Name: Osteoklastik Rezorpsiyonu In Vitro Görselleştirmek ve Ölçmek için Basit Bir Pit Tahlil Protokolü (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-06-16T13:40:00.000+00:00
Duration: 7 min 3 s
Description: Keşfedin, kalsiyum fosfat kaplamalı plakalar kullanarak osteoklastik rezorpsiyonu görselleştirmek ve ölçmek için basit bir pit tahlil protokolü. Bu yöntem, kemik biyolojisi araştırmalarında hücresel etkileşimleri net şekilde gözlemlemeyi sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma kısmen Çin Burs Konseyi [CSC No. 201808440394] tarafından finanse edilmiştir. W.C. CSC tarafından finanse edildi.

Protokol yerel etik kurul tarafından gözden geçirilmiş ve onaylanmıştır (onay numarası 287/2020B02).
1. Kalsiyum fosfat kaplı hücre kültürü plakalarının hazırlanması
<ol><li>Kalsiyum stok çözeltisinin hazırlanması (Tris tamponunda 25 mM CaCl 2·2H 2 O, 1.37 mM NaCl, 15 mM MgCl2·6H2O)<ol>
<li>1,0 M Tris tamponu hazırlayın ve 1 M HCl kullanarak pH'ı 7,4'e ayarlayın.</li>
		<li>Manyetik karıştırıcı üzerine bir cam kab yerleştirin ve 100 mL 1,0 M Tris tamponu ekleyin.</li>
		<li>0.368 g CaCl 2 ·2H 2 O, 8.0 g NaCl ve 0.305 g MgCl2 · 6H2O ağırlığında olun ve Tris tamponunda birer birer çözün.</li>
		<li>1 M HCl. Oda sıcaklığında saklayın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Fosfat stok çözeltisinin hazırlanması (11,1 mM Na2HPO4· H2O, Tris tamponunda 42 mM NaHCO3 )<ol>
<li>Manyetik karıştırıcı üzerine bir cam kab yerleştirin ve 100 mL 1,0 M Tris tamponu ekleyin.</li>
		<li>0,158 g Na2HPO4· ağırlığında H2O ve 0.353 g NaHCO3 ve Tris tamponunda tek tek çözünür.</li>
		<li>1 M HCl. Oda sıcaklığında saklayın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>96 delikli hücre kültürü plakalarının ön kalsifikasyonu<ol>
<li>15 mL 1.0 M Tris tamponu, 7.5 mL kalsiyum stoğu (adım 1.1.4) çözeltisi ve 7.5 mL fosfat stok çözeltisi (adım 1.2.3) karıştırarak 30 mL çalışma çözeltisi hazırlayın. Çözeltiyi 0,2 μm'lik bir filtreyle filtreleyin.</li>
		<li>Düz tabanlı 96 kuyucuklu bir hücre kültürü plakası hazırlayın. Her bir kuyucuğa 300 μL kalsiyum fosfat çözeltisi (adım 1.3.1.) pipetin. Plakayı bir kapakla örtün ve plakayı 3 gün boyunca 37 ° C'de inkübe edin.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Kalsiyum fosfat çözeltisinin hazırlanması (2.25 mM Na2HPO4· H 2 O, 4 mM CaCl 2·2H2O, 0,14 M NaCl, ddH2 O'da 50 mM Tris tabanı)<ol>
<li>Manyetik karıştırma boncuğuna sahip bir beherde 40 mL deiyonize suya 2 mL 1 M HCl ekleyin ve 0,016 g Na2HPO4· çözün H2 O, 0.0295 g CaCl 2·2H 2O, 0.409 g NaCl ve 0.303 g Tris baz tek tek.</li>
		<li>1 M HCl kullanarak pH'ı 7,4'e ayarlayın. hacmi 50 mL'ye doldurmak için deiyonize su ekleyin. Çözeltiyi 0,2 μm'lik bir filtreyle filtreleyin.</li>
	</ol>
</li>
	<li>96 delikli hücre kültürü plakalarının kalsifikasyonu<ol>
<li>Önceden kalsifiye edilmiş 96 delikli hücre kültürü plakalarından ön kalsifikasyon çözeltisini aspire edin ve her bir oyuğa 300 μL kalsiyum fosfat çözeltisi (adım 1.4.2) ekleyin. Plakaları bir kapakla örtün ve 1 gün boyunca 37 ° C'de inkübe edin.</li>
		<li>Çözeltiyi dökmek için plakayı ters çevirin ve plakayı üç kez deiyonize suyla iyice yıkayın. Düzgün bir yüzey sağlamak için plakayı hemen bir saç kurutma makinesi veya sıkıştırılmış CO 2 veya N2 gazı kullanarak kurulayın.</li>
		<li>Kaplanmış plakayı UV radyasyonu ile temiz bir tezgahta 1 saat boyunca sterilize edin. Kaplanmış plakayı hemen kullanın veya plakayı parafilm ile kapatın ve oda sıcaklığında saklayın.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. PBMC'lerin insan periferik kanından izolasyonu
<ol><li>Kan bağışçısından yazılı bilgilendirilmiş onam aldıktan sonra damardan 15 mL kan alın (etik oy: 287/2020B02).</li>
	<li>15 mL taze kanı eşit hacimde PBS ile seyreltin ve tüpü birkaç kez ters çevirerek veya karışımı bir pipetin içine ve dışına çekerek karıştırın.</li>
	<li>Tüp başına 15 mL yoğunluk gradyanı çözeltisi (örneğin, Ficoll, Malzeme Tablosu) içeren 50 mL'lik bir konik tüp hazırlayın. Tüpü eğin ve 30 mL seyreltilmiş kan örneğini 15 mL yoğunluk gradyanı çözeltisine dikkatlice katlayın (seyreltilmiş kan örneği: yoğunluk gradyanı çözeltisi, 1: 0.5-1 oranı). NOT: Numuneyi üst üste koyarken, yoğunluk gradyanı çözeltisini seyreltilmiş kan örneği ile karıştırmamaya dikkat edin.</li>
	<li>Frensiz sallanan kova rotorunda 20 °C'de 20 dakika boyunca 810 x g'de santrifüj.</li>
	<li>Üst tabakayı aspire ederek mononükleer hücre tabakasını (lenfositler, monositler ve trombositler) interfazda bozulmadan bırakın.</li>
	<li>Mononükleer hücre tabakasını dikkatlice yeni bir 50 mL konik tüpe aktarın.</li>
	<li>Tüpü PBS ile doldurun, 20 ° C'de 10 dakika boyunca 300 x g'de karıştırın ve santrifüj yapın (fren bu aşamadan itibaren kullanılabilir).</li>
	<li>Süpernatantı dikkatlice tamamen çıkarın. Hücre peletini 50 mL PBS'de yeniden askıya alın ve 20 ° C'de 10 dakika boyunca 300 x g'de santrifüj yapın. Süpernatantı dikkatlice tamamen çıkarın.</li>
	<li>Trombositlerin çıkarılması için, hücre peletini 50 mL PBS'de yeniden askıya alın ve 20 ° C'de 10 dakika boyunca 200 x g'de santrifüj yapın. Süpernatantı dikkatlice tamamen çıkarın.</li>
	<li>OC progenitörlerinin genişlemesi için resuspended hücreleri hücre kültürü şişelerine aktarın.</li>
</ol>3. OC progenitörlerinin genişletilmesi
<ol><li>PBMC'leri 20 ng/mL M-CSF içeren tam α-MEM'de (%10 FBS, %1 Pen/Strep, %1 amfoterisin B) yeniden askıya alın. 2,5 x 105 hücre/cm2 yoğunlukta tohum PBMC'leri. Genellikle, 15-20 mL taze kandan izole edilen hücreler bir 75cm2 şişede (1.5-2 x 107 hücre) ekilebilir.</li>
	<li>Hücreleri, bağlı hücreler istenen bir akıcılığa ulaşana kadar her üç günde bir 20 ng / mL M-CSF içeren taze tam α-MEM ile besleyin. Tipik verimler, hücreler% 95 birleştiğinde 1.5-2 x 106 hücre / şişedir. Genellikle, genişleme süresi 6 gün sürer. NOT: Öncüllerin osteoklastojenik potansiyeli, ekim süresinin uzamasıyla azalabilir.</li>
</ol>4. CaP kaplı plakalarda osteoklastogenezin indüksiyonu
<ol><li>Hücre yapışmasını kolaylaştırmak için, CaP kaplı plakaları 37 °C'lik bir inkübatörde 1 saat boyunca 50 μL FBS ile inkübe edin.</li>
	<li>OC öncüllerini ayırmak için, ölü veya yapışkan olmayan hücreleri çıkarmak için şişeyi PBS ile iki kez yıkayın. 30 dakika boyunca 75cm2 şişe başına 4 mL tripsin (Malzeme Tablosu) ekleyin.<ol>
<li>Sindirimi durdurmak için 4 mL komple α-MEM ekleyin, bir hücre kazıyıcı kullanarak hücreleri dikkatlice ayırın ve hücreleri 50 mL'lik bir tüpe aktarın.</li>
		<li>Neubauer odası veya benzerini kullanarak toplam hücre sayısını belirleyin.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Hücreleri 350 x g'da 7 dakika santrifüjleme ile pelet edin. Pelet, 1 x 106 hücre / mL'lik bir konsantrasyon elde etmek için 20 ng / mL M-CSF ve 20 ng / mL RANKL içeren yeterli tam α-MEM'de yeniden askıya alın.</li>
	<li>CaP kaplamalı 96 delikli plaka ve pipetten aspirat FBS çözeltisi, kuyu başına 200 μL hücre süspansiyonu (2 x 105 hücre/kuyu).</li>
	<li>OC öncüllerini istenen zaman diliminde veya deneysel tasarımla ilgili istenen reaktiflerle inkübe edin. Genellikle, 6 gün sonra ve rezorpsiyon çukurları oluştuğunda çok sayıda büyük ve çok çekirdekli OC gözlenebilir. Her üç günde bir 20 ng / mL M-CSF ve 20 ng / mL RANKL içeren taze komple α-MEM ortamına sahip hücreleri besleyin.</li>
	<li>Kuluçka sonunda, hücreleri PBS ile iki kez yıkayın, 10 dakika boyunca% 4 paraformaldehit ile sabitleyin ve tekrar PBS ile yıkayın.</li>
	<li>Sabit OC'leri floresan boyama için doğrudan kullanın veya 4 °C'de saklayın.</li>
</ol>5. OC'lerin ve CaP kaplamanın floresan boyanması
<ol><li>Sabit hücreleri 5 dakika boyunca geçirgenlik tamponu (PBS'de% 0.1 Triton) ile inkübe edin.</li>
	<li>PBS'de 100 μL AlexaFluor 546 etiketli falloidin çözeltisi ile 30 dakika boyunca lekeli aktin filamentleri ve boyama çözeltisini aspire eder. Çekirdekleri boyamak için 10 dakika boyunca 100 μL Hoechst 33342 boyama çözeltisi (PBS'de 10 μg / mL) ekleyin. DAPI de kullanılabilir.</li>
	<li>10 dakika boyunca PBS'de 100 μL 10 μM kalsein ile leke CaP kaplama. PBS ile üç kez yıkayın ve fotoğraf çekin.</li>
	<li>Floresan görüntülemeden sonra aynı plakalar Von Kossa boyama ile rezorpsiyon çukuru alanını ölçmek için kullanılabilir. Bunu yapmak için, plakaları iki kez deiyonize suyla yıkayın.</li>
</ol>6. Toplam rezorpsiyon çukuru alanının nicelleştirilmesi
<ol><li>CaP kaplamayı Von Kossa boyama ile boyamak için, kuyucukların dibindeki kaplama kahverengiye dönene kadar, UV radyasyonu altında kuyu başına 50 μL% 5 AgNO3 ile 1 saat boyunca deiyonize suda inkübe edin.</li>
	<li>Plakayı üç kez deiyonize suyla yıkayın ve parlak alan görüntüleri alın. 1,25x hedefi gibi çok az büyütmeye sahip bir hedef, tüm kuyuyu tek bir görüntüde yakalamak için kullanılabilir. Bu, sonraki görüntü analizini kolaylaştırır. Kuyunun tüm alanını yakalamak için alternatif yöntemler uygulanabilir.</li>
	<li>ImageJ ile bir görüntü dosyası açma: Dosya | Açık | Resim | Tip | 8 bit. Görüntünün sağ alt köşesindeki ölçek birimini Düz Çizgi | | analiz edin Ölçeği ayarlayın. "Bilinen mesafe" battaniyesine uzunluğu girin, Uzunluk birimi'ne yeni ölçek birimi girin ve Genel kutusunu işaretleyin.</li>
	<li>Analiz edilecek ölçüm parametrelerini listeleyin: | analiz edin Ölçümleri ayarlayın. Ölçümleri Ayarla penceresinde, Alan ve Eşikle sınırla kutularını işaretleyin.</li>
	<li>Çukurların alanını ölçme: Resim | | ayarlama Eşik. Eşik penceresinde, Koyu arka plan onay kutusunu işaretleyin ve Otomatik'i tıklatın. Çukurların alanı kırmızıya döner. Eşik penceresini kapatın ve | Çözümle'yi seçin Ölçün. Sonuç dosyasını kaydetme: Dosya | Farklı Kaydet.</li>
</ol>7. OC sayısının ve boyutunun ve normalleştirilmiş rezorpsiyon çukuru alanının nicelleştirilmesi
<ol><li>ImageJ ile osteoklastların floresan görüntüsünü açın ve ölçek birimini doğrulayın (bkz. adım 6.3).</li>
	<li>Analiz edilecek ölçüm parametrelerini listeleyin: Analiz | Ölçümleri ayarlayın. Ölçümleri Ayarla penceresinde, Alan kutusunu işaretleyin.</li>
	<li>YG Yöneticisi ve Çokgen seçimlerini kullanarak OC'leri ana hatlarıyla belirtin: | analiz edin Araçlar | Yatırım Getirisi Yöneticisi. Araç setinde Poligon seçimleri'ne tıklayın, bir OC'yi (aktin halkalı ve ≥ üç çekirdeğe sahip hücreler) özetleyin ve YG Yöneticisi penceresinde [t] Ekle'ye tıklayın. Tüm OC'ler dahil edilene kadar anahat oluşturmayı tekrarlayın.</li>
	<li>OC'lerin sayısını ve boyutunu ölçme: YG Yöneticisi'nde tüm öğeleri seçin ve Ölç'ü tıklayın. Sonuç dosyasını kaydetme: Dosya | Farklı Kaydet (Şekil 3E).</li>
	<li>Floresan görüntülerin çukur alanını ölçün. Adım 7.3'teki görüntüyle ilişkili kaplamanın floresan görüntüsünü açın ve ölçek birimini doğrulayın (bkz. adım 6.3).<ol>
<li>Analiz edilecek ölçüm parametrelerini listeleyin (bkz. adım 6.4). Görüntü | | ayarlama Eşik. Eşik penceresinde, tüm kutuların işaretini kaldırın ve Otomatik'i tıklatın. Çukurların alanı kırmızıya döner. Eşik penceresini kapatın ve | Çözümle'yi seçin Ölçün. Sonuç dosyasını kaydedin.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Normalleştirilmiş çukur alanını OC numarasına göre hesaplayın.</li>
</ol>

<ol><li>Jacome-Galarza, C. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Developmental+origin%2C+functional+maintenance+and+genetic+rescue+of+osteoclasts%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Developmental origin, functional maintenance and genetic rescue of osteoclasts.</a> Nature. 568 (7753), 541-545 (2019).</li>
<li>Moller, A. M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aging+and+menopause+reprogram+osteoclast+precursors+for+aggressive+bone+resorption%5BTitle%5D)+AND+%22Bone+Research%22%5BJournal%5D)">Aging and menopause reprogram osteoclast precursors for aggressive bone resorption.</a> Bone Research. 8 (1), 1-11 (2020).</li>
<li>Yokota, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+and+function+of+tumor+necrosis+factor+and+interleukin-6-induced+osteoclasts+in+rheumatoid+arthritis%5BTitle%5D)+AND+%22Arthritis+Rheumatology%22%5BJournal%5D)">Characterization and function of tumor necrosis factor and interleukin-6-induced osteoclasts in rheumatoid arthritis.</a> Arthritis Rheumatology. 73 (7), 1145-1154 (2021).</li>
<li>Teng, Y. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+human+T-cell+immunity+and+osteoprotegerin+ligand+control+alveolar+bone+destruction+in+periodontal+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Investigation%22%5BJournal%5D)">Functional human T-cell immunity and osteoprotegerin ligand control alveolar bone destruction in periodontal infection.</a> Journal of Clinical Investigation. 106 (6), 59-67 (2000).</li>
<li>Terpos, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Soluble+receptor+activator+of+nuclear+factor+kappaB+ligand-osteoprotegerin+ratio+predicts+survival+in+multiple+myeloma%3A+proposal+for+a+novel+prognostic+index%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Soluble receptor activator of nuclear factor kappaB ligand-osteoprotegerin ratio predicts survival in multiple myeloma: proposal for a novel prognostic index.</a> Blood. 102 (3), 1064-1069 (2003).</li>
<li>Morony, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Osteoprotegerin+inhibits+osteolysis+and+decreases+skeletal+tumor+burden+in+syngeneic+and+nude+mouse+models+of+experimental+bone+metastasis%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">Osteoprotegerin inhibits osteolysis and decreases skeletal tumor burden in syngeneic and nude mouse models of experimental bone metastasis.</a> Cancer Research. 61 (11), 4432-4436 (2001).</li>
<li>Sobacchi, C., Schulz, A., Coxon, F. P., Villa, A., Helfrich, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Osteopetrosis%3A+genetics%2C+treatment+and+new+insights+into+osteoclast+function%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Osteopetrosis: genetics, treatment and new insights into osteoclast function.</a> Nature Reviews Endocrinology. 9 (9), 522-536 (2013).</li>
<li>Amarasekara, D. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+osteoclast+differentiation+by+cytokine+networks%5BTitle%5D)+AND+%22Immune+Network%22%5BJournal%5D)">Regulation of osteoclast differentiation by cytokine networks.</a> Immune Network. 18 (1), 8(2018).</li>
<li>Kim, J. M., Lin, C., Stavre, Z., Greenblatt, M. B., Shim, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Osteoblast-osteoclast+communication+and+bone+homeostasis%5BTitle%5D)+AND+%22Cells%22%5BJournal%5D)">Osteoblast-osteoclast communication and bone homeostasis.</a> Cells. 9 (9), (2020).</li>
<li>Teitelbaum, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bone+resorption+by+osteoclasts%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Bone resorption by osteoclasts.</a> Science. 289 (5484), 1504-1508 (2000).</li>
<li>Boyle, W. J., Simonet, W. S., Lacey, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Osteoclast+differentiation+and+activation%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Osteoclast differentiation and activation.</a> Nature. 423 (6937), 337-342 (2003).</li>
<li>Baron, R., Neff, L., Louvard, D., Courtoy, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-mediated+extracellular+acidification+and+bone+resorption%3A+evidence+for+a+low+pH+in+resorbing+lacunae+and+localization+of+a+100-kD+lysosomal+membrane+protein+at+the+osteoclast+ruffled+border%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Cell-mediated extracellular acidification and bone resorption: evidence for a low pH in resorbing lacunae and localization of a 100-kD lysosomal membrane protein at the osteoclast ruffled border.</a> Journal of Cell Biology. 101 (6), 2210-2222 (1985).</li>
<li>Blair, H. C., Teitelbaum, S. L., Ghiselli, R., Gluck, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Osteoclastic+bone+resorption+by+a+polarized+vacuolar+proton+pump%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Osteoclastic bone resorption by a polarized vacuolar proton pump.</a> Science. 245 (4920), 855-857 (1989).</li>
<li>Zhu, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Osteoclast-mediated+bone+resorption+is+controlled+by+a+compensatory+network+of+secreted+and+membrane-tethered+metalloproteinases%5BTitle%5D)+AND+%22Science+Translational+Medicine%22%5BJournal%5D)">Osteoclast-mediated bone resorption is controlled by a compensatory network of secreted and membrane-tethered metalloproteinases.</a> Science Translational Medicine. 12 (529), 6143(2020).</li>
<li>Gowen, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cathepsin+K+knockout+mice+develop+osteopetrosis+due+to+a+deficit+in+matrix+degradation+but+not+demineralization%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Bone+and+Mineral+Research%22%5BJournal%5D)">Cathepsin K knockout mice develop osteopetrosis due to a deficit in matrix degradation but not demineralization.</a> The Journal of Bone and Mineral Research. 14 (10), 1654-1663 (1999).</li>
<li>Abu-Amer, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((IL-4+abrogates+osteoclastogenesis+through+STAT6-dependent+inhibition+of+NF-kappaB%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Investigation%22%5BJournal%5D)">IL-4 abrogates osteoclastogenesis through STAT6-dependent inhibition of NF-kappaB.</a> Journal of Clinical Investigation. 107 (11), 1375-1385 (2001).</li>
<li>Patntirapong, S., Habibovic, P., Hauschka, P. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+soluble+cobalt+and+cobalt+incorporated+into+calcium+phosphate+layers+on+osteoclast+differentiation+and+activation%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Effects of soluble cobalt and cobalt incorporated into calcium phosphate layers on osteoclast differentiation and activation.</a> Biomaterials. 30 (4), 548-555 (2009).</li>
<li>Sorensen, M. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+osteoclasts+derived+from+CD14%2B+monocytes+isolated+from+peripheral+blood%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Bone+and+Mineral+Metabolism%22%5BJournal%5D)">Characterization of osteoclasts derived from CD14+ monocytes isolated from peripheral blood.</a> The Journal of Bone and Mineral Metabolism. 25 (1), 36-45 (2007).</li>
<li>Kumar, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synergistic+effect+of+biphasic+calcium+phosphate+and+platelet-rich+fibrin+attenuate+markers+for+inflammation+and+osteoclast+differentiation+by+suppressing+NF-kappaB%2FMAPK+signaling+pathway+in+chronic+periodontitis%5BTitle%5D)+AND+%22Molecules%22%5BJournal%5D)">Synergistic effect of biphasic calcium phosphate and platelet-rich fibrin attenuate markers for inflammation and osteoclast differentiation by suppressing NF-kappaB/MAPK signaling pathway in chronic periodontitis.</a> Molecules. 26 (21), 6578(2021).</li>
<li>Henriksen, K., Karsdal, M. A., Taylor, A., Tosh, D., Coxon, F. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+human+osteoclasts+from+peripheral+blood%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Generation of human osteoclasts from peripheral blood.</a> Methods in Molecular Biology. 816, 159-175 (2012).</li>
<li>Maria, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reproducible+quantification+of+osteoclastic+activity%3A+characterization+of+a+biomimetic+calcium+phosphate+assay%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedical+Materials+Research+Part+B%3A+Applied+Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Reproducible quantification of osteoclastic activity: characterization of a biomimetic calcium phosphate assay.</a> Journal of Biomedical Materials Research Part B: Applied Biomaterials. 102 (5), 903-912 (2014).</li>
<li>Kong, L., Smith, W., Hao, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Overview+of+RAW264.7+for+osteoclastogensis+study%3A+Phenotype+and+stimuli%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cellular+and+Molecular+Medicine%22%5BJournal%5D)">Overview of RAW264.7 for osteoclastogensis study: Phenotype and stimuli.</a> Journal of Cellular and Molecular Medicine. 23 (5), 3077-3087 (2019).</li>
<li>Li, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systemic+tumor+necrosis+factor+alpha+mediates+an+increase+in+peripheral+CD11bhigh+osteoclast+precursors+in+tumor+necrosis+factor+alpha-transgenic+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Arthritis+%26+Rheumatology%22%5BJournal%5D)">Systemic tumor necrosis factor alpha mediates an increase in peripheral CD11bhigh osteoclast precursors in tumor necrosis factor alpha-transgenic mice.</a> Arthritis & Rheumatology. 50 (1), 265-276 (2004).</li>
<li>Arai, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Commitment+and+differentiation+of+osteoclast+precursor+cells+by+the+sequential+expression+of+c-Fms+and+receptor+activator+of+nuclear+factor+kappaB+%28RANK%29+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Medicine%22%5BJournal%5D)">Commitment and differentiation of osteoclast precursor cells by the sequential expression of c-Fms and receptor activator of nuclear factor kappaB (RANK) receptors.</a> Journal of Experimental Medicine. 190 (12), 1741-1754 (1999).</li>
<li>Xing, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NF-kappaB+p50+and+p52+expression+is+not+required+for+RANK-expressing+osteoclast+progenitor+formation+but+is+essential+for+RANK-+and+cytokine-mediated+osteoclastogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Bone+and+Mineral+Research%22%5BJournal%5D)">NF-kappaB p50 and p52 expression is not required for RANK-expressing osteoclast progenitor formation but is essential for RANK- and cytokine-mediated osteoclastogenesis.</a> The Journal of Bone and Mineral Research. 17 (7), 1200-1210 (2002).</li>
<li>Miyamoto, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bifurcation+of+osteoclasts+and+dendritic+cells+from+common+progenitors%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Bifurcation of osteoclasts and dendritic cells from common progenitors.</a> Blood. 98 (8), 2544-2554 (2001).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyleri yoktur.

Burada, PBMC'lerden in vitro olarak türetilen ve genişletilen OC'leri kullanarak osteoklastik rezorpsiyon testi için basit ve güvenilir bir yöntem açıklanmaktadır. Kullanılan CaP kaplamalı hücre kültürü plakaları, laboratuvarda bulunan malzemeler kullanılarak kolayca hazırlanabilir ve görselleştirilebilir. Bu protokolde benimsenen sıralanmamış PBMC'lere ek olarak, murin monositik hücreler21 ve kemik iliği makrofaj hücreleri17'den üretilen OC'ler de çukur testi için...

<a href="https://app.jove.com/t/6601">This corrects</a> the article <a href="https://dx.doi.org/10.3791/64016">10.3791/64016</a>

An erratum was issued for:&#160;<a href="https://www.jove.com/t/64016">A Simple Pit Assay Protocol to Visualize and Quantify Osteoclastic Resorption In Vitro</a>. The Protocol section was&#160;updated.

Erratum: A Simple Pit Assay Protocol to Visualize and Quantify Osteoclastic Resorption In Vitro

Osteoklastlar (OC'ler), hematopoetik kök hücrelerden (HSC'ler) türetilen ve osteoblastlarla birlikte kemik yeniden şekillenmesinde önemli bir rol oynayan dokuya özgü makrofajlardır1. Kemiği sistemik veya lokal olarak tahrip eden cinsiyet hormonuna bağlı, immünolojik ve malign kemik bozuklukları, menopoza bağlı osteoporoz2, romatoid artrit3, periodontal hastalık4, miyelom kemik hastalığı5 ve osteolitik kemik metastazı6 dahil olmak üzere aşırı osteoklastik aktiviteye bağlıdır. Buna karşılık, OC oluşumu ve fonksiyonundaki kusurlar da osteopetroz7'ye neden olabilir. HSC'ler, makrofaj koloni uyarıcı faktör (M-CSF, gen sembolü ACP5) stimülasyonu altında OC progenitörlerine farklılaşır. Hem M-CSF hem de NF-κB ligandının reseptör aktivatörü varlığında (RANKL, gen sembolü TNFSF11), OC progenitörleri mononükleer OC'lere daha da farklılaşır ve daha sonra çok çekirdekli OC'ler 8,9,10 olmak üzere kaynaşır. Hem sitokinler M-CSF hem de RANKL, kalsitonin reseptörü (BT), nükleer faktör κ B (RANK) reseptör aktivatörü, proton pompası V-ATPaz, klorür kanalı 7 alfa alt birimi (CIC-7), integrin β3, tartarat dirençli asit fosfataz (TRAP, gen sembolü ACP5), lizozomal sistein proteaz kathepsin K (CTSK) ve matriks metallopeptidaz 9 (MMP9) gibi osteoklastik belirteçlerin indüksiyonu için vazgeçilmez ve yeterlidir. Aktif OC'ler,11,12 numaralı fırfırlı bir aktin halkasının oluşumu yoluyla kemik yüzeyinde bir sızdırmazlık bölgesi oluşturur. Sızdırmazlık bölgesi içinde, OC'ler proton pompası V-ATPaz 12,13, MMP914 ve CTSK15 aracılığıyla protonları salgılayarak rezorpsiyona aracılık eder ve lakuna oluşumuna yol açar.
In vitro deneyler için, OC progenitörleri, kemik iliği makrofajlarının farelerin femurundan ve tibia 16,17'den genişlemesinin yanı sıra, insan periferik kan mononükleer hücrelerinin (PBMC'ler) kan örneklerinden ve kabarık ceketlerden18,19,20'den izole edilmesiyle veya ölümsüzleştirilmiş murin monositik hücrelerinin farklılaştırılmasıyla elde edilebilir.
Bu protokolde, birincil PBMC'lerden türetilen OC'leri kullanarak CaP kaplı hücre kültürü plakalarında osteoklastik rezorpsiyon testini tanımladık. Burada kullanılan CaP kaplı hücre kültürü plakaları yöntemi, daha önce Patntirapong ve ark.17 ve Maria ve ark.21 tarafından açıklanan yöntemden uyarlanmış ve rafine edilmiştir. OC öncüllerini elde etmek için, PBMC'ler yoğunluk gradyanı santrifüjleme ile izole edilir ve daha önce açıklandığı gibigenişletilir 20.

<table><tbody><tr><td>AgNO3</td><td>SERVA Electrophoresis GmbH</td><td>35110</td><td>Gümüş nitrat</td></tr><tr><td>a-MEM</td><td>Gibco</td><td>32561-029</td><td>MEM alfa, GlutaMAX, nükleosit yok</td></tr><tr><td>amfoterisin B</td><td>Biochrom</td><td>03-028-1B</td><td>Amfoterisin B Çözeltisi</td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>21097-50G</td><td>Kalsiyum klorür Dihidrat</td></tr><tr><td>Calcein</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C0875</td><td>Calcein</td></tr><tr><td>FBS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F7524</td><td>fetal sığır serumu</td></tr><tr><td>Ficoll</td><td>Cytiva</td><td>17144002</td><td>Ficoll Paque Plus</td></tr><tr><td>Fiksasyon tamponu</td><td>Biolegend</td><td>420801</td><td>Paraformaldehit</td></tr><tr><td>HCl</td><td>Merk</td><td>1.09057.1000</td><td>Hidroklorik asit</td></tr><tr><td>Hoechst 33342</td><td>Promotin</td><td>PK-CA707-40046</td><td>Hoechst 33342</td></tr><tr><td>M-CSF</td><td>PeproTech</td><td>300-25</td><td>Rekombinant İnsan M-CSF</td></tr><tr><td>MgCl2</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>7791-18-6</td><td>Magnezyum klorür</td></tr><tr><td>Na2HPO4</td><td>AppliChem GmbH</td><td>A2943,0250</td><td>di- Sodyum hidrojen fosfat susuz</td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Merk</td><td>S7653-250G</td><td>Sodyum klorür</td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>Merk</td><td>K15322429</td><td>Bikarbonat Soda</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Lonza</td><td>17-512F</td><td>Dulbecco'nun Fosfat Tamponlu Salin (1X), Kalsiyum ve Magnezyum İçermeyen DBPS</td></tr><tr><td>Kalem-Strep</td><td>Lonza</td><td>DE17-602E</td><td>Penisilin-Streptomisin Karışımı</td></tr><tr><td>Phalloidin-Alexa Fluor 546</td><td>Invitrogen</td><td>A22283</td><td>Alexa Fluor 546 Phalloidin</td></tr><tr><td>RANKL</td><td>PeproTech</td><td>310-01</td><td>Rekombinant İnsan sRANK Ligandı (E.coli türevi)</td></tr> <tr><td>Tris</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>93362</td><td>Tris (hidroksimetil) aminometan</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8787</td><td>Alkil Fenil Polietilen</td></tr><tr><td>Glikol TripLE Express</td><td>Gibco</td><td>12605010</td><td>Rekombinant hücre ayrışma enzimleri</td></tr></tbody></table>

osteoklastik rezorpsiyonu in vitro görselleştirmek ve Ölçmek için basit bir pit tahlil protokolü

A Simple Pit Assay Protocol to Visualize and Quantify Osteoclastic Resorption In Vitro

Olgun osteoklastlar, asit ve enzimlerin salgılanması yoluyla kemiği parçalayabilen çok çekirdekli hücrelerdir. Çeşitli hastalıklarda (örneğin, osteoporoz ve kemik kanseri) çok önemli bir rol oynarlar ve bu nedenle önemli araştırma nesneleridirler. In vitro, aktiviteleri rezorpsiyon çukurlarının oluşumu ile analiz edilebilir. Bu protokolde, kolayca görselleştirilebilen ve nicelleştirilebilen kalsiyum fosfat (CaP) kaplı hücre kültürü plakalarını kullanan basit bir çukur testi yöntemi tanımlamaktayız. İnsan periferik kan mononükleer hücrelerinden (PBMC'ler) türetilen osteoklast öncülleri, osteoklastojenik uyaranların varlığında kaplanmış plakalar üzerinde kültüre alındı. 9 günlük inkübasyondan sonra, osteoklastlar floresan görüntüleme için sabitlendi ve boyanırken, CaP kaplaması kalsein ile karşı boyandı. Emilen alanı ölçmek için, plakalar üzerindeki CaP kaplama% 5AgNO3 ile boyandı ve parlak alan görüntüleme ile görselleştirildi. Rezorpsiyon çukuru alanı ImageJ kullanılarak ölçüldü.

Hücre kültürü plakalarının altındaki kalsiyum fosfat kaplama, 3 günlük ön kalsifikasyon ve 1 günlük kalsifikasyon adımından oluşan iki kaplama adımında gerçekleştirildi. Şekil 1'de gösterildiği gibi, 96 kuyucuklu plakaların dibinde eşit olarak dağılmış kalsiyum fosfat elde edilmiştir. Yapılan yıkama adımlarından sonra kaplama tabana çok iyi yapışmıştır.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64016/6401...

Burada, kalsiyum fosfat kaplı hücre kültürü plakaları kullanılarak rezorpsiyon çukuru testleri için basit ve etkili bir tahlil prosedürü sunuyoruz.

Osteoklastik Rezorpsiyonu In Vitro Görselleştirmek ve Ölçmek için Basit Bir Pit Tahlil Protokolü

Mature osteoclasts are multinucleated cells that can degrade bone through the secretion of acids and enzymes. They play a crucial role in various diseases ...

Protokolümüz, osteoklastik rezorpsiyon testi için basit ve güvenilir bir yöntem tanımlamaktadır. Kalsiyum fosfat kaplı hücre kültürü plakalarının kullanımı, laboratuvarda mevcut malzemeler kullanılarak kolayca hazırlanabilir ve görselleştirilebilir. Opak kemik veya dentin dilimlerinin aksine, kalsiyum fosfat kaplama, rezorpsiyon çukurlarının ve hücrelerin aynı anda görselleştirilmesini sağlar.Bu protokolde osteoklast farklılaşması için PBMC'ler kullanıyoruz. Bununla birlikte, kemik iliği kaynaklı monositler veya Raw 264.7 hücreleri gibi diğer hücre tiplerine de uygulanabilir. İlk önce düz tabanlı 96 kuyucuk hücre kültürü plakası ve pipet 300 mikrolitre önceden hazırlanmış kalsiyum fosfat çözeltisini her bir kuyucuğa alın.Ardından, plakayı kapakla örtün ve plakayı üç gün boyunca 37 santigrat derecede inkübe edin. Üç gün sonra, ön kalsifikasyon çözeltisini önceden kalsifiye edilmiş 96 kuyucuk hücre kültürü plakasından aspire edin ve her bir oyuğa 300 mikrolitre kalsiyum fosfat çözeltisi ekleyin. Plakaları bir kapakla örtün ve bir gün boyunca 37 santigrat derecede kuluçkaya yatırın.Daha sonra çözeltiyi dökmek için plakayı ters çevirin ve plakayı üç kez deiyonize suyla iyice yıkayın. Düzgün bir yüzey sağlamak için plakayı hemen bir saç kurutma makinesi veya sıkıştırılmış karbondioksit veya azot gazı kullanarak kurulayın. Şimdi, kaplanmış plakayı temiz bir tezgahta ultraviyole ışınlarıyla bir saat boyunca ışınlayın.Kaplanmış plakayı hemen kullanın veya plakayı Parafilm ile kapatın ve oda sıcaklığında saklayın. 15 mililitre taze kanı eşit hacimde PBS ile seyreltin ve birkaç kez ters çevirerek veya pipetleyerek karıştırın. Daha sonra 50 mililitrelik bir konik tüpte 15 mililitre yoğunluk gradyanı çözeltisi alın, tüpü eğin ve 15 mililitre yoğunluk gradyanı çözeltisi üzerine 30 mililitre seyreltilmiş kan örneğini dikkatlice katmanlayın.Daha sonra, tüpü sallanan bir kova rotorunda, 20 santigrat derecede 20 dakika boyunca 810 kez G'de kırılmadan santrifüj yapın. Daha sonra üst tabakayı aspire ederek mononükleer hücre tabakasını arayüzde bozulmadan bırakın. Mononükleer hücre tabakasını dikkatlice yeni bir 50 mililitrelik konik tüpe aktarın.Tüpü PBS ile doldurun, karıştırın ve 20 santigrat derecede 10 dakika boyunca 300 kez G'de santrifüj yapın. PBMC'leri, mililitre makrofaj kolonisi uyarıcı faktörü başına 20 nanogram içeren tam bir alfa-MEM'de yeniden askıya alın ve bir şişede santimetre kare PBMC'ler başına 2.5 kat 10 ila beşinci hücreye tohumlayın. Kalsiyum fosfat kaplı plakaları bir saat boyunca 37 santigrat derecede 50 mikrolitre fetal sığır serumu ile inkübe edin.Daha sonra, osteoklast öncüllerini ölü veya yapışkan olmayan hücrelerden ayırmak için şişeyi PBS ile iki kez yıkayın, ardından 75 santimetrekarelik şişe başına dört mililitre tripsin ekleyin. 30 dakika sonra, dört mililitre tam alfa-MEM ekleyerek sindirimi durdurun, ardından bir hücre kazıyıcı kullanarak hücreleri dikkatlice ayırın. Hücreleri 50 mililitrelik bir tüpe aktarın ve bir sayma odası kullanarak toplam hücre sayısını sayın.Hücreleri peletlemek için tüpü yedi dakika boyunca 350 kez G'de santrifüj edin ve peleti yeniden askıya alın ve mililitre başına altı hücreye bir kez 10 kat elde etmek için M-CSF ve RANKL içeren alfa MEM'i tamamlayın. Fetal sığır serumunu kalsiyum fosfat kaplı plakadan aspire edin ve kuyu başına 200 mikrolitre hücre süspansiyonu pipetin. Kuluçkadan sonra, hücreleri PBS ile iki kez yıkayın.Hücreleri 10 dakika boyunca% 4 paraformaldehit ile sabitleyin ve PBS ile tekrar yıkayın. Boyama için, sabit hücrelere geçirgenlik tamponu ekleyin ve beş dakika boyunca inkübe edin. Aktin filamentlerini boyamak için, hücreleri PBS'de 100 mikrolitre Alexa Fluor 546 etiketli falloidin çözeltisi ile 30 dakika boyunca inkübe edin, ardından boyama çözeltisini aspire edin ve 10 dakika boyunca 100 mikrolitre Hoechst kullanarak çekirdekleri boyayın.10 dakika boyunca 100 mikrolitre 10 mikromolar kalsein ve PBS ile leke kalsiyum fosfat kaplama. PBS ile üç kez yıkadıktan sonra görüntü yakalayın. Von Kossa için kalsiyum fosfat kaplamanın boyanması her bir kuyucuğa 50 mikrolitre% 5 gümüş nitrat ve deiyonize su ekleyin ve kuyucukların dibindeki kaplama kahverengiye dönene kadar plakayı ultraviyole radyasyon altında bir saat boyunca inkübe edin.96 kuyu plakasının altındaki kalsiyum fosfat kaplamanın düzgün ve iyi yapışmış olduğu ortaya çıktı. Kalsiyum fosfat kaplı plakalar üzerinde M-CSF ve RANKL'de dokuz günlük kültürden sonra, osteoklast öncülleri rezorpsiyon çukurları ve büyük osteoklastlar oluşturdu. Çukurlarda bulunan çok çekirdekli osteoklastlar yüksek TRAP seviyelerini ifade ediyordu.Olgun osteoklastlar üç veya daha fazla çekirdeğin varlığını ve farklı aktin halkasını gösterdi. Yeşil kalsiyum fosfat kaplama, siyah rezorpsiyon çukurlarının varlığını gösterdi. Çukur alanı floresan görüntüleri, J. görüntüsünün eşik aracı kullanılarak ölçüldü.Osteoklastların sayısı ve boyutu, ROI yöneticisi kullanılarak hesaplandı ve görüntü J.Osteoklasts'ın RANKL yokluğunda yetiştirilen öncüllerinin çokgen seçim aracı rezorpsiyon çukurları oluşturamadı, ancak M-CSF ve RANKL osteoklastojenik çukurların oluşumunu kolaylaştırdı.Ve çukur alanı J resmi kullanılarak ölçüldü.Kaplanmış plakanın hava akımı ile hemen kurutulması, düzgün bir kalsiyum fosfat kaplaması yapılmasına yardımcı olur. Aksi takdirde, kuyunun ortasında daha kalın bir kaplama oluşturmaya eğilimlidir.

a-simple-pit-assay-protocol-to-visualize-quantify-osteoclastic

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

Bu video, osteoklastların içindeki TRAP içeren granüllerin varlığını tespit etmek için tartarat dirençli asit fosfataz boyama tekniğini göstermektedir. Teknik, osteoklastların sitoplazmasında macenta renkli boya granül birikintileri oluşturur ve bunları ters çevrilmiş bir mikroskop altında görünür hale getirir.

Tartarat Dirençli Asit Fosfataz Boyama: TRAP Enzimi İçeren Kültürlenmiş Osteoklastları Tespit Etmek İçin İn Vitro Bir Teknik

Bu videoda, insan periferik kan mononükleer hücre türevi osteoklastları ile kültürlenmiş kalsiyum fosfat kaplı hücre kültürü plakaları üzerinde in vitro osteoklastik rezorpsiyon testini açıklıyoruz. Osteoklastlar, hücre kültürü plakasının kalsiyum fosfat kaplı matrisi üzerinde karakteristik bir aktin halkası oluşturur ve kalsiyum ve fosfat iyonlarını serbest bırakmak için aktin halkası bölgesi içindeki matrisi bozar, bu da bozulmuş matris içinde farklı emilim çukurlarının oluşmasına neden olur.

Rezorpsiyon Çukuru Deneyi: Kalsiyum Fosfat Kaplı Kültür Plakaları Kullanılarak Olgun Osteoklastların Kalsiyum Rezorpsiyon Aktivitesini Ölçmek İçin İn Vitro Bir Teknik

Bu videoda, anyonik bir boya olan Alizarin Red S kullanılarak osteoblast tarafından salgılanan kalsiyum birikintilerinin tespiti için bir yöntem açıklıyoruz. Kültürlenmiş osteoblastlar önce boyanır ve daha sonra boya, kalsiyum birikintilerinin kolorimetrik miktar tayini veya osteoblast mineralizasyon derecesi için geri kazanılır.

İn Vitro Mineralizasyon Deneyi: Alizarin Red S Boyama ve Ekstraksiyonu ile Kemik Grefti İkamesi Üzerindeki Osteoblast Kalsiyum Birikintilerini Ölçmek İçin Kolorimetrik Bir Yöntem

Osteoklastlar vücutta ana kemik-rezorbe hücresi vardır. Çok sayıda osteoklastlar izole etmek için bir yeteneği osteoklast biyoloji anlama konusunda önemli ilerlemelere yol açmıştır. Bu protokol, yetiştirilmesi ve in vitro olarak osteoklast aktivitesi miktarının, izole edilmesi için bir yöntem açıklanmaktadır.

Fare Kemik İliği osteoklast türetilmesi

Bu el yazması bir iletişim kuralına izole etmek ve kültür Osteoklastlar vitro fare kemik iliği ve rapamycin karmaşık 1 Osteoklast oluşumunda memeli/mekanik hedef rolü çalışmaya açıklar.

Bir RANKL tabanlı Osteoklast kültür tahlil, fare mTORC1 Osteoklast oluşumunda rol araştırmak için ilik

Uranyum kemik metabolizması etkilediği bilinmektedir. Burada, doğal uranyum pozlama etkisini canlılığı, farklılaşma ve Osteoklastlar, kemik rezorpsiyonu sorumlu hücrelerin fonksiyonlarını araştıran amaçlı bir iletişim kuralı mevcut.

Vitro Osteoclastogenesis üzerinde doğal uranyum etkileri analiz yöntemleri

Bu makalede, biz izole ve kemik iliği stromal hücreler ve hematopoetik kök hücre fare uzun kemiklerin ayırt etmek için yöntemler mevcut. İki farklı protokol verimli farklı hücre popülasyonlarının genişleme ve farklılaşma dokusunu, adipositler ve Osteoklastlar içine uygun sunulmaktadır.

Yalıtım, kültür ve kemik iliği Stromal hücreler ve Osteoklast ataları fareler gelen farklılaşma

Roman Biyomalzeme büyük kemik lezyonlar onarmak için tasarlanmış sayısı sürekli olarak kemik iyileşmesi geliştirmek ve kemik nakli ile ilgili komplikasyonlar aşmak amacı ile genişletiyor. Burada, önceden klinik biyouyumluluk Biyomalzeme kemik onarımı için test edilmesi için çok disiplinli bir strateji mevcut.

Biyolojik uyumluluğu Biyomalzeme kemik rejenerasyon için profil sayfası

Osteokuzlar, hematopoetik kök hücrelerin monosit-makrophaj soylarından elde edilen dokuya özgü makrophaj polykaryonlarındadır. Bu protokol, kemik iliği hücrelerinin nasıl yalıtılmasını açıklar, böylece geleneksel yöntemlerde bulunan kazaların riskini azaltarak büyük miktarlarda osteocsürer elde edilir.

Sıçan kemik Iliği Osteoclast precursors yalıtım, arıtma ve farklılaşma

Osteoklastlar vücuttaki anahtar kemik emici hücrelerdir. Bu protokol, osteoklastların insan periferik kan monositlerinden in vitro farklılaşması için güvenilir bir yöntem tanımlamaktadır. Bu yöntem, homeostazda ve hastalıklarda osteoklast biyolojisini daha iyi anlamak için önemli bir araç olarak kullanılabilir.

Fonksiyonel Osteoklastların İnsan Periferik Kanı CD14+ Monositlerinden Farklılaşması

Keşfedin, kalsiyum fosfat kaplamalı plakalar kullanarak osteoklastik rezorpsiyonu görselleştirmek ve ölçmek için basit bir pit tahlil protokolü. Bu yöntem, kemik biyolojisi araştırmalarında hücresel etkileşimleri net şekilde gözlemlemeyi sağlar.

Osteoklastik Rezorpsiyonu In Vitro Görselleştirmek ve Ölçmek için Basit Bir Pit Tahlil Protokolü

Daha fazla video keşfet