Name: Sitonem analizi için embriyonik fare dokusunun fiksasyonu (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-06-16T14:15:00.000+00:00
Duration: 8 min 46 s
Description: Keşfedin fare embriyolarında sitonem görüntüleme yöntemini, immunoboyama ve vibratome kesit teknikleri kullanarak. Bu protokol endojen sinyal proteinlerinin incelenmesini sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Görüntüler, St. Jude Çocuk Araştırma Hastanesi'ndeki Hücre ve Moleküler Biyoloji Görüntüleme Çekirdeği tarafından tutulan mikroskoplar kullanılarak elde edildi. JAX'ten fare suşları elde edildi. Bu çalışma, Ulusal Sağlık Enstitüleri hibesi R35GM122546 (SKO) ve St. Jude Çocuk Araştırma Hastanesi ALSAC tarafından desteklenmiştir.

Bu protokol, Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi (IACUC) ve St. Jude Çocuk Araştırma Hastanesi'nin onaylanmış hayvan bakım kılavuzlarını takip etmektedir. Tüm suşlar beş nesil boyunca C57BL/6J suşuna geri döndü.
1. Embriyo izolasyonu ve tüm montaj boyama
<ol><li>6 haftalık dişileri doğurun ve vajinal tıkaç varlığını izleyin.</li>
	<li>Bir CO2 odasında CO 2 inhalasyonu ile gebe barajını ötenazi hale getirin ve ardından AVMA kılavuzlarına göre servikal çıkık18. Diseksiyon makası ve forseps kullanarak periton boşluğuna bir Y-insizyonu yapın. E9.5 embriyolarını içeren uterusu onaylanmış kurumsal kılavuzlara göre tüketin.</li>
	<li>Embriyoları tam büyüme ortamında disseke edin (Dulbecco'nun Modifiye Kartal Ortamı, esansiyel olmayan amino asitler, Na-piruvat, L-glutamin ve% 10 fetal sığır serumu ile desteklenmiştir). Yumurta sarısı kesesini, plasentayı ve çevresindeki zarları çıkarmak için forseps kullanın. NOT: Gerektiğinde, embriyo genotiplemesi için her yumurta sarısı kesesini saklayın.</li>
	<li>İzole edilmiş embriyoları, artık amniyotik doku ve kanı çıkarmak için Hank'in dengeli tuz çözeltisinde (HBSS) durulayın.</li>
	<li>Fiksatif hazırlayın. % 4'lük PFA'lık bir son çalışma konsantrasyonu için HBSS'ye paraformaldehit (PFA) ekleyin. DİKKAT: PFA toksik bir kimyasaldır, bu nedenle soluma veya doğrudan cilde maruz kalmaktan kaçınılmalıdır. Fiksatif çözeltinin hazırlanması, uygun kişisel koruyucu eldiven ekipmanı ve bir laboratuvar önlüğü ile bir duman başlığı altında gerçekleştirilir.</li>
	<li>24 kuyucuklu bir plakanın her bir kuyucuğuna 1 mL fiksatif ekleyin ve her embriyoyu ayrı bir kuyuya yerleştirin. Embriyoları bir rocker üzerinde nazik ajitasyonla 45 dakika boyunca fiksatif olarak inkübe edin. NOT: Kritik: Tüm yıkamalar ve inkübasyonlar, embriyoların ani kullanımı veya hareketi sabit sitomları tahrip edeceğinden, bir rocker veya dairesel çalkalayıcı üzerinde nazik ajitasyon (maksimum 20 RPM) ile yapılmalıdır. Tüm solüsyonları nazikçe çıkarmak için pipet kullanın.</li>
	<li>Fiksatifi çıkarın ve embriyoları 3 x 30 dakika içinde Fosfat Tamponlu Salin (PBS) içinde Ca 2 + ve Mg2 + ile% 0.1 Triton ilave edilerek yıkayın.</li>
	<li>Yıkadıktan sonra, embriyoları bloke edici çözeltide (Ca2 + ve Mg2 + ile PBS,% 0.1 Triton ve% 5 keçi serumu) nazik ajitasyonla inkübe edin. Blok 2 x 1 saat. İkinci blokaj inkübasyonundan sonra, taze bloke edici çözelti kullanarak embriyoların hızlı bir şekilde durulanması gerçekleştirilir.</li>
	<li>İkinci blokaj adımı sırasında, birincil antikor çözeltisi11'i hazırlayın. Antikorları PBS'deki optimize edilmiş konsantrasyona göre Ca 2 + ve Mg2 +,% 0.1 Ara-20 ve% 5 keçi serumu ile seyreltin. NOT: GFP membranının daha iyi görselleştirilmesi için tavuk anti-GFP (1:250) kullanılabilir.</li>
	<li>Bloke edici çözeltiyi çıkarın ve her bir oyuğa 1 mL birincil antikor çözeltisi ekleyin. 3 gün boyunca nazik bir dönüşle 4 ° C'de inkübe edin.</li>
	<li>Birincil antikor inkübasyonunu takiben, embriyoları PBS'deki bir rocker üzerinde 20 RPM'de 5 x 1 saat Ca 2 + ve Mg2 +,% 0.1 Ara-20 ve% 5 keçi serumu ile yıkayın.</li>
	<li>Sekonder antikor solüsyonunu F(ab')2 fragman sekonderlerini kullanarak PBS'de Ca 2+ ve Mg 2+,% 0.1 Tween-20 ve% 5 keçi serumu ile 1: 1.000 seyreltmede hazırlayın. NOT: F(ab')2 fragmanlarının kullanımı, numuneye antikor penetrasyonunu büyük ölçüde artırır.</li>
	<li>Her bir kuyucuğa 1 mL ikincil antikor çözeltisi ekleyin. 3 gün boyunca karanlıkta 4 ° C'de hafifçe sallanarak inkübe edin. NOT: Önemli: Bu noktadan itibaren, embriyonun doğrudan ışığa maruz kalmasını en aza indirin. İsteğe bağlı: Bakteri üremesini önlemek için, ikincil antikor çözeltisine% 0.2 sodyum azid ekleyin.</li>
	<li>İkincil antikor çözeltisini çıkarın ve embriyoları PBS'de 3 x 30 dakika Ca 2 + ve Mg2 +,% 0.1 Ara-20 ve% 5 keçi serumu ile yıkayın. Phalloidin veya diğer aktin boyaları ile aktin boyama yapılmazsa, ilk yıkamadan sonra, PBS'ye Ca 2 + ve Mg 2+,% 0.1 Tween-20 ve% 5 keçi serumu ile 4′,6-diamidino-2-fenilindol (DAPI) ekleyin ve 1 saat boyunca inkübe edin, ardından yukarıda açıklandığı gibi 3 x 30 dakikalık yıkamalar yapın. NOT: Bu noktada, embriyolar ertesi gün gömme adımına kadar karanlıkta PBS veya HBSS'de 4 °C'de gece boyunca saklanabilir. Bununla birlikte, embriyoların derhal gömülmesi ve bölümlendirilmesi önerilir.</li>
</ol>2. Embriyo gömme, bölümleme ve montaj
<ol><li>HBSS veya PBS'de Ca 2 + ve Mg2 + ile çözünmüş% 4'lük bir w / v Düşük Erime Noktası (LMP) agaroz çözeltisini, embriyo başına ~ 3 mL'lik bir son hacme hazırlayın. LMP agarozu çözülene kadar uygun ağırlığı HBSS veya PBS'ye Ca 2+ ve Mg2+ ile ve mikrodalgaya ekleyin. NOT: LMP agarozu çözüldükten sonra, LMP agaroz çözeltisinin katılaşmasını önlemek için çözeltiyi 55 ° C'ye ayarlanmış bir boncuk banyosunda, inkübatörde veya su banyosunda saklayın.</li>
	<li>Embriyolar için gömme kalıbı olarak 12 kuyucuklu bir plaka kullanın. 12 delikli plakayı 55 °C boncuk banyosuna yerleştirin. Bir embriyoyu tutacak her bir kuyucuğa 2.5-3 mL% 4 LMP agarozu ekleyin. NOT: Diğer kalıplar kullanılabilse de, 12 delikli plaka hacimleri, agaroz bloğunu daha sonraki aşamalarda bölümleme için hazırlamak için idealdir.</li>
	<li>Delikli bir kaşık kullanarak, embriyoları% 4 LMP agaroz çözeltisi içeren ayrı kuyucuklara aktarın (Şekil 1A).<ol>
<li>12 kuyulu plakayı boncuk banyosundan bir tezgaha aktarın. Embriyoyu çözelti içinde ortalanacak şekilde nazikçe gömmek ve yönlendirmek için pipet uçlarını kullanın. Embriyolar yönlendirildikten sonra, bloğun hızlı katılaşmasını sağlamak için plakayı 10 dakika boyunca -20 ° C'ye yerleştirin. KRİT: Embriyonun bloğun ortasına yerleştirildiğinden emin olun. Dibe batan veya kalıbın kenarına çok yakın olan embriyolar, bölümleme sırasında agaroz bloğundan muhtemelen yerinden çıkacaktır.</li>
	</ol></li>
	<li>Bir neşter kullanarak tüm agaroz bloğunu kuyudan çıkarın ve embriyonun etrafında dikdörtgen bir blok kesin ve her iki tarafta ~ 0.3 cm blok bırakın. Embriyonun kaudal ucu boyunca ekstra uzunluğa izin verin. Vibratom üzerine monte edildiğinde, embriyoyu bloğun üst kısmında dik konumda yönlendirin (Şekil 1B).</li>
	<li>Vibratomun numune tutucusuna bir bant şeridi uygulayın ve agaroz bloğunu banda süper yapıştırın, böylece bıçak embriyonun eksenel bölümlerini anterior (kraniyal) ila posterior sekansta üretecektir.</li>
	<li>Numunenin tamamen daldırıldığından emin olmak için vibratom odasını soğuk HBSS ile doldurun ve ardından odayı buzla çevreleyin.</li>
	<li>Kesme kalınlığı 100 μm olarak ayarlanmış olarak vibratom hızını 0,2 mm / s'ye ve frekansı 5 ila 7 (50-70 Hz) arasında ayarlayın. Embriyonun seri eksenel kesitlemesini gerçekleştirin. NOT: Bölümleme için yavaş bir hız kullanın. Kesim hızı 0.25 mm / s'nin üzerine çıkarsa, kesitleme embriyoyu yırtabilir veya embriyoyu bloktan çıkarabilir.<ol>
<li>Bölümleme serisi sırasında, tek tek bölümleri HBSS ile doldurulmuş ayrı bir 60 mm'lik kaba nazikçe aktarmak için forseps kullanın. Doku hasarını ve sitomların tahrip olmasını önlemek için dokuyu değil, bloğu tutmak için forseps kullanın. NOT: Doku kesitleri agaroz bloğu içinde kalmalıdır. Doku bloktan vibratom odasına düşerse, bölümü kaldırarak yavaşça aktarın. Dokuyu tutmayın veya sıkıştırmayın. KRİT: Doku kesitlerinin katlanması veya ani elleçleme, doku kesitlerindeki sabit sitonemleri yok edecektir.</li>
	</ol></li>
	<li>F-aktin boyama yapmıyorsanız, adım 2.10'a geçin.<ol>
<li>F-aktin boyama işlemini gerçekleştirmek için, HBSS'yi çıkarın ve oda sıcaklığında Ca 2+ ve Mg 2+, %0.1 Tween-20 ve %5 keçi serumu ile PBS'de seyreltilmiş Aktin-Kırmızı ve DAPI çözeltisi ile 40 dakika boyunca bölümleri inkübe edin.</li>
	</ol></li>
	<li>Bölümleri PBS'de 3 x 20 dakika Ca 2+ ve Mg2+ ve% 0.1 Ara-20 ile yıkayın.</li>
	<li>Hidrofobik bir işaretleyici kalem kullanarak, yüklü bir mikroskop slaytının kenarlarına hidrofobik bir bariyer çizin ve alanı doldurmak için az miktarda HBSS ekleyin.</li>
	<li>Bölümleri slayda aktarmak için forseps veya delikli bir kaşık kullanın. NOT: Agaroz içine alınmamış herhangi bir doku kesiti bir transfer pipeti ile aktarılabilir.</li>
	<li>Forseps kullanarak fazla agaroz bloğunu çıkarın.</li>
	<li>Tüm bölümler slayda aktarıldıktan sonra, pipetleme yoluyla fazla sıvıyı ve emici bir havlunun köşesini temizleyin ve ardından slayta birkaç damla montaj ortamı ekleyin. Kürlendiğinde tüm kapak kayma alanını kaplamak için yeterli montaj ortamı kullanın. Kapak kaymasını yavaşça kızağın üzerine yerleştirerek monte edin. NOT: Montaj ortamı sertleşene kadar basınç veya rahatsız edici kapak kayması uygulamaktan kaçının.</li>
</ol>3. Görüntüleme
<ol><li>Herhangi bir konfokal veya daha yüksek çözünürlüklü mikroskopta doku kesitlerinin görüntülenmesini gerçekleştirin11. Genotip başına en az üç embriyoyu analiz edin. NOT: Doku kesitlerinin görüntüleri TCS SP8 STED 3x konfokal mikroskop kullanılarak elde edildi ve bunu LIGHTNING dekonvolüsyonu izledi.</li>
</ol>

<ol><li>Crick, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diffusion+in+embryogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Diffusion in embryogenesis.</a> Nature. 225 (5231), 420-422 (1970).</li>
<li>Zeng, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+freely+diffusible+form+of+Sonic+hedgehog+mediates+long-range+signalling%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">A freely diffusible form of Sonic hedgehog mediates long-range signalling.</a> Nature. 411 (6838), 716-720 (2001).</li>
<li>Yu, S. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fgf8+morphogen+gradient+forms+by+a+source-sink+mechanism+with+freely+diffusing+molecules%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Fgf8 morphogen gradient forms by a source-sink mechanism with freely diffusing molecules.</a> Nature. 461 (7263), 533-536 (2009).</li>
<li>Zhou, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Free+extracellular+diffusion+creates+the+Dpp+morphogen+gradient+of+the+Drosophila+wing+disc%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Biology%22%5BJournal%5D)">Free extracellular diffusion creates the Dpp morphogen gradient of the Drosophila wing disc.</a> Current Biology. 22 (8), 668-675 (2012).</li>
<li>Ribes, V., Briscoe, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishing+and+interpreting+graded+Sonic+Hedgehog+signaling+during+vertebrate+neural+tube+patterning%3A+the+role+of+negative+feedback%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+Perspectives+in+Biology%22%5BJournal%5D)">Establishing and interpreting graded Sonic Hedgehog signaling during vertebrate neural tube patterning: the role of negative feedback.</a> Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 1 (2), 002014(2009).</li>
<li>Le Dréau, G., Martí, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dorsal-ventral+patterning+of+the+neural+tube%3A+a+tale+of+three+signals%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Neurobiology%22%5BJournal%5D)">Dorsal-ventral patterning of the neural tube: a tale of three signals.</a> Developmental Neurobiology. 72 (12), 1471-1481 (2012).</li>
<li>Kornberg, T. B., Guha, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Understanding+morphogen+gradients%3A+a+problem+of+dispersion+and+containment%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Genetics+%26+Development%22%5BJournal%5D)">Understanding morphogen gradients: a problem of dispersion and containment.</a> Current Opinion in Genetics & Development. 17 (4), 264-271 (2007).</li>
<li>Ramirez-Weber, F. A., Kornberg, T. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytonemes%3A+cellular+processes+that+project+to+the+principal+signaling+center+in+Drosophila+imaginal+discs%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Cytonemes: cellular processes that project to the principal signaling center in Drosophila imaginal discs.</a> Cell. 97 (5), 599-607 (1999).</li>
<li>Sanders, T. A., Llagostera, E., Barna, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specialized+filopodia+direct+long-range+transport+of+SHH+during+vertebrate+tissue+patterning%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Specialized filopodia direct long-range transport of SHH during vertebrate tissue patterning.</a> Nature. 497 (7451), 628-632 (2013).</li>
<li>Bischoff, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytonemes+are+required+for+the+establishment+of+a+normal+Hedgehog+morphogen+gradient+in+Drosophila+epithelia%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Cytonemes are required for the establishment of a normal Hedgehog morphogen gradient in Drosophila epithelia.</a> Nature Cell Biology. 15 (11), 1269-1281 (2013).</li>
<li>Hall, E. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytoneme+delivery+of+sonic+hedgehog+from+ligand-producing+cells+requires+Myosin+10+and+a+dispatched-BOC%2FCDON+co-receptor+complex%5BTitle%5D)+AND+%22eLife%22%5BJournal%5D)">Cytoneme delivery of sonic hedgehog from ligand-producing cells requires Myosin 10 and a dispatched-BOC/CDON co-receptor complex.</a> eLife. 10, 61432(2021).</li>
<li>Huang, H., Kornberg, T. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cells+must+express+components+of+the+planar+cell+polarity+system+and+extracellular+matrix+to+support+cytonemes%5BTitle%5D)+AND+%22eLife%22%5BJournal%5D)">Cells must express components of the planar cell polarity system and extracellular matrix to support cytonemes.</a> eLife. 5, 18979(2016).</li>
<li>Brunt, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vangl2+promotes+the+formation+of+long+cytonemes+to+enable+distant+Wnt%2F%CE%B2-catenin+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Vangl2 promotes the formation of long cytonemes to enable distant Wnt/β-catenin signaling.</a> Nature Communications. 12 (1), 2058(2021).</li>
<li>Roy, S., Huang, H., Liu, S., Kornberg, T. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytoneme-mediated+contact-dependent+transport+of+the+Drosophila+decapentaplegic+signaling+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Cytoneme-mediated contact-dependent transport of the Drosophila decapentaplegic signaling protein.</a> Science. 343 (6173), 1244624(2014).</li>
<li>Mattes, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Wnt%2FPCP+controls+spreading+of+Wnt%2F%CE%B2-catenin+signals+by+cytonemes+in+vertebrates%5BTitle%5D)+AND+%22eLife%22%5BJournal%5D)">Wnt/PCP controls spreading of Wnt/β-catenin signals by cytonemes in vertebrates.</a> eLife. 7, 36953(2018).</li>
<li>Bodeen, W. J., Marada, S., Truong, A., Ogden, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+fixation+method+to+preserve+cultured+cell+cytonemes+facilitates+mechanistic+interrogation+of+morphogen+transport%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">A fixation method to preserve cultured cell cytonemes facilitates mechanistic interrogation of morphogen transport.</a> Development. 144 (19), 3612-3624 (2017).</li>
<li>Hall, E. T., Ogden, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preserve+cultured+cell+cytonemes+through+a+modified+electron+microscopy+fixation%5BTitle%5D)+AND+%22Bio-protocol%22%5BJournal%5D)">Preserve cultured cell cytonemes through a modified electron microscopy fixation.</a> Bio-protocol. 8 (13), (2018).</li>
<li>American Veterinary Medical Association. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AVMA+guidelines+for+the+euthanasia+of+animals%5BTitle%5D)+AND+%22American+Veterinary+Medical+Association%22%5BJournal%5D)">AVMA guidelines for the euthanasia of animals.</a> American Veterinary Medical Association. , (2020).</li>
<li>Harfe, B. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evidence+for+an+expansion-based+temporal+Shh+gradient+in+specifying+vertebrate+digit+identities%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Evidence for an expansion-based temporal Shh gradient in specifying vertebrate digit identities.</a> Cell. 118 (4), 517-528 (2004).</li>
<li>Chamberlain, C. E., Jeong, J., Guo, C., Allen, B. L., McMahon, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Notochord-derived+Shh+concentrates+in+close+association+with+the+apically+positioned+basal+body+in+neural+target+cells+and+forms+a+dynamic+gradient+during+neural+patterning%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Notochord-derived Shh concentrates in close association with the apically positioned basal body in neural target cells and forms a dynamic gradient during neural patterning.</a> Development. 135 (6), 1097-1106 (2008).</li>
<li>Muzumdar, M. D., Tasic, B., Miyamichi, K., Li, L., Luo, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+global+double-fluorescent+Cre+reporter+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Genesis%22%5BJournal%5D)">A global double-fluorescent Cre reporter mouse.</a> Genesis. 45 (9), 593-605 (2007).</li>
<li>Bacallao, R., Sohrab, S., Phillips, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBacallao%2C+R+%22Handbook+Of+Biological+Confocal+Microscopy%22">Handbook Of Biological Confocal Microscopy</a>. Pawley, J. B. , Springer US. 368-380 (2006).</li>
<li>Tagliaferro, P., Tandler, C. J., Ramos, A. J., Pecci Saavedra, J., Brusco, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunofluorescence+and+glutaraldehyde+fixation.+A+new+procedure+based+on+the+Schiff-quenching+method%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Methods%22%5BJournal%5D)">Immunofluorescence and glutaraldehyde fixation. A new procedure based on the Schiff-quenching method.</a> Journal of Neuroscience Methods. 77 (2), 191-197 (1997).</li>
<li>Neckel, P. H., Mattheus, U., Hirt, B., Just, L., Mack, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large-scale+tissue+clearing+%28PACT%29%3A+Technical+evaluation+and+new+perspectives+in+immunofluorescence%2C+histology%2C+and+ultrastructure%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Large-scale tissue clearing (PACT): Technical evaluation and new perspectives in immunofluorescence, histology, and ultrastructure.</a> Scientific Reports. 6 (1), 1-13 (2016).</li>
<li>Clendenon, S. G., Young, P. A., Ferkowicz, M., Phillips, C., Dunn, K. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Deep+tissue+fluorescent+imaging+in+scattering+specimens+using+confocal+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Microscopy+and+Microanalysis%22%5BJournal%5D)">Deep tissue fluorescent imaging in scattering specimens using confocal microscopy.</a> Microscopy and Microanalysis. 17 (4), 614-617 (2011).</li>
</ol>

Yazarların beyan etmek için rakip çıkarları yoktur.

Bu protokol, yüksek çözünürlüklü floresan mikroskopi için embriyonik doku kesitlerinde hassas sitomenlerin korunması için geliştirilmiştir. Bugüne kadar, çeşitli model organizmalar arasında dokudaki sitonomların görselleştirilmesi, büyük ölçüde canlı doku görüntülemeyi kullanarak floresan olarak etiketlenmiş proteinlerin ektopik ekspresyonuna dayanıyordu. Ne yazık ki, floresan olarak etiketlenmiş canlı görüntülemenin kullanımı, endojen olarak eksprese edilen proteinlerin analizine nadiren elverişlidir, zaman kısıtlamaları getirebilir ve özel görüntüleme aşamaları ve mikroskoplar gerektirir. Burada tarif edilen boyama ve kesitleme yöntemi, endojen olarak eksprese edilen proteinlerin nihai tespiti için immünohistokimyaya izin vermek için sitonomları ve diğer hücresel uzantıları korur. Bu teknoloji, morfojenlerin in vivo olarak farklı dokular arasında nasıl taşındığına dair yeni anlayışları kolaylaştıracak ve sitonomların çalışılabileceği model sistemlerin kapsamını genişletecektir.
Bu protokol, gliserol gibi denge çözeltisinin veya sakkaroz gibi kriyoprotektan çözeltilerin kullanılmasını önleyen tam montajlı boyama ve vibratom kalın kesitleme kullanır. Hücresel uzantıların maksimum korunmasına izin vermek için kesitli doku kullanımını en aza indirmeyi amaçlamaktadır. Kesitlemeden sonra dokunun daha az işlenmesi, sitonomların genel korunmasında sürekli olarak daha iyi sonuçlar sağlamıştır. Bu nedenle, embriyonun bölümlenmesi, görüntülemeden önceki son adımlardan biridir.
Kültürlenmiş hücrelerin sitonemlerinin korunması için geliştirilen bir fiksasyon tekniği olan MEM-fix, doğuştan gelen hücre mimarisinin canlı boyutlarıyla karşılaştırılabilir 3D korunmasının iyileştirilmesini sağlayan glutaraldehit ve PFA'nın bir kombinasyonundan oluşur16,17. Ne yazık ki, MEM-fix, embriyo fiksasyonu için yararlı değildi, çünkü glutaraldehit otomatik floresan yapabilir ve yüksek protein çapraz bağlanma aktivitesi nedeniyle hücrelerde antikor penetrasyonunu ve epitop bağlanmasını ciddi şekilde sınırlar22,23. Bu nedenle, PFA fiksasyon koşulları sonrası kesitleme protokolleri, embriyonik dokudaki hücresel uzantıların korunmasına izin verecek şekilde optimize edilmiştir. PFA, embriyonik dokudaki sitonem benzeri uzantıları koruyabilse de, görüntü analizi dikkatle yapılmalıdır. PFA, bireysel hücrelerin ve dokuların kısmi dehidrasyonuna neden olabilir, bu da küçük hacim azalmasına ve sabit doku içinde küçük hücre dışı boşlukların oluşmasına neden olabilir.
Bu protokol, kriyoproteksiyon ve doku temizliği için sakkaroz yeniden doygunluğunun ekstra adımlarını önler, çünkü sakkaroz veya gliserol çözeltileri dokunun küçük bir yeniden doygunluğuna neden olabilir24. Ortaya çıkan küçük şişlik, hücreler arasında ve dokular arasında göç eden sabit hücresel uzantıları ve sitomları yok edebilir. Bu, kalın kesitli vibratomu kriyostat kesitleriyle karşılaştırırken belirgindi. Doku kalınlığının arttırılması sağlam sitonomların korunmasını iyileştirmiş olsa da, sakkarozla yeniden doymuş kriyostat kesitlerinde saptanabilir sitonamların görülme sıklığı sürekli olarak daha düşüktür.
Bu protokolün optimizasyonu, 100 μm kalınlığındaki kesitlerin bozulmamış sitonomların korunmasını sağlamak için en iyisi olduğunu ortaya koymuştur. Daha ince kesitler tipik olarak görüntüleme için kullanılır, çünkü çoğu konfokal mikroskop,hücresel uzantıları 25'i temizlemeden ~ 20-40 μm derinliğe kadar görselleştirmek için yalnızca yeterli çözünürlükte görüntüleme yapabilir. Bununla birlikte, ince kesitleri keserken bıçaktan embriyonik hücrelere uygulanan mekanik kuvvetler ve bozulma sitomları yok eder. Daha kalın kesitler, doku içindeki bozulmamış uzantıları korurken kesit içinde daha geniş bir derinlik alanı sağlar. Ek olarak, daha kalın bölümlerin kullanılması, doku bölümlerinin aşırı katlanmasını veya burkulmasını önlemek için kullanım kolaylığı sağlar.
Bu protokol, E8-10.5 fare embriyolarının dokusundaki sitonomların maksimum korunması için optimize edilmiştir. Kesitleme sonrası dokunun minimal manipülasyonu, sitomenlerin genel olarak korunmasını sürekli olarak iyileştirdi. Artan boyut ve doku karmaşıklığı nedeniyle tekniği daha sonraki gelişim aşamalarına ve yetişkin doku kesitlerine uyarlamak için daha fazla optimizasyonun gerekli olması muhtemeldir. Bu, kesitlemeyi ve ardından immünofloresan boyama gerektirecektir. Bu doku, sitonem benzeri uzantıları korumak için ek temizleme adımları ve kesitleme sırasında doku kullanımının adaptasyonunu gerektirebilir. Bu ek adımların, bu protokolün gelecekteki uygulamaları için dikkate alınması ve ele alınması gerekecektir.

Embriyonik gelişim, morfojen sinyal yolaklarının koordineli aktivasyonu ile düzenlenir. Morfojenler, Sonic Hedgehog (SHH), büyüme faktörü β (TGF-β) / kemik morfojenik proteini (BMP), Kanatsız ilişkili entegrasyon bölgesi (WNT) ve fibroblast ve epidermal büyüme faktörü (FGF / EGF) ailelerine dönüştüren küçük, salgılanan proteinlerdir. Morfojenler, doku gelişimi sırasında hücresel organizasyon merkezlerinden üretilir ve salınır ve doku morfogenezi 1,2,3,4,5'i bilgilendirmek için hücrelerin organize alanları boyunca sinyal gradyanları oluşturur. Morfojen gradyanlarının bir temsili, varsayımsal merkezi sinir sisteminin morfojen yol aktivasyonu yoluyla desenlendiği gelişmekte olan sinir sisteminde bulunur. Nöral tüp olarak adlandırılan bu doku, ventral-en notokord ve zemin plakası tarafından salgılanan SHH'nin karşıt gradyanlarından ve dorsal çatı plakasından salgılanan WNT'lerden / BMP'lerdenoluşur. Nöral tüp, gelişimsel araştırmalarda morfojen gradyan bütünlüğünü sorgulamak için yaygın olarak kullanılır.
Morfojen gradyan oluşumu, sinyal dağılımı7'nin sıkı bir şekilde düzenlenmesine dayanır. Bunun gerçekleştiği hücresel mekanizmalardan biri, morfojenlerin sinyal üreten hücrelerden spesifik hedef hücre popülasyonlarına doğrudan iletilmesini kolaylaştıran sitonemler adı verilen uzun sinyal filopodiasının oluşumudur. Sitonomların, sinyal alan hücre zarları üzerinde morfojenleri biriktirmek için yüzlerce mikrometreyi uzattığı gözlenmiştir 8,9. Sitonem aracılı morfojen transportunun bozulması hem sineklerde hem de omurgalılarda gelişimsel anomalilere yol açarak, doku paternlemesi sırasında önemini vurgulamaktadır10,11,12,13,14.
Bugüne kadar, Drosophila, civciv ve zebra balığı modellerinde sitonomlar belgelenmiştir, ancak gelişmekte olan memeli embriyolarındaki yapıların görüntülenmesi zorlu olmaya devam etmektedir 8,9,15. Kompleks memeli dokularındaki sitonemleri in situ olarak etkili bir şekilde görüntülemenin önündeki bir engel, ince ve kırılgan doğalarıdır, bu da onları geleneksel fiksasyon yöntemleriyle hasara duyarlı hale getirir8. Daha önce, kültürlenmiş hücrelerdeki sitonemleri korumak ve konfokal mikroskopi16,17 kullanarak çalışmalarını sağlamak için modifiye elektron mikroskobu fiksatif (MEM-fix) için protokoller geliştirmiş ve optimize etmiştik.
MEM-fix tekniğinin kullanımı, SHH ile indüklenen sitonem oluşumunda ve fonksiyonunda rol oynayan bazı moleküllerin tanımlanmasına izin vermiştir11,16,17. Bununla birlikte, bu bulguların fizyolojik olarak ilgili nöral tüp modellemesi bağlamında doğrulanması, fare embriyonik dokusunu sabitlemek ve görüntülemek için yeni tekniklerin geliştirilmesini gerektirmiştir. Fare embriyolarını sitonem bütünlüğünü koruyacak ve immünoboyamaya ve konfokal analiz için embriyonik dokunun daha sonra bölümlenmesine izin verecek şekilde sabitlemek için bir protokol burada özetlenmiştir. Bu protokol, gelişmekte olan nöral tüpteki SHH üreten hücrelerden membran uzantılarını etiketlemek için membrana bağlı yeşil floresan proteini (GFP) kullanılarak geliştirilmiştir. Bu protokolün uygulanması, memeli sistemlerinin geliştirilmesinde sitonomların prevalansı ve önemi ile ilgili cevaplanmamış soruları ele alacaktır.

<table><tbody><tr><td>12 oyuklu plaka; Nunc Hücre Kültürü Tedavi Edildi&nbsp;</td><td>Termo Bilimsel&nbsp;</td><td>150628 (Fisher Scientific 12-565-321)</td><td></td></tr><tr><td>24 Kuyulu Plaka, Yuvarlak Nunc</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>142475</td><td></td></tr><tr><td>60 mm çanak&nbsp;</td><td>Corning, Falcon</td><td>353004 (Fisher Scientific 08772F)</td><td></td></tr><tr><td>Emici havlular (Professional Kimtech Science Kimwipes)</td><td>Kimberly-Clark KIMTECH</td><td>34155 (Fisher Scientific 06666A)</td><td></td></tr><tr><td>Aktin Kırmızısı 555 ReadyProbes Reaktifi&nbsp;</td><td>Canlandırıcı&nbsp;</td><td>R37112</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 AffiniPure F(ab')2 Parça Eşek Anti-Tavuk IgY (IgG) (H+L)</td><td>Jackson Immunoresearch Lab Inc</td><td>703-546-155</td><td>1:1.000 çalışma konsantrasyonu</td></tr><tr><td>Boncuk Banyosu 6L 230V</td><td>Lab Armor</td><td>Ürün #12L048 (Mfr. Model #74220-706)</td><td>55 & derece olarak ayarlanmış; C</td></tr><tr><td>tavuk anti-GFP</td><td>Aves Labs</td><td>SKU GFP-1020</td><td>1:250 çalışma konsantrasyonu</td></tr><tr><td>CO2 ></td><td></td><td></td><td>yayan bir CO2</tr><tr><td>Konfokal lazer tarama mikroskobu</td><td>Leica Microsystems</td><td>modeli: Leica TCS SP8</td><td></td></tr><tr><td>DAPI Çözeltisi (1 mg/mL)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>62248</td><td></td></tr><tr><td>Diseksiyon makası (Vannas Makas)</td><td>World Precision Instruments</td><td>14003</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco'nun Modifiye Eagle Medium, yüksek glikoz, glutamin içermez</td><td>Thermo Fisher Scientific, Gibco</td><td>11960044</td><td></td></tr><tr><td>Eppendorf Research Plus tek kanallı pipet, 0,1-2,5 & L</td><td>Eppendorf</td><td>3123000012</td><td></td></tr><tr><td>Eppendorf Research Plus tek kanallı pipet, 0,5-10 & mikro; L</td><td>Eppendorf</td><td>3123000020</td><td></td></tr><tr><td>Eppendorf Research Plus tek kanallı pipet, 100-1.000 & mikro; L</td><td>Eppendorf</td><td>3123000063</td><td></td></tr><tr><td>Eppendorf Research Plus tek kanallı pipet, 20-200 & mikro; L</td><td>Eppendorf</td><td>3123000055</td><td></td></tr><tr><td>Tüy Tek Kullanımlık Neşter #10</td><td>Fisher Scientific&nbsp;</td><td>Katalog No.NC9999403</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Sığır Serumu, sertifikalı, Amerika Birleşik Devletleri</td><td>Thermo Fisher Scientific, Gibco</td><td>16000044</td><td></td></tr><tr><td>Fisherbrand İnce Nokta Yüksek Hassasiyetli Forseps</td><td>Fisher Scientific&nbsp;</td><td>22-327379</td><td></td></tr><tr><td>Fisherbrand Etiketleme Bandı</td><td>Fisher Scientific&nbsp;</td><td>15-954</td><td></td></tr><tr><td>Formaldehit, %16, metanol içermez, Ultra Saf EM Sınıf</td><td>Polysciences</td><td>18814-10</td><td></td></tr><tr><td>Hank'in Dengeli Tuz Çözeltisi (HBSS)</td><td>Thermo Fisher Scientific, Gibco</td><td>14025</td><td></td></tr><tr><td>ImmEdge Hidrofobik Bariyer Pap Kalem&nbsp;</td><td>Vektör laboratuvarları</td><td>H-4000</td><td></td></tr><tr><td>Leica Application Suite X (LAS X) ile LIGHTNING</td><td>Leica Microsystems</td><td></td><td>Mikroskop yazılımı</td></tr><tr><td>L-Glutamin (200 mM)</td><td>Thermo Fisher Scientific, Gibco</td><td>25030081</td><td></td></tr><tr><td>Düşük Erime Noktalı Agaroz- UltraPure</td><td>Invitrogen&nbsp;</td><td>16520</td><td></td></tr><tr><td>MEM Esansiyel Olmayan Amino Asit Çözeltisi (100x)</td><td>Thermo Fisher Scientific, Gibco</td><td>11140050</td><td></td></tr><tr><td>Moria MC 17 BIS Delikli Kaşık</td><td>Güzel Bilim Aletleri&nbsp;</td><td></td><td></td>1037018</tr><tr><td>Montaj ortamı (ProLong Diamond Antifade Mountant)&nbsp;</td><td>Thermo Fisher Scientific, Invitrogen</td><td>P36961 ve nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Fare: B6.129X1(Cg)-Shhtm6Amc/J (ShhGFP/+)</td><td>Jackson Laboratuvarı</td><td>Suşu #:008466</td><td></td></tr><tr><td>Fare: B6. Cg-Shhtm1(EGFP/cre)Cjt/J (Shh-Cre)</td><td>Jackson Laboratuvarı</td><td>Suşu #:005622</td><td></td></tr><tr><td>Fare: C57BL/6J (B6)</td><td>Jackson Laboratuvarı</td><td>Suşu #:000664</td><td></td></tr><tr><td>Fare: Gt(ROSA)26Sortm4(ACTB-tdTomato,-EGFP)Luo/J (Rosa26 mTmG)</td><td>Jackson Laboratuvar</td><td>Suşu #:007576</td><td></td></tr><tr><td>Normal Keçi Serumu&nbsp;</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>005-000-121 (Fisher Scientific NC9660079)</td><td></td></tr><tr><td>PBS + Ca 2 + + Mg 2 + &nbsp;</td><td>Thermo Fisher Scientific, Gibco</td><td>14040133</td><td></td></tr><tr><td>Premium Mikrosantrifüj Tüpleri: 1.5 mL</td><td>Fisher Scientific&nbsp;</td><td>05-408-129</td><td></td></tr><tr><td>SHARP Hassas Bariyer Uçları, P-10 ve Eppendorf 10 & için Ekstra Uzun; L</td><td>Denville Scientific</td><td>P1096-FR</td><td></td></tr><tr><td>SHARP Hassas Bariyer Uçları, P-1000 ve Eppendorf 1.000, 1.250 ve mikro için; L</td><td>Denville Scientific</td><td>P1126</td><td></td></tr><tr><td>SHARP Hassas Bariyer Uçları, P-20 ve Eppendorf 20 & için; L</td><td>Denville Scientific</td><td>P1121</td><td></td></tr><tr><td>SHARP Hassas Bariyer Uçları, P-200 ve Eppendorf 200 & için; L</td><td>Denville Scientific</td><td>P1122</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum Azide</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S8032</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum Piruvat (100 mM) (100x)</td><td>Thermo Fisher Scientific, Gibco</td><td>11360070</td><td></td></tr><tr><td>Süper Yapıştırıcı</td><td>Gorilla</td><td></td><td></td></tr><tr><td>SuperFrost Plus mikroskop slaytları&nbsp;</td><td>Fisher Bilimsel&nbsp;</td><td>12-550-15</td><td></td></tr><tr><td>TPP santrifüj tüpleri, hacim 15 mL, polipropilen</td><td>TPP Tekno Plastik Ürünler</td><td>91015</td><td></td></tr><tr><td>TPP santrifüj tüpleri, hacim 50 mL, polipropilen</td><td>TPP Tekno Plastik Ürünler</td><td>91050</td><td></td></tr><tr><td>Transfer pipeti, polietilen</td><td>Millipore Sigma</td><td>Z135003</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T9284</td><td></td></tr><tr><td>Ara-20&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P1379</td><td></td></tr><tr><td>Vari-Mix Platform Rocker</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>09-047-113Q</td><td>20 RPM'ye ayarlanmış</td></tr><tr><td></td><td>Vibratom Leica Biosytems</td><td>VT1000 S</td><td></td></tr></tbody></table>

sitonem analizi için embriyonik fare dokusunun fiksasyonu

Fixation of Embryonic Mouse Tissue for Cytoneme Analysis

Gelişimsel doku paternlemesi ve postgelişimsel doku homeostazı, morfojenler adı verilen hücresel sinyallerin kontrollü olarak iletilmesine bağlıdır. Morfojenler, hücre kaderini öğreten ve güçlendiren farklı transkripsiyonel programları belirtmek için konsantrasyon ve zamana bağlı bir şekilde hareket eder. Uygun morfojen sinyal eşiklerinin sağlandığı bir mekanizma, sinyal proteinlerinin sitomem adı verilen özel filopodia tarafından verilmesidir. Sitonomlar çok incedir (çapı ≤200 nm) ve birkaç yüz mikron uzunluğa kadar büyüyebilir, bu da sabit görüntü analizi için korunmalarını zorlaştırır. Bu yazıda, standart konfokal mikroskopi kullanılarak sitonemlerin görüntülenmesine izin vermek için fiksasyon, immün boyama ve kalın kesitleme için fare embriyolarının hassas kullanımı için rafine bir yöntem açıklanmaktadır. Bu protokol, fare nöral tüp gelişimi sırasında farklı hücresel sinyal bölmelerini birbirine bağlayan sitonomları görselleştirmek için başarıyla kullanılmıştır. Bu teknik ayrıca, gelişimsel sinyallemenin benzeri görülmemiş bir çözünürlükte sorgulanmasını kolaylaştırmak için doku tipleri arasında sitonomları tespit etmek için uyarlanabilir.

Kuyu başına 2.5-3 mL agaroz çözeltisi içeren 12 delikli bir plakanın daha büyük bir kalıbının kullanılması, birkaç embriyonun kısa bir süre içinde gömülmesi ve askıya alınması için idealdir (Şekil 1A). Fazla alan, kesitleme için agaroz bloğunu keserken doğru yönlendirmeye izin verir. Agaroz bloğunu keserken, nesne tutucu üzerindeki banda yapıştırılacağı bloğun tabanı boyunca fazla agarozun korunması önemlidir. Embriyo bloğun üst yarısında olmalıdır (Şekil 1B). Bununla birlikte, alt bölüm çok büyük olmamalıdır, çünkü fazla blok, kesitleme sırasında bıçak bloğa doğru iterken kesme açısını değiştirme şansını arttırır. Doğru yönlendirilmiş bölümlere örnekler gösterilmiştir (Şekil 1C,D).
Bu protokol geliştirilirken vibratom kesiti kriyostat kesitleme ile karşılaştırılmıştır. Dokunun kriyostat kesiti nadiren hücresel uzantıları korumuştur (Şekil 2 kriyostat ve Şekil 3A,B vibratomu). Kriyostat kesitleri, notokord ve nöral tüp hücreleri arasında (Şekil 2A ok ucu) ve bitişik nöral tüp hücreleri arasında (Şekil 2B, B' ok uçları) bazı GFP-pozitif membran parçalarının tespit edilmesine izin verdi. Bununla birlikte, nöral tüpü çevreleyen yüksek filamentli mezenkimal hücrelerdeki hücresel uzantıların F-aktin boyaması kriyostat kesitlerinde bozulmuştur (Şekil 2C, C' ok, vs Şekil 3C, D). Bu kriyostat sonuçları, bu yöntemi takiben kırık hücresel uzantıların sadece bazı izlerinin kaldığını göstermektedir. Bu nedenle, sonraki analizler için bu hassas uzantıları verimli bir şekilde korumak için vibratom kesitleme tercih edilir.
Tüm embriyonun ve bireysel doku kesitlerinin minimal bozulması, hücresel uzantıların yüksek kalitede görüntülenmesi için gereklidir. Herhangi bir katlanma veya burkulma geçirmiş doku kesitleri, notokordun yokluğu veya notokord ile nöral tüpün ventral taban plakası arasında büyük bir ayrım (&gt;30 μm) ile belirgin olacaktır (Şekil 3B). Buna genellikle normalde nöral tüpü çevreleyen mezenkimal hücrelerin kaybı eşlik eder (Şekil 3A, ok). Hasarlı bölümler ayrıca epitel hücreleri arasında göç eden görünür hücresel membran uzantılarının kaybına neden olacaktır (Şekil 3B, Şekil 3A'ya kıyasla, ok uçları). Bölümlerdeki küçük bozulmalar bile, aktin bazlı uzantıların parçalanmasına ve hücreler arasında büyük boşlukların oluşmasına neden olabilir (Şekil 3D, ok uçları, iyi korunmuş Şekil 3C ile karşılaştırıldığında), tüm adımlarda hassas kullanım ihtiyacının altını çizer.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64100/64100fig01.jpg"> Resim 1: E9.5 Shh-Cre örneği; Rosa26 mTmG lekeli, gömülü ve kesitli embriyo. (A) 12 delikli bir plakada,% 4 LMP agarozuna gömülü tek bir embriyo. (B) Vibratom montajı için boyuta göre kesilmiş agaroz bloğu içinde doğru yönlendirilmiş bir embriyo örneği. Alt kısımda fazla agaroz bloğu bulunur. (C) LMP agarozuna gömülü 100 μm kalınlığında embriyo kesitinin parlak alan görüntüsü. (D) Agarozun çıkarılmasından sonra bir bölümün immünofloresan görüntülemesi. Anti-GFP boyalı mGFP (yeşil), dokudaki Shh eksprese eden hücreleri temsil ederken, diğer hücre soyları membran Domatesi (kırmızı), DAPI'yi mavi olarak ifade eder. Nöral tüp (braket) ve mGFP-pozitif notokord (ok) açıkça görülebilir. Ölçek çubukları = 1 cm (A), 5 mm (B) ve 100 μm (C,D). Kısaltmalar: LMP = düşük erime noktası; mGFP = membran yeşil floresan proteini; Shh = Sonik Kirpi; DAPI = 4',6-diamidino-2-fenilindol. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64100/64100fig01large.jpg" target="_blank">Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64100/64100fig02.jpg"> Şekil 2: Kriyostat kesitli nöral tüp taban plakası ve parçalanmış membran uzantılı notokord örneği. (A) 20 μm kalınlığında E9.5 Shh-Cre; Rosa26 mTmG 19,20,21 kesit GFP (yeşil), F-aktin (kırmızı) ve DAPI (mavi) için boyanmıştır. mGFP puncta, nöral tüpün bitişik hücreleri arasında göç eden notochord ve zemin plakası (ok ucu) arasında ve (B, B') arasında görülebilir. (C,C') F-aktin boyama, nöral tüpü (ok) çevreleyen mezenkimal hücreler üzerinde herhangi bir net sitonom tespit edemez. Ölçek çubukları = 20 μm. Kısaltmalar: mGFP = membran yeşil floresan proteini; Shh = Sonik Kirpi; DAPI = 4',6-diamidino-2-fenilindol. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64100/64100fig02large.jpg" target="_blank">Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64100/64100fig03.jpg"> Şekil 3: Optimal ve suboptimal vibratom doku kesitlerine ve nöral tüp taban plakasının, notokordun ve çevresindeki hücrelerin boyanmasına örnekler. (B) katlanmış bir doku kesiti ve (D) bir Shh-Cre'den kötü işlenmiş bir bölüm ile karşılaştırıldığında, hassas bir şekilde ele alınan bölümlerin (A, C) örnekleri; Rosa26 mTmG ve bir ShhGFP / + embriyo 19,20,21. Optimal olarak ele alınan kesitler, bitişik olarak lokalize taban plakası nöral epitel hücreleri (A, ok uçları) arasındaki sitonomların tespit edilmesini sağlar. Notochord (A, mGFP eksprese eden) ve mezenkimal hücrelere (A, ok) bitişik nöral tüp görünür olmalıdır. (C,D) F-aktin ve DAPI boyalı kesitler, nöral tüp ve notokord (C) çevreleyen mezenkimal hücrelerin ve F-aktin bazlı sitomenlerin (oklar) tutarlı aralıklarına sahip olmalıdır. Bölümlerin herhangi bir küçük katlanması veya bozulması boşluklara ve kırık F-aktin parçalarına (D, ok uçları) neden olabilir. Ölçek çubukları = 10 μm. Kısaltmalar: mGFP = membran yeşil floresan proteini; Shh = Sonik Kirpi; DAPI = 4',6-diamidino-2-fenilindol. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64100/64100fig03large.jpg" target="_blank">Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>

Burada, fare dokularının geliştirilmesinde sitomem adı verilen özel sinyal filopodiasını tespit etmek için embriyoların fiksasyonu, immün boyama ve bölümlenmesi için optimize edilmiş bir adım adım protokol sağlanmaktadır.

Sitonem analizi için embriyonik fare dokusunun fiksasyonu

Developmental tissue patterning and postdevelopmental tissue homeostasis depend upon controlled delivery of cellular signals called morphogens. Morphogens ...

Bu protokolü kullanarak, standart ışık mikroskobu ile tüm embriyo boyunca sabit fare dokusundaki sitonomları görselleştirebiliriz. Bu tekniği kullanarak, floresan etiketli proteinleri kullanan genetik olarak manipüle edilmiş fare modellerine güvenmek yerine, sitonemler boyunca hareket eden endojen sinyal proteinlerini araştırabiliriz. Bu protokolü denerken, sitomenlerin optimal korunması için doku kesitlerini nazikçe ele almak önemlidir.Bu prosedürü gösteren, grubumda baş araştırmacı olan Miriam Dillard ve St.Jude yüksek lisans öğrencisi Christina Daly olacak. Başlamak için, periton boşluğuna bir Y kesisi yapmak için diseksiyon makası ve forseps kullanın. E 9.5 embriyosu içeren uterusu tüketin.Embriyoları tam DMEM büyüme ortamında disseke edin. Yumurta sarısı SAC, plasenta ve çevresindeki zarları çıkarmak için forseps kullanın. Artık amniyotik doku ve kanı çıkarmak için izole edilmiş embriyoları HBSS'de durulayın.Daha sonra,% 4'lük bir paraformaldehit çalışma konsantrasyonu için HBSS'ye paraformaldehit ekleyerek fiksatifi hazırlayın. 24 delikli bir plakanın her bir kuyucuğuna bu çözeltinin bir mililitresini ekleyin. Embriyoları bireysel kuyucuklara yerleştirin.Embriyoları 45 dakika boyunca bir rocker üzerinde nazik ajitasyonla inkübe edin. Kuluçkadan sonra, fiksatifi çıkarın ve embriyoları PBS'de 30 dakika boyunca kalsiyum, magnezyum ve% 0.1 Triton eklenerek üç kez yıkayın. Daha sonra embriyoları, her biri bir saat boyunca iki kez nazik ajitasyonla bloke edici çözeltide inkübe edin.İkinci inkübasyondan sonra, embriyoları taze bloke edici çözelti kullanarak durulayın. Bu arada, takviye edilmiş PBS'deki antikorları seyrelterek birincil antikor çözeltisini hazırlayın. Durulama tamamlandıktan sonra, bloke edici çözeltiyi çıkarın ve her bir oyuğa bir mililitre birincil antikor çözeltisi ekleyin.Plakayı üç gün boyunca yumuşak bir dönüşle dört santigrat derecede inkübe edin. Birincil antikor inkübasyonunu takiben, embriyoları 20 RPM'de bir rocker üzerinde bir saat boyunca beş kez takviyeli PBS ile yıkayın. Daha sonra her bir kuyucuğa bir mililitre ikincil antikor çözeltisi ekleyin.Tabağı üç gün boyunca karanlıkta dört santigrat derecede hafifçe sallanarak inkübe edin. İkincil antikor çözeltisini çıkarın ve embriyoları takviye edilmiş PBS'de 30 dakika boyunca üç kez yıkayın. PBS'de kalsiyum ve magnezyum içeren düşük erime noktası agarozunun ağırlığına göre% 4'lük bir çözelti hazırlayın.Aynı zamanda, 55 santigrat derece boncuk banyosuna 12 kuyucuklu bir plaka yerleştirin ve her bir kuyucuğa üç mililitre agaroz ekleyin. Daha sonra, plakayı bir tezgahın üzerine yerleştirin ve embriyoları delikli bir kaşık kullanarak bireysel kuyucuklara aktarın. Embriyoyu, çözelti içinde ortalanacak şekilde nazikçe gömmek ve yönlendirmek için pipet uçlarını kullanın.Embriyolar yönlendirildikten sonra, katılaşma için plakayı eksi 20 santigrat dereceye 10 dakika yerleştirin. Sonra bir neşter kullanarak, tüm agaroz bloğunu kuyudan çıkarın. Embriyonun etrafında dikdörtgen bir blok kesin, her iki tarafta yaklaşık 0.3 santimetre blok bırakın.Embriyonun kaudal ucu boyunca bloğun ekstra bir uzunluğunu bırakın. Embriyoyu vibratom üzerine monte etmek için, önce numune tutucuya bir bant şeridi uygulayın. Embriyoyu bloğun üst kısmında dik bir konumda yönlendirin ve agaroz bloğunu banda süper yapıştırın, böylece bıçak önden arkaya doğru bir sekansta eksenel bölümler üretecektir.Daha sonra, numuneyi tamamen batırmak için vibratom odasını soğuk HBSS ile doldurun ve ardından odayı buzla çevreleyin. Vibratom üzerindeki parametreleri ayarlayın ve embriyonun seri eksenel kesitlemesini gerçekleştirin. Tek tek bölümleri HBSS ile dolu ayrı bir kaba aktarmak için forseps kullanın.Doku hasarını ve sitonomların tahrip olmasını önlemek için sadece agarozu tutmak için forseps kullanmayı unutmayın. F-aktin boyama işlemini gerçekleştirmek için HBSS'yi çıkarın ve bölümleri takviyeli PBS'de ActinRed ve DAPI çözeltisi ile 40 dakika boyunca inkübe edin. Kuluçkadan sonra, bölümleri takviye edilmiş PBS'de 20 dakika boyunca üç kez yıkayın.Hidrofobik bir işaretleyici kalemle, yüklü bir mikroskop slaytının kenarlarına bir bariyer çizin ve doldurma alanına az miktarda HBSS ekleyin. Ardından, bölümleri slayda aktarmak için forseps kullanın. Forseps kullanarak fazla agarozu çıkarın.Tüm bölümler kızağa aktarıldıktan sonra, pipetle pipetleyerek ve emici bir havlunun köşesini kullanarak fazla sıvıyı çıkarın. Ardından slayda birkaç damla montaj ortamı ekleyin. Kapak kaymasını yavaşça kızağa yerleştirerek monte edin.Analiz için, konfokal veya herhangi bir yüksek çözünürlüklü mikroskopta genotip başına en az üç embriyo için doku kesitlerinin görüntülenmesini gerçekleştirin. Bu protokol kullanılarak hazırlanan doğru yönlendirilmiş bölümler burada gösterilmiştir. Vibratom kesiti ile karşılaştırıldığında, dokunun kriyostat kesiti hücresel uzantıları korumadı.Notochord ve nöral tüp hücreleri arasında ve kriyostat kesitlerinde bitişik nöral tüp hücreleri arasında birkaç GFP-pozitif membran fragmanı tespit edildi. Bununla birlikte, nöral tüpü çevreleyen mezenkimal hücrelerdeki hücresel uzantıların F-aktin boyanması kriyostat kesitlerinde bozulmuştur. Vibratom kesitlemesi, tüm embriyonun ve bireysel doku kesitlerinin minimum bozulmasını sağladı.Optimal olarak ele alınan kesitler, bitişik lokalize taban plakası nöral epitel hücreleri ile mezenkimal hücreler arasındaki ktionemlerin saptanmasına izin verdi. Katlanmış veya tokalı bölümler, notokord ile nöral tüpün ventral taban plakası arasındaki büyük bir ayrımla belirgindi. Ve epitel hücreleri arasında göç eden hücresel membran uzantılarının kaybı.F-aktin ve DAPI boyalı kesitler, nöral tüp ve notokord çevreleyen mezenkimal hücrelerin ve ktionemlerin tutarlı bir aralığına sahipti. Bölümlerdeki küçük bozulmalar, aktin bazlı uzantıların parçalanmasına ve hücreler arasında büyük boşlukların oluşmasına neden olmuş olabilir ve bu da hassas kullanım ihtiyacının altını çizer. Embriyo kesitinden sonra, doku bölümlerinin bükülmesini veya katlanmasını en aza indirmek zorunludur.sitonomların kırılmasını önlemek için. Bu tekniği kullanarak, morfojenler gibi sinyal moleküllerinin dokulara nasıl yayıldığını doğrudan görselleştirebiliriz. Bu bize dokuların ve organların nasıl desenlendiğine dair yeni bilgiler veriyor.

fixation-of-embryonic-mouse-tissue-for-cytoneme-analysis

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Gelişim Biyolojisi

Oosit mayotik olgunlaşması sırasında kromozom segregasyon hataları nedeniyle anöploidi yatkındır. Anöploid yumurta, kısırlık, düşüklere veya gelişimsel bozukluklar, Down sendromu gibi neden olabilir. Burada, yumurta ve mayotik olgunlaşma incelemek ve Ploidi değerlendirmek için yöntemler seçim malzemeleri tanıtmak için yöntemler açıklanmaktadır.

Fare Oosit Mikroenjeksiyon, olgunlaşması ve ploidi Değerlendirmesi

Nöral progenitör mitoz nöron kritik bir parametredir. Nöral progenitör mitoz anlayışımızın çok sabit doku analizine dayanmaktadır. Embriyonik beyin dilimleri Canlı görüntüleme, kontrollü bir ortamda, yüksek zamansal ve mekansal çözünürlük ile mitoz değerlendirmek için çok yönlü bir tekniktir.

Gelişmekte Fare Embriyonik Cortex mitoz Canlı Görüntüleme

Burada, genetik olarak tasarlanmış farelerin geliştirilmesinde duyusal akson büyüme fenotiplerini değerlendirmek için etkili bir yöntem olarak, tüm hayvanda periferik nosiseptör akson projeksiyonlarının görüntülenmesi için fetal fareleri genotiplemek, boyamak ve hazırlamak için optimize edilmiş bir protokol sunuyoruz.

Fare Embriyo Duyu Akson Projeksiyonlar tüm montaj Görüntüleme

İkili bir genetik stratejiden yararlanarak, Cre aracılı rekombinasyondan sonra tamamlayıcı transsinaptik izleyicileri eksprese eden farelerde nöral devre izleme için ayrıntılı bir protokol sağlıyoruz. Hücreye özgü izleyici üretimi genetik olarak kodlandığından, deneysel yaklaşımımız, murin embriyonik beyin gelişimi sırasında tek hücre çözünürlüğünde nöral devrelerin oluşumunu ve olgunlaşmasını incelemek için uygundur.

Embriyonik Fare beyninde İzleme Koşullu Genetik transsinaptik

Bu protokol, in utero elektroporasyon yoluyla C57BL/6 merkezi sinir sistemindeki farklı bölgelerin spesifik olarak nasıl transfekte edileceğini ayrıntılı olarak açıklar. Bu protokolde korteks, hipokampus, talamus, hipotalamus, lateral septal çekirdek ve striatuma dönüşen bölgelerin transfeksiyonları için ayrıntılı talimatlar bulunmaktadır.

Korteks, Hippocampus-, Thalamus-, Hypothalamus-, Lateral Septal Nucleus- ve Striatum özgü<em&gt; In Utero</em&gt; C57BL / 6 Fare Elektroporasyon

Bu rapor amacı sağlam immunohistokimyasal algılama epigenetik işaretleri için iletişim kuralı tanımlamak için fare retina 5-metilsitozin (5mC) ve 5 arasında bakterilerde görülen (5hmC) gelişmekte olan ve postmitotic.

5-metilsitozin ve gelişmekte olan 5-arasında bakterilerde görülen immunohistokimyasal tespiti ve Postmitotic fare Retina

Düğüm ve notochordal plaka gelişmekte olan çeşitli teknikler kullanarak görüntülenir fare embriyo organizatörler sinyal geçici. Burada, biz iki çalışma onların yapısı ve morfogenetik bozmak nasıl ayrıntılı olarak tarif: 1) Tarama elektron mikroskobu (SEM); ve 2) bütün Dağı ayirt (WMIF).

Düğüm ve Notochordal plaka Gastrulating fare embriyo Tarama elektron mikroskobu ve bütün Dağı ayirt kullanarak görselleştirme

Burada, kraniyofasiyal morphogenesis/patogenezi sırasında protein düzeylerini algılamak ve ölçmek için ayrıntılı bir protokol sunuyoruz Buna ek olarak, immünostasyon için genç farelerden undecalcified Sert dokularda hazırlama ve donuk kesit için bir yöntem açıklanmaktadır.

Fare Kraniyofacial dokularda ve Undecalcified kemik doku hazırlama ve Immünostasyon

Bu makalede, erkek mayotik bölünmesi için değerli bir model olan abdominal cerrahi ve testiküler GSK923295 enjeksiyonu yoluyla CENP-E'nin in vivo inhibisyonu bildirilmiştir. İmmünofloresan, akım sitometrisi ve transmisyon elektron mikroskobu tahlillerini kullanarak, CENP-E inhibisyonunun fare spermatositlerinde kromozom yanlış hizalaması ve genom instabilitesi ile sonuçlandığını gösterdik.

Kinesin-7 CENP-E'nin In Vivo İnhibisyon, İmmünofloresan ve Akım Sitometrisi Kullanılarak Spermatositlerde Fonksiyonel Değerlendirilmesi

Zebra balığı kalp gelişimi sırasında kalp gen ekspresyon profillerini analiz etmek, toplam RNA izole kalpleri elde edilecek olan. Burada, biz kalp-özel mRNA elde etmek Zebra balığı embriyolarının gelen hızlı manuel diseksiyon ile işlevsel / yenerek kalpleri toplamak için bir protokol mevcut.

Transkripsiyonal Analiz Büyük ölçekli Zebra balığı Embriyonik Kalp Diseksiyon

Keşfedin fare embriyolarında sitonem görüntüleme yöntemini, immunoboyama ve vibratome kesit teknikleri kullanarak. Bu protokol endojen sinyal proteinlerinin incelenmesini sağlar.

Sitonem analizi için embriyonik fare dokusunun fiksasyonu

Daha fazla video keşfet