Name: Sıçan Astrositleri ve Mikroglianın Birincil Kültürleri ve Amiyotrofik Lateral Skleroz Çalışmalarında Kullanımları (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-06-23T12:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 36 s
Description: Öğrenin, sıçan kortekslerinden astrosit ve mikroglia birincil kültürlerini hazırlama protokolünü. Amiyotrofik lateral skleroz çalışmalarında intraselüler Ca²⁺ sinyalini görüntülemek için bu yöntemi kullanın.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma, Sırbistan Eğitim Bilim ve Teknolojik Kalkınma Bakanlığı Sözleşmesi No. 451-03-9/2021-14/ 200178, MDBF - NENS Eğitim ve Öğretim Kümesi projesi "Nöroinflamasyonda Glia Üzerine Üçlü Kurs" ve EC H2020 MSCA RISE hibe #778405 tarafından desteklenmiştir. İmmünohistokimya görüntülerini sağladıkları için Marija Adžić ve Mina Perić'e ve kağıt yazımında yardımcı oldukları için Danijela Bataveljić'e teşekkür ederiz.

Tüm deneyler, hayvanların bilimsel amaçlarla korunmasına ilişkin AB direktiflerine uygun olarak ve Belgrad Üniversitesi Biyoloji Fakültesi Etik Komisyonu'nun izniyle (onay numarası EK-BF-2016/08) gerçekleştirilmiştir. Hasta materyali (IgG'ler için serum) ile ilgili olarak, insanları içeren deneyler için Dünya Tabipler Birliği Etik Kurallarına (Helsinki Deklarasyonu) uygun olarak bilgilendirilmiş hastanın rızası ile rutin klinik muayene için toplanmıştır. Protokol, Sırbistan Klinik Merkezi Etik Kurulu (No. 850/6) tarafından onaylanmıştır.
1. Birincil hücre kültürü hazırlığı
<ol><li>Beyin dokusu izolasyonu NOT: İzolasyon, buz gibi soğuk çözeltiler kullanılarak buz üzerinde yapılmalıdır.<ol><li>Primer yenidoğan hücre kültürü 33 için1-3 günlük yenidoğan yavruları kullanın. NOT: Burada sunulan çalışmada Sprague Dawley hSOD1G93A ve transgenik olmayan sıçanlar kullanılmıştır. Genotipleme için, daha sonra DNA ekstraksiyonu ve PCR için sıçan kuyrukları kullanıldı.</li>
		<li>Yavrunun kafasına% 70 etanol serpin ve makas kullanarak hemen hızlı bir şekilde kafasını kesin.</li>
		<li>Kafatasını ortaya çıkarmak için küçük açılı makas kullanarak cildi kesin. Foramen magnumundan yörüngelere doğru bir kesim yaparak kafatasını açın. Ardından, dik bir orta hat kesimi yapın. Beyni kafatasından çıkarın ve fosfat tamponlu salin (PBS) içeren bir Petri kabına yerleştirin. NOT: Transgenik ve transgenik olmayan yavrular arasındaki çapraz kontaminasyonu önlemek için yavrular arasındaki aletleri temizleyin. Kortiklerin beynin geri kalanından izolasyonu bir stereomikroskop altında yapılmalıdır.</li>
		<li>Forsepslerin ucunu kullanarak, her iki yarım küre arasındaki bağlantıları yırtın. Ardından, bir yarımküreyi merkezden yana doğru hafifçe iterek yarım küreleri kavisli forseps ile ayırın.</li>
		<li>Meninksleri düz ve kavisli forsepslerle dikkatlice yırtarak çıkarın.</li>
		<li>Hipokampüsü kavisli bir forseps ile sıkıştırarak çıkarın. Hipokampüsü atın veya başka bir hücre kültürü hazırlığı için kullanın. NOT: Steril koşulları sağlamak için laminer akış başlığı altında başka adımlar da gerçekleştirilmelidir.</li>
	</ol></li>
	<li>Doku homojenizasyonu ve ayrışması<ol><li>Bir korteksi 3 mL soğuk PBS ile doldurulmuş 15 mL'lik bir tüpe aktarın. Süspansiyonu 1 mL'lik bir uçla yukarı ve aşağı doğru pipetleyin, süspansiyon homojen hale gelene kadar 10-15 vuruşu tamamlayın. NOT: Bu süreçte kabarcık üretmemek için çok dikkatli olun.</li>
		<li>5 dakika boyunca 500 × g'da santrifüj. Süpernatantı çıkarın ve peleti 1 mL'lik bir uçla yukarı ve aşağı pipetleyerek 3 mL soğuk PBS'de yeniden askıya alın. Santrifüjleme adımını tekrarlayın. NOT: Bu noktadan itibaren kullanılan tüm çözeltiler 37 °C'ye kadar ısıtılmalıdır.</li>
		<li>Süpernatantı atın ve peleti,% 10 fetal sığır serumu (FBS) ve antibiyotikler (penisilin ve streptomisin) ile desteklenmiş 2 mL'lik tam Dulbecco'nun Modifiye Kartal Ortamına (DMEM) geri koyun. Homojenatı 2 mL'lik bir tüpe aktarın.</li>
		<li>Tek hücrelerin süspansiyonunu yapmak için homojenatı 21 G ve 23 G iğnelerden (her biri üç kez) geçirin. NOT: Bu süreçte kabarcık üretmemek için çok dikkatli olun.</li>
	</ol></li>
	<li>Bir korteksten hazırlanan hücre süspansiyonunu, 3 mL tam DMEM içeren 60 mm çapında bir Petri kabına veya bir T25 şişesine (yüzey yapışkan hücrelerin büyümesi için bir polipeptit kaplama ile önceden işlenmiş) dökün. Petri kabını hafifçe sallayın, böylece süspansiyon eşit olarak dağıtılır.</li>
	<li>İnkübatördeki hücreleri, 37 ° C'de% 5 CO2/95% havanın nemlendirilmiş bir atmosferinde büyütün.</li>
	<li>İzolasyondan 48 saat sonra ortamı değiştirin ve ortamı her 3 günde bir değiştirin.</li>
	<li>Astrosit büyümesini teşvik etmek için, hücreler% 70 -% 80 akıcılığa ulaştığında, gevşek bir şekilde bağlanmış glial hücreleri ve ortamdaki FBS izlerini çıkarmak için önceden ısıtılmış PBS ile yıkayın.<ol><li>1 mL önceden ısıtılmış tripsin çözeltisi (% 0.25 tripsin,% 0.02 PBS'de% 0.02 EDTA, steril filtrelenmiş) ekleyerek astrositlerin altta yatan tabakasını tripsinize edin.</li>
		<li>Çanağı inkübatöre 2-5 dakika boyunca 37 ° C'de yerleştirin.</li>
		<li>Mikroskop altındaki hücreleri kontrol edin. Ayrılmaya başladıklarında, 4 mL tam DMEM ekleyin.</li>
		<li>Hücre süspansiyonunu toplayın ve 15 mL'lik bir tüpe aktarın. 5 dakika boyunca 500 × g'da santrifüj.</li>
		<li>Süpernatantı atın ve peleti 1 mL tam ortamda yeniden askıya alın. Bir hemositometre kullanarak hücreleri sayın.</li>
		<li>Hücreleri, 5 mL'lik taze tam DMEM'de 104 hücre /cm2 yoğunluğunda yeniden hazırlayın.</li>
	</ol></li>
	<li>Ortamı her 3 günde bir değiştirin. Diğer glial hücre tiplerinin varlığını en aza indirmek için, astrositler% 50 birleşime ulaştıktan sonra ve her ortam değişiminden önce, hücreleri tam DMEM ile yıkayın.<ol><li>Süpernatant ortamı 1 mL'lik bir pipetle aspire edin ve birkaç kez yavaşça hücre tabakasına dağıtın. Bu yıkama adımı sırasında hücre tabakasının tüm yüzeyinin kaplandığından emin olun.</li>
	</ol></li>
	<li>Hücreler% 80 birleşime ulaştığında (genellikle 14 gün sonra), tripsinizasyonu ve astrositlerin toplanmasını adım 1.6'da açıklandığı gibi tekrarlayın.</li>
	<li>Tohum 5 × poli-L-lizin (50 μg / mL) ile kaplanmış 7 mm'lik dairesel cam kapak kapağı üzerinde astrositlerin 103'ü . Bunları 48 saat sonra deneylerde kullanın.</li>
	<li>Mikroglia'yı teşvik etmek için, adım 1.7'den sonra, glial hücrelerin akıcı bir tabaka34'e ulaşmasına izin verin. Mikroglial hücreler astrosit tabakasının üstünde göründüğünde (10-15 gün sonra, daha küçük, daha oval gövdeleri ve daha kısa süreçleri tarafından tanınan), Petri kabını 220 rpm'de 2 saat boyunca yörüngesel bir çalkalayıcı üzerinde çalkalayın.</li>
	<li>Mikroglial hücrelerin dağıtılması ve tohumlanması<ol><li>Süpernatant ortamı 1 mL'lik bir pipet ucuyla aspire ederek ayrılan ve gevşek bir şekilde bağlanmış hücreleri hafifçe yıkayın ve birkaç kez yavaşça hücre tabakasına dağıtın. Bu yıkama adımı sırasında hücre tabakasının tüm yüzeyini kapladığınızdan emin olun, ortamı ayrılmış hücrelerle toplayın ve 15 mL'lik bir tüpe aktarın.</li>
		<li>5 dakika boyunca 500 × g'da santrifüj. Süpernatantı atın ve peleti 1 mL ortamda yeniden askıya alın.</li>
		<li>Tek hücreli bir süspansiyon elde etmek için hücre süspansiyonunu 21 G'lik bir iğneden geçirin. NOT: Yayınlanan yöntemlerin çoğu, dokuyu ayırmak için tripsin veya papain kullanır; Bununla birlikte, 21 G iğneleri, hücrelerin aşırı sindirimini önleme avantajına sahiptir ve daha yumuşak bir ayrışmaya izin verir.</li>
		<li>Bir hemositometre kullanarak hücreleri sayın. Tohum 5 × poli-L-lizin (50 μg / mL) ile kaplanmış 7 mm'lik dairesel cam kapak kapağı üzerinde 103 mikroglial hücre. Bunları 48 saat sonra deneylerde kullanın. NOT: Sallanarak saf bir mikroglial kültür elde etmek zordur, çünkü oligodendrosit öncü hücreleri ve astrositler, deneycinin deneyimine bağlı olarak hala değişken bir sayıda mevcut olabilir. Glial kültürlerde farklı hücre popülasyonlarının varlığını tahmin etmek için kullanılan immünositokimyasal protokol başka bir yerde tanımlanmıştır35.</li>
	</ol></li>
</ol>2. İmmünositokimya
<ol><li>Kapak kapakları üzerine kaplanmış hücreleri PBS'de durulayın, 2 x 1 dakika.</li>
	<li>Hücreleri oda sıcaklığında (RT) 20 dakika boyunca% 4 paraformaldehit içinde sabitleyin.</li>
	<li>PBS 3 x 5 dakika içinde yıkayın.</li>
	<li>RT'de 45 dakika boyunca% 10 normal eşek serumu (NDS) / % 1 sığır serum albümini (BSA) / % 0.1 Triton X-100 içeren bir bloke edici çözeltide inkübe edin.<ol><li>10 mm çaplı kapak kayması başına 50 μL blokaj çözeltisi ekleyin.</li>
	</ol></li>
	<li>Aşağıdaki seyreltmelerde birincil antikorları %1 NDS/%1 BSA/%0,1 TritonX-100'de hazırlayın: fare anti-GFAP 1:300, keçi anti-Iba1 1:500. Hücreleri birincil antikorlarla gece boyunca +4 ° C'de inkübe edin.</li>
	<li>PBS'de durulayın, 3 x 10 dk.</li>
	<li>Bir florofor ile konjuge edilmiş ikincil antikorlarla inkübe edin: eşek anti-fare (uyarma 488 nm [1:200)) veya eşek anti-keçi (647 nm [1:200)). Karanlıkta RT'de hücreleri 2 saat boyunca inkübe edin.</li>
	<li>PBS'de yıkayın, 7 x 5 dakika.</li>
	<li>RT'de 10 dakika boyunca hücreleri 4',6-diamidino-2-fenilindol (DAPI, 1:4,000) ile inkübe edin.</li>
	<li>PBS 5 x 5 dk.</li>
	<li>Kapak kapaklarını bir montaj çözeltisi kullanarak mikroskop slaytlarına monte edin; kapak kapağı başına bir damla kullanın. NOT: Antikor seyreltmeleri üreticiye bağlı olarak değişebilir. Kullanıcılar deneyleri için en uygun seyreltmeleri belirlemelidir.</li>
</ol>3. Hızlandırılmış video görüntüleme
NOT: Floresan boyayı içeren çözeltiler doğrudan ışıktan korunmalıdır. Görüntüleme deneyine başlamadan önce, perfüzyonu açarken cam kapak kaymasının hareket etmediğinden emin olun.
<ol><li>Çözeltilerin ve hücrelerin hazırlanması<ol><li>Görüntüleme için hücre dışı çözelti (ECS) hazırlayın: 140 mM NaCl, 5 mM KCl, 2 mM CaCal 2, 2 mM MgCl2, 10 mM D-glukoz ve 10 mM HEPES. PH'ı 7,4'e ayarlayın. Ozmolaritenin 280-300 mOsm/kg olduğundan emin olun ve Ca2+: 140 mM NaCl, 5 mM KCl, 2 mM MgCl2, 10 mM D-glukoz, 10 mM HEPES ve 0,1 mM EGTA olmadan ECS hazırlayın.</li>
		<li>Test çözeltilerini hazırlayın: ECS'de çözünmüş 100 μM ATP, Ca2+ içermeyen ECS'de 1 μM Thg ve ECS 8'de 0.1 mg/mL ALSIgG.</li>
		<li>DMEM'in tamamını yıkamak için bir kapak kapağını ECS'li bir kaba aktarın. ECS ile 1 mM stok Fluo-4 stok çözeltisini 5 μM Fluo-4 nihai konsantrasyonuna kadar seyrelterek boya yükleme çözeltisini hazırlayın.<ol><li>Kapaklı kapağı karanlıkta RT'de 30 dakika boyunca boya yükleme çözeltisine hücrelerle birlikte yerleştirin. ECS'deki hücreleri 20 dakika yıkayın.</li>
		</ol></li>
		<li>Hücreler yeterince yüklenmemişse (yani, bazal floresan seviyesi, 400 ms'den fazla pozlama süresine sahip kameranın dinamik aralığının% <5'i kadar düşükse), yükleme süresini 37 ° C'de 45 dakikaya 1 saate kadar artırın. Alternatif olarak, ECS'de seyreltmeden önce Fluo-4 stok çözeltisini DMSO'da eşit hacimde% 20 (w / v) deterjan (Pluronik) ile karıştırın ve son Pluronik konsantrasyonu ~% 0.02 yapın. NOT: Bu çalışmanın deneysel örnekleri, daha önce tarif edildiği gibi ALS hastalarının kan serumlarından izole edilen insan IgG'si ile gerçekleştirilmiştir 4,5,11. Her deney tek bir hastanın IgG örnekleri ile yapıldı.</li>
	</ol></li>
	<li>Video görüntüleme NOT: Bu protokolde, Video Görüntüleme Sistemi bir ksenon kısa ark lambası, bir polikromatör sistemi ve su, gliserin ve yağ daldırma hedefi ile donatılmış ters çevrilmiş bir epifloresan mikroskop ile birleştirilmiştir. Timelapse görüntüleme bir Dijital Kamera Sistemi kullanılarak gerçekleştirildi.<ol><li>Sistemin çalışma sıcaklığına ulaşmasını sağlamak için deneyden 15 dakika önce görüntüleme kurulumunun bileşenlerini açın.</li>
		<li>Kapak kapağını 1 mL çalışma çözeltisi (Ca2+ olmadan ECS veya ECS) ile kayıt odasına yerleştirin.</li>
		<li>Doğru görüntüleme protokolünü seçmek için görüntüleme yazılımını açın ve Edinme panelinde, 480 nm'de uyarma dalga boyu, 505 nm'de dikroik ayna ve 535 nm'de emisyon dalga boyuna sahip Fluo4-filtre çiftlerini seçin.</li>
		<li>Deneme boyunca tutarlı sayıda hücreye sahip olmaya dikkat ederek görüş alanını seçin. Maruz kalma süresini ve dedektör kazancını, sinyalin doygun olmayacağı şekilde uygun şekilde ayarlayın. Elde etmek için pseudocolor modunu seçin. Daha ayrıntılı yönergeler için, üretici tarafından sağlanan el kitabına bakın.</li>
		<li>Örnekleme hızını 1 Hz'e (saniyede 1 kare) ayarlayın.</li>
		<li>Temel belirleme (F0) için 3-5 dakika boyunca bazal floresan seviyesini elde ederek görüntülemeye başlayın. Çalışma çözümünün sürekli akışını sağlayın.</li>
		<li>Çalışma çözümünün akışını durdurun ve istenen süre boyunca test çözümüne geçin (ayrıca Şekil 2 ve Şekil 3 örneklerindeki zaman çubuklarına bakın). Her test çözeltisi arasında, hücreleri 3-5 dakika boyunca çalışma çözeltisinin sabit bir akışıyla yıkayın.</li>
		<li>Çözeltinin üstünden sabit bir emme ayarlayarak kayıt odasındaki çözelti hacmini ~1 mL'de tutun (bkz. Şekil 2E). NOT: İşlemi doğrudan görüntülenen hücrelere uygulamak için, bir cam pipetten (0,8 mm iç çap) yapılmış özelleştirilmiş bir dağıtım sistemi, sıkıştırma valfleri ve bir elektronik valf kontrolörü içeren çözelti değişim sistemi ile birlikte 45°'lik bir açıyla ~350 μm uzağa ve hücrelerin ~1 mm yukarısına yerleştirilmiştir (bkz. Şekil 2E).</li>
	</ol></li>
</ol>4. Veri analizi
<ol><li>Tek tek hücreye karşılık gelen bir ilgi bölgesi (ROI) tanımlayın.<ol><li>En yüksek sinyal yoğunluğuna sahip çerçeveyi seçin (yani, ATP uygulamasından) ve Poligonal Araç uygulamasını kullanarak bir hücreyi çevreleyin. Edinilen alandaki tüm hücreler için tekrarlayın. Daire Aracı'nı kullanarak arka planda beş YG seçin.</li>
		<li>Tek bir hücrenin ortalama sinyal yoğunluğunu ve her zaman diliminin arka planını ölçmek için tüm YG'leri seçin ve ImageJ'deki ROI Manager'da Çoklu Ölçüm komutunu veya ticari yazılımlardaki eşdeğer bir komutu kullanın (bkz.</li>
	</ol></li>
	<li>Yatırım getirilerinin ortalama sinyal yoğunluğu değerlerini bir elektronik tablo olarak dışa aktarın.</li>
	<li>Ortalama beş arka plan yatırım getirisidir ve her karenin ortalama arka planını, aynı anda elde edilen çerçevenin ortalama YG yoğunluğundan çıkarın.</li>
	<li>Elde edilen verileri temel sinyale normalleştirmek için denklem (1) kullanın: ΔF/F 0 = (F - F 0)/F0 (1) burada F, arka plan çıkarma işleminden sonra her zaman diliminin sinyal yoğunluğudur ve F0 , temel Fluo-4 floresansıdır. NOT: Bu çalışmada kişiye özel bir kod kullanılmıştır.</li>
	<li>Kalsiyum aktivitesini analiz etmek için, birkaç parametreyi belirleyin4: kalsiyum zirvesinin genliği (ΔF / F 0), kalsiyum geçicisinin entegre değişimi (zaman integrali, yanıt kaydı altındaki yüzey) (ΔF / F 0 × s), stimülasyonun başlangıcından maksimum kalsiyum geçici (s) değerine kadar geçen zirveye kadar geçen süre, stimülasyonun başlangıcından ΔF / F 0 değerine kadar geçen artış süresi maksimum genlik (ler) in% 50 -% 80'ine, yarı maksimum genlikte (s) geçici bir genliğin yarı genişliği-tam genişliğine, tekrarlayan ise yanıt sıklığına (Hz) ulaşır.</li>
</ol>

Yazarların beyan edecekleri herhangi bir çıkar çatışması yoktur.

Bu yazıda, sıçan hSOD1G93A modelinde ALS gibi hücre (pato) fizyolojisinin farklı yönlerini incelemek için hızlı ve "bütçeye uygun" bir araç olarak birincil hücre kültürleme yöntemi sunulmaktadır. Bu nedenle teknik, daha yüksek bir organizasyon seviyesinde (yani, doku dilimlerinde veya canlı bir hayvanda) ekstrapolasyon yapılabilen ve daha fazla araştırılabilen tek hücre seviyesindeki çalışmalar için uygundur. Bununla birlikte, bir teknik olarak hücre kültürlemenin birkaç uyarısı vardır. Beyin dokusu izolasyonu...

Hücre kültürü teknikleri, sağlık ve hastalıkta hücresel nörofizyolojinin çeşitli alanlarında sayısız ilerlemeye yol açmıştır. Özellikle, bir laboratuar hayvanının nöronal dokusundan yeni izole edilmiş birincil hücre kültürleri, deneycinin farklı biyokimyasal ortamlardaki ve fizyolojik kurulumlardaki çeşitli hücrelerin davranışlarını yakından incelemesine izin verir. Hızlandırılmış video mikroskobu ile birlikte Ca2 + duyarlı boyalar gibi farklı floresan fizyolojik göstergelerin kullanılması, hücresel biyofiziksel ve biyokimyasal süreçler hakkında gerçek zamanlı olarak daha iyi bir fikir verir.
ALS, üst ve alt motor nöronları etkileyen yıkıcı bir nörodejeneratif hastalıktır1. Hastalık ailesel tipte kompleks bir patogeneze sahiptir, ancak çoğunlukla sporadik formdadır (vakaların %90'ı)2. Hücre dışı otonom mekanizmaların, öncelikle glial hücrelerin temel rolü nedeniyle ALS patofizyolojisine katkıda bulunduğu iyi bilinmektedir3. ALS ayrıca inflamasyonun humoral ve hücresel faktörlerinin tutulumu olan nöroinflamatuar bir hastalık olarak da karakterizedir.
İmmünoglobulin G, ALS ve diğer nörodejeneratif hastalıklarda moleküler bir belirteç olarak yaygın olarak kullanılmaktadır. Bu belirtecin serum seviyesinin incelenmesi, hastalıkta nöroinflamasyonun varlığını ve evresinigösterebilir 4,5,6, beyin omurilik sıvısındaki varlığı ise kan beyin bariyerinin ihlalini gösterebilir 7. IgG'ler ayrıca ALS hastalarının omurilik motor nöronlarında birikintiler olarak tanımlandı7. Bununla birlikte, bu yaklaşım IgG düzeyinin hastalığın evresi ve özellikleri ile korelasyonunda bazı tutarsızlıklar göstermiştir6.
ALS hastalarının serumlarından izole edilen IgG (ALS IgG), naif astrositlerde8 ve nöronlarda glutamat salınımında kalsiyum yanıtı indükleyebilir ve bu da ALS patolojisi9'un bir işareti olan eksitotoksik bir etkiye işaret eder. Bununla birlikte, hSOD1G93A ALS sıçan modeli üzerine yapılan çalışmalar (insan SOD1 mutasyonu10'un birden fazla kopyasını içeren), kültürlenmiş nöroglial hücrelerde11, dokularda 12,13,14 veya canlı hayvanlarda oksidatif stresin bir dizi belirtecini göstermiştir 13. ALS sıçan modelinden kültürlenen astrositlerin, peroksit tarafından indüklenen oksidatif strese, transgenik olmayan çöp arkadaşlarından gelen astrogliadan daha yatkın olmaları dikkat çekicidir11.
Kültürdeki mikroglial hücreler ALS IgG'den daha az belirgin bir şekilde etkilenir. Yani, bir BV-2 mikroglial hücre hattı, sadece 4/11 ALS IgG hasta örneklerinin uygulanmasına yanıt olarak oksidatif stresin floresan belirteçlerinden gelen sinyalde bir artış gösterdi15. Mikroglia'nın birçok nöroinflamatuar patolojiye katıldığı, ALS16,17'nin hücre dışı otonom mekanizmasında oksidatif strese ve geç progresyon fazına katkıda bulunduğu iyi bilinmektedir. Bununla birlikte, ALS IgGs ile ilgili veriler, bu hücrelerin ALS iltihabının bu humoral faktörlerine astrositler kadar reaktif olmayabileceğini göstermiştir. ALS murin modellerinden primer astrositlerle, sadece yavrularda değil, aynı zamanda semptomatik hayvanlarda, beyinde veya omurilikte 18,19,20,21 üzerinde çeşitli çalışmalar yapılmıştır. Bu aynı zamanda mikroglial primer kültürler için de geçerlidir, ancak astrositlerden daha az ölçüde ve çoğunlukla embriyonik aşamadaki beyin bölgelerinden22,23,24.
Kültürdeki hücreler üzerinde Ca2 + 'nın hızlandırılmış video görüntülemesini, öncelikle eksitotoksisitenin fizyolojik bir belirteci olarak bu iyonun hücre içi geçicilerini takip etmenin bir aracı olarak kullanıyoruz. Böylece, bu geçicilerin biyofiziksel karakterizasyonu ile (genlik, geçici altındaki alan, yükselme zamanı, frekans) araştırmacı, nörodejenerasyonun çeşitli hücresel modellerinden deneysel tanı parametreleri elde edebilir. Bu nedenle bu teknik, IgG'lerin hastalık biyobelirteçleri olarak kantitatif fizyolojik değerlendirmesinin bir avantajını sunar. ALS indüksiyonunda IgGs ve Ca2+'nın rolü hakkında geniş bir literatür bulunmaktadır. Bu çalışmaların çoğu, hasta IgG'leri deney hayvanlarına 25,26,27,28,29 enjekte ederek ALS'yi indükleyerek gerçekleştirildi ve daha sonra hücre içi Ca 2+ yükselmesi ve IgG birikintileri görüldü. Bir dizi çalışma, ALS IgG'lerin in vitro30,31,32 motor sinaps üzerindeki etkisini araştırdı. Yukarıdaki bağlamda, burada sunulan teknik, ALS'nin hücre dışı otonom mekanizmasında önemli oyuncular olarak glial hücrelere odaklanmakta ve nöroinflamasyonun humoral faktörleri olarak IgG'lere potansiyel eksitotoksik yanıtlarını ölçmektedir. Bu yaklaşım, farklı hücre kültürü sistemlerinde ve genel inflamasyonun hücresel modellerinde bütün serumlar, BOS veya sitokinler gibi diğer humoral faktörlerin test edilmesinde daha geniş bir uygulamaya sahip olabilir.
Bu yazıda, Sprague Dawley sıçanlarının kortekslerinden glial hücrelerin, astrositlerin ve mikrogliaların birincil kültürlerinin nasıl hazırlanacağı ve bu hücrelerin hasta sera kaynaklı IgG ile ALS patofizyolojisini incelemek için nasıl daha fazla kullanılacağı açıklanmaktadır. Protokoller, kültürlenmiş hücrelerin boya yüklenmesi (Şekil 1) ve hızlandırılmış video görüntüleme deneylerinde Ca2+ değişikliklerinin kayıtları için detaylandırılmıştır. Video kayıtlarının örnekleri, glial hücrelerin ALS IgG'ye ATP'ye kıyasla nasıl tepki verdiğini gösterecektir, ikincisi pürinerjik membran reseptörlerini aktive eder. İlk kez gösterilen, hSOD1G93A ALS sıçan beyninden izole edilen astrositlerin, transgenik olmayan kontrollere kıyasla ALS IgG'ye daha belirgin bir Ca2+ yanıtı ile nasıl tepki verdiğine ve bu sürecin Ca2 + depo operasyonundaki farklılıklarla nasıl ilişkilendirileceğine dair bir örnektir. Ayrıca, ALS IgG ile akut olarak meydan okuyan mikroglial hücrelerde, hücre içi kalsiyumun sadece mütevazı bir cevabı ile kalsiyum görüntülemenin bir örneği gösterilmiştir.

<table><tbody><tr><td>15 mL tüp</td><td>Sarstedt, Almanya</td><td>62 554 502</td><td></td></tr><tr><td>2 mL tüp</td><td>Sarstedt, Almanya</td><td>72.691</td><td></td></tr><tr><td>21 G iğne</td><td>Nipro, Japonya</td><td>HN-2138-ET</td><td></td></tr><tr><td>23 G iğne</td><td>Nipro, Japonya</td><td>HN-2338-ET</td><td></td></tr><tr><td>5 mL şırınga</td><td>Nipro, Japonya</td><td>SY3-5SC-EC</td><td></td></tr><tr><td>6 mm dairesel cam lamel</td><td>Menzel Glasser, Almanya</td><td>630-2113</td><td></td></tr><tr><td>60 mm Petri kabı</td><td>ThermoFisher Sientific, ABD</td><td>130181</td><td></td></tr><tr><td>ATP</td><td>Sigma-Aldrich, Almanya</td><td>A9062</td><td></td></tr><tr><td>AxioObserver A1</td><td>Carl Zeiss, Almanya</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sığır serum albümini</td><td>Sigma-Aldrich, Almanya</td><td>B6917</td><td></td></tr><tr><td>Kalsiyum klorür</td><td>Sigma-Aldrich, Almanya</td><td>2110</td><td></td></tr><tr><td>Santrifüj</td><td>Eppendorf, Almanya</td><td></td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Sigma-Aldrich, Almanya</td><td>10236276001</td><td></td></tr><tr><td>D-glukoz</td><td>Sigma-Aldrich, Almanya</td><td>158968</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Sigma-Aldrich, Almanya</td><td>D5648</td><td></td></tr><tr><td>Eşek anti keçi AlexaFluor 647 IgG antikoru</td><td>Invitrogen, ABD</td><td>A-21447</td><td></td></tr><tr><td>Eşek karşıtı fare AlexaFluor 488 IgG antikoru</td><td>Invitrogen, ABD</td><td>A-21202</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Sigma-Aldrich, Almanya</td><td>EDS-100G</td><td></td></tr><tr><td>EGTA</td><td>Sigma-Aldrich, Almanya</td><td>E4378</td><td></td></tr><tr><td>" evolve"-EM 512 Dijital Kamera Sistemi</td><td>Fotometri, ABD</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fetal sığır serumu (FBS)</td><td>Gibco, ThermoFisher Scientific, ABD</td><td>10500064</td><td></td></tr><tr><td>Fiji ImageJ Yazılımı</td><td>GNU Genel Kamu Lisansı</td><td></td><td></td>altında açık kaynak</tr><tr><td>FITC filtre seti</td><td>Chroma Technology Inc., ABD</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fluo-4</td><td>Moleküler Problar, ABD</td><td>F14201</td><td></td></tr><tr><td>Keçi anti-Iba1</td><td>Fujifilm Wako Chemicals, ABD</td><td>011-27991</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Biowest, Fransa</td><td>P5455</td><td></td></tr><tr><td>Yüksek Hızlı Çözüm Değişim Sistemi</td><td>ALA Scientific Instruments, ABD</td><td></td><td></td></tr><tr><td>İnkübatör</td><td>Memmert GmbH + Co. KG, Almanya</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Magnezyum klorür</td><td>Sigma-Aldrich, Almanya</td><td>M2393</td><td></td></tr><tr><td>Matlab yazılımı</td><td>Math Works, ABD</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fare anti-GFAP</td><td>Merck Millipore, ABD</td><td>MAB360</td><td></td></tr><tr><td>Mowiol 40-88</td><td>Sigma-Aldrich, Almanya</td><td>324590</td><td></td></tr><tr><td>Normal eşek serumu</td><td>Sigma-Aldrich, Almanya</td><td>D9663</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehit</td><td>Sigma-Aldrich, Almanya</td><td>158127</td><td></td></tr><tr><td>Penisilin ve Streptomisin</td><td>ThermoFisher Sientific, ABD</td><td>15140122</td><td></td></tr><tr><td>Poli-L-lizin</td><td>Sigma-Aldrich, Almanya</td><td>P5899</td><td></td></tr><tr><td>Potasyum klorür</td><td>Sigma-Aldrich, Almanya</td><td>P5405</td><td></td></tr><tr><td>Potasyum dihidrojen fosfat</td><td>Carlo Erba Reaktifleri, İspanya</td><td>471686</td><td></td></tr><tr><td>Çalkalayıcı DELFIA PlateShake</td><td>PerkinElmer Yaşam Bilimleri, ABD</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sodyum bikarbonat</td><td>Sigma-Aldrich, Almanya</td><td>S3817</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum klorür</td><td>Sigma-Aldrich, Almanya</td><td>S5886</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum fosfat dibazik heptahidrat</td><td>Carl ROTH GmbH</td><td>X987.2</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum piruvat</td><td>Sigma-Aldrich, Almanya</td><td>P5280</td><td></td></tr><tr><td>Thapsigargine</td><td>Tocris Bioscience, İngiltere</td><td>1138</td><td></td></tr><tr><td>Triton X - 100</td><td>Sigma-Aldrich, Almanya</td><td>T8787</td><td></td></tr><tr><td>Tripsin</td><td>Sigma-Aldrich, Almanya</td><td>T4799</td><td></td></tr><tr><td>Vapro Buhar Basıncı Ozmometresi 5520</td><td>Wescor, ELITechGroup Inc., ABD</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ViiFluor Görüntüleme Sistemi</td><td>Visitron System Gmbh, Almanya</td><td></td><td></td></tr><tr><td>VisiChrome Polikromatör</td><td>Sistemi Visitron System GmbH, Almanya</td><td></td><td></td></tr><tr><td>VisiView yüksek performanslı kurulum</td><td>Visitron System Gmbh, Almanya</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Xenon Kısa Ark lambası</td><td>Ushio, Japonya</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

sıçan astrositleri ve mikroglia'nın birincil kültürleri ve amiyotrofik lateral skleroz Çalışmalarında kullanımları

Primary Cultures of Rat Astrocytes and Microglia and Their Use in the Study of Amyotrophic Lateral Sclerosis

Bu protokol, Sprague Dawley sıçanlarının kortekslerinden glial hücrelerin, astrositlerin ve mikrogliaların birincil kültürlerinin nasıl hazırlanacağını ve bu hücrelerin sıçan hSOD1G93A modelinde amiyotrofik lateral skleroz (ALS) patofizyolojisini incelemek amacıyla nasıl kullanılacağını göstermektedir. İlk olarak, protokol astrositlerin ve mikrogliaların doğum sonrası sıçan kortekslerinden nasıl izole edileceğini ve kültürleneceğini ve daha sonra astrositlerin glial fibriler asidik protein (GFAP) belirtecini ve iyonize kalsiyum bağlayıcı adaptör molekülü 1 (Iba1) mikroglial belirtecini kullanarak immünositokimya ile bu kültürlerin saflık için nasıl karakterize edileceğini ve test edileceğini göstermektedir. Bir sonraki aşamada, kültürlenmiş hücrelerin boya yüklemesi (kalsiyuma duyarlı Fluo 4-) ve canlı hücreler üzerindeki video görüntüleme deneylerinde Ca2+ değişikliklerinin kayıtları için yöntemler açıklanmaktadır.
Video kayıtlarının örnekleri şunlardan oluşur: (1) ALS hastalarından izole edilen immünoglobulin G'ye (IgG) akut olarak maruz kalan kültürlü astrositlerin Ca2+ görüntüleme vakaları, aynı deneyde gösterildiği gibi ATP'ye verilen cevaba kıyasla karakteristik ve spesifik bir yanıt göstermektedir. Örnekler ayrıca, hSOD1G93A astrositlerinde ALS IgG tarafından uyarılan hücre içi kalsiyum konsantrasyonunda, transgenik olmayan kontrollere kıyasla daha belirgin bir geçici artış göstermektedir; (2) Endoplazmik retikulum Ca 2+ ATPaz'ın rekabetçi olmayan bir inhibitörü olan thapsigargin (Thg) tarafından kalsiyum depolarının tükenmesi sırasında kültürlenmiş astrositlerin Ca 2+ görüntülenmesi, ardından kayıt çözeltisine kalsiyum ilavesiyle ortaya çıkan depo tarafından işletilen kalsiyum girişi, hSOD1G93A'da ve transgenik olmayan astrositlerde Ca 2+ depo çalışması arasındaki farkı gösterir; (3) Kültürlü mikroglianın Ca 2+ görüntülemesi ağırlıklı olarak ALS IgG'ye yanıt eksikliği gösterirken, ATP uygulaması Ca2+ değişikliğine neden olmuştur. Bu makale aynı zamanda kritik hücre yoğunluğu ve kültürlerin saflığı ile ilgili olası uyarıları ve uyarıları vurgulamakta, Ca2+ boya ve boya yükleme tekniklerinin doğru konsantrasyonunu seçmektedir.

Kültürde farklı glial hücre tiplerinin karakterizasyonu Deneyler için astrositlerin üretilmesi genellikle 15-21 gün sürerken, mikroglial hücrelerin büyümesi 10-15 gün sürer. Kültürün hücre saflığını değerlendirmek için immün boyama yapıldı. Şekil 1 , astrositik işaretleyici GFAP ve mikroglial işaretleyici Iba1'in ilgili kültürlerdeki çift etiketleme ekspresyonunu göstermektedir.
Kalsiyum görüntülemenin sağlıklı ve hastalıklı astrositlerin hücre...

Burada, hSOD1G93A sıçan modelinde amiyotrofik lateral sklerozun patofizyolojisi üzerine araştırmalar için hücre içi Ca2+'nın hızlandırılmış video görüntülemesi için sıçan kortekslerinden glial hücrelerin, astrositlerin ve mikrogliaların primer kültürlerinin nasıl hazırlanacağına dair bir protokol sunuyoruz.

Sıçan Astrositleri ve Mikroglia'nın Birincil Kültürleri ve Amiyotrofik Lateral Skleroz Çalışmalarında Kullanımları

This protocol demonstrates how to prepare primary cultures of glial cells, astrocytes, and microglia from the cortices of Sprague Dawley rats and how to ...

Bu protokol, sağlıkta ve hastalıkta her hücre tipi yanıtını karakterize eden hücreler arası kalsiyum sinyal paternini ortaya çıkarmaya izin verir. Bu teknik, karmaşık hücresel davranışın hızlı ve ayrıntılı biyofiziksel karakterizasyonunu sağlar. Bu IgG kaynaklı kalsiyum sinyalini nöroinflamatuar hastalıkların kişiselleştirilmiş tıbbı için parmak izi olarak kullanmayı planlıyoruz.Gerçek hayat ortamında, tüm süreçleri ve olayları, özellikle mikroskop altında olanları görmek ve takip etmek kolay değildir. Bu nedenle, görsel veriler önemlidir. Bir ila üç günlük yavruların kafasını kestikten sonra, küçük açılı makas kullanarak cildi keserek kafatasını ortaya çıkarın.Daha sonra foramen magnumunu yörüngelere doğru keserek kafatasını açın ve dik bir orta hat kesimi yapın. Beyni kafatasından çıkarın ve PBS içeren bir Petri kabına yerleştirin. Her iki yarım küre arasındaki bağlantıları koparmak için forsepsin ucunu kullanın ve bir yarımküreyi merkezden yana doğru hafifçe iterek yarım küreleri kavisli forseps ile ayırın.Meninksleri dikkatlice yırtarak çıkarmak için düz ve kavisli forseps kullanın. Daha sonra hipokampüsü kavisli forsepslerle sıkıştırarak çıkarın ve atın veya başka bir hücre kültürü hazırlığı için kullanın. Daha sonra, korteksi üç mililitre soğuk PBS içeren 15 mililitrelik bir tüpe aktarın ve bir mililitrelik bir uçla 10 ila 15 kez yukarı ve aşağı pipet yaparak dokuyu homojenize edin.Hücreleri beş dakika boyunca 500 g'da santrifüj yapın. Süpernatantı atın ve bir mililitrelik bir uçla pipetleyerek peleti üç mililitre soğuk PBS'de yeniden askıya alın. Bir kez daha santrifüj yapın ve peleti% 10 FBS ve antibiyotiklerle desteklenmiş iki mililitre tam DMEM'de yeniden askıya alın.Homojenatı iki mililitrelik bir tüpe aktardıktan sonra, homojenatı tek hücrelerin süspansiyonunu yapmak için 21 ve 23 gauge iğnelerden geçirin. Bir korteksten hazırlanan hücre süspansiyonunu, üç mililitre tam DMEM içeren 60 milimetrelik bir Petri kabına dökün ve Petri kabını hafifçe sallayın, böylece süspansiyon eşit olarak dağıtılır. Nemlendirilmiş bir inkübatördeki hücreleri, 37 santigrat derecede %5 karbondioksit ve %95 hava ile inkübe edin.Astrosit büyümesini teşvik etmek için, eski ortamı çıkarın ve gevşek bir şekilde bağlanmış glial hücreleri ve FBS izlerini% 70 ila% 80 akıcılığa ulaştıklarında çıkarmak için hücreyi önceden ısıtılmış PBS ile yıkayın. Daha sonra, bir mililitre önceden ısıtılmış tripsin çözeltisi ekleyerek altta yatan astrosit tabakasını tripsinize edin ve iki ila beş dakika boyunca 37 santigrat derecede inkübe edin. Hücrelerin ayrılmaya başlayıp başlamadığını kontrol etmek için bir mikroskop kullanın ve dört mililitre tam DMEM ekleyin.Hücre süspansiyonunu toplayın ve 15 mililitrelik bir tüpe aktarın. Daha sonra tüpü beş dakika boyunca 500 g'da santrifüj edin. Süpernatantı atın ve peleti bir mililitre tam ortamda yeniden askıya alın.Bir hemositometre kullanarak hücreleri sayın. Ardından, kültür yemeğini hazırlayın ve kültür ortamı ekleyin. Hücreleri, beş mililitre taze tam DMEM'de santimetre kare başına 10 ila dördüncü hücre yoğunluğunda yeniden plakalayın ve her ortam değişiminden önce hücreleri tam DMEM ile yıkayın.% 70 ila% 80 akıcılığa ulaştıktan sonra, tripsinizasyonu tekrarlayın ve yedi milimetrelik poli-L-lizin kaplı dairesel cam kapak kayması üzerine beş kez 10 ila üçüncü astrositleri tohumlayın. 10 dakika boyunca takmalarına izin verin ve tam DMEM ekleyin. Bunları 48 saat sonra deneylerde kullanın.Mikroglial kültürleri hazırladıktan sonra, mikroglia'yı teşvik etmek için, glial hücrelerin akıcı hale gelmesine izin verin ve mikroglia 10 ila 15 gün sonra astrosit tabakasının üstünde görünecektir. Petri kabını yörüngesel bir çalkalayıcıda 220 RPM'de iki saat çalkalayın. Şimdi, ayrılan ve gevşek bir şekilde tutturulmuş hücreleri, süpernatantı bir mililitrelik pipet ucuyla aspire ederek hafifçe yıkayın.Süpernatantı birkaç kez hücre tabakasına yavaşça dağıtın ve bu yıkama adımı sırasında tüm hücre tabakası yüzeyinin kaplanmasını sağlayın. Ortamı ayrılmış hücrelerle toplayın ve 15 mililitrelik bir tüpe aktarın. Daha önce gösterildiği gibi hücreleri merkeze alın, yeniden askıya alın ve sayın.Yedi milimetrelik poli-L-lizin kaplı dairesel cam kapak kayması üzerinde beş kez 10 ila üçüncü mikroglia tohumlayın. 10 dakika boyunca takmalarına izin verin ve tam DMEM ekleyin. Bunları 48 saat sonra deneylerde kullanın.DMEM'in tamamını yıkamak için, bir kapak kaymasını hücre dışı çözelti içeren bir kaba aktarın. Beş mikromolar'ın nihai konsantrasyonunu elde etmek için bir milimolar Fluo-4'yi hücre dışı çözelti ile seyrelterek boya yükleme çözeltisini hazırlayın. Kapak kaymasını karanlıkta oda sıcaklığında 30 dakika boyunca boya yükleme çözeltisindeki hücrelerle birlikte yerleştirin ve hücreleri 20 dakika boyunca hücre dışı çözelti içinde yıkayın.Kapak kaymasını bir mililitre çalışma solüsyonu ile kayıt odasına yerleştirin. Deneme boyunca tutarlı sayıda hücreye sahip görüş alanını seçin. Görüntülemeye başlayın ve üç ila beş dakika boyunca bazal floresan seviyesini elde ederek taban çizgisini belirleyin.Ardından çalışma çözümünün akışını durdurun ve istenen süre boyunca test çözümüne geçin. Her test çözeltisi arasında, hücreleri üç ila beş dakika boyunca çalışma çözeltisinin sabit bir akışıyla yıkayın. Çözeltinin üstünden sabit bir emme ayarlayarak kayıt odasındaki çözelti hacmini bir mililitrede tutun.En yüksek sinyal yoğunluğu çerçevesini seçin ve Poligonal araç uygulamasını kullanarak bir hücreyi çevreleyin. Edinilen alandaki tüm hücreleri çevreledikten sonra, Daire aracını kullanarak arka planda beş ilgi alanı seçin. Ardından, tek bir hücrenin ortalama sinyal yoğunluğunu ve her zaman dilimi için arka planı ölçün.İlgilendiğiniz tüm bölgeleri seçin ve ImageJ'deki ROI Manager'da Multi-Measure komutunu veya ticari yazılımlardaki eşdeğer bir komutu kullanın. Verileri MATLAB yazılımına aktardıktan sonra, ortalama beş arka plan yatırım getirisini elde edin ve her karenin ortalama arka planını aynı anda elde edilen karelerin ortalama yatırım getirisi yoğunluğundan çıkarın. Daha sonra, kalsiyum zirvesinin genliğini, kalsiyum geçicisinin entegre değişimini, zirveye ulaşma süresini, yükselme süresini, yarı genişliği ve sıklığı belirleyerek kalsiyum aktivitesini analiz edin.GFAP, astrositleri görselleştirmek için ve Iba1 mikrogliayı görselleştirmek için kullanılır. hSOD1G93A astrositleri, ALS immünoglobulin G'ye, kalsiyum geçicisinin daha büyük genliği, daha önemli bir genel entegre değişim ve transgenik olmayan astrositlerden daha kısa bir zirve süresi ile yanıt verir. ALS immünoglobulin G'ye verilen yanıt, ATP'ye verilen yanıttan ayırt edilebilir.hSOD1G93A astrositleri, depo tükenmesinin ortaya çıkardığı gibi depolarda daha yüksek bir kalsiyum iyonu seviyesine sahipti ve bu da bu iyonun aşırı yüklendiğini gösteriyordu. Mikroglia kültürlendi ve ortalama floresan yoğunluğu zamanla ekstrakte edildi. Üç hücrenin kalsiyum izleri, sadece bir hücrenin ALS immünoglobulin G'ye yanıt verdiğini, tüm hücrelerin ATP'ye yanıt verdiğini temsil ediyordu.Sahte renkli görüntüler, ALS, IgG ve ATP'ye yanıt olarak floresan yoğunluğunu ve taban çizgisini temsil ediyordu. Hücrelerin yeterince yüklenmesi ve görüntüleme sisteminin parametrelerinin uygun şekilde ayarlanması gerekir, böylece sinyal deney sırasında ayrılmaz. Kalsiyum yayma ile birlikte, yama kelepçeleme yapılabilir.Böylece, farklı membran iyon akımları ile kalsiyum yayan arasındaki korelasyonun daha eksiksiz bir resmi elde edilebilir. Hücre içi kalsiyum homeostazının anlaşılması, doğal olduğu kadar stresli ve dışsal uyaranlara verilen çeşitli yanıtların araştırılması için çok önemlidir.

primary-cultures-rat-astrocytes-microglia-their-use-study-amyotrophic

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

Burada kültür sıçan kortikal nöronların glial besleyici tabakasının varlığı için bir protokol sağlar. Kültürlü nöronlar polarite kurmak ve sinapslar oluşturmak ve glia elektrofizyoloji, kalsiyum görüntüleme, hücre sağkalım deneyleri, immünhistokimya ve RNA / DNA / protein izolasyonu gibi çeşitli uygulamalarda kullanılmak üzere ayrılabilir.

İlköğretim Rat Kortikal Nöronlar ve Glia bilaminar Co-kültür

Beynin hücresel heterojenite birincil mikroglia Yalıtımlı fizyolojik ve patolojik hem de kendi rolünü araştırmak için esastır. Bu protokol bir mekanik izolasyon ve yüksek verim ve yüksek saflıkta sağlar karışık hücre kültürü tekniği için geçerli birincil mikroglia hücreleri...

Yenidoğan Rat Beyin Dokusu Karışık Glial Hücre Kültürleri Primer mikroglia İzolasyonu

Video, sıçan korteksinden birincil astrositleri kültürlemek için bir tekniği göstermektedir. Korteks, homojen bir glial hücre süspansiyonu elde etmek için mekanik olarak ayrışır, bu daha sonra astrositlerin seçici proliferasyonunu teşvik etmek için polipeptit kaplı plakalar üzerine kaplanır. Daha sonra, astrositler enzimatik olarak plakalardan ayrılır ve saf astrositlerin kültürüne izin vererek taze ortama aktarılır.

Bir Sıçan Yavrusu Beyninden Birincil Astrosit Kültürü Oluşturma

Bu video, sıçan beyinlerinden mikroglia'yı izole etmek ve kültürlemek için bir yöntemi göstermektedir. Mikrogliaya özgü bir monoklonal antikor ile kaplanmış plakalar kullanılarak mikroglia'yı diğer nöronal ve nöronal olmayan hücrelerden ayırmayı gerektirir.

Sıçan Beyinlerinden Serumsuz Besiyeri Kullanılarak Mikroglia İzolasyonu ve Kültürü

Astrositler normal beyin gelişimi ve işlevi, ve merkezi sinir sistemi onarımı için gerekli olan temel biyolojik süreçler katılan yönlü hücreler olduğu kabul edilmiştir. Burada santral sinir sistemi hücrelerinin bu büyük sınıf biyoloji eğitimi saf fare astrosit kültürleri elde etmek için hızlı bir prosedürdür.

Fare Kortikal astrositlerde İzolasyon ve Kültür

Floklanmış, koşullu onkojenik alellerle tasarlanmış ve viral Cre aracılı rekombinasyon yoluyla transforme edilmiş farelerden toplanan fenotipik vahşi tip astrositler ve nöral kök hücreler, astrositom patogenezini modellemek için kullanılabilir in vitro ve in vivo dönüştürülmüş hücrelerin sinjeneik, bağışıklığı yetkin yavruların beyinlerine ortotopik enjeksiyonu ile.

Modelleme Astrositom Patogenez İn Vitro Ve In Vivo Kortikal Astrositler veya Şartlı, Genetiği fareler ile Nöral Kök Hücreler kullanma

nöropatik ağrı gelişimi omurilik glial hücrelerin patolojik değişiklikleri kapsar. Bu hücrelerin in vitro incelenmesi için, yetişkin omurilik dokusu elde edilir ve tasarlanmış güvenilir bir glial kültür sistemi yoksundur. Bu nedenle, biz yetişkin fare omurilik dokusu primer karışık glial kültürlerin nasıl kurulabileceğini burada gösteriyor.

Yetişkin Fare Omurilik Doku İlköğretim Karışık glial Kültürler hazırlanması

Burada açıklanan AWESAM iletişim kuralı diğer beyin hücreleri izolasyonu fare astrocytes bir hızlı, basit ve ucuz şekilde kültür için en iyi yöntemdir. AWESAM astrocytes spontan Ca2 + sinyal, morfoloji ve gen ifade profilleri için astrocytes vivo içindebenzer sergi.

Vivokültür-tarihlerde hızlı, basit ve ucuz AWESAM iletişim kuralını kullanarak fare Astrocytes

Ayrıntılı olarak mikroglial işlevini anlamak için çaba olgun vivo içinde microglia özelliklerini özetlemek mikroglial kültür modellerin eksikliği tarafından engel. Bu iletişim kuralı sağlam çok ramified olgun sıçan microglia tanımlanan-orta koşullar altında yaşama korumak için tasarlanmış bir yalıtım ve kültür yaklaşım anlatılmaktadır.

Yalıtım ve dinamik bir teşvik etmek kemirgen Microglia kültürünü Morfoloji Serum-Alerjik orta Ramified

Omurilik insan kaynaklı pluripotent kaynaklı astrositleri ve nöronları ve elektrofizyolojik kayıt için ortak kültürlerini ayırt etmek için bir yöntem tanımladık.

ALS'yi Bölgesel Olarak Spesifik İnsan Pluripotent Kök Hücre Kaynaklı Astrositler ve Nöronlarla Modellemek için Bir Elektrofizyolojik Platformun Kurulması

Bu protokol, yetişkin fare omuriliğinden saflaştırılmış astrositlerin ve mikrogliaların izolasyonunu ana hatlarıyla belirtir ve RNA analizi ve hücre kültürü gibi sonraki uygulamaları kolaylaştırır. İzole edilmiş hücrelerin hem kalitesini hem de verimini artırmak için tasarlanmış ayrıntılı hücre ayrışma yöntemlerini ve prosedürlerini içerir.

İn Vitro Tahliller ve Transkriptomik Çalışmalar için Yetişkin Fare Omuriliğinden Saf Astrositlerin ve Mikroglia'nın İzolasyonu

Öğrenin, sıçan kortekslerinden astrosit ve mikroglia birincil kültürlerini hazırlama protokolünü. Amiyotrofik lateral skleroz çalışmalarında intraselüler Ca²⁺ sinyalini görüntülemek için bu yöntemi kullanın.

Sıçan Astrositleri ve Mikroglia'nın Birincil Kültürleri ve Amiyotrofik Lateral Skleroz Çalışmalarında Kullanımları

Daha fazla video keşfet