Name: Biyosürfaktanların Kombinasyonu Kullanılarak Geliştirilmiş Yağ Geri Kazanımı (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-06-03T12:30:00.000+00:00
Duration: 13 min 19 s
Description: Keşfedin biyosürfaktan üreten mikropların taranması ve karakterizasyonu için yöntemleri. Rhodococcus, Lysinibacillus ve Paenibacillus suşlarından elde edilen biyosürfaktanların kum paket kolon tekniğiyle artık petrol kurtarma uygulamalarındaki etkinliğini değerlendirin.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar, finansal destek için Hindistan Hükümeti Biyoteknoloji Bakanlığı'na teşekkür eder.

1. Mikrobiyal suşların büyümesi
<ol><li>2 g Luria Suyu tozu tartın ve 250 mL'lik konik bir şişede 50 mL damıtılmış suya ekleyin. Toz tamamen çözünene kadar içeriği karıştırın ve damıtılmış su kullanarak hacmi 100 mL'ye kadar yükseltin.</li>
	<li>Benzer şekilde, 100 mL Luria Suyu'ndan iki şişe daha hazırlayın ve şişelerin boynuna pamuklu tapalar yerleştirin.</li>
	<li>Pamuklu tapaları alüminyum folyo ile örtün ve ortamı sterilize etmek için şişeleri 121 ° C'de 15 dakika ve 15 psi otoklav yapın.</li>
	<li>Otoklavlamadan sonra, ortamın oda sıcaklığına soğumasını bekleyin.</li>
	<li>Bir suşun birincil kültürünün hazırlanması için, bir aşılama döngüsü kullanarak bir LA plakasından tek bir koloni seçin ve 5 mL steril Luria suyu içeren bir test tüpünde aşılayın.</li>
	<li>Test tüpünü gece boyunca 30 ° C'de 180 rpm'de inkübe edin.</li>
	<li>100 mL otoklavlanmış Luria Suyu içeren şişeleri, laminer hava akış kabini içindeki şişelere 1 mL gece yetiştirilen tohum kültürleri ekleyerek aşılayın.</li>
	<li>Şişeleri döner bir inkübatörde 7 gün boyunca 30 ° C ve 180 rpm'de inkübe edin.</li>
	<li>Kuluçka süresinin tamamlanmasından sonra, şişeleri hasat edin ve kültür suyunu santrifüj tüplerine aktarın. Kültürü 4 °C'de soğutulmuş bir santrifüjde 20 dakika boyunca 4.500 x g'de santrifüj yapın.</li>
	<li>Nazikçe, hücresiz süpernatantı taze bir beherin içine dökün ve biyosürfaktan üretimi için tarama testlerinde kullanın.</li>
</ol>2. Biyosürfaktan üretimi için tarama tahlilleri
NOT: Aşağıdaki bölümlerde, pozitif kontrol olarak ticari yüzey aktif madde (Saponin) kullanılırken, negatif kontrol olarak su ve aşılanmamış ortam kullanılmıştır.
<ol><li>Damla çökme testi
	<ol>
<li>Temiz bir cam slayt alın ve slaytın yüzeyini 200 μL yağ ile kaplayın.</li>
		<li>Yağın merkezine 20 μL hücresiz süpernatant ekleyin ve 2-3 dakika boyunca bozulmadan bırakın. NOT: Damla çökerse, biyosürfaktan varlığı için süpernatantı pozitif olarak puanlayın.</li>
	</ol></li>
	<li>Yağ serpme testi
	<ol>
<li>Bir Petri plakasına (75 mm çapında) 20 mL çift damıtılmış su alın ve su yüzeyine 200 μL ham petrol ekleyin.</li>
		<li>Yağın merkezine 20 μL hücresiz süpernatant ekleyin ve 1 dakika boyunca bozulmadan bırakın. NOT: Yağ yer değiştirmesi nedeniyle bir temizleme bölgesi oluşursa, biyosürfaktan varlığı için süpernatantı pozitif olarak puanlayın.</li>
	</ol></li>
	<li>Emülsiyon indeksi testi (E24 testi)
	<ol>
<li>Her biri temiz bir cam test tüpüne 4 mL benzin (benzin) ve hücresiz süpernatant ekleyin.</li>
		<li>Karışımı 3 dakika boyunca kuvvetlice vorteksleyin ve sonraki 24 saat boyunca bozulmadan bırakın.</li>
		<li>24 saat sonra, E24 indeksini, tüm sıvı sütunun (cm) yüksekliğine göre emülsifiye tabakanın (cm) yüksekliğinin bir yüzdesi olarak belirleyin. <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/63207/63207eq01.jpg" style="margin: auto;"> NOT: 24 saat sonra bir emülsiyon (sudaki yağ veya yağdaki su) gözlenirse, süpernatantın biyosürfaktan içermesi muhtemeldir.</li>
	</ol></li>
	<li>Yüzey gerilimi ölçümü NOT: Yüzey gerilimi Du Noüy halka yöntemi17 kullanılarak ölçülmüştür. Bu deneyde kullanılan alet ( bakınız Malzeme Tablosu) çok hassastır, bu nedenle cam kabın ve probun uygun şekilde temizlenmesini sağlayın.<ol>
<li>Sistemi açın ve açmak için ilgili yazılıma çift tıklayın.</li>
		<li>Cam kabı, yüzey gerilimi belirlenecek sıvı ile temizleyin.</li>
		<li>Sıvıyı (40 mL) kaba ekleyin ve kabı kap tutucusuna monte edin.</li>
		<li>Prob tutucusunun kilidini açın ve probu üzerine monte edin. Şimdi manuel kontrol cihazındaki Kilitle düğmesine basarak prob tutucuyu kilitleyin .</li>
		<li>Manuel kontrolörü kullanarak, platformun yüksekliğini, probun sıvı yüzeyinden yaklaşık 2-3 mm uzakta olacak şekilde ayarlayın.</li>
		<li>Şimdi yüzey gerilimini ölçmek için yazılımı kullanın. Ekranın sol üst panelinde bulunan Dosya'ya tıklayın. Çalışma Alanını Aç'a tıklayın. Bir açılır pencere görünecektir.</li>
		<li>Aşağı kaydırın ve K100: Yüzey ve Ara Yüz Gerilimi simgesine çift tıklayın.</li>
		<li>Şimdi, ekranın sol üst köşesinde bulunan Dosya simgesine tıklayın. Yeni Veritabanı'na tıklayın. Verileri kaydetmek için adı girin ve Tamam'a tıklayın.</li>
		<li>Yine, SFT &gt; Ring&gt; Yeni Ölçüm &gt; Dosya'ya tıklayın. Ölçümün adını girin. Yapılandırma şablonunun SFT halkasını gösterdiğinden emin olun.</li>
		<li>Probu ve ölçüm için kullanılan kabı seçerek Ölçüm Yapılandırması penceresindeki ayrıntıları doldurun. Ayrıca, sıvı ve gaz fazının ayrıntılarını doldurun. NOT: Sıvı faz su, gaz fazı ise hava olacaktır. Sıvı fazın yoğunluğu, hücresiz süpernatanın yoğunluğudur. Bu, sıvının 50 mL'lik ağırlığının alınması ve yoğunluğun Kg/m3 olarak hesaplanmasıyla belirlenebilir.</li>
		<li>Şimdi Prosedür sekmesine tıklayın ve aşağıdaki ayrıntıları doldurun: Algılama Hızı: 6 mm / dak, Algılama Hassasiyeti: 0,005 g, Arama Hızı: 6 mm / dak, Arama Hassasiyeti: 0,005 g, Ölçüm Hızı: 3 mm / dak, Ölçüm Hassasiyeti: 0,001 g, Daldırma Derinliği: 3 mm, Geri Dönüş Mesafesi: % 10, düzeltme: Harkins &amp; Jordan, maksimum değerler: 5. Tamam'a tıklayın.</li>
		<li>Açılır pencerede, verilerin depolanacağı veritabanını seçin ve Tamam'a tıklayın. NOT: Burada yeni bir veritabanı oluşturulabilir veya mevcut verilere yeni ölçümler eklenebilir.</li>
		<li>Şimdi ekranın üst ortasında bulunan Oynat düğmesine tıklayın. Sistem komut dosyasını yürütmeye başlayacaktır. Sistem stabilize olduktan sonra, yüzeyi algılar. Probu sıvıya batırın, probu ileri geri hareket ettirin ve oluşan lameldeki gerginliği tespit edin.</li>
		<li>Sonuçları elde etmek için ekranın sol orta tarafındaki Ölçüm simgesine tıklayın. Veri'ye tıklayın ve belirlenen yüzey gerilimini not edin.</li>
		<li>Ölçümün tamamlanmasından sonra, platformun yüksekliğini düşürün ve probun ve kabın kilidini açın ve aletten çıkarın. NOT: Biyosürfaktan üretimi nedeniyle yüzey gerilimindeki azalmayı belirlemek için, kontrol olarak aşılanmamış LB kullanılmalıdır.</li>
	</ol></li>
</ol>3. Biyosürfaktan ekstraksiyonu
<ol><li>Hücresiz süpernatantın pH'ını 2 N HCl kullanarak 2'ye ayarlayın. karışımı gece boyunca 4 ° C'de saklayın.</li>
	<li>Süpernatanta eşit miktarda kloroform-metanol karışımı (2: 1) ekleyin ve 20 dakika boyunca kuvvetlice karıştırın.</li>
	<li>Faz ayrımının gerçekleşmesi için karışımı rahatsız etmeden bırakın.</li>
	<li>Su ve metanol içeren üst fazı çıkarın ve biyosürfaktan içeren alt fazı bir duman davlumbazında buharlaşmaya bırakın.</li>
	<li>Organik fazın buharlaştırılmasından sonra, bal rengindeki ham biyosürfaktan 3 mL kloroform içinde yeniden çözün ve bu karışımı biyosürfaktan daha fazla tanımlanması ve karakterizasyonu için kullanın.</li>
</ol>4. Emülsiyon stabilite çalışmaları
<ol><li>
Farklı sıcaklıklarda emülsiyon kararlılığı
	<ol>
<li>Farklı test tüplerinde 5 mL hücresiz süpernatant alın.</li>
		<li>Her test tüpüne 5 mL benzin ekleyin ve 3 dakika boyunca vorteksleme yaparak kuvvetlice karıştırın.</li>
		<li>Test tüplerini farklı su banyolarında farklı sıcaklıklarda (30 ° C, 40 ° C, 50 ° C, 60 ° C ve 70 ° C) gece boyunca inkübe edin.</li>
		<li>24 saat sonra, daha önce de belirtildiği gibi emülsiyon endekslerini tahmin edin.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Farklı pH değerlerinde emülsiyon kararlılığı
	<ol>
<li>Temiz test tüplerinde hücresiz süpernatantın 5 mL'sini alın.</li>
		<li>1 N HCl ve 1 N NaOH kullanarak hücresiz süpernatantların (2, 4, 6, 8 ve 10) pH'ını ayarlayın.</li>
		<li>Test tüplerine eşit miktarda benzin ekleyin ve 3 dakika boyunca vorteksleme yaparak kuvvetlice karıştırın.</li>
		<li>Test tüplerini oda sıcaklığında 24 saat boyunca rahatsız edilmeden bırakın.</li>
		<li>Emülsiyon indeksini daha önce de belirtildiği gibi tahmin edin.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Farklı tuz konsantrasyonlarında emülsiyon kararlılığı
	<ol>
<li>Temiz test tüplerinde hücresiz süpernatantın 5 mL'sini alın.</li>
		<li>Süpernatantlara farklı miktarlarda tuz (NaCl) ekleyin (0 g / L, 5 g / L, 10 g / L, 20 g / L, 60 g / L ve 80 g / L).</li>
		<li>Tuzları hücresiz süpernatantlarda 3 dakika boyunca vorteks yaparak çözün.</li>
		<li>Test tüplerine eşit miktarda benzin ekleyin ve 3 dakika boyunca vorteksleme yaparak kuvvetlice karıştırın.</li>
		<li>Test tüplerini oda sıcaklığında 24 saat boyunca rahatsız edilmeden bırakın.</li>
		<li>Emülsiyon indeksini 24 saat sonra tahmin edin.</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. Biyosürfaktan niteliğinin belirlenmesi
<ol><li>
Ekstrakte edilen biyosürfaktan TLC'si
	<ol>
<li>TLC plakalarındaki biyosürfaktan maddelerin 20 μL'sini tespit edin. Bir seferde 2 μL nokta.</li>
		<li>Biyosürfaktanları üç farklı TLC plakasında tespit edin.</li>
		<li>Kloroform:metanol (2:1) içeren elüentin 100 mL'lik bir karışımını hazırlayın ve elüenti TLC odasına ekleyin. Odanın kapağını kapatın ve 20 dakika doygunluğa ulaşmasına izin verin.</li>
		<li>Plakaları kuruttuktan sonra, TLC plakalarını kloroform metanol karışımı ile doyurulmuş odanın içine yerleştirin ve TLC'yi çalıştırın.</li>
		<li>Eluent TLC plakasının tepesine ulaştıktan sonra (üstten 1 cm uzakta), plakaları çıkarın ve havayla kurumasını bekleyin.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Lipid tespiti için boyama
	<ol>
<li>Temiz bir TLC haznesi alın ve taze odaya biraz (5-10) granül iyot ekleyin ve odayı 5 ila 10 dakika doyurun.</li>
		<li>TLC plakasını haznenin içine yerleştirin ve sarı lekelerin gelişimini gözlemleyin. Lekeler ortaya çıkarsa, lipit bileşeninin varlığı için biyosürfaktan pozitif puan alın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Peptit veya amino asit tespiti için boyama
	<ol>
<li>20 mL bütanol içinde 0.4 g ninhidrin çözerek bir ninhidrin çözeltisi hazırlayın. Karışıma 0,6 mL% 100 buzul asetik asit ekleyin.</li>
		<li>TLC plakasına ninhidrin çözeltisi püskürtün ve 2 dakika boyunca havayla kurumasını bekleyin. Plakayı 110 ° C'de ısıtın ve rengin gelişimini gözlemleyin. NOT: Mavi lekeler belirirse, herhangi bir peptit zincirinin veya amino asidin varlığı için biyosürfaktan pozitif puan alın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Karbonhidrat tespiti için boyama
	<ol>
<li>1 mL H2SO 4 içeren 48 mL buzul asetik asidine 2 mL p-anisaldehit ekleyerekbirp-anisaldehit çözeltisi hazırlayın. Karışıma 0.6 mL asetik asit ekleyin.</li>
		<li>Karışımı bir TLC plakasına eşit şekilde püskürtün ve 2 dakika boyunca havada kurumasını bekleyin.</li>
		<li>Plakayı 110 ° C'de inkübe edin ve lekelerin gelişimini izleyin. NOT: Yeşil veya kahverengi lekeler ortaya çıkarsa, biyosürfaktan herhangi bir karbonhidratın varlığı için pozitif puan alın.</li>
	</ol>
</li>
</ol>6. Biyosürfaktan kimyasal olarak tanımlanması
<ol><li>Biyosürfaktan LCMS
	<ol>
<li>Ekstrakte edilen biyosürfaktan 25 mg'ı 1 mL kloroform içinde çözün.</li>
		<li>Bir C18 sütunu kullanarak LCMS (referans tarama frekansı 10 sn olan bir kilit sprey konfigürasyonunda) gerçekleştirin.</li>
		<li>Kloroform kullanın: metanol (1: 1) mobil bir faz olarak ve numunenin 2 μL'sini kolona 0.1 mL / dak akış hızında enjekte edin.</li>
		<li>Deneysel parametreleri şu şekilde ayarlayın: polarite: ES pozitif, kılcal gerilim: 3 kV, kaynak sıcaklığı: 80 °C, çözünme sıcaklığı: 300 °C, çözünme gazı akış hızı: 7.000 L/s ve tuzak gaz akış hızı: 0,40 mL/dak.</li>
		<li>20 dakikalık bir algılama süresi boyunca 100 ila 1.200 Da arasındaki aralıkları tarayın ve iyonları pozitif ES modunda inceleyin.</li>
		<li>Herhangi bir kütle spektrometresi nicel yazılımı kullanarak m / z değerlerini analiz edin.</li>
		<li>Analiz için yazılıma giriş yapın.</li>
		<li>Toplu Arama'ya tıklayın ve elde edilen kütlelerin listesini girin. Sonuçları pozitif şarj modunda araştırın ve katkı olarak M + H ve M + Na kullanın. Doğruluğu 10 PPM'ye kadar koruyun ve Ekran Yapısı'nı işaretleyin.</li>
		<li>Ara'ya tıklayın ve bileşikler listesinden en düşük PPM seviyesine sahip olanı seçin.</li>
	</ol></li>
	<li>1 adet Biyosürfaktan H NMR NOT: Biyosürfaktan 1H NMR, 400 MHz NMR spektrometresi kullanılarak gerçekleştirilmiştir (bkz.<ol>
<li>5 mg biyosürfaktan 1 mL deuterated kloroform (CdCl3) içinde çözün.</li>
		<li>Karışımı bir NMR tüpüne aktarın. Tüpü düzgün bir şekilde kapatın ve tüpü anahtara yerleştirin. Ayarlayıcı tüpü kullanarak tüpün yüksekliğini ayarlayın.</li>
		<li>Tüpü anahtarla birlikte NMR makinesine yerleştirin ve bir NMR spektrumu elde etmek için aşağıda belirtilen adımları izleyin.</li>
		<li>Numune tüpü tipini seçmek için: sx N, burada N, ilgili yazılımda tüpün yerleştirildiği konumdur (örneğin, tüp 13. konuma yerleştirilmişse sx 13).</li>
		<li>Verilerin depolanabileceği yeni bir klasör oluşturmak için edc yazın ve Enter tuşuna basın.</li>
		<li>Bir açılır pencere görünecektir. Listede CdCl 3'e tıklayarak çözücüyü seçin ve numunenin adını girin.</li>
		<li>Protokolü başlatmak için "getprosol" yazın; çözücüyü kilitlemek için "cdcl3'ü kilitle" yazın.</li>
		<li>Örneği şime etmek için "topshim" yazın ve son olarak verileri almak için "rga;zgefp" yazın. Bu, protokolü başlatacaktır.</li>
		<li>Spektrumlar elde edildikten sonra, "apk;abs n" yazın ve faz ve taban çizgisi düzeltmesi için enter tuşuna basın.</li>
		<li>Birincil tepe noktalarını seçmek için "pp" yazın ve Enter tuşuna basın. Yalnızca yoğun zirveleri seçmek için "mi" girin ve zirvelerin seçilmesi gereken yoğunluğu yazın. Varsayılan değer 0,2 olacaktır.</li>
		<li>Tepe noktalarını entegre etmek için, Entegre Et'e tıklayın ve imleci entegre edilecek tepenin sol tarafına yerleştirin ve imleci basılı tutarken imleci tıklayın ve tepenin etrafına sürükleyin.</li>
		<li>Sol üst köşedeki Dosya'ya ve ardından Kaydet'e tıklayarak verileri kaydedin.</li>
		<li>Numune "sx ej" yazılarak makineden çıkarılabilir.</li>
		<li>Zirveleri analiz edin ve H atomlarının ortamını belirleyin.</li>
	</ol></li>
	<li>Fourier Dönüşümü Biyosürfaktan Kızılötesi Spektroskopisi NOT: Ekstrakte edilen biyosürfaktan FT-IR, ATR modunda ticari olarak temin edilebilen bir spektrofotometre kullanılarak gerçekleştirilmiştir (bkz.<ol>
<li>Spektrofotometreyi açın ve temizlemeyi, kurutucuyu ve dedektörü kontrol edin.</li>
		<li>Bir spektrum toplamak için, önce bir örnek olmadan arka plan spektrumunu toplayın.</li>
		<li>Ekstrakte edilen biyosürfaktan alın ve tamamen kurutun. Kurutulmuş biyosürfaktan doğrudan elmas kristalinin üzerine yerleştirin, basınç uygulayın ve ATR temas noktasına basın.</li>
		<li>Yazılımda, tarama sayısını seçin (30 girin) ve spektrumu 400 cm-1 ila 4.000 cm-1 arasında tarayın.</li>
		<li>Örnek spektrumu spektral pencereye eklemek için Tamam'a tıklayın.</li>
		<li>Dosyalar &gt; Kaydet &gt; Farklı Kaydet'e tıklayın ve dosya adını ve ardından .spa uzantısını girin ve Tamam'a tıklayın.</li>
	</ol></li>
</ol>7. Biyosürfaktan uygulaması (gelişmiş yağ geri kazanımı)
NOT: Bu deneyde negatif kontrol olarak çift damıtılmış su, pozitif kontrol olarak SDS, Tween 80 ve ticari saponin kullanılmıştır.
<ol><li>Camı alın ve alt çıkışı cam yünü ve cam boncuklarla kapatın.</li>
	<li>Kolonu kumlu toprakla, toprağın üstüne bir miktar sıvı eklenebilecek ve içinden geçen akış altta toplanabilecek şekilde paketleyin. Kolonu tutucuya monte edin ve toprağın üstüne biraz cam boncuk ekleyin.</li>
	<li>Kolonu 50 mL tuzlu su çözeltisi ile doldurun ve gözenek hacmini belirlemek için akışı toplayın. gözenek hacmi = üstüne eklenen tuzlu su hacmi - toplanan akış hacmi.</li>
	<li>Kolonun üstünden ekledikten sonra ham petrolü içinden geçmeye zorlayarak tuzlu suyu kolondan çıkarın. İlk yağ doygunluk hacmini belirlemek için kolondan çıkan tuzlu su ve yağın hacmini toplayın. Kolondan salınan tuzlu suyun hacmi, ilk yağ doygunluğu hacmi veya yerinde orijinal yağ olacaktır.</li>
	<li>Sütunu 24 saat boyunca rahatsız edilmeden bırakın.</li>
	<li>24 saat sonra, sütunu 10 gözenek hacmi tuzlu suyla doldurun ve ikincil yağ geri kazanımını tahmin etmek için sütundan çıkan yağı toplayın. İkincil yağ geri kazanımından sonra kolonda kalan yağ, artık yağa karşılık gelir.</li>
	<li>Cam beherine ekstrakte edilen biyosürfaktan (adım 3.5'ten sonra ekstrakte edilen) eşit hacimlerde ekleyerek bir biyosürfaktan karışımı hazırlayın. Biyosürfaktanları sütunun üstüne ekleyin ve sütunu 24 saat boyunca inkübe edin.</li>
	<li>24 saat sonra, ek veya gelişmiş yağ geri kazanımını belirlemek için yağ ve su miktarını ölçün. Kolondan salınan yağın hacmi, geri kazanılan artık yağa karşılık gelecektir.</li>
	<li>Aşağıdaki denklemle gelişmiş yağ geri kazanımını tahmin edin: <img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/63207/63207eq02.jpg" style="margin: auto;">
</li>
</ol>

Yazarlar çıkar çatışması olmadığını beyan ederler.

Biyoyüzey aktif maddeler, kimyasal yüzey aktif maddelere cazip alternatifler haline gelen biyolojik olarak aktif bileşenlerin en çok yönlü gruplarından biridir. Daha iyi ıslanabilirlikleri, düşük CMC'leri, çeşitlendirilmiş yapıları ve çevre dostu olmaları nedeniyle deterjan, boya, kozmetik, gıda, ilaç, tarım, petrol ve su arıtma gibi çok sayıda endüstride geniş bir uygulama alanına sahiptirler18. Bu, biyosürfaktan üretimi yapabilen daha fazla mikrobiyal suşun keşfedilmesine olan ilginin artmasına ...

Biyosürfaktanlar, mikroorganizmalar tarafından üretilen ve yüzeyi ve iki faz arasındaki ara yüzey gerilimini azaltma kapasitesine sahip amfipatik yüzey aktif moleküllerdir1. Tipik bir biyosürfaktan genellikle bir şeker köstebeği veya bir peptit zinciri veya hidrofilik amino asitten oluşan hidrofilik bir kısım ve doymuş veya doymamış bir yağ asidi zincirinden oluşan hidrofobik bir kısım içerir2. Amfipatik doğaları nedeniyle, biyosürfaktanlar iki faz arasındaki arayüzde toplanır ve sınırdaki ara yüzey gerilimini azaltır, bu da bir fazın diğerine dağılmasını kolaylaştırır 1,3. Şimdiye kadar bildirilen çeşitli biyosürfaktan türleri arasında, karbonhidratların ester bağları (örneğin, rhamnolipidler, trehalolipidler ve soforolipidler) yoluyla uzun zincirli alifatik veya hidroksi-alifatik asitlere bağlandığı glikolipidler, lipitlerin polipeptit zincirlerine bağlandığı lipopeptitler (örneğin, yüzey aktif madde ve likenisin) ve genellikle polisakkarit-protein komplekslerinden oluşan polimerik biyosürfaktan maddeler (örneğin, emülsan, liposan, alasan ve lipomannan)4. Mikroorganizmalar tarafından üretilen diğer biyosürfaktan türleri arasında yağ asitleri, fosfolipitler, nötr lipitler ve partikül biyosürfaktanlarbulunur 5. En çok çalışılan biyosürfaktan sınıfı glikolipidlerdir ve bunların arasında çalışmaların çoğu rhamnolipidler üzerinde bildirilmiştir6. Rhamnolipidler, bir veya iki uzun zincirli yağ asidi molekülüne (genellikle hidroksi-dekanoik asit) bağlı bir veya iki ramnoz molekülü (hidrofilik kısmı oluşturan) içerir. Rhamnolipidler ilk olarak Pseudomonas aeruginosa7'den bildirilen primer glikolipidlerdir.
Biyosürfaktanlar, sundukları çeşitli benzersiz ve ayırt edici özellikler nedeniyle kimyasal muadillerine kıyasla artan bir odak noktası kazanmaktadır8. Bunlar arasında daha yüksek özgüllük, daha düşük toksisite, daha fazla çeşitlilik, hazırlama kolaylığı, daha yüksek biyolojik parçalanabilirlik, daha iyi köpüklenme, çevresel uyumluluk ve aşırı koşullar altında aktivite9 bulunur. Biyosürfaktan maddelerinin yapısal çeşitliliği (Şekil S1), onlara kimyasal muadillerine göre bir avantaj sağlayan bir başka avantajdır10. Kritik misel konsantrasyonları (CMC) genellikle kimyasal yüzey aktif maddelerden birkaç kat daha düşük olduğu için genellikle daha düşük konsantrasyonlarda daha etkili ve verimlidirler11. Yüksek oranda ısıl stabil oldukları (100 ° C'ye kadar) ve daha yüksek pH (9'a kadar) ve yüksek tuz konsantrasyonlarını (50 g / L'ye kadar) tolere edebildikleri bildirilmiştir12, böylece aşırı koşullara maruz kalmayı gerektiren endüstriyel proseslerde çeşitli avantajlar sunarlar13. Biyolojik olarak parçalanabilirlik ve daha düşük toksisite, onları biyoremediasyon gibi çevresel uygulamalar için uygun hale getirir. Sundukları avantajlar nedeniyle, gıda, tarım, deterjan, kozmetik ve petrol endüstrisi gibi çeşitli endüstrilerde artan ilgi görmektedirler11. Biyosürfaktanlar, petrol kirleticilerinin ve toksik kirleticilerin uzaklaştırılması için petrol ıslahında da çok dikkat çekmiştir14.
Burada Rhodococcus sp. IITD102, Lysinibacillus sp. IITD104 ve Paenibacillus sp. IITD108 tarafından üretilen biyosürfaktan maddelerinin üretimini, karakterizasyonunu ve uygulamasını sunuyoruz. Gelişmiş yağ geri kazanımı için biyosürfaktan bir kombinasyonunun taranması, karakterizasyonu ve uygulanmasında yer alan adımlar Şekil 1'de özetlenmiştir.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63207/63207fig01.jpg"> Şekil 1: Biyosürfaktanların bir kombinasyonunu kullanarak gelişmiş yağ geri kazanımı için bir yöntem. Kademeli iş akışı gösterilir. Çalışma dört adımda gerçekleştirildi. İlk önce mikrobiyal suşlar kültürlendi ve damla çökme testi, yağ yayılma testi, emülsiyon indeksi testi ve yüzey gerilimi ölçümünü içeren çeşitli tahlillerle biyosürfaktan üretimi için tarandı. Daha sonra, biyosürfaktanlar hücresiz et suyundan ekstrakte edildi ve doğaları ince tabaka kromatografisi kullanılarak tanımlandı ve LCMS, NMR ve FT-IR kullanılarak daha da tanımlandı. Bir sonraki adımda, ekstrakte edilen biyosürfaktan maddeler birlikte karıştırıldı ve elde edilen karışımın gelişmiş yağ geri kazanımı için potansiyeli, kum paketi kolon tekniği kullanılarak belirlendi. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63207/63207fig01large.jpg" target="_blank">Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
Biyosürfaktan üretmek için bu mikrobiyal suşların taranması, damla çökmesi, yağ yayılımı, emülsiyon indeksi testi ve mikropların büyümesi nedeniyle hücresiz ortamın yüzey geriliminde azalmanın belirlenmesi ile yapıldı. Biyosürfaktanlar LCMS, 1H NMR ve FT-IR ile ekstrakte edildi, karakterize edildi ve kimyasal olarak tanımlandı. Son olarak, bu mikroplar tarafından üretilen biyosürfaktan bir karışımı hazırlandı ve simüle edilmiş bir kum paketi sütununda kalan yağı geri kazanmak için kullanıldı.
Bu çalışma sadece biyosürfaktan kombinasyonunun taranması, tanımlanması, yapısal karakterizasyonu ve artık yağ geri kazanımının arttırılması üzerine uygulanmasında yer alan yöntemleri göstermektedir. Mikrobiyal suşlar tarafından üretilen biyosürfaktan maddelerinin ayrıntılı bir fonksiyonel karakterizasyonunu sağlamaz15,16. Herhangi bir biyosürfaktan ayrıntılı fonksiyonel karakterizasyonu için kritik misel tayini, termogravimetrik analiz, yüzey ıslanabilirliği ve biyolojik parçalanabilirlik gibi çeşitli deneyler gerçekleştirilir. Ancak bu makale bir yöntem makalesi olduğundan, odak noktası, artık yağ geri kazanımını arttırmak için biyosürfaktan kombinasyonunun taranması, tanımlanması, yapısal karakterizasyonu ve uygulanmasıdır; bu deneyler bu çalışmaya dahil edilmemiştir.

<table><tbody><tr><td>1 ml pipet</td><td>Eppendorf, Almanya</td><td>G54412G</td><td></td></tr><tr><td>1H NMR</td><td>Bruker Avance AV-III tipi spektrometre, ABD</td><td></td><td></td></tr><tr><td>20 ul pipet</td><td>Thermo scientific, ABD</td><td>H69820</td><td></td></tr><tr><td>Otoklav</td><td>JAISBO, Hindistan</td><td>Ser no 5923</td><td>Jain Scientific</td></tr><tr><td>Blue alev brülör</td><td>Rocker scientific, Tayvan</td><td>ejderha 200</td><td></td></tr><tr><td>Butanol</td><td>GLR yenilikleri, Hindistan</td><td>GLR09.022930</td><td></td></tr><tr><td>C18 sütunu</td><td>Agilent Teknolojileri, ABD</td><td>770995-902</td><td></td></tr><tr><td>Santrifüj</td><td>Eppendorf, Almanya</td><td>5810R</td><td></td></tr><tr><td>Chloroform</td><td>Merck, Hindistan</td><td>1.94506.2521</td><td></td></tr><tr><td>Chloroform-d</td><td>SRL, Hindistan</td><td>57034</td><td></td></tr><tr><td>Falcon tüpleri</td><td>Tarsons, Hindistan</td><td>546041</td><td>Radyasyonla sterilize polipropilen</td></tr><tr><td>FT-IR</td><td>Thermo Fisher Scientific, ABD&</td><td>nbsp; Nicolet iS50</td><td></td></tr><tr><td>Çeker ocak</td><td>Khera, Hindistan</td><td>47408</td><td>Özel</td></tr><tr><td>buzlu asetik asit</td><td>Merck, Hindistan</td><td>1.93002</td><td></td></tr><tr><td>Cam boncuklar</td><td>Merck, Hindistan</td><td>104014</td><td></td></tr><tr><td>Cam slaytlar</td><td>Polar Industrial Corporation, ABD</td><td>Mavi Yıldız</td><td>75 mm * 25 mm</td></tr><tr><td>Cam yünü</td><td>Merk, Hindistan</td><td>104086</td><td></td></tr><tr><td>Hidroklorik asit</td><td>Merck, Hindistan</td><td>1003170510</td><td></td></tr><tr><td>İnkübatör</td><td>Thermo Scientific, ABD</td><td>MaxQ600</td><td>Çalkalama inkübatörü</td></tr><tr><td>İnkübatör</td><td>Khera, Hindistan</td><td>Sunbim</td><td></td></tr><tr><td>İyot yeniden yüceltilmiş</td><td>Merck, Hindistan</td><td>231-442-4</td> <td>& nbsp; yeniden yüceltilmiş Granüller</td></tr><tr><td>K12 &ndash; Kruss tansiyometresi</td><td>Kruss Scientific, Almanya</td><td>K100</td><td></td></tr><tr><td>Laminer hava akışlı kabin ağı</td><td>Thermo Scientific, Çin</td><td>1300 Serisi A2</td><td></td></tr><tr><td>LCMS</td><td>Agilent Teknolojileri, ABD</td><td>1260 Infinity II</td><td></td></tr><tr><td>Luria Suyu</td><td>HIMEDIA, Hindistan</td><td>M575-500G</td><td>Toz</td></tr><tr><td>Metanol</td><td>Merck, Hindistan</td><td>107018</td><td></td></tr><tr><td>Ninhydrin</td><td>Titan Biotech Limited, Hindistan</td><td>1608</td><td></td></tr><tr><td>p- anisaldehyde</td><td>Sigma, ABD</td><td>204-602-6</td><td></td></tr><tr><td>Petri plakası</td><td>Tarsons, Hindistan</td><td>460090-90 MM</td><td>Radyasyonla sterilize polipropilen</td></tr><tr><td>Saponin</td><td>Merck, Hindistan</td><td>232-462-6</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum klorür</td><td>Merck, Hindistan</td><td>231-598-3</td><td></td></tr><tr><td>Test tüpleri</td><td>Borosil, Hindistan</td><td>9800U06</td><td>Cam tüpler</td></tr><tr><td>TLC plakalar</td><td>Merck, Hindistan</td><td>1055540007</td><td></td></tr><tr><td>Vortex</td><td>GeNei, Hindistan</td><td>2006114318</td><td></td></tr><tr><td>Su Banyosu</td><td>Julabo, Hindistan</td><td>SW21C</td><td></td></tr></tbody></table>

biyosürfaktanların kombinasyonu kullanılarak geliştirilmiş yağ geri kazanımı

Enhanced Oil Recovery using a Combination of Biosurfactants

Biyosürfaktanlar, farklı polaritelerin iki fazı arasındaki yüzey gerilimini azaltabilen yüzey aktif bileşiklerdir. Biyoyüzey aktif maddeler, daha az toksisite, yüksek biyolojik parçalanabilirlik, çevresel uyumluluk ve aşırı çevre koşullarına tolerans nedeniyle kimyasal yüzey aktif maddelere umut verici alternatifler olarak ortaya çıkmaktadır. Burada, biyosürfaktan üretebilen mikropların taranması için kullanılan yöntemleri gösteriyoruz. Biyosürfaktan üreten mikroplar, damla çökmesi, yağ yayılması ve emülsiyon indeksi testleri kullanılarak tanımlanmıştır. Biyosürfaktan üretimi, mikrobiyal üyelerin büyümesi nedeniyle ortamın yüzey gerilimindeki azalmanın belirlenmesiyle doğrulanmıştır. Ayrıca biyosürfaktanların karakterizasyonu ve tanımlanmasında yer alan yöntemleri de açıklıyoruz. Ekstrakte edilen biyosürfaktan ince tabaka kromatografisi ve ardından plakların diferansiyel boyanması biyosürfaktan doğasını belirlemek için yapıldı. LCMS, 1H NMR ve FT-IR, biyosürfaktan kimyasal olarak tanımlamak için kullanıldı. Ayrıca, simüle edilmiş bir kum paketi sütununda artık yağ geri kazanımını arttırmak için üretilen biyosürfaktan kombinasyonunun uygulanmasını değerlendirme yöntemlerini de gösteriyoruz.

Üç bakteri suşu (Rhodococcus sp. IITD102, Lysinibacillus sp. IITD104 ve Paenibacillus sp. IITD108), düşme çökme testi, yağ yer değiştirme testi, emülsiyon indeksi testi ve yüzey gerilimi azaltmayı içeren çeşitli tahlillerle biyosürfaktan üretimi için taranmıştır. Her üç bakteri suşunun hücresiz süpernatantları ve bir kimyasal yüzey aktif madde çözeltisi bir damla çöküşe neden oldu ve bu nedenle biyosürfaktanların varlığı için pozitif puan aldı (Şekil 4a). Öte yanda...

Biyosürfaktan üreten mikropların taranması ve tanımlanmasında yer alan yöntemleri gösteriyoruz. Biyosürfaktan maddelerin kromatografik karakterizasyonu ve kimyasal olarak tanımlanması, biyosürfaktan kalıntı yağ geri kazanımının arttırılmasında endüstriyel uygulanabilirliğinin belirlenmesi için yöntemler de sunulmaktadır.

Biyosürfaktanların Kombinasyonu Kullanılarak Geliştirilmiş Yağ Geri Kazanımı

Biosurfactants are surface-active compounds capable of reducing the surface tension between two phases of different polarities. Biosurfactants have been ...

Biyosürfaktanlar, sıvının yüzey gerilimini ve iki farklı faz arasındaki interficial gerilimi azaltma kapasitesine sahip mikroorganizmalar tarafından üretilen empatik yüzey aktif molekülleridir. Bu moleküllerin empatik doğası, kendilerini iki farklı faz arasındaki arayüzde hizalamalarını ve bir fazın diğerine çözünmesini arttırmalarını sağlar. Biyosürfaktanlar, sundukları çeşitli avantajlar nedeniyle kimyasal muadillerine kıyasla çok dikkat çekmektedir.Bunlar arasında daha yüksek özgüllük, daha düşük toksisite, daha fazla yapısal çeşitlilik, hazırlık kolaylığı, daha yüksek biyolojik parçalanabilirlik, daha yüksek çevresel uyumluluk ve aşırı çevre koşulları altındaki aktiviteleri sayılabilir. Bu videoda, farklı rodokok, lysinibacillus ve paenibacillus suşları tarafından üretilen tarama, karakterizasyon ve uygulama biyosürfaktanlarında yer alan yöntemleri gösteriyoruz. Ayrıca, bu üç mikrobiyal suş tarafından üretilen biyosürfaktan kombinasyonunun, bir kum paketi kolon tekniği ile artık yağın geri kazanımında uygulanmasını değerlendirme yöntemlerini de gösteriyoruz.Çalışma, Dr. Preeti Srivastava ve Dr. Manoj Kumar'ın rehberliğinde gerçekleştirilmiştir. Mikropların büyümesi için, laminer hava akış kabini içindeki şişeye bir mililitre gece boyunca yetiştirilen tohum kültürü ekleyerek, yüz mililitre otoklavlanmış Luria suyu içeren şişeleri aşılayın. Şişeleri döner bir inkübatörde yedi gün boyunca 30 santigrat derece ve 180 RPM'de inkübe edin.Kuluçka süresinin tamamlanmasından sonra, şişeleri hasat edin ve kültür suyunu santrifüj tüplerine aktarın. Kültürü dört santigrat derecede soğutulmuş bir santrifüjde 20 dakika boyunca 4.500 G'de santrifüj yapın. Hücresiz süpernatantı nazikçe taze bir beherin içine dökün ve biyosürfaktan üretimi için tarama tahlillerinde kullanın.Biyosürfaktan üretimini bir damla çökme testi ile taramak için, temiz bir cam slayt alın ve slaytın yüzeyini 200 mikrolitre yağ ile kaplayın. Şimdi yağın merkezine 20 mikrolitre hücresiz süpernatant ekleyin ve iki ila üç dakika boyunca rahatsız edilmeden bırakın. Damla çökerse, biyosürfaktan varlığı için süpernatantı pozitif olarak puanlayın.Yağ yayılma tahlilinde, bir Petri plakasına 20 mililitre çift damıtılmış su alın ve su yüzeyine 200 mikrolitre ham petrol ekleyin. Şimdi yağın merkezine 20 mikrolitre hücresiz süpernatant ekleyin ve bir dakika boyunca rahatsız edilmeden bırakın. Yağ yer değiştirmesinin bir sonucu olarak bir temizleme bölgesi oluşursa, biyosürfaktan varlığı için süpernatantı pozitif olarak puanlayın.Emülsiyon indeksi tahlilinde, her biri temiz bir cam tüpe dört mililitre benzin ve hücresiz süpernatant ekleyin. Sonra karışımı üç dakika boyunca kuvvetlice uygulayın ve önümüzdeki 24 saat boyunca bozulmadan bırakın. Hücresiz süpernatanın yüzey gerilimini ölçmek için, cam kabı yüzey gerilimi belirlenecek sıvı ile temizleyin.Sıvıyı kaba ekleyin ve kabı kap tutucusuna monte edin. Prob tutucusunun kilidini açın ve probu üzerine monte edin. Manuel kontrolörü kullanarak, platformun yüksekliğini, probun sıvı yüzeyinden iki ila üç milimetre uzakta olacak şekilde ayarlayın.Ardından yazılımlara gidin ve yüzey gerilimini ölçmek için makalede belirtilen adımları izleyin. Ölçümün tamamlanmasından sonra, platformun yüksekliğini düşürün ve probun ve kabın kilidini açın ve aletten çıkarın. Biyosürfaktan ekstraksiyonu için, iki normal hidroklorik asit kullanarak hücresiz süpernatantın pH'ını ikiye ayarlayın.Karışımı gece boyunca dört santigrat derecede saklayın. Ertesi gün, eşit miktarda kloroform metanol karışımı ekleyin ve 20 dakika boyunca kuvvetlice karıştırın. Serbest ayırmanın gerçekleşmesi için karışımı bozulmadan bırakın.Su ve metanol içeren üst yüzü çıkarın ve biyosürfaktan içeren alt yüzü bir duman davlumbazında buharlaşmaya bırakın. Organik fazın buharlaşmasından sonra, bal renkli biyosürfaktan üç mililitre kloroform içinde yeniden çözün ve bu karışımı biyosürfaktan karakterizasyonu ve tanımlanması için kullanın. Ekstrakte edilen biyosürfaktan kromatografik karakterizasyonu için, TLC plakaları üzerinde 20 mikrolitre biyosürfaktan bulun.Plakaları kuruttuktan sonra, TLC plakasını kloroform metanol karışımı ile doyurulmuş haznenin içine yerleştirin ve TLC'yi çalıştırın. Lipid tespiti için, taze odaya bazı iyot granülleri ekleyin ve odayı beş ila 10 dakika doyurun. TLC'yi odanın içine yerleştirin ve sarı lekelerin gelişimini gözlemleyin.Protein ve karbonhidrat tespiti için, TLC plakasına hidrojen veya anisaldehit olmayan püskürtün ve 110 santigrat derecede ısıtın ve rengin gelişimini gözlemleyin. NMR analizi için, tüpü anahtara yerleştirin. Ayarlanmış tüpü kullanarak tüpün yüksekliğini ayarlayın.NMR tüpünü, anahtarla birlikte bir MR makinesine yerleştirin ve bir NMR spektrumu elde etmek için makalede belirtilen adımları izleyin. Gelişmiş yağ geri kazanım deneyi için, bir cam sütun alın ve alt çıkışı cam yünü ve cam boncuklarla kapatın. Kolonu Kumlu toprakla, toprağın üstüne bir miktar sıvı eklenebilecek şekilde geri yerleştirin.Kolonu tutucuya monte edin ve toprağın üstüne biraz cam boncuk ekleyin. Kolonu 50 mililitre tuzlu su çözeltisi ile doldurun ve zayıf hacmi belirlemek için akışı toplayın. Ham petrolü içinden geçmeye zorlayarak tuzlu suyu kolondan çıkarın.İlk yağ doygunluk hacmini belirlemek için kolondan çıkan tuzlu su ve yağ hacmini toplayın. 24 saat sonra, sütunu 10 zayıf tuzlu su hacmiyle doldurun ve ikincil petrol geri kazanımını tahmin etmek için sütundan çıkan yağı toplayın. İkincil yağ geri kazanımından sonra kolonda kalan yağ, artık yağa karşılık gelir.Şimdi ekstrakte edilen biyosürfaktan bir cam beherine ekleyerek biyosürfaktan bir karışım hazırlayın. Biyosürfaktan ve karışımı sütuna ekleyin ve önümüzdeki 24 saat boyunca bozulmadan bırakın. 24 saat sonra, ek veya gelişmiş yağ geri kazanımını belirlemek için kolondan çıkan yağ ve su miktarını ölçün.Üç mikrobiyal suşun hücresiz süpernatantları, damla çökmesi, yağ yayılması ve emülsiyon oluşumu ile sonuçlandıkları için biyosürfaktan varlığı için pozitif olarak puanlandı. Biyosürfaktan üretiminin doğrulanması, hücresiz et suyunun yüzey geriliminin ölçülmesiyle sağlanmıştır. Rodokok ve lysinibacillus'un büyümesi nedeniyle, ortamın yüzey gerilimi metre başına 59'dan 45 mN'ye düştü.Paenibacillus'un büyümesi nedeniyle, ortamın yüzey gerilimi metre başına 59'dan 28.4 mN'ye düştü. Emülsiyon stabilite testleri, üç mikrobiyal suş tarafından üretilen biyosürfaktanların, çeşitli ve çevresel koşullar altında büyük bir stabilite sergilediğini göstermiştir. Emülsiyon indeksleri, kuluçka sıcaklığı, pH ve hücresiz et suyunun tuz konsantrasyonu değiştirildiğinde önemli bir değişiklik göstermedi.Ekstrakte edilen biyosürfaktan DLC karakterizasyonu, her üç suş tarafından üretilen biyosürfaktan maddelerin glikolit olduğunu göstermiştir. Biyosürfaktanların kimyasal olarak tanımlanması, rodococcus ve lysinbacillus'un, yaklaşık dört 80 daltonluk bir kütleye sahip rhamnolipid olarak tanımlanan aynı biyosürfaktan ürettiğini gösterdi. Öte yandan Paenibaccilus, yaklaşık 802 dalton kütleye sahip üç lipit zinciri içeren bir rhamnolipid üretir.Biyosürfaktan maddelerin kombinasyonu, kum kolonundan kalan yağın% 56.5'ini geri kazanmayı başardı. Rodokok, lsyinibaccilus ve paenibacillus suşlarından biyosürfaktan üretimi test edildi ve suşlar biyosürfaktan üretimi için pozitif puanlandı. Üretilen biyosürfaktanlar rhamnolipidler olarak karakterize edildi ve tanımlandı.Biyosürfaktan kombinasyonu, bir kum paketleme tekniğinde artık yağın% 56'sının geri kazanılmasında başarılı olduğundan, biyosürfaktan kombinasyonu, petrol rezervuarlarında sıkışan artık yağı geri kazanmak için saha uygulamalarında kullanılabilir.

enhanced-oil-recovery-using-a-combination-of-biosurfactants

Research

JoVE Journal

Environment

Çevre

Kaynak: Villela, H. D. M . ve diğerleri. Metaorganizma Araştırması ve Koruma için Biyoremediasyon ve Probiyotik Geliştirme için Mikrobiyal Suşların Araştırılması. J. Vis. Exp. (2019)Bu video, petrol bazlı ortamda deniz suyu örneklerinin zenginleştirilmesiyle petrol bozucu deniz bakterilerinin seçici izolasyonunu gösteriyor; bu da ham petrol biyoremediasyonu ve çevresel temizlikte potansiyel uygulamalara sahip saf suşların geri kazanılmasını sağlıyor.

Deniz Suyu Örneklerinden Petrol Bozucu Deniz Bakterilerinin Seçici Zenginleştirmesi ve İzolasyonu

örnek olarak L-iksuloz üretimini kullanarak kofaktör rejenerasyonu ve geliştirilmiş yeniden kullanılabilirliği eş hareketsiz tam hücre Biyokatalizörler için protokol sundu. Kofaktör yenilenmesi işlevsel tamamlayıcı enzimleri ifade eden iki Escherichia coli suşları birleştirilmesi ile elde edilir; Bütün hücre gibi bir biyokatalizör hareketsizleştirme kalsiyum aljinat taneleri hücre kapsülleme ile elde edilir.

Kofaktör Yenilenme ve Geliştirilmiş kullanırlılık için Aljinat Boncuk Multi-biyokatalizi immobilizasyonu

Bu yordamı, kolay ve hızlı bir mikrosıvısal aygıt ile özelleştirilebilir geometri ve petrol kurtarma çalışmaları için organik sıvılar tarafından şişme direnç üretmek için hedeftir. Bir polydimethylsiloxane kalıp ilk oluşturulan ve epoksi esaslı aygıt döküm için kullanılır. Bir temsilci deplasman çalışma bildirilmektedir.

Gözenek çaplı olay süreçleri gözenekli ortamda petrol kurtarma uygulamaları için karakterize için mikrosıvısal aygıtlar

Kirlilik tüm biyomları etkiler. Deniz ortamları özellikle, özellikle mercan resifleri, dünya üzerindeki en hassas ekosistemler biri etkilenmiştir. Biyoremediasyon, organizmaların kirleticileri bozabilme kapasitesidir. Burada, mercanlar için biyoremediasyon yeteneği ve potansiyel probiyotik özellikleri sunan mikropları izole etmek ve test etmek için metodolojileri tanımlıyoruz.

Metaorganizma Araştırma ve Koruma için Biyoremediasyon ve Probiyotikler Gelişimi için Mikrobiyal Suşların Prospektileri

Siklopentane'ye batırılmış bir su damlacığının arayüzünde nonik yüzey aktif maddelerin varlığında hidrat oluşumunu incelemek için bir protokol sıyoruz. Protokol, düşük maliyetli, programlanabilir, sıcaklık düzenleyicisi oluşturmaktan oluşur. Sıcaklık kontrol sistemi görselleştirme teknikleri ve iç basınç ölçümleri ile birleştirilir.

Düşük Maliyetli Entegre Modüler Peltier Cihazı Kullanarak Yağ-Su Arayüzlerinde Hidrat Kristalizasyonu Üzerine Sürfaktan Etkilerinin İncelenmesi

Burada, inatçı materyallerin parçalanmasında rol oynayan mantar suşlarını aramak için toprak biyoçeşitliliğini taramak için bir protokol sunuyoruz. İlk olarak, hümik asitler veya lignoselüloz üzerinde büyüyebilen mantar suşları izole edilir. Aktiviteleri daha sonra hem enzimatik testlerde hem de hidrokarbonlar ve plastikler gibi kirleticiler üzerinde test edilir.

İnatçı Malzemelerin Parçalanmasında Rol Oynayan Mantarlar için Toprak Biyoçeşitliliğinden İzolasyon ve Tarama

İlaç taşıyıcı uygulamalar için kullanılan yağlar, hastaların lipid profilini bozabilir, bu da kardiyovasküler hastalıklarda istenmeyen bir durumdur. Omega-3 yağ asitleri açısından zengin yağlar, geleneksel yağlara sağlıklı bir alternatiftir ve kendi kendine emülsifiye edilmiş ilaç dağıtım sistemleri için muazzam bir potansiyele sahiptir.

Lipofilik İlaçların Çözünürlüğünü Arttırmak için Sağlıklı Yağların Kendi Kendine Nanoemülsifikasyonu

Bir alkali katalizör kullanan bitkisel yağlar için güvenli bir ultrasonik destekli transesterifikasyon yöntemi burada sunulmaktadır. Yöntem, saf biyodizel ürünleri hazırlamak için hızlı ve verimlidir.

Bitkisel Yağlardan Ultrasonik Destekli Biyodizel Ürünlerinin Hazırlanması

Bu çalışma, farmasötikler ve per- ve polifloroalkil maddeler (PFAS) dahil olmak üzere sudaki mikro kirleticilerin bozunması için bir Hiperbolik Vorteks Plazma Reaktörü içinde altı farklı tipte plazma deşarjının üretilmesi için metodolojiyi sunmaktadır.

Sudaki mikro kirleticilerin giderilmesi için hiperbolik bir vorteks plazma reaktörünün uygulanması

Bu çalışmanın genel amacı, bir perakende deli bir ortamda gıda kaynaklı patojen Listeria monocytogenes potansiyel çapraz kontaminasyon mekanizmasını göstermekti. Bu metodoloji, patojen kirlenme izlemek için farklı ortamlarda çeşitli tatbik edilebilir.

Floresan Tozu Kullanımı Perakende Ortamlarda Mikrobiyal Bulaşma Takip - Bir Perakende Deniz Çevre Örneği

Keşfedin biyosürfaktan üreten mikropların taranması ve karakterizasyonu için yöntemleri. Rhodococcus, Lysinibacillus ve Paenibacillus suşlarından elde edilen biyosürfaktanların kum paket kolon tekniğiyle artık petrol kurtarma uygulamalarındaki etkinliğini değerlendirin.

Biyosürfaktanların Kombinasyonu Kullanılarak Geliştirilmiş Yağ Geri Kazanımı

Daha fazla video keşfet