Name: Oksijene Bağlı Retinopati Fare Modelinde Retina Damarlarının Dinamik Büyümesinin İzlenmesi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-04-02T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 32 s
Description: Öğrenin, fare retinası izolasyonu ve immünofloresan boyama yöntemiyle oksijene bağlı retinopati modelinde damar değişikliklerini incelemeyi. Bu protokol, her fareyi kendi kontrolü olarak kullanarak retinal bütünlüğü korur ve sonuçların karşılaştırılabilirliğini artırır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Laboratuvarımızdan ve Zhongshan Oftalmik Merkezi Oftalmik Hayvan Laboratuvarından tüm üyelere teknik yardımları için teşekkür ederiz. Ayrıca deneysel destek için Prof. Chunqiao Liu'ya teşekkür ederiz. Bu çalışma, Çin Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı'ndan (NSFC: 81670872; Pekin, Çin), Guangdong Eyaleti Doğa Bilimleri Vakfı, Çin (Hibe No.2019A1515011347) ve Zhongshan Oftalmik Merkezi'ndeki Devlet Anahtar Oftalmoloji Laboratuvarı'ndan Yüksek Düzey hastane inşaatı projesi (Hibe No. 303020103; Guangzhou, Guangdong Eyaleti, Çin).

Farelerin kullanımını içeren tüm prosedürler, Zhongshan Oftalmik Merkezi, Sun Yat-sen Üniversitesi, Çin'in hayvan deney etik komitesi (yetkili numara: 2020-082) tarafından ve Zhongshan Oftalmik Merkezi Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi'nin onaylanmış kılavuzlarına ve Görme ve Oftalmolojide Araştırma Derneği (ARVO) Oftalmik ve Görme Araştırmalarında Hayvanların Kullanımı Beyanı'na uygun olarak onaylanmıştır.
1. Fare OIR modelinin indüksiyonu
<ol><li>Gözlerin doğuştan malformasyon oranı daha düşük olan fareler kullanın, örneğin C57BL / 6J fareler ve bunları erkek / dişi = 1: 2 oranında çiftleştirin. Yavruları aynı gün doğdurun ve P7'de OIR modelini indüklemeye başlayın. Modellemeden önce fare yavrularının vücut ağırlığını kesinlikle kaydedin. NOT: Doğum gününü P0 olarak not edin. Her farenin ağırlığını düzenli olarak kaydedin. Yenidoğan yavruların vücut ağırlığı, OIR'nin indüksiyonu sırasında çok önemlidir, çünkü farklı durumlardaki farelerin oksijene duyarlılığı farklıdır. Karşılaştırılabilir sonuçlar elde etmek için yavruları P7'de 5 g'dan fazla hariç tutun.</li>
	<li>Emziren anneler ve yavruları için, sıcaklığı 23 ° C ± 2 ° C'ye ayarlamak, nemi% 40 -% 65 arasında kontrol etmek, her gün 12 saat ışık ve 12 saat karanlığı değiştirmek, yuvalama için kafese biraz pamuk yünü eklemek, yeterli sterilize edilmiş yiyecek ve su sağlamak ve bunları ayrı ayrı havalandırılan kafeslerde (IVC) tutmak gibi uygun bir yaşam ortamı sağlayın.</li>
	<li>Odanın içindeki nem ve sıcaklık seviyesini izleyin. Nemi %40 ila %65 arasında kontrol edin ve sıcaklığı 23 °C ± 2 °C'de tutun.</li>
	<li>Oksijen sensörleriyle oksijen beslemesini kontrol edin, oksijen seviyesini %75'te sabit tutun ve oksijen akış hızını 0,5-0,75 L/dak'da kontrol edin. Aşırı CO2'yi emmek ve CO2 değerlerini% 3'ün altında tutmak için odanın dibine 50 g soda kireci koyun22.</li>
	<li>Emziren annelerin yuva kurma davranışı, yavrularını ısırma ve laktasyonu günde en az bir kez reddetme gibi davranışlarını izleyin. Zayıf anneliği olan emziren anneleri ortadan kaldırın.</li>
	<li>P7 yavrularını (erkek ve dişi) ve emziren annelerini, oksijen seviyesinin P12'ye 5 gün boyunca% 75 olduğu bir oksijen odasına yerleştirin. Model indüksiyonu döneminde odanın gereksiz yere açılmasını önleyin. Emziren annelerin hiperoksi sırasında akciğer hasarı nedeniyle ölmesi durumunda, değiştirme için ekstra taşıyıcı anneler olduğundan emin olun. NOT: Deneyin karşılaştırılabilirliğini sağlamak için, sayıyı her anne için 6-8 yavru ile sınırlandırın. Bazı emziren annelerin ölümüne neden olan potansiyel oksijen toksisitesi sorununa dikkat edin. Emziren annelerde hiperoksik akciğer hasarı belirtileri, bunlarla sınırlı olmamak üzere, dalgalanan solunum hızı, azalmış aktivite ve azalmış beslenmeyi içerir. Yukarıdaki fenomen ortaya çıktığında, emziren anneyi mümkün olan en kısa sürede% 1 pentobarbital sodyum (50 mg / kg) ile ötenazi yapın. Bazı taşıyıcı anneleri hazırlayın, örneğin, 129S1 / SvImJ değiştirme için ve bunları yalnızca gerekirse kullanın. Emziren annelerin rutin olarak değiştirilmesi önerilmez, çünkü bu bir oksijen odasının sık sık açılmasına yol açacak ve kararsız oksijen seviyelerine ve maternal saldırganlığa neden olacaktır.</li>
	<li>Yavruları ve emziren annelerini P12'deki oda havasına geri getirin ve tüm yavruların ağırlığını P17'ye kadar sürekli izleyin. Her deney grubunun benzer bir ağırlık dağılımına sahip olduğundan emin olmak için yavruları ağırlığa göre gruplandırın.</li>
</ol>2. Retinal bütün montajların hazırlanması ve immünofloresan boyama
<ol><li>Yavruların vücut ağırlığını kaydedin. Yavruları aşırı dozda anestezik (% 1 pentobarbital sodyum 50 mg / kg) veya CO2 inhalasyonu ile feda edin. Gerekirse servikal çıkık ve bilateral torakotomi gibi diğer ötenazi yöntemleri kullanılabilir.</li>
	<li>Göz küreleri ve orbital doku arasındaki bağlantıyı serbest bırakmak için kavisli makas kullanın. Ardından, göz küresinin arka kısmına kavisli forseps koyun, optik siniri sıkıştırın ve gözü yörüngeden hızla kaldırın. Saçları ve kanı göz kürelerinin yüzeyinden çıkarmak için göz kürelerini önceden soğutulmuş 1x fosfat tampon salin (PBS) içinde yıkayın.</li>
	<li>Temizlenmiş göz kürelerini% 4 paraformaldehit (PFA) ile doldurulmuş 2 mL'lik bir mikrosantrifüj tüpüne yerleştirin ve oda sıcaklığında 15 dakika boyunca dakikada 12-15 devir (rpm) hızında bir çalkalayıcı üzerinde inkübe edin (ilk fiksasyon). DİKKAT: Paraformaldehitin alerjenik, genellikle toksik ve aşırı derecede sitotoksik olduğu bilinmektedir. Güvenlik talimatlarını kesinlikle izleyin ve soluma ve cilt temasından kaçının.</li>
	<li>Bir kültür kabı kullanın ve orta kısma 1x PBS'lik bir damla koyun ve aşağıdaki adımları diseksiyon mikroskobu altında gerçekleştirin ve bu damlaya bir göz küresi yerleştirin. Göz küresini bir çift forseps ile tutun ve 1 mL'lik bir şırınga iğnesi kullanarak kornea limbusunda korneayı dikkatlice delin. Makasın ucunu bu deliğe yerleştirin ve kornea limbus boyunca korneayı dikkatlice kesin. Retinayı kesmemeye dikkat edin.</li>
	<li>İris ve lensi bir çift forseps ile çıkarın. Daha sonra kalan vizör adaptörünü% 4 PFA'ya yerleştirin ve oda sıcaklığında 45 dakika daha çalkalayıcı üzerinde 12-15 rpm hızında (ikincil sabitleme) tekrar sabitleyin.</li>
	<li>Bir kültür tabağı kullanın ve orta kısma 1x PBS'lik bir damla koyun. Sabit göz küresini bu damlaya yerleştirin. Göz küresini bir çift forseps ile tutun. İki forseps kullanarak retina ve sklera tabakalarını nazikçe ayırın. Makasın ucunu retina ve sklera tabakaları arasına yerleştirin ve sklerayı optik sinire doğru kesin. Sklerayı retinadan soyun ve retina kabını elde edin. NOT: Arka kabı forseps ile optik sinir tarafından tutun, ardından optik sinir başındaki skleraya bastırmak için başka bir forsepsin kavisli ucunu kullanın ve retinayı serbest bırakmak için alternatif olarak retinayı ileri doğru süpürme hareketiyle hafifçe masaj yapın.</li>
	<li>Radyal hyaloid damarlar ve periferik retina arasındaki bağlantıyı serbest bırakmak için forseps kullanın, optik sinir kafasına yakın olan hyaloid damarların kökünü kelepçeleyin ve hyaloid damarları dikkatlice kesin.</li>
	<li>Retinal kabı aktarmak için ucu kesilmiş 2 mL'lik bir pipet kullanın. Retinal kabı 48 delikli bir plakada bir kuyucuğa yerleştirin ve oda sıcaklığında 1x PBS ile 3 x 5 dakika boyunca 12-15 rpm hızında bir çalkalayıcı üzerinde yıkayın.</li>
	<li>Retinal kabı, 4 ° C'de gece boyunca% 1 Triton X-100 (PBS'de) ve% 5 normal eşek serumundan (PBS'de) oluşan karışık bir çözelti içinde inkübe edin.<ol><li>Alternatif olarak, alternatif olarak retinaları oda sıcaklığında 1 saat boyunca bloke edin ve geçirgenleştirin. Bloke edici serumu sekonder antikorun kaynağına göre değiştirin.</li>
	</ol></li>
	<li>Retinal vaskülatürü İzolektin B4 kullanarak etiketliyorsanız, retinayı% 0.1 normal eşek serumu (400 μL) ve IsolectinB4-594 (1:400) ile 48 delikli bir plaka kuyusunda, 12-15 rpm hızında bir çalkalayıcıda 4 ° C'de gece boyunca inkübe edin. NOT: Kan damarlarını CD31 gibi diğer belirteçlerle etiketliyorsanız veya diğer hücreleri etiketliyorsanız, bunları etiketlemek için spesifik birincil antikorlar kullanın.</li>
	<li>Retinayı 1:100-1:500 spesifik primer antikorlarla (400 μL% 0.1 normal eşek serumunda) 4 ° C'de 48 saat boyunca 12-15 rpm hızında bir çalkalayıcıda inkübe edin. (isteğe bağlı)</li>
	<li>Oda sıcaklığına döndükten sonra, retinayı 12-15 rpm hızında bir çalkalayıcıda 3 x 20 dakika boyunca% 0.1 PBST (PBS'de% 0.1 TritonX-100) ile yıkayın.</li>
	<li>Retinayı 1:1.000 sekonder antikor (400 μL % 0.1 normal eşek serumunda) ile gece boyunca 4 ° C'de 12-15 rpm hızında bir çalkalayıcıda inkübe edin. (isteğe bağlı)<ol><li>Alternatif olarak, retinayı oda sıcaklığında 1 saat boyunca yüksek afiniteli ikincil antikorlarla inkübe edin.</li>
	</ol></li>
	<li>Çekirdeği etiketlemek için retinayı oda sıcaklığında DAPI (1:1.000) ile 20-25 dakika boyunca inkübe edin. NOT: Ön deneyde adım 10-11 ve 13-14'te kullanılan tüm antikorlar için optimum seyreltme oranlarını test edin.</li>
	<li>Retinayı, oda sıcaklığında 12-15 rpm hızında bir çalkalayıcıda% 0,1 PBST ile 3 x 30 dakika boyunca yıkayın.</li>
	<li>Retina kabını, açıklığı yukarı bakacak şekilde temiz bir slayda aktarın. Retinayı optik sinir kafasından yaklaşık 1-1,5 mm uzağa keserek retinayı periferikten merkeze saat 3, 6, 9 ve 12 pozisyonlarında radyal olarak kesin.</li>
	<li>Retinayı üç kez durulamak için birkaç damla 1x PBS ekleyin. Retinayı kurutmak ve düzleştirmek için hava yoluyla döşenen kağıt kullanın. Kapak kaymasının ortasına bir damla montaj ortamı ekleyin (bkz. Malzeme Tablosu) ve damlacığın çapı kapak kaymasının yarısına yükselene kadar eklemeyi bırakın. Kapak kapağını hızla ters çevirin ve yayılmış retinanın üzerine yerleştirin. Kabarcık oluşturmaktan kaçının.</li>
	<li>Retinal düz montajların görüntülerini çekin veya slaytları 4 °C'de saklayın ve ışıktan koruyun.</li>
</ol>3. Retinal düz montajların analizi ve nicelleştirilmesi
NOT: OIR fare modeli için, araştırmacılar genellikle P12-P25 sırasında merkezi retinal vasküler tıkanıklık ve periferik retinal patolojik neovaskülarizasyon alanını kaydederler. Önceki çalışmalar, retinanın merkezi avasküler alanının P12'de maksimuma ulaştığını ve yavaş yavaş P13'ten P17'ye küçüldüğünü göstermiştir; Aynı zamanda, OIR farelerinin retinası, P1722,29 civarında neovaskülarizasyon alanının zirvesine ulaşır. P17'den itibaren neodamarlar yavaş yavaş geriler ve fonksiyonel damarlar avasküler bölgeye doğru yeniden büyür. Retinal vaskülatür temel olarak P2533'te normale döner.
<ol><li>10x objektif lensle floresan mikroskopla retinal düz montajların görüntülerini alın ( Malzeme Tablosuna bakınız). İlk olarak, DAPI kanalını seçin ve optik sinir kafasını görme alanının ortasına ayarlayın. Ardından, diğer kanalları ayarlayın ve retinanın yüzeysel vaskülatürüne odaklanın. Bir fotoğraf yazılımında Kutucuklar'ı işaretleyin (bkz. Malzeme Tablosu) ve dikilmesi gereken fotoğraf sayısını ayarlayın. Tüm retinayı yakalamak için Deneyi Başlat'a tıklayın.</li>
	<li>İmmünofloresan boyama sonrası vazo-obliterasyon (VO) ve neovaskülarizasyon (NV) alanını ölçmek için bir görüntü işleme programı kullanın (bakınız Malzeme Tablosu).<ol><li>İlk olarak, Sihirli Değnek Aracı'na tıklayın ve parlaklık farkına göre uygun bir tolerans ayarlayın ve imleci arka plana taşıyın ve fareyi tıklayın. Ardından, retinanın temel bir taslağını elde etmek için Ters Seç'i seçin. Retinanın ayrıntılarını daha da özetlemek için Kement Aracı'nı kullanın. Histogram işlevini kullanarak, tüm retinanın piksel değerini kaydedin ve bir yere yazın veya bir veritabanı programında bir tablo oluşturun.</li>
		<li>Retina görüntüsünü dört kadrana bölün. Her çeyrekte, VO alanını çizmek için Kement Aracı'nı kullanın (Şekil 2A-C) ve NV alanını seçmek için Sihirli Değnek Aracı'nı kullanın (Şekil 2D-F). Histogramdaki piksel bilgileri sayesinde, VO ve NV'nin tüm retinaya piksel oranını, yani VO veya NV alanının tüm retinaya göre yüzdesini hesaplayın. NOT: Ayrıca, derin öğrenme sinir ağları (http://oirseg.org/) kullanılarak OIR görüntülerindeki VO ve NV alanlarının nicelleştirilmesi için araştırmacılar için güvenilir ve zaman kazandıran bir yol sağlayan veniceleme standardını birleştiren açık kaynaklı ve tam otomatik bir boru hattı da vardır 34.</li>
	</ol></li>
	<li>Piksel bilgilerini, sonraki analizler için uygun olan bir e-tablo tablosuna kaydedin.</li>
</ol>4. Floresein fundus anjiyografi (FFA) ile in vivo görüntüleme
NOT: OIR fareleri için, hem FITC perfüzyonu hem de immünofloresan boyama, deney hayvanlarının ölümü nedeniyle yalnızca bir kez kullanılabilir. Bununla karşılaştırıldığında, FFA'nın avantajlarından biri, in vivo35,36 gelişimi ve patolojik durumu sırasında fare retina damarlarının dinamik değişikliklerinin gözlemlenmesidir.
<ol><li>Anesteziden önce yavruları tartın.</li>
	<li>30-50 mg / kg'lık bir dozda% 0.3 pentobarbital sodyumun intraperitoneal enjeksiyonu ile yavruları anestezi altına alın. NOT: 1 ay içindeki fareler için, anestezik dozlara dikkat edin. Anestezinin neden olduğu farelerin ölümünü azaltmak için daha düşük konsantrasyonlarda ve anestezik dozlarında kullanın. Yavrular anestezi altına alındıktan sonra, vücut ısısını korumak için küçük bir ısıtma yastığı kullanın. Hipotermi sadece yavruların fizyolojik fonksiyonlarını etkilemekle kalmaz, aynı zamanda kristalinde değişikliklere yol açar ve katarakt gelişimini hızlandırır.</li>
	<li>Her yavru için 20 μL midriatik göz damlası (%0,5 tropikamid/tr + %0,5 fenilefrin hidroklorür) kullanın ve uzun süreli göz bebeği genişlemesi elde etmek için 5 dakika bekleyin (Şekil 3A,B).</li>
	<li>Anestezi uygulanan yavruları görüntüleme cihazının önüne getirin (bkz. Yavruları küçük bir ısıtma yastığı üzerinde tutun, yavruları sabit bir konuma getirin ve korneadaki nemi korumak için düzenli olarak yapay gözyaşları kullanın. Optik sinir kafasını ekranın ortasına ayarlamak için Kızılötesi Fundus Görüntüleme (IR) moduna tıklayın. NOT: Yavruların bir gözünü gözlemlerken, diğer gözü korumayı unutmayın. Korneanın kuruluk nedeniyle beyazlamasını önlemek için Hypromellose göz damlası kullanın.</li>
	<li>0.15 mL% 0.5 floresein sodyum tuzu çözeltisinin intraperitoneal enjeksiyonundan sonra, zamanlamaya başlamak için görüntüleme cihazının dokunmatik panelindeki FA düğmesine ve hemen Enjeksiyon düğmesine tıklayın. Retinanın kan dolaşımı venöz faza girdiğinde 3 dakika sonra görüntüleri kaydedin ve retinayı 6-8 dakikadan az olmamak üzere gözlemleyin. NOT: Floresein sodyum tuzu çözeltisinin intraperitoneal enjeksiyonundan sonra, yavruların derisi, mukozası ve idrarı belirgin sarımsı yeşil gösterir. Floreseinin çoğu yavrular tarafından bir gün içinde atılır. Floresein sodyumun intraperitoneal olarak her gün altı kez enjekte edilmesi önemli yan etkilere neden olmaz37.</li>
	<li>Optik sinir kafasını görüntü alma alanının merkezine doğru hareket ettirin ve merkezi retinanın ilk görüntüsünü alın. Ardından, optik sinir kafası görüntü yakalama alanının bir tarafının orta noktasına yerleştirilene kadar görüntüleme cihazının lensini yatay olarak gözün burun tarafına doğru hareket ettirin ve ikinci görüntüyü alın. Bu yöntemi kullanarak sırasıyla zamansal, superior ve inferior retinanın görüntülerini çekmeye devam edin (Şekil 3C). NOT: Regresyon aşaması gerçekleşirken 12 dakika içinde "Beş yönlü" görüntüler alın. Optik sinir kafasının alt görüntüdeki konumunun, lensin sınırlı açı ayarı nedeniyle kenar çizgisine düşmemesine izin verilir.</li>
	<li>Görüntüleri kaydedin ve dikiş için bir görüntü işleme programı kullanın.</li>
</ol>5. Floresein fundus anjiyografinin (FFA) görüntü işleme
<ol><li>Görüntüleme işleme programını açın ve siyah arka plana sahip yeni bir tuval oluşturmak için Dosyada Yeni'ye tıklayın (Şekil 4A).</li>
	<li>Arka plan katmanında önce merkezi retinanın görüntüsünü açın. Dosya'ya tıklayın ve ikinci resmi ekleyin. İkinci görüntünün opaklığını %60'a ayarlayın, iki görüntünün aynı bölümleri üst üste binene kadar ikinci görüntüyü taşıyın ve yeniden boyutlandırın. Serbest Dönüşüm ve Çarpıtma Modları Arasında Geçiş Yap düğmesine tıklayın ve gerekirse gemilerde ince ayarlamalar yapın. Ardından, ikinci görüntünün opaklığını tekrar %100'e çevirin (Şekil 4A,B).</li>
	<li>Aynı anda iki görüntü seçin ve Katmanları Otomatik Karıştır'a tıklayın. Karışım yöntemi olarak Panorama'yı kontrol edin ve aşağıdaki iki cümleyi seçin. Tamam'a tıklayın ve ilk iki görüntünün görüntü dikişini bitirin (Şekil 4C, D).</li>
	<li>İlk iki dikişli görüntüyü bir bütün olarak alın, üçüncü görüntüyü ekleyin ve karıştırmaya devam edin. Beş görüntünün dikişini tamamlamak için yukarıdaki yöntemleri tekrarlayın (Şekil 4E).</li>
	<li>FFA'nın farklı zaman noktalarındaki görüntülerini düzgün bir boyuta kesmek ve retinal vaskülatürün P15'ten P25'e hem normal hem de OIR yavrularında dinamik değişikliklerini gözlemlemek için Kırpma Aracı'nı kullanın.</li>
</ol>6. İstatistiksel analiz
<ol><li>Ortalama ± standart sapma (s.d.) olarak bugünkü değerler.</li>
	<li>İki bağımsız örneği karşılaştırmak için Öğrencinin t-testini kullanın. Birden fazla veri kümesini karşılaştırmak ve yaygın olarak kullanılan çoklu karşılaştırma testi olan Dunnett veya Tukey testi ile birleştirmek için Tek Yönlü ANOVA'yı kullanın.</li>
	<li>Normal olarak dağıtılmamış veriler için Mann-Whitney U testi veya Kruskal Wallis testi kullanın. P 0,05 < olduğunda önemli istatistiksel farklılıkları göz önünde bulundurun.</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyleri yoktur.

Farelerin OIR'ye duyarlılığı birçok faktörden etkilenir. Farklı genetik geçmişe ve suşlara sahip yavrular karşılaştırılamaz. BALB / c albino farelerde, damarlar VO bölgesine hızla yeniden büyür ve önemli ölçüde azalmış neovasküler tutamlar38 ile araştırmaya bazı zorluklar getirir. C57BL/6 farelerde, BALB/cJ fare suşu39,40 ile karşılaştırıldığında fotoreseptör hasarı artmıştır. Aynı şey farklı transgenik fare türleri için de geçerlidir<sup ...

Yeni patolojik damarların mevcut retinal damarlardan kaynaklandığı bir durum olarak tanımlanan retinal neovaskülarizasyon (RNV), genellikle retinanın iç yüzeyi boyunca uzanır ve vitreusa (veya bazı koşullar altında subretinal boşluğa) doğru büyür1. Prematüre retinopatisi (ROP), retinal ven tıkanıklığı (RVO) ve proliferatif diyabetik retinopati (PDR)2 dahil olmak üzere birçok iskemik retinopatinin ayırt edici özelliği ve ortak özelliğidir.
Çok sayıda klinik ve deneysel gözlem iskeminin retinal neovaskülarizasyonun ana nedeni olduğunu göstermiştir 3,4. ROP'ta, yenidoğanlar hayatta kalma oranlarını arttırmak için kapalı inkübatörlerde yüksek seviyeli oksijene maruz kalırlar ve bu da vasküler büyümenin durması için önemli bir itici güçtür. Tedavi yapıldıktan sonra, yenidoğanların retinaları nispeten hipoksik bir dönemyaşar 5. RVO'da santral veya dal retinal venlerin tıkanmasında başka durumlar da görülmekte ve PDR2'de mikroanjiyopatinin neden olduğu retinal kılcal damarların hasarı da gözlenmektedir. Hipoksi, vasküler endotelyal büyüme faktörü (VEGF) gibi anjiyojenik faktörlerin, hipoksiye bağlı faktör-1α (HIF-1α) sinyal yolu aracılığıyla ekspresyonunu arttırır ve bu da vasküler endotel hücrelerini hipoksik alana büyümeye ve yeni damarlar oluşturmaya yönlendirir 6,7.
ROP, preterm bebeklerde bir tür vasküler proliferatif retinopatidir ve retina hipoksisi, retinal neovaskülarizasyon ve fibröz hiperplazi10,11,12 ile karakterize çocukluk çağı körlüğünün önde gelen bir nedeni 8,9'dur. 1950'lerde araştırmacılar, yüksek oksijen konsantrasyonunun prematüre bebeklerin solunum semptomlarını önemli ölçüde iyileştirebileceğini bulmuşlardır13,14. Sonuç olarak, oksijen tedavisi o zamanlar prematüre bebeklerde giderek daha fazla kullanılmaya başlandı15. Bununla birlikte, preterm bebeklerde oksijen tedavisinin yaygın kullanımı ile eş zamanlı olarak, ROP insidansı yıldan yıla artmıştır. O zamandan beri, araştırmacılar oksijeni ROP'a bağladılar ve ROP ve RNV16'nın patogenezini anlamak için çeşitli hayvan modellerini araştırdılar.
İnsanlarda, retinal vaskülatür gelişiminin çoğu doğumdan önce tamamlanırken, kemirgenlerde retinal vaskülatür doğumdan sonra gelişir ve retinal vaskülatürdeki anjiyogenezi incelemek için erişilebilir bir model sistemi sağlar2. Araştırmanın sürekli ilerlemesiyle birlikte, oksijene bağlı retinopati (OIR) modelleri, iskemiye bağlı patolojik anjiyogenezi taklit etmek için önemli modeller haline gelmiştir. OIR modelinin çalışmasında belirli bir hayvan türü yoktur ve model, yavru kedi17, sıçan18, fare19, beagle köpek yavrusu 20 ve zebra balığı21 dahil olmak üzere çeşitli hayvan türlerinde geliştirilmiştir. Tüm modeller, erken retinal gelişim sırasında hiperoksiye maruz kaldıkları ve daha sonra normoksik ortama geri döndükleri aynı mekanizmayı paylaşırlar. Smith ve ark., fare yavrularını 5 gün boyunca P7'den hiperoksiye maruz bırakmanın, merkezi retinada aşırı bir damar regresyonu formuna neden olduğunu ve onları P12'deki oda havasına geri getirmenin, yavaş yavaş vitreus gövdesine doğru büyüyen neovasküler tutamları tetiklediğini gözlemlemiştir19. Bu, Smith modeli olarak da adlandırılan standartlaştırılmış bir OIR fare modeliydi. Connor ve ark. protokolü daha da optimize etti ve 2009 yılında VO (vazo-obliterasyon) ve NV (neovaskülarizasyon) alanını ölçmek için evrensel olarak uygulanabilir bir yöntem sağladı ve bu da model22'nin kabulünü ve kullanımını artırdı. OIR fare modeli, küçük boyutu, hızlı üremesi, net genetik arka planı, iyi tekrarlanabilirliği ve yüksek başarı oranı nedeniyle şu anda hala en yaygın kullanılan modeldir.
Farelerde, retinal vaskülarizasyon doğumdan sonra damarların optik sinir kafasından iç retinaya ora serrata'ya doğru büyümesiyle başlar. Normal retinal gelişim sırasında, ilk retinal damarlar doğum sırasında optik sinir başından filizlenir ve doğum sonrası 7 (P7) 23 civarında çevreye ulaşan genişleyen bir ağ (primer pleksus) oluşturur. Daha sonra damarlar derin bir tabaka oluşturmak, retinaya nüfuz etmek ve insan24'te olduğu gibi iç nükleer tabakanın (INL) etrafında laminer bir ağ oluşturmak için retinaya doğru büyümeye başlar. Üçüncü doğum sonrası haftanın (P21) sonunda, daha derin pleksus gelişimi neredeyse tamamlanır. OIR fare modeli için, hiperoksiye maruz kalma sırasında merkezi bölgedeki çok sayıda olgunlaşmamış vasküler ağın hızlı dejenerasyonu nedeniyle vasküler tıkanıklık her zaman merkezi retinada görülür. Bu nedenle, patolojik neovaskülarizasyonun büyümesi, perfüzyon dışı alanın ve vasküler alanın sınırı olan orta periferik retinada da meydana gelir. Bununla birlikte, insan retina damarları neredeyse doğumdan önce oluşmuştur. Prematüre bebeklere gelince, periferik retina hiperoksiye maruz kaldığında tamamen vaskülarize değildir25,26. Bu nedenle vasküler oklüzyon ve neovaskülarizasyon esas olarak periferik retinada görülür27,28. Bu farklılıklara rağmen, fare OIR modeli, iskemiye bağlı neovaskülarizasyon sırasında ortaya çıkan patolojik olayları yakından özetlemektedir.
OIR modelinin indüksiyonu iki faza ayrılabilir29: faz 1'de (hiperoksi faz), retinal vasküler gelişim, VEGF'deki düşüş ve endotel hücrelerinin apoptozu 24,30'un bir sonucu olarak kan damarlarının tıkanması ve gerilemesi ile durdurulur veya geciktirilir; faz 2'de (hipoksi faz), retinal oksijen kaynağı, nöral gelişim ve homeostaz19,31 için gerekli olan oda hava koşulları29 altında yetersiz kalacaktır. Bu iskemik durum genellikle düzenlenmemiş, anormal neovaskülarizasyon ile sonuçlanır.
Şu anda, yaygın olarak kullanılan modelleme yöntemi alternatif olarak yüksek / düşük oksijene maruz kalmaktadır: Anneler ve yavruları P7'de 5 gün boyunca% 75 oksijene maruz kalmaktadır, ardından P17, OIR fare modeli indüksiyonunun son noktası olankarşılaştırılabilir sonuçlar 22'yi gösterene kadar oda havasında 5 gün beklemektedir. (Şekil 1). ROP'u simüle etmenin yanı sıra, bu iskemi aracılı patolojik neovaskülarizasyon, diğer iskemik retina hastalıklarını incelemek için de kullanılabilir. Bu modelin ana ölçümleri, immünofloresan boyama veya FITC-dekstran perfüzyonu ile retinal düz montajlardan analiz edilen VO ve NV alanının ölçülmesini içerir. Her fare, ölümcül operasyon nedeniyle sadece bir kez incelenebilir. Günümüzde, vasküler regresyon ve patolojik anjiyogenez sürecinde retinal vaskülatürün dinamik değişikliklerini sürekli olarak gözlemlemek için birkaç yöntem vardır32. Bu yazıda, OIR model indüksiyonunun ayrıntılı bir protokolünü, retinal düz montajların analizini ve fareler üzerinde floresein fundus anjiyografi (FFA) iş akışını sunuyoruz ve bu da OIR fare modelinin iki aşamasında vasküler dinamik değişikliklerin daha kapsamlı bir şekilde anlaşılmasına yardımcı olacaktır.

<table><tbody><tr><td>1 mL steril şırınga</td><td>Solarbio</td><td>YA0550</td><td>Retinal düz montajların hazırlanması ve intraperitoneal enjeksiyonun 1 kez hazırlanması için</td></tr><tr><td>; Fosfat Tamponlu Salin (PBS)</td><td>Transgen Biotech</td><td>&nbsp; FG701-01</td><td>Retinal düz montajların hazırlanması için</td></tr><tr><td>2 ml Mikrosantrifüj Tüpü</td><td>Corning</td><td>MCT-200-C</td><td>Retinal düz montajların hazırlanması için</td></tr><tr><td>48 Kuyu Şeffaf TC ile Tedavi Edilmiş Çoklu Kuyu Plakaları</td><td>Corning</td><td>3548</td><td>Retinal düz montajların hazırlanması için</td></tr><tr><td>Yapıştırıcı mikroskop slaytları</td><td>Çeşitli</td><td></td><td>Retinal düz montajların hazırlanması için</td></tr><tr><td>Adobe Photoshop CC 2019</td><td>Adobe Inc. (İngilizce)</td><td></td><td>Görüntü analizi için</td></tr><tr><td>Karbondioksit gazı</td><td>Çeşitli</td><td></td><td>Kurban için</td></tr><tr><td>Kapak sürgüsü</td><td>Çeşitli Retinal</td><td></td><td>düz montajların hazırlanması için</td></tr><tr><td>Kavisli forseps</td><td>World Precision Instruments</td><td>14127</td><td>Retinal düz montajların hazırlanması için</td></tr><tr><td>DAPI boyama solüsyonu</td><td>Abcam</td><td>ab228549</td><td>Retinal düz montajlardaki çekirdeği etiketlemek için</td></tr><tr><td>Diseksiyon mikroskobu</td><td>Olmpus</td><td>SZ61</td><td>Retinal düz montajların hazırlanması için</td></tr><tr><td>Floresein sodyum</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F6377</td><td>in vivo görüntüleme</td></tr><tr><td>için Floresan Mikroskobu</td><td>&nbsp; Zeiss</td><td>AxioImager.Z2</td><td>Retinal düz montajların floresan görüntülerinin alınması için</td></tr><tr><td>Fluoromount-G Montaj ortamı</td><td>SouthernBiotech</td><td>&nbsp; 0100-01</td><td>Retinal düz montajların hazırlanması için</td></tr><tr><td>Hidroksipropil Metilselüloz</td><td>Maya</td><td>89161</td><td>in vivo görüntüleme için</td></tr><tr><td>İzolektin B4 594 antikoru</td><td>Invitrogen</td><td>I21413</td><td>Retinal düz montajlarda retinal vaskülatürü etiketlemek için</td></tr><tr><td>Fareler C57/BL6J</td><td>Jiangsu Eyaleti</td><td></td> GemPharmatech <td>OIR modeli indüksiyon için</td></tr><tr><td>Mikro diseksiyon makaslı düz bıçak</td><td>World Precision Instruments</td><td>503242</td><td>Retinal düz montajların hazırlanması için</td></tr><tr><td>No.4 düz forseps</td><td>World Precision Instruments</td><td>&nbsp; 501978-6</td><td>Retinal düz montajların hazırlanması için</td></tr><tr><td>Normal eşek serumu</td><td>Abcam</td><td>ab7475</td><td>Retinal düz montajların hazırlanması için</td></tr><tr><td>O2 sensörü</td><td>Çeşitli</td><td></td><td>O2</td></tr><tr><td>OxyCycler</td><td>Biospherix</td><td>A84XOV</td><td>OIR modeli indüksiyon</td></tr><tr><td>için Paraformaldehit (PFA)</td> <td>Sigma</td><td>P6148-1KG</td><td>Doku fiksasyonu için</td></tr><tr><td>Pentobarbital sodyum</td><td>Çeşitli</td><td></td><td>Anestezi için</td></tr><tr><td>Soda kireç</td><td>Çeşitli Oksijen</td><td></td><td>odasında fazla CO2 emmek için</td></tr><tr><td>SPECTRALIS HRA+OCT</td><td>Heidelberg</td><td>HC00500002</td><td>in vivo görüntüleme için</td></tr><tr><td>SPSS İstatistikleri 22.0</td><td>IBM</td><td></td><td>İstatistiksel analiz için</td></tr><tr><td>Tansference azaltıcı çalkalayıcı</td><td>Kylin-Bell</td><td>ZD-2008</td><td>Retinal düz montajların hazırlanması için</td></tr><tr><td>Doku kültürü kabı (Düşük ataşman)</td> <td>Corning</td><td>3261-20EA</td><td>Retinal düz montajların hazırlanması için</td></tr><tr><td>Transfer pipetleri</td><td>Çeşitli</td><td></td><td>Retinal düz montajların hazırlanması için</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>&nbsp; SLBW6818</td><td>Retinal düz montajların hazırlanması için</td></tr><tr><td>Tropicamide</td><td>Various</td><td></td><td>For in vivo görüntüleme</td></tr><tr>için<td>ZEN Görüntüleme Yazılımı</td><td>ZEISS</td><td></td><td>Görüntü alma ve dışa aktarma için</td></tr></tbody></table>

oksijene bağlı retinopati fare modelinde retina damarlarının dinamik büyümesinin İzlenmesi

Monitoring Dynamic Growth of Retinal Vessels in Oxygen-Induced Retinopathy Mouse Model

Oksijene bağlı retinopati (OIR), prematüre retinopatisi (ROP), proliferatif diyabetik retinopati (PDR) ve retinal ven tıkanıklığı (RVO) dahil olmak üzere iskemik retina hastalıklarında anormal damar büyümesini incelemek için yaygın olarak kullanılmaktadır. Çoğu OIR çalışması retinal neovaskülarizasyonu belirli zaman noktalarında gözlemler; Bununla birlikte, OIR ile ilişkili damar hastalıklarını anlamak için gerekli olan bir zaman seyri boyunca canlı farelerde dinamik damar büyümesi yeterince çalışılmamıştır. Burada, OIR fare modelinin indüksiyonu için adım adım bir protokol açıklıyoruz, potansiyel tuzakları vurguluyoruz ve immünofloresan boyama kullanarak vazo-obliterasyon (VO) ve neovaskülarizasyon (NV) alanlarını hızlı bir şekilde ölçmek için geliştirilmiş bir yöntem sunuyoruz. Daha da önemlisi, OIR fare modelinde floresein fundus anjiyografi (FFA) yaparak P15'ten P25'e canlı farelerde damar büyümesini izledik. FFA'nın OIR fare modeline uygulanması, damar yeniden büyümesi sırasında yeniden şekillendirme sürecini gözlemlememizi sağlar.

OIR fare modelinde, en önemli ve temel sonuç, VO ve NV alanının nicelleştirilmesidir. P7'den 5 gün boyunca hiperoksi ortamında yaşadıktan sonra, yavruların merkezi retinası en büyük perfüzyon dışı alanı gösterdi. 5 gün içinde hipoksinin uyarılması altında, retinal neovaskülarizasyon yavaş yavaş üretildi ve bu da normal damarları çevreleyen normal damarlardan daha yoğun bir şekilde floresan oldu. P17'den sonra, patolojik neovaskülarizasyonun floresan sinyali, retinanın yeniden şekillenmesiyle hızla gerilemiştir (<strong c...

Bu protokol, farelerin retinal düz montajlarının hazırlanması ve immünofloresan boyanması ve analizi için ayrıntılı bir yöntemi açıklamaktadır. Floresein fundus anjiyografinin (FFA) fare yavruları ve görüntü işleme için kullanımı da ayrıntılı olarak açıklanmaktadır.

Oksijene Bağlı Retinopati Fare Modelinde Retina Damarlarının Dinamik Büyümesinin İzlenmesi

Oxygen-induced retinopathy (OIR) is widely used to study abnormal vessel growth in ischemic retinal diseases, including retinopathy of prematurity (ROP), ...

Bu protokol, araştırmacıların farelerin retinalarını kolayca ayırmalarına ve OIR fare modelinin retina vaskülatüründeki dinamik değişiklikleri gözlemlemelerine yardımcı olabilir. Bu yöntemin temel avantajları, ayrılmış retinaların bütünlüğünün korunması ve her farenin kendi kontrolü olarak hizmet etmesine izin vermektir, bu da sonuçları daha karşılaştırılabilir hale getirir. Bu yöntemi ilk kez deneyen araştırmacılar, beş oryantasyon görüntülemesini yaparken zorlanabilirler, çünkü yavruları doğru pozisyona yerleştirmek biraz zordur.Retinal tam montaj için dokuyu toplamak üzere, göz kürelerini ötenazi C57-Black / 6 yavrusunun yörünge dokusundan ayırmak için kavisli makas kullanın. Ardından, kavisli forsepsleri göz küresinin arka kısmına yerleştirin, optik siniri sıkıştırın ve gözü yörüngeden hızla kaldırın. Yüzeydeki kılları ve kanı çıkarmak için göz kürelerini önceden soğutulmuş PBS'ye yerleştirin.Tüm göz küreleri toplandığında, temizlenen göz kürelerini% 4 paraformaldehit içeren iki mililitrelik bir mikrosantrifüj tüpüne aktarın ve oda sıcaklığında 15 dakika ve dakikada 12 ila 15 devir boyunca inkübe edin. Kuluçkanın sonunda, diseksiyon mikroskobu altında bir kültür kabının ortasına bir damla PBS ekleyin ve damlaya bir göz küresi yerleştirin. Göz küresini bir çift forseps ile tutarak, kornea limbusunda korneayı dikkatlice delmek için bir mililitrelik bir şırınga iğnesi kullanın.Bir çift makasın ucunu delinmeye yerleştirin ve retinayı kesmemeye dikkat ederek korneayı kornea limbus boyunca kesin. İris ve lensi çıkarmak için forseps kullanın ve kalan vizör adaptörünü, çalkalayıcı üzerindeki oda sıcaklığında 45 dakikalık bir inkübasyon için% 4 paraformaldehit içine yerleştirin. Kuluçkanın sonunda, sabit vizör adaptörünü yeni bir kültür kabının ortasındaki taze bir PBS damlasına yerleştirin.Vizör adaptörünü bir çift forseps ile tutarak, retina ve sklera tabakalarını nazikçe ayırmak için ikinci bir çift forseps kullanın. Makasın ucunu retina ve sklera tabakaları arasına yerleştirin ve sklerayı optik sinire doğru kesin. Retina kabını elde etmek için sklerayı retinadan soyun.Forseps kullanarak, radyal hyaloid damarlar ve periferik retina arasındaki bağlantıyı serbest bırakın. Retinal kabı, çalkalayıcı üzerindeki oda sıcaklığında PBS'de beş dakikalık üç yıkama için 48 delikli bir plakanın bir kuyucuğuna aktarmak için ucu kesilmiş iki mililitrelik bir pipet kullanın. Son yıkamadan sonra, bardağı% 1 Triton X-100 ve% 5 normal eşek serumunda PBS'de gece boyunca dört santigrat derecede inkübe edin.Retinal vaskülatürü izolektin B4 ile etiketlemek için, retinayı 48 delikli bir plakanın bir kuyucuğunda, 400 mikrolitrede% 0.1 normal eşek serumunda, bir çalkalayıcı üzerinde 4 santigrat derecede gece boyunca izolektin B4-594 ile desteklenmiş normal eşek serumunda inkübe edin. Gerekirse, aynı anda başka bir birincil antikor eklenebilir. Ertesi gün, retinayı çalkalayıcıda% 0.1 PBST'de üç adet 20 dakikalık yıkama ile yıkayın.Son yıkamadan sonra, numuneyi 20 ila 25 dakika boyunca DAPI ile etiketlemeden önce retinayı oda sıcaklığında bir saat boyunca uygun bir yüksek afiniteli ikincil antikor ile inkübe edin. Kuluçkanın sonunda, retinayı oda sıcaklığında% 0.1 PBST'de% 30 dakikalık üç yıkamayla çalkalayarak yıkayın. Son yıkamadan sonra, retina kabını açıklığı yukarı bakacak şekilde temiz bir slayta aktarın ve retinayı optik sinir kafasından bir ila 1,5 milimetreye kadar çevreden merkeze doğru saat üç, altı, dokuz ve 12 pozisyonlarında radyal olarak kesmek için mikroskopu kullanın.Retinayı kurutmak ve düzleştirmek için hava yoluyla serilmiş kağıt kullanmadan önce retinayı yıkama başına birkaç damla PBS ile üç kez durulayın. Damlacığın çapı kapak kaymasının yarısını kaplayana kadar kapak kaymasının ortasına bir damla montaj ortamı ekleyin. Ardından, kapak kayması montajını orta taraftan aşağıya doğru hızla yayılmış retinanın üzerine yerleştirin.Tüm retinal düz montajlar hazırlandıktan sonra, örnekler konfokal floresan mikroskopi ile görüntülenebilir. İn vivo görüntüleme için, uzun süreli göz bebeği genişlemesi elde etmek için 20 mikrolitre midriatik göz damlası ekleyin. Beş dakika sonra, yavruları görüntüleme cihazının önündeki küçük bir ısıtma yastığı üzerinde sabit bir konuma getirin.Kornealardaki nemi korumak için, görüntüleme prosedürü boyunca düzenli olarak yapay gözyaşları ekleyin. Ardından, optik sinir kafasını ekranın ortasına ayarlamak için cihazdaki Kızılötesi Fundus Görüntüleme'ye tıklayın. İntraperitoneal olarak 150 mikrolitre% 0.5 floresein sodyum tuzu çözeltisi enjekte edin ve zamanlayıcıyı başlatmak için görüntüleme cihazının dokunmatik panelindeki FA ve Enjeksiyon düğmelerini hemen tıklayın.Üç dakika sonra, retinanın kan dolaşımı venöz faza girdiğinde, merkezi retinanın ilk görüntüsünü elde edin. Optik sinir kafası görüntü alma alanının bir tarafının orta noktasına yerleştirilene kadar görüntüleme cihazının lensini yatay olarak gözün burun tarafına doğru hareket ettirin ve ikinci görüntüyü alın. Lensi hareket ettirmeye devam edin ve aynı şekilde zamansal, üst ve alt retinanın görüntülerini alın.Retinal görüntüleri uygun bir görüntüleme işleme programında işlemek için, Dosya menüsünü açın ve siyah arka plana sahip yeni bir tuval oluşturmak için Yeni'yi tıklatın. Merkezi retinanın görüntüsünü açın. Ardından, ikinci bir görüntü eklemek için Dosya'yı tıklayın.İkinci görüntünün opaklığını %60 olarak ayarlayın ve iki görüntü üst üste binene kadar görüntüyü taşıyın ve yeniden boyutlandırın. Serbest Dönüştürme ve Çarpıtma Modları Arasında Geçiş Yap'a tıklayın ve gerekirse gemilerde ince ayarlamalar yapın. Ardından ikinci görüntünün opaklığını tekrar %100'e ayarlayınHer iki görüntüyü de seçin ve Katmanları Otomatik Karıştır'ı tıklatın.Karışım yöntemi olarak Panorama'yı işaretleyin ve ayrıca Kesintisiz Tonlar ve Renkler ve İçeriğe Duyarlı Dolgu Şeffaf Alanlar için kutuları işaretleyin. İlk iki görüntünün dikişini tamamlamak için Tamam'ı tıklatın. Ardından, üçüncü görüntüyü ekleyin ve tek bir retinadan gelen görüntülerin beşi de dikilinceye kadar gösterildiği gibi bu görüntüyü ilk iki görüntüye dikin.Analizden elde edilen tüm görüntüler işlendiğinde, farklı gelişimsel zaman noktalarında retinal vaskülatür dinamiklerindeki değişikliklerin gözlemlenmesini kolaylaştırmak için FFA görüntülerini eşit bir boyuta kırpmak için Kırpma Aracı'nı kullanın. Hiperoksiye beş gün maruz kaldıktan sonra, doğum sonrası gün 12 yavrularının merkezi retinaları büyük bir perfüzyon dışı alan gösterir. Beş günlük hipoksik koşullara transfer edildikten sonra, retinalar yavaş yavaş neovaskülarize olur ve çevredeki normal damarlarda gözlenenden daha güçlü floresan sinyalinde bir artış gösterir.Postnatal 17. günden sonra patolojik neovaskülarizasyon hızla geriler ve retina postnatal 25. güne kadar tamamen normal bir görünüm gösterir. Oksijen kaynaklı retinopati modelinin iyi bir tekrarlanabilirliği ve stabilitesi, yavruların çöp boyutunu ve doğum sonrası kilo alımını kontrol ederek elde edilebilir. Gözlemlendiği gibi, vazo-obliterasyon tipik olarak doğum sonrası 12. günde zirveye ulaşır ve doğum sonrası 25. günde kaybolurken, neovaskülarizasyon doğum sonrası 17. günde zirveye ulaşır ve doğum sonrası 25. günde geriler.Doğum sonrası 15 ila 25 oksijene bağlı retinopati faresinde, retinal kan damarı çapı artar ve normal farelerin retinaları için gözlenenlere kıyasla oldukça işkenceci hale gelir. Sol eldeki forsepsler esas olarak destekleyici bir rol oynar. Göz küresini sıkmamaya dikkat edin, bu da onu deforme edebilir veya yırtabilir.

monitoring-dynamic-growth-retinal-vessels-oxygen-induced-retinopathy

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

İntravital mikroskopi, hayvanlarda retina vasküler çaplarını, kan dolaşım hızlarını ve toplam retinal kan akışını görselleştirmek ve ölçmek için kullanılabilir.

Farelerde Retinal Kan Akışının İntravital Video Mikroskobu Ölçümleri

Kemirgen retina uzun beyin için erişilebilir bir pencere olarak kabul edilmiştir. Bu teknik yazıda iskemik yaralanma sonrası, merkezi sinir sistemi içinde, vasküler rejenerasyon başarısız olmasına yol mekanizmaları incelemek için oksijen kaynaklı retinopatinin fare modeli kullanan bir protokol sağlar. Anlatılan sistem, aynı zamanda, retina ve CNS içindeki fonksiyonel kan damarlarının büyümesini teşvik etmek için stratejiler keşfetmek için dönüştüğü edilebilir.

Fare Retina kullanma CNS&#39;deki Vasküler Rejenerasyon Değerlendirilmesi

Vizyon tehdit eden birçok oküler hastalıklar işlevsel olmayan retina yüzdeki ile ilişkilidir. Bu nedenle, retina arteriyol yanıt ölçümü temel patofizyolojik mekanizmaları araştırmak önemlidir. Bu makalede fare retina arteriyol yalıtım ve damar çapı vazoaktif maddelerin etkilerini değerlendirmek için hazırlık için detaylı bir iletişim kuralı.

Fare retina arteriyoller Ex Vivo reaktivite ölçümü için hazırlık adımları

Oksijen kaynaklı retinopati (OIR), prematürite retinopatisi ve proliferatif diyabetik retinopati gibi iskemik retina hastalıklarını modellemek ve neovasküler hastalıklar için antianjiyojenik ilaçların değerlendirilmesinde kavram kanıtı çalışmaları için bir model görevi görmek için kullanılabilir. OIR, retinada ölçülebilen sağlam ve tekrarlanabilir neovaskülarizasyona neden olur.

Kemirgenlerde İskemik Retina Hastalıkları için Oksijen Kaynaklı Retinopati Modeli

Bu makalede, tüm mount retinal preparatları için iyi kurulmuş ve tekrarlanabilir bir lektin lekesi testi ve proliferatif ve proliferatif olmayan retinopatilerde sıklıkla değiştirilen vasküler parametrelerin nicel ölçümü için gerekli protokoller açıklanmaktadır.

Proliferatif Olmayan ve Proliferatif Retinopatilerle Farelerin Tüm Mount Retinalarında Vasküler Parametrelerin Nicelemesi

Burada, farelerde retinopatinin tanısını ve kantitatif ölçümünü kolaylaştırmak için optik koherens tomografi kullanan bir in vivo görüntüleme tekniğini tanımladık.

Optik Koherens Tomografinin Retinopatinin Bir Fare Modeline Uygulanması

Burada, Retinal Ven Tıkanıklığı (RVO) çalışmasında floresein anjiyografi (FA) ve optik koherens tomografi (OCT) görüntüleri için üç veri analizi protokolü sunulmuştur.

İn vivo Tekrarlanabilirliği Artırmak için Fare Retinasında Vasküler Yaralanma Okumaları

Fare retinal damar sistemi, vasküler patern oluşumunun mekanizmalarını anlamada özellikle ilgi çekicidir. Bu protokol, optik diskten sabit bir mesafede floresan anjiyografi fundus görüntülerinden fare retina damarlarının çapını otomatik olarak ölçer.

Fare Floresan Anjiyografi Görüntülerinden Retina Damar Çapının Ölçülmesi

Bu raporda, ışıkla sertleşen diş reçine elektrotlar veya kronik deneylerde mikrodiyaliz probları montaj tabanı için yeni bir uygulama öneriyorum. Bu malzeme, kafatası doğrudan yapıştırma sağlar.

Kronik Deneyleri Montaj Elektrotlar veya mikrodiyaliz Problar Işık tedavi Diş Yapıştırıcı Reçine Uygulama

Yumurtalık kanseri Ortotopik hayvan modellerinde daha iyi insan hastalığı çoğaltmak ve bu nedenle kanser progresyonu ve tedaviye tümör yanıt anlayışımızı geliştirmek. Bir fare modelinde lusiferaz ifade over tümör hücrelerinin bir İntrabursal enjeksiyon alır. Tedavi ağızdan sonda ile yönetilmektedir. Tümör büyüme...

In vivo Görüntüleme ve Yumurtalık Kanseri Ortotopik Fare Modeli Tedavi Tedaviler

Öğrenin, fare retinası izolasyonu ve immünofloresan boyama yöntemiyle oksijene bağlı retinopati modelinde damar değişikliklerini incelemeyi. Bu protokol, her fareyi kendi kontrolü olarak kullanarak retinal bütünlüğü korur ve sonuçların karşılaştırılabilirliğini artırır.

Oksijene Bağlı Retinopati Fare Modelinde Retina Damarlarının Dinamik Büyümesinin İzlenmesi

Daha fazla video keşfet