RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
tr_TR
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/64560-v
Leonor Orge1,2, Maria de Lurdes Pinto1, Paula Cristovão2, Paula Mendonça2, Paulo Carvalho2, Carla Lima3, Helena Santos2, Anabela Alves1, Fernanda Seixas1, Isabel Pires1, Adelina Gama1, Maria dos Anjos Pires1
1Animal and Veterinary Research Centre (CECAV), Associate Laboratory for Animal and Veterinary Science-AL4AnimalS,University of Trás-os-Montes and Alto Douro (UTAD), 2Pathology Laboratory,UEISPSA, National Institute for Agricultural and Veterinary Research (INIAV), Oeiras, 3Pathology Laboratory,UEISPSA, National Institute for Agricultural and Veterinary Research (INIAV), Vairão
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
This study presents a detailed immunohistochemistry protocol for immunolabeling abnormal prion proteins (PrP) in infected tissues. It emphasizes the importance of specific antibody preparation and epitope demasking to enhance the accuracy of PrP detection while minimizing background staining.
İmmünohistokimya protokollerini kullanarak anormal prion proteininin immüno-etiketlemesi, spesifik numune ve anti-PrP antikor hazırlama metodolojileri gerektirir. Bu protokol, uygun PrP immün etiketlemesini sağlamak ve spesifik olmayan arka plan boyamasını en aza indirmek için epitop demasking işlemindeki temel adımları açıklamaktadır. Ayrıca, bu yaklaşım, prion ile enfekte olmuş dokularla immünohistokimya çalışmaları yaparken biyogüvenlik önlemlerini de göz önünde bulundurur.
Bu teknik, dokularda PrP scrapie tekniği ile prion hastalıklarının doğrulayıcı tanısına, bilinen PrP scrapie birikim profiline cezai sapmayı değerlendirmek için PrP scrapie tiplerinin ve dağılımının analiz edilmesine olanak tanır. Teknik standartlaştırılmıştır ve dokularda PrP scrapie birikiminin görselleştirilmesini sağlayan PrP scrapie'ye spesifik antikorlar kullanır. Teknik ayrıca nöroanatomik alan ve hücrelerin tipi hakkında bilgi verir.
Slaytları doku bölümleriyle birlikte paslanmaz çelik bir boyama sepetine yerleştirerek başlayın. Sepeti bir ksilen banyosunda ortaya çıkarın. Üç dakika sonra, sepeti çıkarın ve bir kez daha daldırın.
Ksileni çıkarmak ve bölümleri yeniden sulandırmak için, sepeti mutlak bir etanol banyosuna batırın. Üç dakika sonra, sepeti çıkarın ve bir kez daha daldırın. Bölümleri bir dakika boyunca% 90 etanol banyosuna koymadan önce hava ile kurutun.
Daha sonra, bölümü bir dakika daha% 70 etanol banyosuna aktarın. Her etanol banyosu işlemi için, sürgü sepetini iki kez hafifçe çalkalayın ve bir sonraki transferden önce sepeti boşaltın. Sepeti bir dakika boyunca% 50 etanol banyosuna aktarın.
Doku bölümlerini oda sıcaklığında% 98 formik aside 30 dakika boyunca dikkatlice batırın. Bölümleri musluk suyunda beş dakika durulayın, ardından damıtılmış suda iki kez durulayın. 10 milimolar sitrat tamponunu 98 santigrat derecede 20 dakika boyunca ön işlemden geçirmek için 500 mililitre damıtılmış suyla doldurulmuş basınç odasında paslanmaz çelik bir boyama kabı kullanın.
Kalite kontrol amacıyla, sıcaklık ve basıncı izlemek için sepete yapışkan otoklav gösterge bandının bir bölümünü yerleştirin. Alarm, ekipmanın program süresine ve sıcaklığına ulaştığını gösterdiğinde, sepeti slaytlarla daldırın. Ardından, Nokta 2'yi ayarlamak için basınç odasındaki programı başlatın ve bu programın ilk ve son basıncını kaydedin.
Endojen peroksidazın inaktivasyonu için, numune bölümlerini içeren sürgü sepetini 30 dakika boyunca metanol içinde% 3 hidrojen peroksit banyosuna daldırın. Bölümleri akan su altında beş dakika boyunca köprüleyin Boşalttıktan sonra, bölümleri beş dakika daha Tris tamponlu tuzlu suya batırın. İmmün tespiti için, her bir slaydı Tris tamponlu salin ile önceden nemlendirilmiş ticari olarak temin edilebilen bir kapak plakası tutucusuna, doku tarafı tutucuya bakacak şekilde ve tutucunun iki alt noktasıyla çakışan sürgü kenarları olacak şekilde yerleştirin.
Hava kabarcıklarından kaçındığınızdan emin olun. Sürgü tutucu tertibatı başparmak ve işaret parmağı arasında tutun. Bir parmağınızı örnek slaytın üstünde, diğerini tutucunun altında tutun, ardından tertibatı sistemin galerisine yerleştirin.
Setin iyi monte edildiğinden emin olmak için, numune sürgüsü ile tutucu arasındaki kuyuyu, taşmadan Tris tamponlu salin ile doldurun. Bu noktadan itibaren, tutucu ile slayt arasında yaklaşık 80 mikrolitre Tris tamponlu salin tutulması gerektiğinden emin olun. Bölümlerin kurumasına izin vermeyin.
Tris tamponlu salin içindeki sekonder antikor konakçısı ile aynı türden% 20 normal serum ile slayt örneklerini 30 dakika boyunca ön inkübe ederek birincil antikor ile tedaviden önce arka plan boyamasını azaltın. Bölümleri yıkamadan, 200 mikrolitre birincil antikor çözeltisini doğrudan slayt tutucu setinin her bir kuyucuğuna uygulayın ve oda sıcaklığında 60 dakika boyunca inkübe edin. Bölümleri yıkamak için, kuyucukları Tris tamponlu salin ile doldurun ve beş dakika bekleyin.
Yıkamayı iki kez tekrarlayın. Daha sonra, biyotinile sekonder antikoru Tris tamponlu salin içinde 1 ila 200 konsantrasyonda% 10 at serumu ile seyreltin. Tedavi edilecek bölüm sayısına bağlı olarak gerekli hacmi onarın.
Sürgülü tutucu setinin her bir kuyucuğuna 200 mikrolitre ikincil antikor çözeltisi uygulayın. Oda sıcaklığında 30 dakikalık inkübasyondan sonra, Tris tamponlu tuzlu su yıkamasını tekrarlayın. Avidin-biyotin kompleks peroksidaz ile inkübasyon için, reaktifi kullanımdan 30 dakika önce hazırlayın ve sürgülü plaka tutucunun her bir kuyucuğuna 200 mikrolitre çözelti uygulayın.
İşiniz bittiğinde, plaka tutucuyu oda sıcaklığında 30 dakika boyunca inkübe edin. Bilinen transmissibl süngerimsi ensefalopatiler-negatif kontrol hayvanlarında spesifik olmayan immünoetiketleme düzeyi, spesifik anormal prion proteinlerinin immün etiketlemesini doğru şekilde yorumlamak için belirlenmiştir. Anti-PrP antikorları tarafından hedef dışı etiketlemenin, ayrık intranöronal ince partikül boyama, nöropilde düzensiz ince doğrusal leke iplikleri, bazı gri ve beyaz cevher alanlarında yaygın partikül olmayan etiketleme ve nöronların yaygın sitoplazmik etiketlenmesi olarak ortaya çıktığı kaydedildi.
Tablo, sığır süngerimsi ensefalopatisinde, klasik ve atipik scrapie'de gözlenen immün işaretli anormal prion protein tiplerinin ve pozitif tanı için servidlerin kronik israf hastalığının tanımını ve negatif, sonuçsuz ve uygun olmayan sonuçlar için belirlenmiş kriterleri özetlemektedir. Tüm adımlar çok önemlidir. Çözeltilerin pH'ı ve oda sıcaklığı bu tekniğin başarısı için önemli özelliklerdir.
Hem PrP scrapie'yi hem de hücre tipini saptamak için immünohistokimyanın geliştirilmesi, asal patogenezde rol oynayan her hücre hakkında bilgi verebilir.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
09:22
Related Videos
11.9K Views
06:02
Related Videos
37.4K Views
11:29
Related Videos
11.2K Views
10:12
Related Videos
20.1K Views
01:22
Related Videos
264 Views
04:37
Related Videos
545 Views
12:00
Related Videos
11.6K Views
11:41
Related Videos
8.2K Views
12:01
Related Videos
11.3K Views
09:50
Related Videos
14.3K Views