Name: Tüm hücre yama-kelepçe kayıtları için bir hedef olarak hipotalamik kisspeptin nöronları (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-03-17T14:25:00.000+00:00
Duration: 9 min 39 s
Description: Keşfedin hipotalamik kisspeptin nöronlarında tam hücre yama-kelepçe kayıtları için güvenilir bir yöntem. Bu elektrofizyolojik teknik, nöroendokrinolojide üreme sağlığı araştırmalarına önemli katkılar sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma São Paulo Araştırma Vakfı [FAPESP hibe numaraları: 2021/11551-4 (JNS), 2015/20198-5 (TTZ), 2019/21707/1 (RF); ve Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES) - Finans Kodu 001" (HRV) tarafından desteklenmiştir.

Tüm hayvan prosedürleri, São Paulo Üniversitesi Biyomedikal Bilimler Enstitüsü Hayvanlar Etik Komitesi tarafından onaylandı ve Brezilya Hayvan Deneyleri Koleji tarafından kabul edilen etik kurallara göre gerçekleştirildi.
1. Çözümlerin hazırlanması
<ol><li>İç çözümün hazırlanması NOT: Dahili çözelti yama kelepçeli mikropipeti doldurur ve hücrenin iç kısmına temas eder ( Şekil 2'deki bir örneğe bakın). Dahili çözümler, ölçülecek faaliyet türüne bağlı olarak değişebilir33.<ol><li>Deneysel amacını ve uygun kayıt türünü göz önünde bulundurarak dahili çözümü seçin. Akım kelepçesi modunda membran potansiyelini kaydetmek için, 120 mM K-glukonat, 1 mM NaCl, 5 mM EGTA, 10 mM HEPES, 1 mM MgCl 2, 1 mM CaCl2, 3 mM KOH, 10 mM KCl ve 4 mM (Mg)-ATP'den oluşan dahili çözeltiyi kullanın. Tüm tuzları Tablo 1'de verildiği gibi istenen son hacme göre tartın.</li>
		<li>Çözeltinin nihai hacminin% 90'ına ulaşmak için yeterli miktarda deiyonize su kullanın. Bu hacim, pH ve ozmolariteyi ayarlamak için yeterli alan sağlayacaktır.</li>
		<li>Tüm malzemeleri iyice ekleyip karıştırdıktan sonra, bir pH metre kullanarak pH'ı 5 M KOH ile 7.2-7.3'e ayarlayın. 275-280 mOsm civarında olması gereken ozmolariteyi kontrol etmek için bir ozmometre kullanın (gerekirse sadece aşağı doğru ayarlayın).</li>
		<li>Dahili çözeltiyi önceden hazırlayın ve 8 ° C'de saklayın. ATP'yi deneme gününe ekleyin. ATP içeren dahili çözeltiyi -20 ° C'de (1 mL aliquots) 3-4 ay boyunca saklayın.</li>
	</ol></li>
	<li>Dilimleme çözeltisinin hazırlanması<ol><li>238 mM sakaroz, 2.5 mM KCl, 26 mM NaHCO3, 1.0 mM NaH 2 PO4, 10 mM glikoz, 1.0 mM CaCl 2 ve 5.0 mM MgCl2 içeren dilimleme çözeltisi hazırlayın. Tüm tuzları Tablo 2'de gösterildiği gibi istenen son hacme göre tartın. Hazırlanacak bu çözeltinin tam hacmi, kesme odasının boyutuna bağlı olacaktır.</li>
		<li>Tüm tuzları deiyonize suda karıştırırken, sürekli olarak karbogen ile doyurun (% 95 O2 ve% 5CO2). Dilimleme çözeltisine karbojen sağlamak için polietilen boruyu (1,57 mm dış çap [OD] x 1,14 mm iç çap [ID]) bir karbogen silindirine takın. Tüpün açık ucunu dilimleme çözeltisini içeren kabın içinde tutun.</li>
		<li>Tüm malzemeleri iyice karıştırdıktan sonra, bir pH metre kullanarak pH'ı% 10 nitrik asit ile 7.3'e ayarlayın. 290-295 mOsm olması gereken ozmolariteyi kontrol etmek için bir ozmometre kullanın (gerekirse yalnızca aşağı doğru ayarlayın). Daha sonra, çözeltiyi 0-2 ° C'ye soğutun.</li>
	</ol></li>
	<li>Kayıtlar için aCSF çözümü hazırlama<ol><li>124 mM NaCl, 2,8 mM KCl, 26 mM NaHCO3, 1,25 mM NaH 2 PO 4, 1,2 mM MgSO4, 5 mM glikoz ve 2,5 mM CaCl2 içerenkayıtlar için yapay beyin omurilik sıvısı (aCSF) çözeltisi hazırlayın. Tüm tuzları Tablo 3'te verilen istenen son hacme göre tartın.</li>
		<li>Tüm tuzları deiyonize suda karıştırırken, adım 1.2.2'de açıklandığı gibi sürekli olarak karbogen (% 95O2 ve% 5 CO2) ile doyurun.</li>
		<li>Tüm bileşenleri ekleyip karıştırdıktan sonra, bir pH metre kullanarak pH'ı 7.3'e (% 10 nitrik asit kullanılabilir) ayarlayın. 290-300 mOsm olması gereken ozmolariteyi kontrol etmek için bir ozmometre kullanın. Daha sonra, aCSF'yi bir beher içine dökün ve 30 ° C'de bir su banyosunda tutun.</li>
	</ol></li>
</ol>2. Beyin diseksiyonu ve dilimleme
NOT: Farklı beyin yapıları farklı düzlemlerde (koronal, sagital veya yatay dilimler) kesmeyi gerektirebileceğinden, dilimleri elde etmek için kesin yaklaşım ilgilenilen beyin bölgesine bağlıdır. Tipik olarak, AVPV / PeN ve ARH'deki Kiss1 eksprese eden hücreleri incelemek için (burada AVPV / PeN Kisspeptin nöronları ve ARHkisspeptin nöronları olarak adlandırılır; Şekil 2A,B), koronal beyin dilimleri (200-300 μm) genellikle 17,19,20,21,34 yapılır. AVPV / PeN Kisspeptin nöronları bregmadan yaklaşık 0.5 ila -0.22 mm uzaklıkta bulunurken, ARHkisspeptin nöronları -1.22 ila -2.70 mm'dir. Çekirdeklerin konumu, stereotaksik fare beyni atlası35 veya Allen Fare Beyni Referans Atlası (http://mouse.brain-map.org/) kullanılarak belirlenebilir. Bu çalışmada yetişkin Kiss1-Cre/GFP dişi (diestrus-evre) ve erkek fareler36 kullanılmıştır.
<ol><li>Beyin çıkarılması<ol><li>Diseksiyon bölgesini ve beyni çıkarmak için gereken araçları hazırlayın: kafa kesme makası, iris makası, Castroviejo kavisli makas, osteotom, cımbız, spatula, filtre kağıdı, Petri kabı, tıraş bıçağı ve siyanoakrilat yapıştırıcı.</li>
		<li>Dilimleri yapmadan önce, sonraki tüm prosedürlerin hızlı bir şekilde yapılması gerektiğinden, diseksiyonun yapılacağı tezgahı hazırlayın. Vibratom gibi bir dilimleme cihazına erişebildiğinizden emin olun.</li>
		<li>Dokuyu dilimlemeden önce beyin dilimlerini korumak için bir kayıt odası hazırlayın. Ticari bir markadan (Malzeme Tablosu) 24 mm x 15 mm x 2 mm (U x G x Y) banyo boyutlarında bir kayıt odası edinin veya şirket içinde bir tane yapın. NOT: Şirket içi bir geri kazanım odası aşağıdaki gibi imal edilebilir: 24 delikli bir plakayı dokuz kuyu mevcut olacak şekilde kesin. Dokuz kuyucuğun tabanına naylon bir elek yapıştırın. Kuyu plakasının geri kalanıyla, naylonun alt kısmı serbest kalacak şekilde bir taban yapın. Bu uyarlanmış taban, aCSF içeren 500 mL'lik bir beherin içine yerleştirilebilir (Ek Şekil 1).</li>
		<li>Her şeyi hazırladıktan sonra,% 4 -% 5 izofluran kullanarak hayvanı inhale anestezi ile uyuşturun. Anestezi, etik kurul tarafından onaylanmış bir protokole uygun olmalıdır. Hayvan hareketsiz kaldıktan kısa bir süre sonra, hayvanın derinlemesine uyuşturulmasını sağlamak için kuyruk ve pençe çimdik testleri yapın.</li>
		<li>Hücre canlılığını arttırmak için kalp hala aktifken farelerin kafasını hızla kesin. Beyni dekapitasyondan sonra hızlı bir şekilde toplayın.</li>
		<li>Cerrahi makasla hayvanın kafatasının tepesindeki deride, kaudalden rostral'e kadar bir kesi yapın ve kafa derisini hayvanın kafasından çıkarın. Daha sonra, interparietal plakayı iris makası ile sagital sütür boyunca kesin ve oksipital kemiği çıkarın. Osteotomu parietal kemiğin altına kaydırın ve beyin açığa çıkana kadar yavaşça dışarı çekin.</li>
		<li>Beyni açığa çıkardıktan sonra, başını baş aşağı çevirin, her iki taraftaki trigeminal siniri görselleştirmek için beyni yavaşça indirin, ardından Castroviejo kavisli makas kullanarak trigeminal siniri kesin. Hipotalamusu görselleştirdikten sonra, optik siniri tanımlayın ve yavaşça kesin. NOT: Optik siniri keserken dikkatli olun, çünkü onu çekmek AVPV / PeN çekirdeğini içeren bitişik hipotalamik alanı yırtacaktır.</li>
		<li>Frontal lobun en ön kısmını kesin ve beyni tamamen çıkarın. Dilimleri elde edene kadar beyni hemen dilimleme çözeltisine daldırın.</li>
	</ol></li>
	<li>Beyin örneklerinin dilimlenmesi<ol><li>Fazla çözeltiyi kurutmak için beyni filtre kağıdına (Petri kabında desteklenen) yerleştirin. Daha sonra, keskin bir kesme tıraş bıçağı ile, beyin sapını beyincik ile dokunun geri kalanından ayıran bir koronal kesim gerçekleştirin.</li>
		<li>Daha sonra, beynin kaudal kısmını vibratomun tabanına yapıştırın ve dilimleme cihazının odasını 0-2 ° C'ye soğutulmuş dilimleme / aCSF çözeltisi ile doldurun. İşlem sırasında, dilimleme çözeltisini soğuk tutmak için vibratom odasının etrafına kuru buz paketleyin.</li>
		<li>Tıraş bıçağını vibratoma yerleştirin ve cihazın uygun kesme parametrelerini ayarlayın: hız = 3, frekans = 9 ve besleme = 250 μm. Doku dilimleme prosedürü sırasında dilimleri geri kazanım odasına (adım 2.1.3'te açıklanmıştır) aktarmak için bir akrilik transfer pipeti (silikon meme ucuna tutturulmuş ters Pasteur cam pipet) kullanın. Dilim alımından sonra doku iyileşmesi için 60 dakika bekleyin.</li>
	</ol></li>
</ol>3. Kayıt için hücre sızdırmazlığı
<ol><li>Kayda başlamadan önce tüm ekipman parçalarının (mikroskop, amplifikatör, sayısallaştırıcı, mikromanipülatör ve diğerleri) açık olduğundan emin olun.</li>
	<li>Mikroskopa bağlı ticari bir markadan (Malzeme Tablosu) kayıt odasını, kayıtlar için aCSF çözümü ile doldurun. aCSF'yi sürekli olarak 2 mL/dak hızında perfüze etmek için bir perfüzyon pompası kullanın.</li>
	<li>İlgilendiğiniz bir beyin dilimini (birer birer birer) kayıt odasına aktarın. Hipotalamik dilimleri odaya aktarmak için bir akrilik transfer pipeti (silikon meme ucuna tutturulmuş ters Pasteur cam pipet) kullanın. Dilimi aCSF perfüzyonu sırasında hareket etmeyecek şekilde tutmak için bir dilim ankrajı (Malzeme Tablosu) kullanın.</li>
	<li>Mikroskopa bağlı kayıt odasının ortasına bir dilim yerleştirin. Dilim konumu, mikroskop altında istenen bölgenin iyi bir şekilde görülebilmesi ve kayıt mikropipetine mükemmel bir şekilde ulaşılabilmesi için kritik öneme sahiptir.</li>
	<li>Dilimi konumlandırmaya ve ilgi alanını bulmaya yardımcı olmak için daldırma mikroskobunun düşük güçlü objektif lensini (10x veya 20x) kullanın.</li>
	<li>İlgilenilen bölgeyi bulduktan sonra, objektif lensi yüksek güçlü lense (63x) geçirin ve doku seviyesine odaklanın, endojen floresan proteinini ve hedef bölgedeki hücrelerin şekillerini gözlemleyerek kisspeptin hücrelerini beyin dilimi20'nin yüzeyinde konumlandırın.</li>
	<li>Olası bir hedef hücre bulunduğunda, bilgisayar ekranında fare imleciyle veya ilgi alanının üzerine kare gibi bir biçim çizerek işaretleyin. Bilgisayar ekran işareti, kayıt mikropipetinin konumunu hücreye yönlendirmeye yardımcı olur.</li>
	<li>Hedef hücrenin tam yerini belirledikten sonra, hedefi kaldırın ve dahili çözelti ile doldurulmuş kayıt mikropipetini tanıtın. Mikropipeti elektrot tutucuya yerleştirirken, dahili çözeltinin gümüş elektrot ile temas halinde olduğundan emin olun. NOT: Mikropipet hazırlama, elektrot tutucu üzerine yerleştirme ve konumlandırma için lütfen33'e bakın.</li>
	<li>Mikropipet tutucusuna bir polietilen boru (≈130 cm daha uzun) ile bağlanan 1-3 mL hava dolu bir şırınga kullanarak, döküntülerin mikropipete girmesini önlemek için mikropipeti aCSF çözeltisine batırmadan önce pozitif basınç uygulayın; yaklaşık 100-200 μL hava uygulayın.</li>
	<li>Mikromanipülatörü kullanarak, mikropipeti hedefin merkezinin altına yönlendirin. X-Y-Z eksenindeki mikropipeti ilgilenilen hücreye doğru yönlendirmek için mikromanipülatör üzerindeki düğmeleri hareket ettirin.</li>
	<li>Mikropipetin ucunu görmek için odağı ayarlayın ve odağı dilime yaklaştırın, ancak çok yakın değil. Mikromanipülatörün hızını azaltın ve mikropipeti yavaşça odak düzlemine indirin. Mikropipet ucunun dilime aniden nüfuz etmediğinden, hücrenin/hedef bölgenin yüzeyine dokunana kadar yavaşça alçaldığından emin olun.</li>
	<li>Yaklaşma yolundaki kalıntıları temizlemek için mikropipet tutucuya bağlı 1-3 mL hava dolu şırınga ile hafif pozitif basınç (≈100 μL) uygulayın.</li>
	<li>Hedef hücreye odaklanın ve mikropipeti hedef hücreye yaklaştırmak için mikromanipülatörü X-Y-Z ekseninde yavaşça hareket ettirin. Mikropipet hücreye dokunulduğunda, mikropipet ucundan uygulanan basıncın neden olduğu bir çukur gözlenecektir (Şekil 2C).</li>
	<li>Çukuru oluşturduktan sonra, mikropipetin hücreye yakınlığı nedeniyle, mikropipet ile hücre arasındaki sızdırmazlığı oluşturmak için mikropipet tutucuya bağlı tüpten ağızdan (1-2 s) zayıf, kısa süreli emme uygulayın (gigaohm conta veya gigaseal >1 GΩ; Şekil 2D). Contayı oluşturmak için, yazılım üzerindeki voltaj kelepçesi modunu kullanın. Mühür oluşumu detayları için lütfen33'e bakınız.</li>
	<li>Conta sabit kalırsa (gigaohm conta mekanik olarak kararlı olmalı ve yaklaşık 1 dakika boyunca gözlemle belirlenen gürültü paraziti olmamalıdır), tutma voltajını ilgili hücrenin en yakın fizyolojik dinlenme potansiyeline ayarlayın. Kisspeptin hipotalamik nöronlar için -50 mV önerilir.</li>
	<li>Plazma zarını kırmak için hücreye kapatılmış mikropipet ile ağızdan kısa süreli emme (negatif basınç) uygulayın (Şekil 2E). Emiş yeterli kuvvetle gerçekleştirildiğinde, yırtılmış membranın mikropipeti tıkamaması ve membranın büyük bir bölümünü veya hatta hücreyi çekmemesi için yeterli tam hücre konfigürasyonu elde edilir.</li>
	<li>Kullanılan sistem ayarları kılavuzunu kontrol edin. Seri direncini (SR) ve tüm hücre kapasitansını (wcc) dijital olarak kontrol etmek ve hesaplamak için yazılımı kullanın (bkz.</li>
	<li>Voltaj kelepçesi modunda, hücre zarını kırdıktan sonra, tüm hücre seçeneğini etkinleştirin ve tüm hücre sekmesine atıfta bulunan Otomatik komutuna tıklayın. Hücrenin SR ve wcc'si otomatik olarak hesaplanacak ve yazılım tarafından anında görüntülenecektir. Bu parametreler, Malzeme Tablosu33'te belirtilen yükselteç ile membran testi yapılarak da kontrol edilebilir.</li>
	<li>Hücre canlılığı parametrelerini kontrol ettiğinizden emin olun. Kisspeptin nöronları için, elektrofizyolojik ölçümlerin şunlar olduğunu kontrol edin: SR < 25 mΩ, giriş direnci 0.3 GΩ > ve mevcut mutlak değeri 30 pA< tutmak (kişisel gözlemler ve referans21). AVPV / PeN Kisspeptin veya ARHkisspeptin nöronlarının wcc'sinin ortalama değeri, gonad bozulmamış farelerde ≈ 10-12 pF'dir20.</li>
	<li>Deneyler sırasında SR ve hücre kararlı durum kapasitansını izleyin. Kayıt sırasında SR'nin %20'den fazla değişmediğinden ve membran kapasitansının sabit olduğundan emin olun.</li>
	<li>Yazılım ayarlarını kontrol edin. Deneme türüne göre kayıtlar için özel protokoller oluşturun. Akım kelepçesi modunda membran potansiyelini kaydetmek için, Malzeme Tablosunda belirtilen ekipmanla, alçak geçirgen elektrofizyolojik sinyalleri 2-4 kHz'de filtreler ve sonuçları bir yazılımda çevrimdışı olarak analiz eder (yazılım bilgileri için Malzeme Tablosuna bakın).</li>
	<li>Tüm hücre konfigürasyonu düzgün bir şekilde sağlandıktan sonra, voltaj-kelepçe modunda sinaptik akımları ölçün (Şekil 2G). Dinlenme membranı potansiyelindeki (RMP) değişiklikleri ve akım kelepçesi modunda indüklenen RMP varyasyonlarını kaydedin (Şekil 2H). Hücre zarının depolarizasyonu gibi RMP'deki değişiklikler, Şekil 1'de gösterildiği gibi, banyoya bilinen bir ilaç / nörotransmitter uygulanarak (adım 3.2'de açıklanmıştır) indüklenebilir. NOT: Akım-kelepçe modunda, membran voltajını istenen voltajda tutmak için pozitif veya negatif akım enjekte edilebilir. Kisspeptin nöronları için, membran potansiyelinin kendiliğinden varyasyonunu kaydetmek için genellikle sıfır akım enjeksiyonu (I = 0) ayarlarız.</li>
</ol>

Çıkar çatışması ilan edilmemelidir.

Tüm hücre yama-kelepçe tekniğinin geliştirilmesi, bilimsel araştırma geliştirmek ve çeşitli keşiflere olanak sağlamak için büyük önem taşıyan bilimsel topluluk üzerinde önemli bir etkiye sahipti. Bilim üzerindeki etkisi, 1991'de Nobel Tıp Ödülü ile sonuçlanmak için yeterliydi, çünkü bu keşif, iyon kanallarının fizyolojik ve patolojik koşullar altında nasıl işlediğinin daha iyi anlaşılmasına ve terapötik ajanlar için potansiyel hedeflerin belirlenmesine kapı açtı 11,39,40,41<sup class="x...

Hodgkin ve Huxley, çeşitli bilimsel çalışmalarda tanımlanan bir aksiyon potansiyelinin ilk hücre içi kaydını yaptılar. Bu kayıt, aksonun içine bir mikroelektrodun yerleştirilmesine izin veren büyük bir çapa (~ 500 μm) sahip kalamar aksonu üzerinde gerçekleştirildi. Bu çalışma, bilimsel araştırmalar için büyük olanaklar sağladı ve daha sonra aksiyon potansiyeli üretimi 1,2,3,4,5,6,7,8'in iyonik temelini incelemek için kullanılan voltaj-kelepçe modunun oluşturulmasıyla sonuçlandı. Yıllar geçtikçe, teknik geliştirildi ve bilimsel araştırmalarda yaygın olarak uygulandı 6,9. 1970'lerin sonlarında Erwin Neher ve Bert Sakmann tarafından başlatılan çalışmalarla gerçekleşen yama-kelepçe tekniğinin icadı, araştırmacıların sadece tek bir elektrot kullanarak hemen hemen her hücre tipinde tek iyon kanallarını ve hücre içi zar potansiyellerini veya akımlarını kaydetmelerine izin verdi 9,10,11,12. Yama-kelepçe kayıtları, kültürlü hücreler veya doku dilimleri gibi çeşitli doku preparatları üzerinde, voltaj-kelepçe modunda (hücre zarını belirli bir voltajda tutarak, örneğin voltaja bağlı akımların ve sinaptik akımların kaydedilmesine izin veren) veya akım-kelepçe modunda (örneğin, iyon akımlarının neden olduğu dinlenme zarı potansiyelindeki değişikliklerin kaydedilmesine izin veren) yapılabilir. aksiyon potansiyelleri ve postsinaptik potansiyel frekans).
Yama-kelepçe tekniğinin kullanılması, birkaç önemli keşfi mümkün kıldı. Gerçekten de, üçüncü ventrikülün (RP3V) rostral periventriküler alanı olarak da bilinen anteroventral periventriküler ve rostral periventriküler çekirdeklerde (AVPV / PeN Kisspeptin) bulunan hipotalamik kisspeptin nöronlarının elektrofizyolojik özellikleri ve hipotalamusun (ARHkisspeptin) kavisli çekirdeği üzerine seminal bulgular13,14,15 özellikle ilgi çekicidir. 2010 yılında Ducret ve ark., başka bir elektrofizyolojik araç olan gevşek hücreli yama-kelepçe tekniğini kullanarak farelerde AVPV / PeNKisspeptinnöronlarının ilk kayıtlarını gerçekleştirdi. Bu çalışmalar, AVPV / PeNKisspeptin nöronlarının elektriksel bir tanımını sağladı ve ateşleme modellerinin östrus döngüsüne bağlı olduğunu gösterdi16. 2011 yılında, Qiu ve ark., ARHkisspeptin nöronlarının endojen kalp pili akımlarını eksprese ettiğini göstermek için tüm hücre yama-kelepçe tekniğini kullandılar17. Daha sonra, Gottsch ve ark., kisspeptin nöronlarının spontan aktivite sergilediğini ve hem h-tipi (kalp pili) hem de T-tipi kalsiyum akımlarını eksprese ettiğini gösterdi, bu da ARHkisspeptin nöronlarının elektrofizyolojik özellikleri diğer merkezi sinir sistemi kalp pili nöronlarıyla paylaştığını düşündürmektedir18. Ek olarak, ARH kisspeptin nöronlarının cinsel olarak dimorfik ateşleme hızları sergilediği ve AVPV / PeNKisspeptin nöronlarının ATP'ye duyarlı potasyum kanallarından (K ATP) etkilenen bimodal dinlenme zarı potansiyeli (RMP) sergilediği gösterilmiştir19,20. Ayrıca, gonadal steroidlerin farelerde kisspeptin nöronlarının spontan elektriksel aktivitesini olumlu yönde etkilediği tespit edilmiştir 19,20,21. Kisspeptin nöronlarının elektrofizyolojik özelliklerini inceleyen ilk çalışmalardan 16,17,18,19,20 bahsedilmektedir. O zamandan beri, birçok çalışma, kisspeptin nöronlarının elektriksel aktivitesini modüle etmek için hangi faktörlerin / nöromodülatörlerin yeterli olduğunu göstermek için tüm hücre yama-kelepçe tekniğini kullanmıştır (Şekil 1)17,21,22,23,24,25,26,27,28,29,30,31,32.
Bu tekniğin, burada ele alınmayan diğer hücre tiplerinin yanı sıra, üreme için gerekli olan nöronların incelenmesi için önemi göz önüne alındığında, bu makalede, çözeltilerin hazırlanması, beynin diseksiyonu ve dilimlenmesi ve kayıtlar için hücre zarının mühürlenmesi gibi tüm hücre yama-kelepçe tekniğinin geliştirilmesi için temel adımlar açıklanmaktadır. Ayrıca, teknikle ilgili avantajları, teknik sınırlamaları ve optimum deneysel performans için kontrol edilmesi gereken önemli değişkenler gibi ilgili konular tartışılmaktadır.

<table><tbody><tr><td><güçlü > aCSF, iç ve dilimleme çözeltileri için bileşikler< / güçlü ></td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>ATP</td><td>Sigma Aldrich / çeşitli</td><td>A9187</td><td></td></tr><tr><td>CaCl < alt > 2< / alt ></td> <td>Sigma Aldrich / çeşitli</td><td>C7902</td><td></td></tr><tr><td>D - (+) - Glikoz</td><td>Sigma Aldrich / çeşitli</td><td>G7021</td><td></td></tr><tr><td>EGTA</td><td>Sigma Aldrich / çeşitli</td><td>O3777</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma Aldrich / çeşitli</td><td>H3375</td><td></td></tr><tr><td>KCL</td><td>Sigma Aldrich / çeşitli</td><td>P5405</td><td></td></tr><tr><td>K-glukonat</td><td>Sigma Aldrich / çeşitli</td><td>G4500</td><td></td></tr><tr><td>KOH</td><td>Sigma Aldrich / çeşitli</td><td>P5958</td><td></td></tr><tr><td>MgCl < alt > 2< / alt ></td> <td>Sigma Aldrich / çeşitli</td><td>M9272</td><td></td></tr><tr><td>MgSO< alt > 4< / alt> </td><td>Sigma Aldrich / çeşitli</td><td>230391</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma Aldrich / çeşitli</td><td>S5886</td><td></td></tr><tr><td>NaH2PO4&nbsp;</td><td>Sigma Aldrich / çeşitli</td><td>S5011</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>Sigma Aldrich / çeşitli</td><td>S5761</td><td></td></tr><tr><td>nitrik asit</td><td>Sigma Aldrich / çeşitli</td><td>225711</td><td>DİKKAT</td></tr><tr><td>Sükroz</td><td>Sigma Aldrich / çeşitli</td><td>S1888</td><td></td></tr> <tr><td>< güçlü > Ekipmanlar< / güçlü ></td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Hava masası</td><td>TMC</td><td>63-534</td><td></td></tr><tr><td>Amplifikatör</td><td>Moleküler Cihazlar</td><td>Multiclamp 700B</td><td></td></tr><tr><td>Bilgisayar</td><td>çeşitli-DIGIDATA</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>1440 DÜŞÜK GÜRÜLTÜLÜ VERİ TOPLAMA SİSTEMİ</td><td>Moleküler Cihazlar</td><td>DD1440</td><td></td></tr><tr><td>Dijital peristaltik pompa</td><td>Ismatec</td><td>ISM833C&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Faraday kafesi</td><td>TMC</td><td>81-333-03</td><td></td></tr><tr><td>Görüntüleme Kamerası</td><td>Leica</td><td>DFC 365 FX</td><td></td></tr><tr><td>Mikromanipülatör</td><td>Sutter Aletleri</td><td>Roe-200</td><td></td></tr><tr><td>Mikropipet Çektirme</td><td>Narishige</td><td>PC-10</td><td></td></tr><tr><td>Mikroskop</td><td>Leica</td><td>DM6000 FS</td><td></td></tr><tr><td>Osteotom</td><td>Bonther ekipmanları & Tecnologia/çeşitli</td><td>128</td><td></td></tr><tr><td>Kurtarma odası</td><td>Warner Instruments/Harvard</td> <td>aparatı-şirket</td> <td>içinde yapılabilir</td></tr><tr><td>Kayıt odası</td><td>Warner Instruments</td><td>640277</td><td></td></tr><tr><td>Spatula</td><td>Fisher Scientific /çeşitli</td><td>FISH-14-375-10; BALIK-21-401-20</td><td></td></tr><tr><td>Vibratom&nbsp;</td><td>Leica</td><td>VT1000 S</td><td></td></tr><tr><td>Su Banyosu&nbsp;</td><td>Fisher Scientific / çeşitli</td><td>Isotemp</td><td></td></tr><tr><td>Yazılım ve sistemler</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>AxoScope 10 yazılımı</td><td>Moleküler</td> <td>Cihazlar-Commander</td> <td>Yazılımı</td></tr><tr><td>LAS X geniş alan sistemi</td><td>Leica-Görüntü</td><td></td> <td>elde etme ve analizi</td></tr><tr><td>MultiClamp 700B</td><td>Moleküler Cihazlar</td><td>MULTICLAMP 700B</td><td>Commander Yazılımı</td></tr><tr><td>PCLAMP 10 WINDOWS İÇİN YAZILIM</td><td>Moleküler Cihazlar</td><td>Pclamp 10 Standart</td><td></td></tr><tr><td><güçlü>Aletler</güçlü></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ag/AgCl elektrot, pelet, 1.0 mm</td><td>Warner Instruments</td><td>64-1309</td><td></td></tr><tr><td>Kavisli hemostatik forsep</td><td></td> çeşitli-siyanoakrilat <td></td><td></td></tr><tr><td>yapıştırıcı</td><td>LOCTITE/çeşitli</td><td>-</td><td></td></tr><tr><td>Dekapitasyon makası</td><td>çeşitli-Filtre</td> kağıdı <td>çeşitli-Cam</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>kılcal damarlar (mikropipet)</td><td>World Precision Instruments, Inc</td><td>TW150F-4</td><td></td></tr><tr><td>İris makası</td><td>Bonther equipamentos & Tecnologia/çeşitli</td><td>65-66</td><td></td></tr><tr><td>Pasteur cam pipet&nbsp;</td><td>Sigma Aldrich / çeşitli</td><td>CLS7095B9-1000EA</td><td></td></tr><tr><td>Petri kabı</td><td>çeşitli-Polietilen</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>boru & nbsp;</td><td>Warner Instruments</td><td>64-0756</td><td></td></tr><tr><td>Beyin diseksiyonu için tıraş bıçağı</td><td>TED PELLA</td><td>TEDP-121-1</td><td></td></tr><tr><td>Vibratom için tıraş bıçağı</td><td>TED PELLA</td><td>TEDP-121-9</td><td></td></tr><tr><td>Makas</td><td>Bonther ekipmanları & Tecnologia/çeşitli</td><td>71-72, 48,49; &nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>silikon emzik</td><td>çeşitli-Dilimli</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Ankraj&nbsp;</td><td>Warner Instruments</td><td>64-0246</td><td></td></tr><tr><td>Şırınga filtreleri</td><td>Merck Millipore Ltda</td><td>SLGVR13SL</td><td>Millex-GV 0.22 & mu; m</td></tr><tr><td>Cımbız</td><td>Bonther equipamentos & Tecnologia/çeşitli</td><td>131, 1518</td><td></td></tr></tbody></table>

tüm hücre yama-kelepçe kayıtları için bir hedef olarak hipotalamik kisspeptin nöronları

Hypothalamic Kisspeptin Neurons as a Target for Whole-Cell Patch-Clamp Recordings

Kisspeptinler, hipotalamik-hipofiz-gonadal (HPG) ekseninin olgunlaşması ve doğurganlık için gereklidir. Anteroventral periventriküler çekirdekte ve rostral periventriküler çekirdekte bulunan hipotalamik kisspeptin nöronlarının yanı sıra hipotalamusun kavisli çekirdeği, diğer hücrelerin yanı sıra gonadotrofin salgılayan hormon (GnRH) nöronlarına yansır. Önceki çalışmalar, kisspeptin sinyallemesinin Kiss1 reseptörü (Kiss1r) aracılığıyla gerçekleştiğini ve sonuçta heyecan verici GnRH nöron aktivitesini ortaya çıkardığını göstermiştir. İnsanlarda ve deneysel hayvan modellerinde, kisspeptinler GnRH sekresyonunu ve sonuç olarak luteinize edici hormon (LH) ve folikül uyarıcı hormon (FSH) salınımını indüklemek için yeterlidir. Kisspeptinler üreme fonksiyonlarında önemli bir rol oynadığından, araştırmacılar hipotalamik kisspeptin nöronlarının içsel aktivitesinin üreme ile ilgili eylemlere nasıl katkıda bulunduğunu değerlendirmek ve bu özellikleri değiştirebilen birincil nörotransmiterleri / nöromodülatörleri tanımlamak için çalışıyorlar. Tüm hücre yama-kelepçe tekniği, kemirgen hücrelerinde kisspeptin nöron aktivitesini araştırmak için değerli bir araç haline gelmiştir. Bu deneysel teknik, araştırmacıların spontan uyarıcı ve inhibitör iyonik akımları, dinlenme zarı potansiyelini, aksiyon potansiyeli ateşlemesini ve hücre zarlarının diğer elektrofizyolojik özelliklerini kaydetmelerini ve ölçmelerini sağlar. Bu çalışmada, hipotalamik kisspeptin nöronlarını tanımlayan elektrofizyolojik ölçümler olarak bilinen tüm hücre yama-kelepçe tekniğinin önemli yönleri ve teknikle ilgili konuların tartışılması gözden geçirilmiştir.

İnsan rekombinant büyüme hormonunun (hGH) hipotalamik kisspeptin nöronlarının aktivitesi üzerindeki olası etkilerini incelemek için, beyin dilimlerinde tüm hücre yama-kelepçe kayıtları gerçekleştirdik ve bu hormonun AVPV / PeN Kisspeptin ve ARHkisspeptin nöronlarının aktivitesinde akut değişikliklere neden olup olmadığını değerlendirdik. Bu çalışmada yetişkin Kiss1-Cre/GFP dişi (diestrus-evre) ve erkek fareler36 kullanılmıştır. Deneyler için gonad-bozulmamış hayvanlar seçildi...

Burada, gonadotropin salgılayan hormon (GnRH) hücrelerinin birincil modülatörü olan kisspeptin nöronlarını içeren beyin dilimleri üzerinde tüm hücre yama kelepçesini gerçekleştirmek için bir protokol sunuyoruz. Kisspeptin nöron aktivitesi hakkında bilgi ekleyerek, bu elektrofizyolojik araç son 20 yılda nöroendokrinoloji alanındaki önemli gelişmelerin temelini oluşturmuştur.

Tüm hücre yama-kelepçe kayıtları için bir hedef olarak hipotalamik kisspeptin nöronları

Kisspeptins are essential for the maturation of the hypothalamic-pituitary-gonadal (HPG) axis and fertility. Hypothalamic kisspeptin neurons located in ...

Hücre zarlarının elektrofizyolojik özelliklerini ölçerek, ana soru, bir hücrenin elektriksel aktivitesinin modüle edilmesinin çözülebileceğini kanıtlar. Tüm hücre yama kelepçesi kaydı, bireysel hücrelerdeki iyonik akımları incelemek ve farklı uyaranlara hücresel yanıtı sorgulamak için periferik bir tekniktir. Tüm hücre yama kelepçesi ön kayıtlarında en iyi performans, çok fazla pratik yaptıktan ve çalıştıktan sonra elde edilecektir.Beyin diseksiyonuna başlamak için, kafası kesilmiş hayvanın kafatasının tepesindeki deride kaudalden rostrale kadar cerrahi makas kullanarak bir kesi yapın ve kafa derisini çıkarın. Daha sonra, inter parietal plakayı sagital sütür boyunca iris makası ile kesin ve oksipital kemiği çıkarın. Osteotomu parietal kemiğin altına kaydırın ve beyin açığa çıkana kadar yavaşça dışarı çekin.Beyni açığa çıkardıktan sonra, başını baş aşağı çevirin. Her iki taraftaki trigeminal siniri görselleştirmek için beyni yavaşça indirin. Daha sonra Castroviejo kavisli makas kullanarak trigeminal siniri kesin.Hipotalamusu görselleştirdikten sonra optik siniri tanımlayın ve yavaşça kesin. Daha sonra, frontal lobun uzak ön kısmını kesin. Beyni çıkarın ve dilimleri elde edene kadar hemen dilimleme çözeltisine daldırın.Beyin örneklerini dilimlemek için, fazla çözeltiyi kurutmak için beyni bir filtre kağıdına yerleştirin. Daha sonra keskin bir kesme tıraş bıçağı ile beyin sapını beyincik ile dokunun geri kalanından ayıran bir koronal kesim gerçekleştirin. Daha sonra, beynin kaud kısmını bir vibratomun tabanına yapıştırın ve dilimleme cihazı odasını dilimleme çözeltisi veya sıfır ila iki santigrat dereceye soğutulmuş aCSF çözeltisi ile doldurun.İşlem sırasında dilimleme çözeltisini soğuk tutmak için vibratom odasının etrafına kuru buz paketleyin. Tıraş bıçağını vibratoma yerleştirin ve cihazın hız üç, frekans dokuz ve besleme gibi kesme parametrelerini 250 mikrometreye ayarlayın. Doku dilimleme işlemi sırasında akrilik transfer pipeti kullanarak dilimleri geri kazanım odasına aktarın ve dilim alımından sonra doku iyileşmesi için 60 dakika bekleyin.Hücre sızdırmazlığına ve kaydına başlamadan önce, mikroskop, amplifikatör, sayısallaştırıcı ve mikro manipülatörü açın. Mikroskopa bağlı kayıt odasını aCSF çözümü ile oluşturun. aCSF'yi dakikada iki mililitrede sürekli perfüze etmek için bir perfüzyon pompası kullanın.Yazılım ayarlarını kontrol edin ve deneme türüne göre kayıtlar için özel protokoller oluşturun. İlgilendiğiniz bir beyin dilimini akrilik transfer pipeti kullanarak kayıt odasına teker teker aktarın. Dilimi bir dilim ankrajıyla tutun, böylece aCSF perfüzyonu sırasında hareket etmez.Daldırma mikroskobunun düşük güçlü objektif lensi 10X veya 20X'i kullanarak dilimi kayıt odasının ortasına yerleştirin. Dilim konumu, mikroskop altında istenen bölgenin iyi bir şekilde görülebilmesi ve kayıt mikropipetine mükemmel bir erişim sağlamak için kritik öneme sahiptir. İlgilenilen bölgeyi bulduktan sonra objektif lensi yüksek güçlü lense, 63X'e geçirin ve beyin diliminin yüzeyindeki kisspeptin hücrelerini bulmak için endojen floresan proteinini ve hedef bölgedeki hücrelerin şekillerini gözlemleyerek doku seviyesine odaklanın.Olası bir hedef hücre bulunduğunda, bilgisayar ekranında fare imleciyle veya ilgi alanının üzerine kare gibi bir biçim çizerek işaretleyin. Bilgisayar ekran işareti, kayıt pipeti konumunu hücreye yönlendirmeye yardımcı olur. Hedef hücrenin tam yerini belirledikten sonra, hedefi kaldırın ve dahili çözeltinin gümüş elektrotla temas halinde olmasını sağlamak için elektrot tutucusuna dahili çözelti ile doldurulmuş kayıt mikropipetini tanıtın.Mikropipete döküntülerin girmesini önlemek için mikropipet tutucuya bir polietilen boru aracılığıyla bağlanan bir ila üç mililitrelik hava dolu bir şırınga kullanarak mikropipeti aCSF çözeltisine batırmadan önce pozitif bir basınç uygulayın. Mikro manipülatörü kullanarak mikropipeti hedefin merkezinin altına yönlendirin. Mikropipetin XYZ eksenini ilgilenilen hücreye doğru yönlendirmek için mikro manipülatör düğmelerini hareket ettirin.Mikropipetin ucunu görmek için odağı ayarlayın ve odağı dilime çok yakın değil, daha yakına getirin. Mikro manipülatörün hızını azaltın ve mikropipet ucunun dilime aniden nüfuz etmemesini, ancak hücrenin yüzeyine veya hedef bölgeye dokunana kadar yavaşça inmesini sağlayarak mikropipeti yavaşça odak düzlüğüne indirin. Yaklaşma yolundaki kalıntıları temizlemek için bir ila üç mililitre hava dolu şırınga ile hafif pozitif basınç uygulamak.Mikropipet ucunu yakınlaştırmak için mikro manipülatörü XYZ ekseni üzerinde yavaşça hareket ettirin ve uygulanan basınçla çukurlaşmaya neden olan hedef hücreye dokunun. Yazılım üzerindeki voltaj kelepçesi modu yardımıyla çukuru kurduktan sonra, mikropipet tutucuya bağlı tüp aracılığıyla bir ila iki saniye boyunca ağızdan zayıf kısa emme uygulayın ve mikropipet ile hücre arasındaki sızdırmazlığı oluşturun. Conta yaklaşık bir dakika boyunca gürültü paraziti olmadan mekanik olarak sabit kalırsa, tutma voltajını ilgili hücrenin en yakın fizyolojik dinlenme potansiyeline ayarlayın.Kisspeptin hipotalamik nöronlar için eksi 50 milivolt önerilir. Daha sonra, hücreye yerleştirilen mikropipet ucundaki plazma zarını kırmak için ağız yoluyla kısa bir emme uygulayın, böylece yırtılmış membran mikropipeti tıkamaz veya büyük bir zar kısmını veya hücreyi çekmez. Yeterli kuvvetle emme yapılarak yeterli bir bütün hücre konfigürasyonu elde edilebilir.Kullanılan sistem ayarları kılavuzunu kontrol edin. Hücre zarını kırdıktan sonra, voltaj kelepçesi modunda tüm hücre seçeneğini etkinleştirin ve tüm hücre sekmesine atıfta bulunan otomatik komuta tıklayın. Hücrenin seri direnci ve tüm hücre kapasitansı yazılım tarafından otomatik olarak hesaplanır ve anında görüntülenir.Ardından, metin makalesinde açıklandığı gibi yazılımdaki hücre canlılığı parametrelerini kontrol edin. Deneyler sırasında seri direncini ve hücre kararlı durum kapasitansını izleyin. Tüm hücre konfigürasyonu düzgün bir şekilde sağlandıktan sonra, voltaj kelepçesi modunda sinaptik akımları ölçün.Dinlenme membranı potansiyelindeki değişiklikleri ve mevcut kelepçe modunda indüklenen dinlenme membranı potansiyel değişikliklerini kaydedin. İnsan rekombinant büyüme hormonunun hipotalamik kisspeptin nöronlarının aktivitesi üzerindeki olası etkileri, tüm hücre yama kelepçesi kayıtları yardımıyla incelenmiştir. İnsan rekombinant büyüme hormonu HGH'nin gram başına 20 mikrogramda uygulanması, 12 AVPV / PeN kisspeptin nöronundan 5'inde ve kaydedilen 14 ARH kisspeptin nöronundan 9'unda dinlenme zarı potansiyelinin önemli bir hiperpolarizasyonuna neden oldu.AVPV / PeN kisspeptin ve ARH kisspeptin hiperpolarize nöronları, yanıt vermeyen hücrelere kıyasla dinlenme zarı potansiyelini önemli ölçüde değiştirdi. HGH uygulaması sırasında dinlenme zarı potansiyeli üzerindeki etkiler, AVPV / PeN kisspeptin nöronları üzerinde yaklaşık 0.9 ila 0.7 gigaohm ve ARH kisspeptin nöronları üzerinde 1.7 ila 1.0 gigaohm arasında tüm hücre giriş direncinin önemli ölçüde azalmasını izlemiştir. Dikkatli gigaseal ile gerçekleştirilen mükemmel beyin hatları sırasında ve plaj parametreleri aracılığıyla hücredeki alan şeyi, en iyi tüm hücre kayıtlarını elde etmek için gereklidir.Kaydedilen hücrenin mikropipet çözeltisi, izole edilmiş bir hücrenin moleküler karakterizasyonuna izin veren tek hücreli RTPCR için toplanabilir ve kullanılabilir. Genetiği değiştirilmiş hayvanların kullanımı ile birleştirilen tüm hücre yama kelepçesi tekniği, kisspeptin nöronlarının artan özelliklerinin tanımlanmasına izin veren üreme anlayışında bir atılımı temsil eder ve bunlar ana modülatörlerdir.

hypothalamic-kisspeptin-neurons-as-target-for-whole-cell-patch-clamp

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

Bu protokol, zebra balığı embriyolarında Mauthner nöronlarının ve diğer retikülospinal hücrelerin elektriksel özelliklerini incelemek için bir yöntem olan tam hücre yama kelepçesi elektrofizyolojisi adı verilen bir tekniği tanımlar.

Tüm Hücre Yama Kelepçesi Elektrofizyolojisi: Nöronların Elektriksel Özelliklerini İncelemek İçin Bir Yöntem

Video, bir tam hücre yama akım kelepçesi kullanarak floresan proteini eksprese eden nöronal hücrelerin uyarılabilirliğini incelemek için bir yöntemi göstermektedir. Akım kelepçesi modunda, nöronal uyarılabilirliği gösteren aksiyon potansiyelleri üretilir.

Tüm Hücre Yama Kelepçesi Kullanarak Floresan Nöronların Uyarılabilirliğinin İncelenmesi

Video, transfekte edilmiş bir fare hipokampal beyin dilimindeki sinaptik etkileşimleri ve nöronal tepkileri incelemek için bir protokol göstermektedir. Aksiyon potansiyellerini tetiklemek için uzun menzilli duyusal nöronların aydınlatılmasını ve elde edilen uyarıcı post-sinaptik potansiyellerin tüm hücre yama-kelepçe tekniği kullanılarak kaydedilen nöronda kaydedilmesini içerir.

Fare hipokampal dilimlerindeki nöronların fotostimülasyon ve tam hücre yama kelepçesi kayıtları

Bu video, transfekte edilmiş fare hipotalamik dilimlerinden kisspeptin nöronlarındaki yanıtları ölçmek için tüm hücre yama-kelepçe tekniğinin kullanımını göstermektedir. İşlem, tüm hücre konfigürasyonunun elde edilmesini ve akım kelepçesi modu kullanılarak test hormonu tarafından indüklenen zar potansiyel değişikliklerinin kaydedilmesini içerir.

Tüm Hücre Yama Kelepçesi Kullanarak Kisspeptin Nöronları Üzerinde Test Büyüme Hormonu Etkisinin Belirlenmesi

Bu video, nöron ateşleme modellerini analiz etmek için tam hücre yama-klemp tekniklerini kullanarak omurilik dilimlerinin substantia gelatinosa (SG) nöronlarında elektrofizyolojik kayıtlar gerçekleştirme prosedürünü göstermektedir. Bu yöntem, omuriliğin SG nöronlarındaki uyaranlara verilen sinirsel tepkilerin incelenmesine izin verir.

Bir omurilik diliminin substantia jelatinosa nöronunda tam hücre yama kelepçesi kaydı

Protokol videosu, farelerde vomeronazal organın (VNO) duyusal nöronlarından elektrofizyolojik kayıt için bir tam hücre yama kelepçesi oluşturmayı açıklar. Floresan olarak işaretlenmiş duyusal nöronlara sahip bir koronal VNO dilimi, bir kayıt kurulumuna yerleştirilir. Etiketli bir nöron, kimyasal uyaranlara yanıt olarak elektrofizyolojik kayıt için tüm hücre konfigürasyonunda bir kayıt pipeti ile yamalanır.

Vomeronazal Duyusal Nöronlardan Elektrofizyolojik Kayıt için Tam Hücre Yama Kelepçesi Oluşturulması

Kortikal ağları inhibitör küçük, ama farklı kümesi tarafından kontrol edilir. Internöronlar Fonksiyonel soruşturma dolayısıyla hedeflenen kayıt ve titiz belirlenmesini gerektirir. Hücre içi etiketleme, post-hoc morfolojik ve imünositokimyasal analizler nöronu tek ya da çiftli sinaptik çiftlerinden bütün hücre kayıtları içeren bir birleşik yaklaşım aşağıda tarif edilmiştir.

Morphologically- ve nörokimyasal tanımlanan hipokampal internöronlardan gelen tüm hücre Patch-kelepçe Kayıtlar

Bu protokol tüm hücre yama-kelepçe kayıtları gerçekleştirmek için temel usul adımları açıklar. Bu teknik nöronların elektriksel davranışının çalışma sağlar ve beyin dilimleri yapıldığında, hala nispeten iyi korunmuş beyin devreleri entegre edilmiştir nöronlardan farklı nöron işlevlerinin değerlendirilmesine olanak sağlamaktadır.

Beyin Dilimleri tüm hücre Patch-kelepçe Kayıtlar

Burada, Bütün hücre yama kelepçe Elektrofizyoloji akut beyin dilimler halinde kullanarak fonksiyonel sinaptik çeşitlilik değerlendirmek için bir iletişim kuralı mevcut.

Sinaptik çeşitlilik bütün hücreli yama-kelepçe Elektrofizyoloji kullanarak değerlendirilmesi

İşte biz elektrofizyolojik kayıtlar için fare retina karanlık adapte dilim üretmek için bir prosedür açıklanmaktadır.

Patch Kelepçe bir Karanlık adapte Dilim Hazırlık Fare Retina Nöronlar Kayıtlar

Keşfedin hipotalamik kisspeptin nöronlarında tam hücre yama-kelepçe kayıtları için güvenilir bir yöntem. Bu elektrofizyolojik teknik, nöroendokrinolojide üreme sağlığı araştırmalarına önemli katkılar sağlar.

Tüm hücre yama-kelepçe kayıtları için bir hedef olarak hipotalamik kisspeptin nöronları

Daha fazla video keşfet