarın. NOT: Ventilatör 60 mbar'a kadar inspiratuar basınç uygulamalıdır, ancak daha yüksek olmamalıdır.</li>
	<li>Solunum hızını 12/dk'ya düşürin ve ilhamı son kullanma (I:E) oranına 1:1,5 olarak ayarlayın (2 s'lik bir ilham süresi ve 3 sn'lik bir son kullanma süresi ile sonuçlanır).</li>
	<li>Gelgit hacmini en az 2 dakika boyunca yavaşça 17 mL/kg bw'ye kadar artırın.<ol>
<li>60 mbar'a kadar inspiratuar basınca ulaşılırsa gelgit hacmini daha fazla artırmayın. NOT: Sınırlı inspiratuar basınç, yüzey aktif madde yıkamadan sonra akciğer hasarına bağlı olarak 17 mL/kg vücut ağırlığının altında gelgit hacmine neden olabilir. Gelgit hacminde ani bir artış barotrauma veya hemodinamik dekompsiasyona neden olabilir. Bu nedenle, gelgit hacimlerini birkaç dakika içinde yavaşça artırmak son derece önemlidir.</li>
	</ol>
</li>
	<li>PEEP'i 2 mbar'a düşürün.</li>
	<li>Hayvanı 2 saate kadar havalandırın (ventilatör ayarları ve akış eğrisi için Şekil 2'ye bakın). NOT: Yüksek gelgit hacimli havalandırma, hayvanın iyi oksijenlenmesine neden olur, ancak döngüsel neredeyse tam enflasyon ve deflasyon akciğerlerin yapısal yaralanmasına neden olur. İşe alım manevraları, eğilimli konumlandırma, yüksek PEEP vb. Ortaya çıkan yaralanma soruşturma boyunca tolere edilmelidir. Aşağıdaki deneye ve araştırma süresine bağlı olarak daha kısa bir yüksek Tv/düşük PEEP havalandırma süresi gerekebilir.</li>
</ol>7. Deney ve ötenazi sonu
<ol><li>Akciğer hasarının indüksiyonunu takip edecek deneysel protokolün tüm ölçümlerinin yapıldığından emin olun.</li>
	<li>Sürekli anesteziye ek olarak fentanil (en az 0,5 mg) enjekte edin ve en az 5 dakika bekleyin. Tiyopental (en az 1000 mg) hızlı bir şekilde merkezi hattı kullanarak en az 60 mmol potasyum enjekte edin.</li>
</ol>

<ol><li>Bellani, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epidemiology%2C+patterns+of+care%2C+and+mortality+for+patients+with+acute+respiratory+distress+syndrome+in+intensive+care+units+in+50+countries%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA%22%5BJournal%5D)">Epidemiology, patterns of care, and mortality for patients with acute respiratory distress syndrome in intensive care units in 50 countries.</a> JAMA. 315 (8), 788-800 (2016).</li>
<li>Ashbaugh, D. G., Bigelow, D. B., Petty, T. L., Levine, B. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+respiratory+distress+in+adults%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Acute respiratory distress in adults.</a> Lancet. 2 (7511), 319-323 (1967).</li>
<li>Ballard-Croft, C., Wang, D., Sumpter, L. R., Zhou, X., Zwischenberger, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large-animal+models+of+acute+respiratory+distress+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22The+Annals+of+Thoracic+Surgery%22%5BJournal%5D)">Large-animal models of acute respiratory distress syndrome.</a> The Annals of Thoracic Surgery. 93 (4), 1331-1339 (2012).</li>
<li>Lachmann, B., Robertson, B., Vogel, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+lung+lavage+as+an+experimental+model+of+the+respiratory+distress+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Anaesthesiologica+Scandinavica%22%5BJournal%5D)">In vivo lung lavage as an experimental model of the respiratory distress syndrome.</a> Acta Anaesthesiologica Scandinavica. 24 (3), 231-236 (1980).</li>
<li>Russ, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lavage-induced+surfactant+depletion+in+pigs+as+a+model+of+the+acute+respiratory+distress+syndrome+%28ARDS%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">Lavage-induced surfactant depletion in pigs as a model of the acute respiratory distress syndrome (ARDS).</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. (115), e53610(2016).</li>
<li>Pomprapa, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Artificial+intelligence+for+closed-loop+ventilation+therapy+with+hemodynamic+control+using+the+open+lung+concept%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Intelligent+Computing+and+Cybernetics%22%5BJournal%5D)">Artificial intelligence for closed-loop ventilation therapy with hemodynamic control using the open lung concept.</a> International Journal of Intelligent Computing and Cybernetics. 8 (1), 50-68 (2015).</li>
<li>Yoshida, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Continuous+negative+abdominal+pressure+reduces+ventilator-induced+lung+Injury+in+a+porcine+model%5BTitle%5D)+AND+%22Anesthesiology%22%5BJournal%5D)">Continuous negative abdominal pressure reduces ventilator-induced lung Injury in a porcine model.</a> Anesthesiology. 129 (1), 163-172 (2018).</li>
<li>Theisen, M. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ventral+recumbency+is+crucial+for+fast+and+safe+orotracheal+intubation+in+laboratory+swine%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">Ventral recumbency is crucial for fast and safe orotracheal intubation in laboratory swine.</a> Laboratory Animals. 43 (1), 96-101 (2009).</li>
<li>Seldinger, S. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Catheter+replacement+of+the+needle+in+percutaneous+arteriography%3A+A+new+technique%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Radiologica%22%5BJournal%5D)">Catheter replacement of the needle in percutaneous arteriography: A new technique.</a> Acta Radiologica. 39 (5), 368-376 (1953).</li>
<li>Kelly, C. R., Rabbani, L. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Videos+in+clinical+medicine.+Pulmonary-artery+catheterization%5BTitle%5D)+AND+%22The+New+England+Journal+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">Videos in clinical medicine. Pulmonary-artery catheterization.</a> The New England Journal of Medicine. 369 (25), 35(2013).</li>
<li>Forrester, J. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thermodilution+cardiac+output+determination+with+a+single+flow-directed+catheter%5BTitle%5D)+AND+%22American+Heart+Journal%22%5BJournal%5D)">Thermodilution cardiac output determination with a single flow-directed catheter.</a> American Heart Journal. 83 (3), 306-311 (1972).</li>
<li>Dos Santos Rocha, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physiologically+variable+ventilation+reduces+regional+lung+inflammation+in+a+pediatric+model+of+acute+respiratory+distress+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Respiratory+Research%22%5BJournal%5D)">Physiologically variable ventilation reduces regional lung inflammation in a pediatric model of acute respiratory distress syndrome.</a> Respiratory Research. 21 (1), 288(2020).</li>
</ol>

Tüm yazarlar hiçbir finansal veya başka bir çıkar çatışması açıklamaz.

Bu makalede, tekrarlanan akciğer lavajları ve havalandırma ile yüksek gelgit hacimleri, düşük PEEP ve akciğerlerin tam şişirilmesi / deflasyonu ile yüzey aktif madde tükenmesini birleştiren domuzlarda deneysel ARDS'nin indüksiyonu açıklanmaktadır. Bu kombinasyon, gaz değişiminde tekrarlanabilir ve karşılaştırılabilir bir bozulmaya ve bunun sonucunda ortaya çıkan hemodinamik uzlaşmaya neden olur, ancak akciğerlerin işe alınabilirliğini sınırlar. Böylece, bu model düşük işe alınabilirlik ile klinik ARDS'yi taklit eder ve y...

Akut solunum sıkıntısı sendromunun (ARDS) mortalitesi, Ashbough ve Petty tarafından 1967'deki ilk açıklamasından bu yana yoğun araştırmalara rağmen%40 1'in üzerindeki değerlerle yüksek kalır2. Doğal olarak, klinikte etik kaygılar ve altta yatan patolojilerin, ortam koşullarının ve yardımcı ilaçların standardizasyonunun olmaması nedeniyle yeni terapötik yaklaşımların araştırılması sınırlıdır, oysa hayvan modelleri standart koşullarda sistematik araştırmalara olanak sağlar.
Bu nedenle, deneysel ARDS, oleik asidin pulmo-arteriyel infüzyonu, bakteri ve endotoksinlerin intravenöz (yani) infüzyonu veya sepsis kaynaklı ARDS'ye neden olan cekal ligasyon ve delinme (CLP) modelleri gibi çeşitli yöntemler kullanılarak büyük hayvanlarda (örneğin domuzlar) veya küçük hayvanlarda (örneğin kemirgenler) indüklenmiştir. Ayrıca yanık ve duman soluma veya akciğer iskemisi/reperfüzyonu (I/R) kaynaklı doğrudan akciğer yaralanmaları3. Doğrudan akciğer hasarının sık kullanılan bir modeli, ilk olarak Lachmann ve ark. tarafından kobaylarda tanımlandığı gibi akciğer lavajları ile yüzey aktif madde tükenmesi4.
Yüzey aktif madde tükenmesi, gaz değişimi ve hemodinamik5'tehızla taviz veren son derece tekrarlanabilir bir yöntemdir. Önemli bir avantaj, klinik olarak kullanılan mekanik ventilatörler, kateterler ve monitörlerle araştırmayı destekleyen büyük türlerde yüzey aktif madde tükenmesi uygulama olasılığıdır. Bununla birlikte, yüzey aktif madde tükenme modelinin en büyük dezavantajı, yüksek hava yolu basınçları veya eğilimli konumlandırma gibi işe alım manevraları uygulandığında atelektatik akciğer bölgelerinin anında işe alınmasıdır. Bu nedenle, model, örneğin, uzun süreler için yüksek PEEP seviyelerine sahip otomatik havalandırmayı araştırmak için uygun değildir6. Yoshida ve arkadaşları, deneysel ARDS7'yiindüklemek için yüksek inspiratuar hava yolu basınçları ile yüzey aktif madde tükenmesi ve havalandırmanın bir kombinasyonunu tanımladı, ancak modelleri, tekrarlanan kan gazı örneklemesi ve sürüş basıncının kayan bir inpiratuar basınç ve PEEP tablosuna göre ayarlanması yoluyla önceden tanımlanmış bir koridorda kısmi oksijen basıncının(Pa O2)ayrıntılı bir şekilde korunmasını gerektirir.
Genel olarak, aşırı agresif bir yaralanmalı ventilasyona veya havalandırma rejiminin zahmetli, tekrarlanan bir şekilde ayarlanmasına sahip bir model, akciğerlerin yapısal hasar görmesine neden olabilir, bu da çok şiddetlidir ve daha sonra çoklu organ yetmezliği ile sonuçlanır. Bu nedenle, bu makale, uzun süre klinik olarak kullanılan ventilasyon parametreleri ile araştırmaları destekleyen deneysel ARDS'nin indüksiyonu için yüksek Tv / düşük PEEP ile kolayca uygulanabilir bir yüzey aktif madde tükenmesi ve yaralanmalı havalandırma modelinin ayrıntılı bir açıklamasını sunmaktadır.

<table><tbody><tr><td>Eve</td><td>Fritz Stephan GmbH</td><td></td><td>acil ventilatör</td></tr><tr><td>Kardiyak debiyi ölçmek için</td><td>oda termistörü</td><td>Baxter</td><td>93-505</td> içinden akış</tr><tr><td>Lider Cath Set</td><td>Vygon</td><td>1,15,805</td><td>arteriyel kateter</td></tr><tr><td>Mallinckrodt Trakeal Tüp Manşetli</td><td>Covidien</td><td>107-80</td><td>&nbsp; 8.0 mm ID</td></tr><tr><td>MultiCath3</td><td>Vygon</td><td>1,57,300</td><td>3 lümen santral venöz kateter, 20 cm uzunluk</td></tr><tr><td>Perkütan Kılıf Tanıtıcı Set</td><td>Oku</td><td>SI-09600</td><td>pulmoner arter kateteri için 4-6 Fr., 10 cm uzunluğunda tanıtıcı kılıf</td></tr><tr><td>Swan-Ganz Gerçek Boy Termodilüsyon Kateteri</td><td>Edwards</td><td>132F5</td><td>pulmoner arter kateteri, 75 cm uzunluğunda</td></tr><tr><td>üriner kateter</td><td></td><td></td><td>belirli bir model gerekli değildi</td></tr><tr><td>Vasofix Braun&uuml; le 20G</td><td>B Braun</td><td>4268113B</td><td>periferik ven kateteri</td></tr><tr><td>Vijilans I&nbsp;</td><td>Edwards</td><td></td><td>monitörü</td></tr></tbody></table>

yüzey aktif madde tükenmesi, akut solunum sıkıntısı sendromunun (ards) tekrarlanabilir bir modeliyle birlikte yaralanmalı havalandırma ile birleşti

Surfactant Depletion Combined with Injurious Ventilation Results in a Reproducible Model of the Acute Respiratory Distress Syndrome (ARDS)

Akut solunum sıkıntısı sendromunun (ARDS) karmaşık patomekanizmlerini incelemek için çeşitli hayvan modelleri mevcuttur. Bu modeller arasında oleik asidin pulmo-arteriyel infüzyonu, endotoksin veya bakterilerin infüzyonu, cekal ligasyon ve delinme, çeşitli pnömoni modelleri, akciğer iskemisi / reperfüzyon modelleri ve elbette yüzey aktif madde tükenme modelleri bulunur. Yüzey aktif madde tükenmesi pulmoner gaz değişimi ve hemodinamikte hızlı, tekrarlanabilir bir bozulma üretir ve % 0,9 salin (35 mL / kg vücut ağırlığı, 37 °C) ile tekrarlanan akciğer lavajları kullanılarak uyuşturulabilen domuzlarda indüklenebilir. Yüzey aktif madde tükenme modeli, klinik olarak uygulanan cihazlarla standart solunum ve hemodinamik izleme ile yapılan incelemeleri destekler. Ancak model nispeten yüksek bir işe alınabilirlikten muzdariptir ve yüksek hava yolu basınçlarına sahip havalandırma, atelektatik akciğer bölgelerini yeniden açarak yaralanmanın şiddetini hemen azaltabilir. Bu nedenle, bu model yüksek hava yolu basınçları kullanan ventilatör rejimlerinin araştırılması için uygun değildir. Solunum cihazı kaynaklı akciğer yaralanmasına (VILI) neden olmak için yüksek gelgit hacmi / düşük pozitif son ekspiratuar basınç (yüksek Tv / düşük PEEP) ile yüzey aktif madde tükenmesi ve yaralanmalı havalandırma kombinasyonu, ortaya çıkan akciğer hasarının işe alınabilirliğini azaltacaktır. Zamanında indüksiyonun avantajları ve deneysel araştırmaları yoğun bakım ünitesiyle karşılaştırılabilir bir ortamda yapma imkanı korunur.

PaO2/FIO2oranı tüm hayvanlarda yüzey aktif madde yıkama sırasında azaldı (Şekil 3). Ortaya çıkan hipoksemi, hiperkapni ve atelektazi pulmoner arter basıncında artışa neden oldu. Akciğer lavajlarının ayrıntıları zaten başka bir yerde açıklanmıştır6.
Yüzey aktif madde tükenmesi, PaO 2 /FIO2oranı, en az5 dakika boyunca 5 mbar PEEP ile mekanik havalandırmaya...

%0,9 tuzlu su (35 mL/kg vücut ağırlığı, 37 °C) ve düşük PEEP ile yüksek gelgit hacmi havalandırması kullanılarak yapılan yüzey aktif madde yıkama kombinasyonu, orta derecede ventilatör kaynaklı akciğer yaralanmasına (VILI) neden olur ve deneysel akut solunum sıkıntısı sendromu (ARDS) ile sonuçlanır. Bu yöntem, çeşitli ventilasyon stratejilerinin etkisini uzun süre incelemek için düşük / sınırlı işe alınabilirlik ile akciğer yaralanmasının bir modelini sağlar.

Yüzey Aktif Madde Tükenmesi, Akut Solunum Sıkıntısı Sendromunun (ARDS) Tekrarlanabilir Bir Modeliyle Birlikte Yaralanmalı Havalandırma ile Birleşti

Various animal models exist to study the complex pathomechanisms of the acute respiratory distress syndrome (ARDS). These models include pulmo-arterial ...

Yüzey aktif madde yıkamanın zararlı havalandırma ile kombinasyonu, özel yüzey aktif madde yıkamalı modellere kıyasla akciğer hasarının işe alınabilirliğini azaltır. Model tekrarlanabilir ve ek teknikler gerektirmez. Ayrıca, iki isabetli bir model gerçekçi klinik durumu yakından taklit eder.Bu modelin işe alınabilmesi, yeni ventilasyon stratejilerinin deneysel olarak araştırılmasını destekleyerek deneysel akciğer araştırmalarının klinik uygulamaya çevrilmesinin önünü açtır. Başlamak için, metin el yazmasında açıklandığı gibi mekanik ventilasyon parametrelerini ayarlayın ve 35 ila 40 milimetre cıva ve% 95'in üzerinde bir oksijen doygunluğu olan bir son ekspiratuar kısmi basıncı hedef alın Anesteziyi korumak için sürekli intravenöz bir tiyopenton ve fentanil infüzyonu kullanın ve gerekirse bir kas gevşetici verin. Dış juguler damarı merkezi bir venöz kateterle kanüle edin ve pulmoner arteriyel kateterin indeksleyici kılımını aynı damara yerleştirin.Daha sonra, invaziv kan basıncı takibi için femoral arteri kanvaslatın. Dönüştürücüleri, arter hattı için sıfır milimetre cıva ve 200 milimetre cıva ve merkezi venöz hat için 50 milimetre cıva olan atmosfere karşı kalibre edin ve arteriyel katetere ve merkezi venöz hatta bağlayarak izlemeye başlayın. Pulmoner arter kateterini basınç dönüştürücü sistemine bağlayın ve dönüştürücünün atmosfere ve 100 milimetre cıvaya karşı kalibresini alın.Daha sonra, pulmoner arter kateterini, kılıf uzunluğuna bağlı olarak 10 ila 15 santimetre boyunca sönmüş bir balonla indeksleyici kılıftan geçirin. Balon kılıfı terk ettikten sonra, basıncı izlerken onu şişirin ve pulmoner arter kateterini daha da ilerletin. Monitörde sağ kulakçık, sağ ventrikül ve pulmoner arter basınç dalgaları göründüğünde pulmoner arter kateterini öne doğru itin ve pulmoner kılcal kama basınç dalgası görüldüğünde durun.Daha sonra, son kullanma tarihinde pulmoner kılcal kama basıncını kaydedin ve balonu söndürün. Metin el yazmasında açıklanan basınç parametrelerini hesaplayın ve veri kümesini tamamlamak için gerekli solunum ayarlarını ve ölçümlerini kaydedin. Hayvanı bir ilham verici oksijenin bir kısmıyla havalandırın, ardından hayvanı ventilatörden çıkarın.Endotrakeal tüpe bağlı bir huni kullanarak akciğerleri önceden ısıtılmış salinle doldurun. Ortalama arteriyel basınç 50 milimetre cıvanın altına düşerse durun. Huniyi zemin seviyesine indirerek lavaj sıvısını boşaltın ve dalgayı izleyin.Oksijenlenme için hayvana solunum cihazına yeniden bağlanın ve hayvan iyileşene kadar bekleyin, ardından Horowitz indeksi 100 milimetre cıvanın altına inene kadar lavajları bir ilham verici oksijenin bir kısmında en az beş dakika ve beş milibarın üzerinde pozitif bir son ekspirasyon basıncı ile tekrarlayın. Her lavajı takip ettikten beş dakika sonra arteriyel kan gazı örneği alın. İlham alan oksijenin fraksiyonunu bir arada tutun ve ventilatörü hacim garantili, basınç kontrollü havalandırma moduna ayarlayın.Pik inspiratuar basınç için alarm eşiğini 60 milibara çıkarın. Solunum hızını düşürün ve ilham-son kullanma oranını ayarlayın, ardından gelgit hacmini en az iki dakika boyunca kilogram vücut ağırlığı başına 17 mililitreye kadar yavaşça artırın. 60 milibarlık bir inspiratuar basınca ulaşılırsa gelgit hacmini daha fazla artırmayın.Pozitif uç maruz kalma basıncını iki milibara düşürün ve hayvanı iki saate kadar havalandırın. Horowitz indeksi tüm hayvanlarda yüzey aktif madde yıkama sırasında azaldı, ancak işe alım manevrası, yüzey aktif madde yıkamadan sonra oksijenlenmede önemli bir artışa neden oldu. İki saatlik yaralanmalı havalandırma, gaz değişimi ve ortalama pulmoner arteriyel basınç açısından akciğer işe alım kabiliyetini azalttı.Gaz değişim parametreleri döngüsel işe alım nedeniyle yüksek gelgit hacimleri ile iyileştirilirken, yüksek intratorasik basınçlar ve hiperkapni nedeniyle ortalama pulmoner arteriyel basınç yükselmiştir. Akciğerlerin bilgisayar tomografik görüntülemesinde, havalandırma sırasında akciğerin bağımlı bölgelerinde geniş bir atelektaz, altı milibar pozitif uç ekspiratuar basıncı ile, havalandırma büyük ölçüde 15 milibar pozitif uç ekspiratuar basınca yükseltildiğinde çözüldü. Bununla birlikte, her yerde bulunan önemli zemin camı opaklıkları çözülmedi.15 milibar pozitif uç ekspiratuar basınç ile gözlenen alveoler opaklıklar akciğerlerin yapısal hasarını gösterdi. Akciğerlerin ölüm sonrası muayenesinde de gözlendiler. Bu protokolü denerken, yapısal akciğer hasarı alınamadığı ve yaralanma çok genişse bir hayvan erken ölebileceği için yaralanmalı havalandırma süresini ayarlamak önemlidir.Yüzey aktif madde tükenmesi ve zararlı ventilasyonun kombinasyonu, yüksek ventilatör basınçlı havalandırma modları gibi atelektatik akciğer bölgelerinin hızlı bir şekilde işe alınmasıyla sonuçlanan tedavilerin araştırılmasını destekler.

surfactant-depletion-combined-with-injurious-ventilation-results

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

anestezi domuzlarda tekrarlanan akciğer lavaj insan akut solunum sıkıntısı sendromu (ARDS) önemli yönlerini benzeyen akciğer hasarı neden olur. Bu amaçla, akciğerler, art arda 37 ° C'de% 0.9 tuzlu su ile yıkanır. Protokolün amacı, ARDS araştırma için gaz değişimi ve hemodinamik tekrarlanabilir hafifletme olduğunu.

Akut Solunum Sıkıntısı Sendromu Modeli itibariyle Domuzların lavaj kaynaklı Surfaktan tükenmesi (ARDS)

Bu protokol, insanlarda gözlenen asit pnömonisinin patogenezine yakın olan bir farede akut akciğer hasarına neden olur. Maksimum akut ölümcül olmayan düşük pH'lı akciğer hasarı oluşturuyoruz ve çevresel basınç salınımı ile birlikte açık bir trakeostomi kullanarak kemirgen-insan anatomik solunum yapısındaki farklılıkları açıklıyoruz.

Akut Akciğer Hasarı Açık Trakeostomi Gastrik Asit Aspirasyon Fare Modeli Maksimal Akut Ölümcül olmayan Akciğer Hasarı Sonuçlar

Bu makalede, biz domuz akut akciğer yaralanmalara oleik asit Merkezi venöz enjeksiyonu ile ikna etmek için bir iletişim kuralı mevcut. Bu akut respiratuar distress Sendromu (ARDS) eğitim için kurulan bir hayvan modelidir.

Oleik asit enjeksiyon domuzlarda Akut Respiratuar Distress Sendromu için bir Model olarak

Farelerde sol akciğere selektif bronşiyal asit instillasyonu, gastrik asit aspirasyonu ile indüklenen insan akut solunum sıkıntısı sendromunu (ARDS) modelleyen tek taraflı ve kendi kendine sınırlı akut akciğer hasarına yol açar.

Tek Taraflı Bronşiyal Asit İnstillasyonu ile Kendi Kendine Sınırlı Akut Akciğer Hasarı Modeli

Solunan yoğun bakım sedasyonu için kullanılan bir cihaz aracılığıyla halojenli ajanlar, izofluran ve sevofluran ile sedasyon alan domuz yavrularında hidroklorik asit kaynaklı akut solunum sıkıntısı sendromu (ARDS) modelini tarif ediyoruz. Bu model, halojenli ajanların akciğer yaralanması ve onarımı üzerindeki biyolojik mekanizmalarını araştırmak için kullanılabilir.

Akut Solunum Sıkıntısı Sendromunun Porcine Modelinde Yoğun Bakım Ünitesi Tipi Cihazla Halojenli Ajan Doğumu

Mevcut protokol, akut solunum sıkıntısı sendromunu (ARDS) taklit etmek için oleik asit kullanan farelerde bir akciğer hasarı modelini açıklamaktadır. Bu model ödem üzerindeki inflamatuar mediyatörleri arttırır ve akciğer kompliyansını azaltır. Oleik asit, tuz formunda (oleat) kullanılır, çünkü bu fizyolojik form emboli riskini ortadan kaldırır.

Oleik Asit Kaynaklı Akut Solunum Sıkıntısı Sendromunun Fare Modeli

Bu el yazması, farelerde enfeksiyöz bir pnömoni modelinin oluşturulmasını ve bakteri yetiştirme ve intratrakeal damlatma yöntemleri ile birlikte yaralanma çözünürlüğünün ilgili karakterizasyonunu açıklamaktadır. Bağışıklık ortamını değerlendirmek için yüksek boyutlu akış sitometrisi kullanan yeni bir yaklaşım da açıklanmaktadır.

Pnömoni Çözünürlüğünü Değerlendirmek için Deneysel Model

Anestezi uygulanmış yetişkin bir domuzun pulmoner arterine sürekli olarak oleik asit infüze etmek, akut solunum yetmezliğine neden olarak akut solunum dekompansasyonu sırasında kontrollü deneyler yapılmasını sağlar.

Sürekli Oleik Asit İnfüzyonu ile Akut Solunum Yetmezliğinin Domuz Modeli

Bu protokol, bronkopulmoner displazinin moleküler tetikleyicilerinin anlaşılmasını kolaylaştırmak ve terapötik translasyonu geliştirmek için yetersiz yüzey aktif madde miktarı, hiperoksi, yüksek basınçlı ventilasyon ve inflamasyon dahil olmak üzere erken akciğerde meydana gelen erken patojenik olayları modelleyen akut akciğer hasarının yenidoğan domuz yavrusu modelinin geliştirilmesini açıklar.

Prematüre Bebek Akciğerlerinin Erken Ortamını Yeniden Yaratan Yenidoğan Domuz Yavrusu Akut Akciğer Hasarı Modelinin Geliştirilmesi

Ventilatöre bağlı akciğer hasarı için bir fare modeli akut akciğer hasarı incelemek için önemli bir...

Farelerde Akut Akciğer Hasarı tetikleyebilecek Basınç Kontrollü Havalandırma

Keşfedin, yüzey aktif madde tükenmesi ve yaralanmalı havalandırma ile domuzlarda ARDS modeli oluşturma yöntemini. Bu model, yoğun bakım için yeni ventilasyon stratejilerinin araştırılmasına olanak tanır.

Yüzey Aktif Madde Tükenmesi, Akut Solunum Sıkıntısı Sendromunun (ARDS) Tekrarlanabilir Bir Modeliyle Birlikte Yaralanmalı Havalandırma ile Birleşti (Video) | JoVE Journal

Yüzey Aktif Madde Tükenmesi, Akut Solunum Sıkıntısı Sendromunun (ARDS) Tekrarlanabilir Bir Modeliyle Birlikte Yaralanmalı Havalandırma ile Birleşti

Daha fazla video keşfet