Name: Domuz Pankreas Nakli Yapmak için Cerrahi İpuçları ve Püf Noktaları (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-07-20T14:50:00.000+00:00
Duration: 10 min 32 s
Description: Öğrenin domuz pankreas nakli tekniğini hassas visseral anatomiyi yönetmek için. Bu adım adım rehber, yeni cerrahların başarı oranını artırmaya ve transplantasyon sonuçlarını iyileştirmeye yardımcı olur.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Protokol, Toronto genel araştırma enstitüsü Hayvan Bakım Komitesi'nden etik onay aldı. Hayvanlar, Ulusal Tıbbi Araştırma Derneği ve Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı Kılavuzu, Ulusal Sağlık Enstitüsü (NIH), Ontario, Kanada'ya uygun olarak insancıl bakım aldı. Bu çalışma için 40-50 kg ağırlığında 15 haftalık akraba olmayan Yorkshire erkek domuzu kullanıldı.
NOT: Çalışmanın tüm protokolü aşağıdaki ana adımlara ayrılmıştır: (i) Organ alımı ve arka masa hazırlığı; (ii) Alıcı total pankreatektomi ve (iii) Greft implantasyonu. Donör ve alıcının tüm ameliyatı 1 günde yapılır.
1. Donör organ alımı ve arka masa hazırlığı
NOT: Organ alma yöntemi ayrı bir protokol6'da açıklanmıştır. Bununla birlikte, protokol, kısaca, cerrahi tekniğe özgü bazı ek eve dönüş noktaları (donör operasyonu ile ilgili cerrahi ipuçları) ile birlikte burada açıklanmaktadır.
<ol><li>Kısacası, donör domuzu uyuşturun ve hava yolunu ve merkezi venöz kateteri sabitleyin (aşağıda alıcı pankreatektomi bölümünde açıklanmıştır). İç organları kesin ve açığa çıkarın. Aortokaval diseksiyon ve mobilizasyonu iliak damarlara bifurkasyona kadar gerçekleştirin.</li>
	<li>Bağırsak kullanımı: Domuz ince bağırsağı uzun ve kıvrımlıdır ve kalın bağırsak çoğunlukla şişkindir. Yeterli perfüzyonu sağlamak ve mezenterik torsiyon olasılığını önlemek için donör operasyonunun her adımından sonra bağırsak halkalarını anatomik pozisyonlarında yeniden konumlandırdığınızdan emin olun.</li>
	<li>Hiler diseksiyon: Portal veni açığa çıkarmak için arteriyel dalları ve safra kanalını ligate edin ve bölün. Pankreato-duodenal bölgenin üstün yönünü perfüze eden küçük vasküler kanalların yaralanma riskini önlemek için hilumu (hepato-duodenal ligament) mümkün olduğunca yüksek / distal diseke edin. Portal venin ön yüzeyi çıplak kalana kadar damarları sağdan sola doğru bir sırayla iskeletleştirmeye başlayın.</li>
	<li>Aorto-kaval diseksiyon: Diyafragma crurasını bölerek aortun supra-hepatik infra-diyafragmatik kısmını açığa çıkarır. Pankreato-duodenal koru etrafındaki inferior vena kava diseksiyonundan kaçının. Her iki taraftaki renal arterleri diseksiyonun belirgin üst sınırı olarak kullanın.</li>
	<li>Daha küçük kesesi açarak pankreası açığa çıkarın. Renal arterleri bağlayın ve bölün. İnfrarenal aortu kanüle edin ve kızarma için Wisconsin Üniversitesi (UW) çözeltisine bağlanın.</li>
	<li>Supra-hepatik aort ve kelepçeyi ligate. Bağırsak ve pankreasın yeterli şekilde yıkanmasını sağlamak için 1.5 L-2 L UW çözeltisi ile yıkayın (solgunluğun görsel görünümü ile belirgindir). Organın in situ kızarması sırasında, ince bağırsağı ve kalın bağırsağı orta hatta doğru sırayla yeniden konumlandırarak mezenterik bükülme olmamasını sağlayın. Bu adım, bağırsak ve pankreasın UW (Wisconsin Üniversitesi) çözeltisi ile düzgün bir şekilde yıkanmasını sağlar ve hatırlanması önemlidir.</li>
	<li>Portal ven ve infrahepatik vena kava'yı, venöz atık suyu dışarı atmak için yıkamaya başladıktan sonra aynı anda kesin. Soğuk perfüzyon sağlamak için karnı buzla örtün. Organı (retroperitoneum, psoas, dalak ve adrenal kısımları ile pankreatoduodenal greft) topluca diseke edin.</li>
	<li>Soğuk diseksiyon: Pankreas ve kalın bağırsak arasındaki fasyanın keskin diseksiyonu ile greftin lateral yönden medial yöne, pankreasın kuyruğundan baş ve korpus arasındaki kavşağa kadar mobilizasyonuna başlayın. Bu adımı gerçekleştirirken, pankreası forseps ile retroperitoneal kaplamasından tutun ve asistandan kalın bağırsakta ayağa doğru karşı çekiş yapmasını isteyin.</li>
	<li>Mezenterik kelepçeleme: İnce dokuyu pankreasın korpusu, duodenojejunal döngü ve kalın bağırsağın etrafına böldükten sonra, asistandan mezenterik pedikülün etrafında dönmesini ve kalın bağırsak döngüsünü kaudal olarak çekmesini isteyin. Bu, mezenterin tanımlanmasını ve mezenterik ana damarları pankreas parankimine zarar vermeden sırayla bölmek için kelepçenin güvenli bir şekilde yerleştirilmesini sağlayacaktır.</li>
	<li>Greftin tam ekstraperitoneal diseksiyonu: Mezenterik damarları böldükten sonra, pararenal fasya, adrenal bez, IVC manşeti, psoas kası ve diyafragma crus dahil olmak üzere ekstrapankreatik dokuları bölerek, saat yönünün tersine medialden laterale diseksiyon yaparak grefti almaya başlayın. Üstün mezenterik ve çölyak arterlerine zarar vermemek için aorttan uzakta yeterli bir düzlem olduğundan emin olun.</li>
	<li>Buz üzerinde arka masa hazırlığı yapın. Organı bir buz kutusunda saklayın (5 saatlik soğuk iskemi süresi).</li>
</ol>2. Alıcı pankreatektomi
<ol><li>Ameliyat öncesi hazırlık<ol><li>Öngörülen indüksiyon süresinden önce hayvanı en az 6 saat boyunca oruç tutun. Midazolam (0.15 mg / kg), atropin (0.04 mg / kg) ve ketamin (25 mg / kg) içeren bir enjeksiyonu, hayvanı ameliyathaneye (OR) taşımadan 15 dakika önce deri altından (SC) uygulayın. Ameliyathaneye nakledilmeden 15 dakika önce buprenorfin 0.3 mg sürekli salımlı enjeksiyon SC uygulayın.</li>
		<li>Konumlandırma: Hayvanı sırtüstü yatarak ameliyat masasına yerleştirin ve ameliyat sırasında sabit bir pozisyon sağlamak için ön ayakları kullanın.</li>
		<li>Hava yolu ve indüksiyon: Nabız oksimetre probunu bağlarken ve kalp atış hızını veO2 doygunluğunu izlerken, dakikada% 3 -% 5 izofluran ve 2-3 L oksijen içeren bir torba ve maske kullanarak hayvanı havalandırın.</li>
		<li>Çenelerin gevşemesi ve sabit oksijen doygunluğu ve kalp atış hızı ile onaylanan yeterli gevşemeden sonra, asistandan hayvanın gevşemiş üst ve alt çenelerinde yeterli çekişle ağzı açık tutmasını isteyin ve laringoskopu kullanarak ses tellerini görselleştirin. Entübasyonun neden olduğu spazmları önlemek için ses tellerini gevşetmek için% 2 lidokain püskürtün (domuz ses telleri oldukça vasküler ve kırılgandır!).</li>
		<li>7 mm'lik bir endotrakeal tüp kullanarak entübe edin ve manşeti 3-5 mL hava kullanarak şişirin. Son gelgit CO 2 (ETCO2) probunu kullanarak tüpün konumunu sağlayın ve 10-15 mL / kg'lık bir gelgit hacmi elde etmek için tüpü dakikada 14-16 nefesle ventilatöre bağlayın. İzofluran'ı, inhalasyonel anestezinin idame dozu olarak% 2.5'e düşürün.</li>
		<li>İntravenöz hat: Aseptik olarak cerrahi bölgeyi betadin ile hazırlayın ve steril bir örtü yerleştirin. Ardından, mastoid süreç, akromion işlemi ve klavikula başı arasında oluşan üçgenin merkezi olan merkezi venöz kateteri yerleştirmek için dönüm noktasını tanımlayın. Damarı delmek için 16 G'lik bir iğne kullanın; Venöz kanın serbest akışını sağladıktan sonra, renk ve pulsatilite eksikliği ile belirgin, Seldinger tekniğini kullanarak bir kılavuz tel kullanın.</li>
		<li>Sağlanan dilatörü kullanarak yolu genişletin. Kılavuz teli ve dilatörü 8,5 x 10 Fr kateter ile değiştirin ve 0-0 ipek dikiş kesme iğnesi ile dikiş atarak yerine sabitleyin. IV hattını sefazolin (1 gm) ve metronidazol (500 mg) içeren intravenöz antibiyotiklere bağlayın ve ardından 10 mL / s hızında propofol infüzyonu ile yapılan intravenöz anestezi uygulayın.</li>
		<li>İnvaziv kan basıncı izleme: Cerrahi bölgeyi betadin ile aseptik olarak hazırladıktan sonra, steril bir örtü yerleştirin ve orta hattan 2 cm uzaklıktaki trakeaya paralel bir kesi yapın. Sternomastoid kas ve paratrakeal fasyanın liflerini Lahey'in dik açılı forsepsleri ve hemostatik forsepsleri kullanarak künt diseksiyon ile diseke edin.</li>
		<li>Kayış kaslarının liflerine lateral juguler veni tanımlayın ve yukarıda tarif edildiği gibi künt diseksiyon kullanarak karotis arterden medial olarak bölümlere ayırarak kas boyunca diseksiyon yapın. Arteri nabzı, dokusu (kordon benzeri) ve perivasküler pleksus ile tanımlayın. Gemiyi harekete geçirin ve iki ipek 2-0 bağ kullanarak asın.</li>
		<li>Eğimli bir ucu yukarı bakacak şekilde 16 G anjiyo-kateter ile damarı delin ve iç stili damarın içine bir kez geri çekin. Seldinger tekniğini kullanarak dış kateter kılıfını kaydırın ve çıkışı arteriyel kan basıncı (BP) ölçüm sistemine bağlayın. İnvaziv BP monitörünü bağlamadan önce, doğru kayıt sağlamak için okumayı sıfıra kalibre edin ve ipek bağları kullanarak kateteri yerinde sabitleyin.</li>
		<li>Sıcaklık izleme ve ısınma: Sıcaklık kayıt probunu oral olarak yerleştirin. Hayvanı Bair-hugger ısıtma yorganı ile örtün ve 37-38 ° C sıcaklık sağlayın. Gözleri nötr bir göz yağlayıcı jeli ile yağlayın. Cerrahi alanı boyayın ve örtün</li>
	</ol></li>
	<li>Cerrahi prosedür NOT: Cilt, betadin ovma kullanılarak tüm cerrahi prosedürler için aseptik olarak hazırlanır ve ardından steril örtülerin yerleştirilmesi sağlanır.<ol><li>Kesi ve maruziyet: Bovie'nin elektrokoterinin saf kesme modunu kullanarak xiphisternum'dan symphysis pubis'e orta hat insizyonu yapın. Yaralanmayı önlemek için insizyonun alt kısmında fallusun ötesinde üretraya lateral tuttuğunuzdan emin olun. Cerrahi alanın maruz kalmasını optimize etmek için dalak ve karaciğere zarar vermemeye özen göstererek kendiliğinden duran karın duvarı retraktörünü yerleştirin.</li>
		<li>Pankreas başının mobilizasyonu: Pankreato-duodenal koruya karşı traksiyon sağlayan asistan ile, pankreas parankimleri (duodenal lob) ve infra-hepatik IVC arasındaki avasküler fasyal düzlem boyunca diseksiyon yaparak başlayın.</li>
		<li>Pankreas halkası mobilizasyonu: Domuz pankreası mezenteriko-portal eksen (bağlantı lobu) etrafında bir halka oluşturur. Bağlantı lobunun üstteki PV'den tam mobilizasyonunu sağlamak için portal venin (PV) her iki yönündeki fasya boyunca disseke edin. En güvenli yol, portal venin her iki tarafı boyunca diseksiyona başlamak ve dokuları saat yönünde veya saat yönünün tersine çevresel olarak ayırmaktır.</li>
		<li>Pankreas kuyruğu mobilizasyonu: Daha sonra, pankreas ve pararenal dokular arasındaki bağlantıyı tanımlayın (beyaz bir çizgi olarak görülür) ve kuyruğu parankime yakın kalan altta yatan dalak damarından diseke etmeye başlayın. Küçük venöz kolları parankime bağlayın ve bölün, ipek 3/0 bağları kullanarak dalak damarına zarar vermemeye özen gösterin.</li>
		<li>Pankreatik korpus mobilizasyonu: Paranimi kalın bağırsaktan ve mideden ayıran ince doku tabakası boyunca diseksiyon yaparak, infrapilor bölge boyunca ince vasküler çarşıyı korumaya özen gösterir.</li>
		<li>Pankreato-duodenal mobilizasyon: Daha sonra, duodenumun C döngüsü boyunca ince vasküler çarşıyı korumaya özen göstererek, pankreato-duodenal koruda keskin diseksiyon ile parankimi duodenumun C döngüsünden ayırın.</li>
		<li>Pankreas kanalının bölünmesi: Pankreas kanalını tanımlayın, ipek 2-0 bağlarla bağlanın ve duodenal C döngüsünde kanalın yaklaşık 3-5 mm kütüğünü tutarak, duodenal vasküler çarşıdan uzak durarak bölün (kanalla yakın ilişki içinde).</li>
		<li>Numunenin çıkarılması: Portal venin her iki tarafındaki bağlantı lobu, duodenum ve kolon arasındaki kavşaktan parankimin diseke edilmesiyle mobilizasyonun son bölümünü tamamlayın. Bağlantı lobunu PV'nin ön tarafına bölerek numuneyi en-masse (Şekil 1) ayıklayın. PV etrafındaki çevresel konumu nedeniyle numuneyi çıkarmak için parankimin bölünmesi gerekir.</li>
		<li>Diseksiyon alanları boyunca hemostaz sağlayın ve duodenumu herhangi bir yaralanma ve vasküler tıkanıklık açısından inceleyin (Şekil 2).</li>
	</ol></li>
	<li>Pankreato-duodenal greftin implantasyonu<ol><li>Greftin hazırlanması: Anastomoz için kenarları keserek greft PV ve proksimal aort ucunu hazırlayın. Hazırlanan grefti bir buz banyosunda UW çözeltisi ile organ torbasına yerleştirin. Pankreas kuyruğundan çekirdek iğne biyopsilerini alın - formalinde saklayın, dondurun ve daha sonraki bir aşamada RNA'yı çıkarın. Biyopsi bölgesini Prolene 6-0 kullanarak 8 şeklinde dikin.</li>
		<li>Aorto-kaval diseksiyon: Sağ üreteri tanımlayarak başlayın ve üreteri inferior vena kava üzerindeki retroperitoneal örtüden ayıran fasya boyunca diseksiyon yapın. Altta yatan psoas kasından çıkarmak için aortun lateral sınırı boyunca diseksiyon yapın. Daha sonra, aortu IVC'den ayırmak için interaortocaval koru boyunca diseksiyon yapın.</li>
		<li>Kelepçe testi: Satinsky'nin vasküler kelepçe yerleştirme denemesi ile aort ve IVC'nin yeterli mobilizasyonunu sağlayın. İlk asistanla pozisyon değiştirin ve ana damarları anastomoz için açığa çıkarmak için sol taraftaki bağırsak halkalarını geri çekerek cerrahi alanı hazırlayın. Anastomoz için her iki damarın yeterli mobilizasyonunu yeniden değerlendirmek için deneme kelepçelerini IVC ve aort üzerine yerleştirin.</li>
		<li>Venöz anastomoz: IVC'ye vasküler yan ısırma kelepçesini yerleştirdikten sonra, damarın ön duvarında küçük bir açıklık açın ve Pott'un makasını kullanarak kraniyal ve kaudal olarak yeterli bir boyuta (greft damarı ile eşleştirilmiş) uzatın. IV kanülünün esnek kılıfını kullanarak lümeni heparinize salinle yıkayın.</li>
		<li>Prolene 6-0 çift iğne kullanarak, IVC (içten dışa) ve greft portal ven (içten dışa) üzerinde köşe dikişleri yapın. Kaudal köşe sütürünü sabitleyin ve iğnelerden birini greft ve alıcı venin arka duvarı boyunca sürekli olarak çalıştırın. Ön duvarı benzer (dışarıda-sürekli) bir şekilde sabitleyin ve anastomozun lümenini heparinize salin ile yıkadıktan sonra düğümü ön duvarın ortasına sabitleyin.</li>
		<li>Damarın kelepçesinin çıkarılması: Bir Bulldog'un vasküler kelepçesini greft portal ven üzerine, anastomozdan uzağa yerleştirin ve yan ısırma kelepçesini alıcı IVC'den yavaşça serbest bırakın. Venöz yeniden doldurma ve anastomozdan kaynaklanan herhangi bir majör kanama olup olmadığını kontrol edin.</li>
		<li>Arteriyel anastomoz: Damarın posteromedial duvarı boyunca lomber dallara zarar vermemeye dikkat ederek yan ısırma kelepçesini aort üzerine yerleştirin. Anestezi uzmanına merkezi venöz kateterden heparin (100 U / kg BW) ve metilprednizolon (500 mg) enjekte etmesini söyleyin.</li>
		<li>Damarın ön duvarında bir açıklık açın ve damar duvarı boyunca diseke etmemeye özen göstererek kraniyal ve kaudal olarak uzatın. Lümeni heparinize salin ile yıkayın ve Prolene 6-0 çift iğne kullanarak greft aortunun proksimal ucunu Paraşüt tekniği ile alıcı aort açıklığına sürekli bir şekilde dikin. Son düğümü damarın ön duvarına bağlamadan önce lümeni heparinize salinle yıkayın.</li>
		<li>Reperfüzyon: Bu adımı gerçekleştirirken aşağıdaki iki hususa dikkat edin. İlk olarak, ortalama BP'de ciddi bir düşüşün meydana geldiği hemodinamik değişiklikler. İnvaziv BP'yi dakikadan dakikaya izleyin ve vazopressörün doz titrasyonunu (norepinefrin infüzyonu) ve hedef ortalama BP'yi 45-50 mmHg arasında tutmak için sıvı ön yüklemesini gerçekleştirin.</li>
		<li>İkincisi, hemostazı koruyun. Bulldog kelepçesinin damardan çıkarılmasından sonra, parankim, para-aort bölgesi ve peri-portal bölgeden herhangi bir büyük kanama olup olmadığını değerlendirin; Ardından, aort kelepçesini serbest bırakın ve arteriyel anastomoz bölgesinden kanama olup olmadığını kontrol edin. Kanama noktalarını ligatürler ve hemostatik dikiş ile sabitleyin. Anestezistten merkezi venöz kateterden bir şişe traneksamik asit enjekte etmesini isteyin. NOT: Önemli bir kural, reperfüzyonun bu aşamasında pankreasın agresif kullanımını en aza indirmektir (greft ödemi ve hematomdan kaçınmak için).</li>
		<li>Bağırsak anastomozu: Mezenterik burulma olmadığından emin olduktan sonra, duodenojeunal bileşkeden 40-50 cm uzakta bir jejunum halkasını izole edin ve greftin yakınına getirin. Greft duodenumunu alıcı jejunuma Polydioxanone 4-0 sütür kullanarak yan yana sürekli bir şekilde anastomoz, 1.5-2 cm'lik yeterli bir luminal çap sağlamaya özen gösterir.</li>
		<li>Hemostaz ve reperfüzyon sonrası biyopsi: Greft çevresinde ve anastomoz bölgelerinde hemostaz sağlayın. Formalinde reperfüzyon deposundan 1 saat sonra pankreas kuyruğundan üç çekirdek iğne biyopsisi alın, dondurun ve daha sonraki bir aşamada RNA'yı ekstrakte edin. Biyopsi bölgesini Prolene 6-0 ile 8 şeklinde dikin.</li>
		<li>Karın duvarının kapatılması: Tutulan paspasları değerlendirdikten ve hemostazı güvence altına aldıktan sonra, üretradan uzak durmak için alt orta hatta dikkat ederek Polydioxanone 0 iğnesini kullanarak rektus abdominis'i sürekli olarak dikin. Sürekli olarak ipek 0 dikiş kullanarak cildi kapatın. NOT: İdeal olarak, monofilament sütürler (Naylon) önerilir; Bununla birlikte, bu 3 günlük bir hayatta kalma modeli olduğundan, bu deneysel modellerde ipek kabul edilebilir.</li>
		<li>Santral venöz kateterin çemberlenmesi: Boyunda deri altı bir tünel oluşturun ve merkezi venöz kateteri tünelin altına gömerek ve üstteki cildi ipek 0-0 kesme iğnesi ile dikerek sabitleyin.</li>
		<li>Arteriyel kateterin çıkarılması: Kan gazı analizinde stabil bir ortalama BP (40-50 mmHg) ve pH ve laktat seviyelerinin iyileşme eğilimi sağlandıktan sonra, arteriyel kateteri çıkarın ve boyundaki hemostazı güvence altına almak için damarı açın. Üst kısımdaki cildi sürekli olarak ipek 0 dikiş ile kapatın.</li>
		<li>Hayvanı ve ekstübasyonu konumlandırın: Gerekli tüm önlemler altında, hayvanı sternal bir taşıma arabasına çevirin. O2 doygunluğunu ve anestezinin tersine çevrilmesini gözlemleyin (uzuvların hareketi, spontan solunum çabaları, SpO2 &gt;95%O2 indirimi ve ventilatör desteği) ve hayvanı ekstübe edin. Kaleme taşıyın ve hayvan sternalini konumlandırın ve stabil olana kadar hemodinamik durumu izleyin.</li>
	</ol></li>
</ol><img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64203/64203fig01.jpg"> Resim 1: Pankreatektomi örneği toplu halde rezeke edildi. Portal veni in vivo çevreleyen pankreas dokusunun halkasına dikkat edin. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64203/64203fig01large.jpg" target="_blank">Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64203/64203fig02.jpg"> Resim 2: Duodenumun görüntüsü. Duodenumun korunmuş bir vasküler çarşı (ok ucu) ile C döngüsü, çevredeki jejunal döngü ile karşılaştırıldı ve tıkanıklık açısından değerlendirildi. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64203/64203fig02large.jpg" target="_blank">Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.</a>

<ol><li>Gruessner, R. W., Gruessner, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+current+state+of+pancreas+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews.+Endocrinology%22%5BJournal%5D)">The current state of pancreas transplantation.</a> Nature Reviews. Endocrinology. 9 (9), 555-562 (2013).</li>
<li>Redfield, R. R., Rickels, M. R., Naji, A., Odorico, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pancreas+transplantation+in+the+modern+era%5BTitle%5D)+AND+%22Gastroenterology+Clinics+of+North+America%22%5BJournal%5D)">Pancreas transplantation in the modern era.</a> Gastroenterology Clinics of North America. 45 (1), 145-166 (2016).</li>
<li>Canadian Institute for Health Information. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Annual+Statistics+on+Organ+Replacement+in+Canada%3A+Dialysis%2C+Tranplantation+and+Donation%2C+2009+to+2018%5BTitle%5D)+AND+%22Canadian+Institute+for+Health+Information%22%5BJournal%5D)">Annual Statistics on Organ Replacement in Canada: Dialysis, Tranplantation and Donation, 2009 to 2018.</a> Canadian Institute for Health Information. , Ottawa, ON: CIHI. (2019).</li>
<li>Prudhomme, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ex-situ+perfusion+of+pancreas+for+whole-organ+transplantation%3A+Is+it+safe+and+feasible%3FA+systematic+review%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Diabetes+Science+and+Technology%22%5BJournal%5D)">Ex-situ perfusion of pancreas for whole-organ transplantation: Is it safe and feasible?A systematic review.</a> Journal of Diabetes Science and Technology. 14 (1), 120-134 (2020).</li>
<li>Ferrer, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pig+pancreas+anatomy%3A+Implications+for+pancreas+procurement%2C+preservation%2C+and+islet+isolation%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Pig pancreas anatomy: Implications for pancreas procurement, preservation, and islet isolation.</a> Transplantation. 86 (11), 1503-1510 (2008).</li>
<li>Parmentier, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Normothermic+ex+vivo+pancreas+perfusion+for+the+preservation+of+pancreas+allografts+before+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Normothermic ex vivo pancreas perfusion for the preservation of pancreas allografts before transplantation.</a> Journal of Visualized Experiments. , (2022).</li>
<li>Chaib, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Total+pancreatectomy%3A+Porcine+model+for+inducing+diabetes+-+Anatomical+assessment+and+surgical+aspects%5BTitle%5D)+AND+%22European+Surgical+Research%22%5BJournal%5D)">Total pancreatectomy: Porcine model for inducing diabetes - Anatomical assessment and surgical aspects.</a> European Surgical Research. 46 (1), 52-55 (2011).</li>
<li>Prudhomme, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Total+pancreatectomy+and+pancreatic+allotransplant+in+a+porcine+experimental+model%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+and+Clinical+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Total pancreatectomy and pancreatic allotransplant in a porcine experimental model.</a> Experimental and Clinical Transplantation. 18 (3), 353-358 (2022).</li>
<li>Grussner, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Streptozotocin-induced+diabetes+mellitus+in+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Hormone+and+Metabolic+Research%22%5BJournal%5D)">Streptozotocin-induced diabetes mellitus in pigs.</a> Hormone and Metabolic Research. 25 (4), 199-203 (1993).</li>
<li>Mazilescu, L. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Normothermic+ex+situ+pancreas+perfusion+for+the+preservation+of+porcine+pancreas+grafts%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Normothermic ex situ pancreas perfusion for the preservation of porcine pancreas grafts.</a> American Journal of Transplantation. 22 (5), 1339-1349 (2022).</li>
<li>Kumar, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ex+vivo+normothermic+porcine+pancreas%3A+A+physiological+model+for+preservation+and+transplant+study%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Surgery%22%5BJournal%5D)">Ex vivo normothermic porcine pancreas: A physiological model for preservation and transplant study.</a> International Journal of Surgery. 54, 206-215 (2018).</li>
<li>Kaths, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Normothermic+ex+vivo+kidney+perfusion+for+the+preservation+of+kidney+grafts+prior+to+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Normothermic ex vivo kidney perfusion for the preservation of kidney grafts prior to transplantation.</a> Journal of Visualized Experiments. (101), e52909(2015).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak çıkar çatışmaları yoktur.

Mevcut protokol, domuz modellerinde pankreatektomi ve pankreas allotransplantasyonunun tekniğini ve uygulanabilirliğini göstermek için yapılmıştır. Hayvanlar, pankreatektomi tekniğinin ve allotransplantasyonun güvenilirliğini göstermek için transplantasyondan sonra 3 günlük bir süre boyunca gözlendi. Tüm hayvanlar, ameliyattan sonra 3 gün boyunca antibiyotikler, sıvılar, analjezikler, ek beslenme ve immünosüpresanlar (yani siklosporin) içeren standart bir hayvan bakım protokolü kullanılarak izlendi ve emzirildi. Postoper...

Son birkaç on yılda, perioperatif yönetim stratejilerinde ve cerrahi tekniklerde, pankreas transplantasyonunun son dönem böbrek hastalığı olan diabetes mellitusun tedavisinde (genellikle böbrek nakli ile birlikte) en umut verici stratejilerden birine dönüşmesine yol açan önemli ilerlemeler kaydedilmiştir1 . Bununla birlikte, greft pankreatit, iskemi-reperfüzyon hasarı ve vasküler tromboz gibi komplikasyonlar, başarılı sonuçlar elde etmek için üstesinden gelinmesi gereken en büyük zorluklar olmaya devam etmektedir, daha çok hasarlı genişletilmiş kriterli greftlerde2. Ek olarak, pankreas greftleri tedarikten en sık atılan greftlerdir ve herhangi bir organ için en düşük kullanım oranlarına (%9) sahiptir3. Bu nedenle, makine perfüzyonu, karaciğer, böbrek ve akciğer transplantasyonunda elde edilene benzer şekilde, greft kullanım oranını artırmak amacıyla pankreas greftine optimum homeostatik ortam sağlamayı amaçlamaktadır4. Domuz pankreas anatomisi, lobüler mimarisi (üç lobdan oluşan), mezenteriko-portal eksen etrafındaki uzantıları, mezenterik vasküler varyasyonları (%40-%50) ve duodenum5'in C döngüsü boyunca hassas vasküler kanalları açısından karmaşıktır. Bu anatomik özellikler, hem pankreato-duodenal greftin alınmasında hem de alıcı pankreatektomide iyatrojenik apankreatik diyabet durumunu, yani cerrahi olarak indüklenen diabetes mellitus durumunu 8 mmol / L'nin üzerinde açlık glukoz seviyesine sahip zorlu bir diseksiyona katkıda bulunur. diabetes mellitus. Bu makale aşağıdaki hususları ele almayı amaçlamaktadır: (i) alıcı pankreatektomi ve pankreas grefti implantasyonu sırasında perioperatif domuz bakımının ana hatları; (ii) alıcı pankreatektomi ve pankreato-duodenal greftin implantasyonu ile ilgili teknik adım adım detaylar ve (iii) greft ve alıcı yaralanmasını en aza indirmek için domuz modellerinde donör ve alıcı pankreas operasyonunun ipuçları ve püf noktaları.

<table><tbody><tr><td>Belzer UW Soğuk hava deposu çözümü</td><td>Bridge to life Ltd (Columbia, SC, ABD)</td><td>4055</td><td></td></tr><tr><td>Kalsiyum glukonat (%10)</td><td>Fresenius Kabi Canada Ltd (Toronto, ON)</td><td>C360019</td><td></td></tr><tr><td>Composelect (kan alma torbaları)</td><td>Fresenius Kabi Canada Ltd (Toronto, ON)</td><td>PQ31555</td><td></td></tr><tr><td>Heparin (10000 IU/10 ml)</td><td>Fresenius Kabi Canada Ltd (Toronto, ON)</td><td>C504710</td><td></td></tr><tr><td>Emzirilmiş Ringer's</td><td>Baxter (Mississauga, ON, Kanada)</td><td>JB2324</td><td></td></tr><tr><td>7-7.5 Fr Kateterlerle kullanım için İntegral Hemostaz Valfi/yan Portlu Perkütan Kılıf Tanıtıcı Seti;</td><td>Arrow International LLC</td><td>SI-09880</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum bikarbonat (% 8.4)</td> <td>Fresenius Kabi Canada Ltd (Toronto, ON)</td> <td>C908950</td><td></td></tr><tr><td>Solu-Medrol</td><td>Pfizer Canada Inc. &nbsp;</td><td>52246-14-2</td><td></td></tr><tr><td>Cerrahi geri alma ve nakil alet seti</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

domuz pankreas nakli yapmak için cerrahi İpuçları ve püf noktaları

Surgical Tips and Tricks for Performing Porcine Pancreas Transplantation

Tip 1 diabetes mellitus ve metabolik sendromda pankreas transplantasyonunun umut verici sonuçlarına rağmen, bu son teknoloji tekniğin etrafındaki en büyük endişe, nakil için uygun görülen organların azlığı olmaya devam etmektedir. Yüksek intravasküler direnç, hassas intraparankimal kılcal çerçeve ve mezenterik vaskülatür etrafındaki karmaşık lobüler anatomi, bu organı yaralanmaya daha duyarlı ve karaciğer ve böbrek gibi organlara kıyasla önemsiz travmaya karşı daha az toleranslı kılan şeydir. Titiz cerrahi diseksiyon ve akılcı doku kullanımı, pankreas transplantasyonunun tüm egzersizinin temel taşını oluşturur. Domuz pankreasının anatomisi ile çevredeki mezenterik damarlar ve organlar arasındaki morfolojik benzerlik nedeniyle, insan anatomisine kıyasla, domuz modelindeki tekniğin gösterilmesi, bunu bir insan ortamına en doğru şekilde tahmin etmeye yardımcı olabilir. Bu makale, domuz eti 3 günlük sağkalım modelinde bu yüksek derecede duyarlı organın transplantasyonunda daha yüksek bir başarı oranı sağlamak için izlenmesi gereken temel cerrahi ipuçlarını ve püf noktalarını özetlemeyi amaçlamaktadır.

Beş pankreas nakli sağkalım modelinden peri-operatif ve postoperatif, 3 güne kadar, biyokimyasal parametreler aşağıda özetlenmiştir (kronolojide PTX 1 ila 5 olarak numaralandırılmıştır). Toplam beş pankreas naklinin hepsi, genel refahları ve pankreas hasarı ve endokrin fonksiyon testleri ile açıkça görüldüğü gibi, 3 günlük sağkalım süresi boyunca iyi performans gösterdi. Aşağıda gösterilen sonuçlar, alıcı pankreatektominin 3 günlük sağkalım modelinin deneyimini ve ardından greftin statik soğuk depolanmasından sonra pankr...

Video makalesi, domuz 3 günlük sağkalım modelinde pankreatektomi ve pankreas allotransplantasyonu tekniğini, yöntemin adım adım açıklanması ve güvencesiz ve hassas domuz viseral anatomisi ile başa çıkmak için cerrahi ipuçları ve püf noktalarına vurgu yaparak özetlemektedir.

Domuz Pankreas Nakli Yapmak için Cerrahi İpuçları ve Püf Noktaları

Despite the promising results of pancreas transplantation in type 1 diabetes mellitus and metabolic syndrome, the biggest concern around this ...

Protokol, domuz modellerinde pankreas transplantasyonunun güvencesiz prosedürüne adım adım bir yaklaşım sağlamaya yardımcı olacaktır. Teknik, insanlarda gözlemlenenle neredeyse aynı adımları izler ve bu nedenle klinik pratikte çoğaltılması mümkün olan en yakın modeldir. Domuz viseral yapıları ve damarları insanlarla karşılaştırıldığında son derece kırılgandır.Ve bu nedenle, ameliyatı ilk kez yapan herkes için en büyük zorluğu sağlar. Bovie'nin elektrokoterinin saf kesme modunu kullanarak xiphisternum'dan symphysis pubis'e bir orta hat kesisi yaparak başlayın. Yaralanmayı önlemek için insizyonun alt kısmında fallusun ötesinde üretraya lateral tuttuğunuzdan emin olun.Dalak ve karaciğere zarar vermemek ve cerrahi alana maruz kalmayı optimize etmek için kendiliğinden inlayan karın duvarı retraktörünü yerleştirin. Pankreasın başını harekete geçirmek için, asistanın yardımıyla pankreatikoduodenal oluğa karşı traksiyon sağlayın. İnfrahepatik IVC'de pankreatik parankimin duodenal lobu arasındaki avasküler fasyal düzlem boyunca diseksiyon.Bağlantı lobunun üstteki portal damardan tam mobilizasyonunu sağlamak için portal venin her iki yönündeki fasya boyunca diseke ederek pankreas halkası mobilizasyonunu başlatın. En güvenli yol, portal venin her iki tarafı boyunca diseksiyona başlamak ve dokuları saat yönünde veya saat yönünün tersine bir yönde ayırmaktır. Daha sonra, pankreas ve ebeveyn dokuları arasındaki kavşağı tanımlayın ve kuyruğu altta yatan dalak damarından diseke etmeye başlayın, parankime yakın durun.İpek 3-0 bağlarını kullanarak küçük venöz kolları parankime bağlayın ve bölün, dalak damarına zarar vermemeye özen gösterin. Pankreatik korpus mobilizasyonu için, paranimi kalın bağırsaktan ve mideden ayıran ince doku tabakası boyunca diseksiyon yaparak, infrapilorik bölge boyunca ince vasküler çarşıyı koruyun. Daha sonra pankreatikoduodenal mobilizasyon için, duodenumun C-döngüsü boyunca ince vasküler çarşıyı koruyarak, pankreatikoduodenal olukta keskin diseksiyon ile parankimi ikilinin C-döngüsünden ayırın.Ardından, pankreas kanalını tanımlayın. İpek 2-0 bağları ile ligate ve bölün, duodenal C-döngüsü üzerinde kanalın yaklaşık üç ila beş milimetre kütüğünü tutarak, duodenal vasküler çarşıdan uzak durun. Portal venin her iki tarafındaki bağlantı lobu, duodenum ve kolon arasındaki kavşaktan parankimin diseke edilmesiyle mobilizasyonun son bölümünü tamamlayın.Bağlantı lobunu portal venin ön tarafına bölerek numuneyi kütle olarak çıkarın. Parankimal bölünme, portal ven etrafındaki çevresel konumu nedeniyle numuneyi çıkarmak için gereklidir. Diseksiyon alanları boyunca hemostaz sağlayın ve duodenumu herhangi bir yaralanma ve vasküler tıkanıklık açısından inceleyin.Greft portal venini ve proksimal aort ucunu anastomoz için kenarları keserek hazırlayın. Hazırlanan grefti bir buz banyosunda UW çözeltisi ile organ torbasına yerleştirin. Pankreas kuyruğundan çekirdek iğne biyopsileri alın, bunları Formalin'de saklayın ve dondurun.RNA'yı daha sonraki bir aşamada çıkarın. Prolene 6-0 kullanarak biyopsi bölgesini sekiz rakamlı bir şekilde dikin. Aortokaval diseksiyona sağ üreteri tanımlayarak ve fasya boyunca diseksiyon yaparak, üreteri inferior vena kava üzerindeki retroperitoneal örtüden ayırarak başlayın.Altta yatan soleus kasından açığa çıkarmak için aortun lateral sınırı boyunca diseksiyon yapın. Daha sonra, aortu IVC'den ayırmak için interaortokaval oluk boyunca disseke edin. Satinsky'nin vasküler kelepçe yerleştirme denemesi ile aort ve IVC'nin yeterli mobilizasyonunu sağlayın.İlk asistanla pozisyon değiştirin ve ana damarları anastomoz için açığa çıkarmak için sol taraftaki bağırsak halkalarını geri çekerek cerrahi alanı hazırlayın. Anastomoz için her iki damarın yeterli mobilizasyonunu yeniden değerlendirmek için deneme kelepçelerini IVC ve aort üzerine yerleştirin. Vasküler yan ısırma kelepçesini IVC'ye yerleştirdikten sonra, damarın ön duvarında küçük bir açıklık açın ve Potts makası kullanarak kraniyal ve kaudal olarak yeterli bir boyuta uzatın.IV kanülünün esnek kılıfını kullanarak lümeni heparinize salinle yıkayın. Prolene 6-0 çift iğne kullanarak, IVC ve greft portal ven üzerinde köşeden yukarıya dikişler yapın. Coddle köşe sütürünü sabitleyin ve iğnelerden birini greft ve alıcı venin arka duvarı boyunca sürekli bir şekilde çalıştırın.Ön duvarı dışardan-sürekli bir şekilde sabitleyin ve anastomozun lümenini heparinize salin ile yıkadıktan sonra düğümü ön duvarın ortasına sabitleyin. Daha sonra bir Bulldog'un vasküler kelepçesini greft portal venine anastomozdan uzağa yerleştirin ve yan ısırma kelepçesini alıcı IVC'den yavaşça serbest bırakın. Venöz yeniden doldurma ve anastomozdan kaynaklanan herhangi bir majör kanama olup olmadığını kontrol edin.Daha sonra, yan ısırma kelepçesini, damarın posteromedial duvarı boyunca bel dallarına zarar vermeden aort üzerine yerleştirin. Anesteziste merkezi venöz kateterden heparin ve metilprednizolon enjekte etmesini söyleyin. Damarın ön duvarında bir açıklık açın ve damar duvarı boyunca disseke etmemeye dikkat ederek kraniyal ve kaudal olarak uzatın.Lümeni heparinize salin ile yıkayın. Prolene 6-0 çift iğne kullanılarak greft aortunun proksimal ucunun alıcı aort açıklığına paraşüt tekniği ile sürekli olarak dikilir. Son düğümü damarın ön duvarına bağlamadan önce lümeni heparinize salinle yıkayın.Reperfüzyona başlamadan önce, ortalama BP'de herhangi bir ciddi düşüş için hemodinamik değişiklikleri kontrol edin. İnvaziv BP'yi dakikadan dakikaya izleyin ve hedef ortalama BP'yi 45 ila 50 milimetre cıva arasında tutmak için vazopresör ve sıvı ön yükünün bir doz titrasyonunu gerçekleştirin. Daha sonra parankim, paraaortik bölge ve periportal bölgeden herhangi bir majör kanama olup olmadığını değerlendirerek Bulldog kelepçesini damardan çıkardıktan sonra hemostazı koruyun. Aort kelepçesini serbest bırakın ve arteriyel anastomoz bölgesinden kanama olup olmadığını kontrol edin.Kanama noktalarını ligatürler ve hemostatik dikiş ile sabitleyin. Anestezistten merkezi venöz kateterden bir şişe traneksamik asit enjekte etmesini isteyin. Greft ödemi ve hematomu önlemek için reperfüzyonun bu aşamasında pankreasın agresif kullanımını en aza indirmek önemlidir.Mezenterik burulma olmadığından emin olduktan sonra, duodenojejunal bileşkeden 40 ila 50 santimetre uzakta bir jejunum döngüsünü izole edin ve greftin yakınına getirin. Greft duodenumunu alıcı jejunuma polidioksanon 4-0 sütür kullanarak yan yana sürekli bir şekilde anastomoz. Greft çevresinde ve anastomoz bölgelerinde hemostazı doğrulayın.Daha sonra reperfüzyondan bir saat sonra pankreas kuyruğundan üç çekirdek iğne biyopsisi alın. Formalin'de saklayın, dondurun ve daha sonra RNA'yı çıkarın. Biyopsi bölgesini Prolene 6-0 ile sekiz rakamlı bir şekilde dikin.Tutulan paspasları değerlendirdikten ve hemostazı güvence altına aldıktan sonra, rektus abdominis'i polidioksanon 0 iğnesi kullanarak sürekli bir şekilde dikin ve alt orta hattı üretradan uzak tutun. Sürekli İpek 0 dikiş kullanarak cildi kapatın. Boyunda deri altı bir tünel oluşturun ve merkezi venöz kateteri tünelin altına gömerek ve üstteki cildi İpek 0-0 kesme iğnesi ile dikerek sabitleyin.Kan gazı analizinde stabil bir ortalama BP ve pH ve laktat seviyelerinin iyileşme eğilimini sağladıktan sonra, arteriyel kateteri çıkarın ve boyundaki hemostazı güvence altına almak için damarı bağlayın. Üst kısımdaki cildi Silk 0 dikiş ile sürekli bir şekilde kapatın. Reperfüzyondan bir saat sonra ortalama kalp atış hızı dakikada ortalama 135 atımdı ve ortalama kan basıncı yaklaşık 37 mililitre cıva idi.Bu seviyeler, hayvanı kalemine geri kaydırmadan önce beş vakanın hepsinde konik ve kesilebilen yüksek dozda norepinefrin infüzyonu altında tutuldu. Laktat düzeyleri reperfüzyondan sonra üç saat boyunca ameliyathanede izlendi. Beş hayvanın tümü klinik olarak uyanıktı, reperfüzyondan sonraki beş ila altı saat içinde uzuvların aktif hareketi ve solunum paternleri ile belirgindi.Postoperatif amilaz, serum lipaz ve serum laktat dehidrogenaz düzeyleri ilk üç gün izlendi. Postoperatif üçüncü günde 120 dakikalık glukoz tolerans testi yapıldı. Kan örnekleri daha sonra geri çekildi ve iki dakika, beş dakika, 10 dakika, 20 dakika 30 dakika, 60 dakika, 90 dakika ve 120 dakikada glikoz seviyeleri için işlendi.Pankreatektomi sırasında pankreas çevresindeki vasküler çarşının titizlikle ele alınması çok önemlidir. Ve bu adımın dikkatli bir şekilde gerçekleştirilmesi, ameliyatın sonunda duodenuma iyi bir vasküler besleme sağlar ve bu da pankreatektomi sonrası başarının önemli bir belirleyicisidir. Bu teknik, domuz modellerinde transplantasyon ile makine perfüzyonu seçeneğini ortaya çıkarmış ve sağkalım modelleri oluşturmuştur.

surgical-tips-tricks-for-performing-porcine-pancreas

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

Bu videoda, pankreas adacık hücrelerini hepatik portal ven içine infüze etmek için bir prosedürü ve ardından kanamayı başarılı bir şekilde önlemek için jel köpük uygulamasını açıklıyoruz. Postoperatif kanama, adacık nakli sırasında sık görülen yüksek mortalite nedenidir.

Adacık Transplantasyonunda Murin Modeli: Pankreas Adacıklarının Portal Ven İçine İnfüzyonu ve Postoperatif Kanamanın Önlenmesi İçin Cerrahi Bir Yöntem

Bu videoda, bir domuz modelinde ortotopik böbrek ototransplantasyonu açıklanmaktadır. Bu cerrahi prosedür, bir hayvanın böbrek greftinin orijinal anatomik konumuna nakledilmesini içerir. Model, insanlarda son dönem böbrek hastalıkları için yeni tedavileri araştırmak için kullanılır.

Ortotopik Domuz Böbreği Nakli: Domuz Modelinde Greft Böbrek Nakli İçin Bir Teknik

Deneysel hayvan araştırmaları, klinik transplantasyon uygulamalarının gelişiminde çok önemli bir rol oynamaktadır. Domuz ortotopik karaciğer nakli modeli (OLTx), insan koşullarına çok benzer ve klinik odaklı araştırmalarda sıklıkla kullanılır. Aşağıdaki protokol, aktif bir porto-kaval-juguler şant kullanan güvenilir bir domuz OLTx modeli için tüm bilgileri içerir.

Active Porto-Caval Shunt kullanarak Domuz Karaciğer Tedarik ve Ortotopik Nakli Tekniği

Organ naklinin domuz modelleri, organ koruma mekanizmalarını incelemek için önemli bir platform sağlar. Bu makalede, marjinal böbrek greftleri kullanılarak transplantasyon sonucunu iyileştirmek için yeni yaklaşımların araştırılmasına olanak tanıyan heterotopik bir domuz renal ototransplantasyon modeli tanımlanmaktadır.

Bir Domuz Modeli heterotopik Böbrek Ototransplantasyon: Bir Adım-Adım Protokolü

Karın solid organ nakli arasında pankreas Greftler şiddetli iskemi reperfüzyon greft yaralanma ilişkili hasar, sonunda erken greft kaybı için önde gelen geliştirmek yatkındır. Bu iletişim kuralı fare pankreas nakli bu erken, zararlı zararlardan analiz etmek için ideal bir dikiş manşet tekniği kullanarak bir modeli açıklar.

Fare modeli değiştirilmiş manşet tekniği kullanarak pankreas nakli için

Normothermic ex vivo makine perfüzyonu (NEVP), pankreas allogreftlerinin korunması için henüz araştırılmamıştır. Bu yazıda pankreas allogreftleri için transplantasyon öncesi yenilikçi bir koruma tekniği sunulmaktadır.

Transplantasyon Öncesi Pankreas Allogreftlerinin Korunması için Normothermic Ex Vivo Pankreas Perfüzyonu

Sağlıklı ve hastalıklı pankreasın seri ve uzunlamasına çalışmalarına izin veren, murin pankreasın hücre altı çözünürlüklü görüntülenmesi için stabilize kalıcı bir optik pencerenin cerrahi implantasyonu için bir protokol sunuyoruz.

Murin Pankreasın İntravital Görüntülenmesi için Stabilize Pencere

Bu protokol, adacık izolasyonu ve saflaştırılması için bir domuz pankreasının satın alınması için adım adım bir kılavuz sağlar.

Adacık izolasyonu için domuz pankreasının cerrahi perfüzyonu ve izolasyonu

Bu protokol, açık karın ameliyatı ve bağırsak rezeksiyonu yapılan Yucatan mini domuzları kullanılarak ameliyat sonrası karın içi adezyon oluşumunun domuz modelini tanımlar. Bu yaklaşım, karın içi yapışmaları güvenilir şekilde indükler ve yapışma gelişimini değerlendirmek ve anti-adezyon stratejilerini test etmek için bir platform sağlar.

Postoperatif Karın İçi Yapışma Oluşumu için Translasyonel Cerrahi Domuz Modeli

Bu video çoklu depolama biçimleri içine insan pankreas işlemek için bir diseksiyon yordam gösterir. Anatomik oryantasyon bölgesel adacık bileşimi ve yoğunluğu tanımı izin pankreas bölgeleri boyunca korunur.

İnsan Pankreas için Toplama Protokolü

Öğrenin domuz pankreas nakli tekniğini hassas visseral anatomiyi yönetmek için. Bu adım adım rehber, yeni cerrahların başarı oranını artırmaya ve transplantasyon sonuçlarını iyileştirmeye yardımcı olur.

Domuz Pankreas Nakli Yapmak için Cerrahi İpuçları ve Püf Noktaları

Daha fazla video keşfet