28 Mart 2025
CD8 T hücre biyoenerjetik değerleri Mito Stres Testi kullanılarak sorgulanabilir. Bu metodoloji, akut ve kronik metabolik programlamayı incelemek için kullanılabilir. Bu protokol, T hücresi reseptör biyolojisi ve biyoenerjetik analiz arasındaki ilişkileri incelemek için yaklaşımları açıklar.
Laboratuvarımız, lenfositler tarafından immün tolerans, immün sürveyans ve antijen reseptör sinyalini inceler. Lizofosfatidik asidin, efektör hücrelerde metabolik esnekliği azaltarak periferik toleransı teşvik ederek CD8 T hücre sitotoksisitesini bozduğunu bulduk. CD8 T Hücrelerinde mitokondriyal metabolizmayı ve enerji kapasitelerini ölçmek için teknolojiler kullanıyoruz.
Laboratuvarımız, lizofosfatidik asidin CD8 T hücrelerinin metabolik uygunluğunu modüle ettiğini ve T hücre fenotiplerinin önemli bir belirleyicisi olabileceğini göstermiştir. Burada açıklanan protokolümüz, T hücresi reseptör sinyalinin fonksiyonel metabolizmasını ve biyoenerjetik özelliklerini gerçek zamanlı olarak değerlendirir. Başlamak için, bir yardımcı plakanın her bir kuyucuğuna 200 mikrolitre damıtılmış su ekleyin.
Yardımcı plakanın üzerine bir sensör kartuşu yerleştirin ve uygun hidrasyonu sağlamak için sensör kartuşunun uçlarının suya daldırıldığından emin olun. Yardımcı plakayı sensör kartuşu ile 37 santigrat derecede karbondioksit olmayan bir inkübatörde en az 10 saat inkübe edin. Daha sonra, 50 mililitrelik konik bir tüpü 50 mililitre kalibrant çözeltisi ile doldurun ve inkübe edin.
Ertesi gün, damıtılmış suyu çıkarmak için plakayı hafifçe vurun. Plakayı 200 mikrolitre kalibrant ile yeniden sulandırın. Yardımcı plakanın üstündeki sensör kartuşunu değiştirin ve yardımcı plakayı karbondioksit olmayan inkübatöre geri yerleştirin.
Ardından, 10 milyon CD8 T-Hücresini 4,5 mililitre tam ortamda yeniden süspanse etmek için çok kanallı bir pipet kullanın. Her bir oyuka 90 mikrolitre süspansiyon pipetleyin, ardından ön işlem sırasında kuyucuk başına 90 mikrolitre belirlenen ortamdan pipetleyin. Buharlaşmayı önlemek için 180 mikrolitre tam ortamı köşe kuyularına pipetleyin.
Daha sonra CD8 T-Hücreleri ile mikroplakayı karbondioksit olmayan bir inkübatöre yerleştirin. Plaka adaptörlerini sensör kartuşuna güvenli bir şekilde yerleştirin. İnkübasyondan sonra, Oligomisin, FCCP, Rotenon ve Antimisin A'yı ilgili portlara pipetlemek için plaka adaptörleri kullanın.
Mikroplakayı, teste başlamadan bir saat önce karbondioksit olmayan inkübatöre yerleştirin. Yazılımı açın ve mikroplakayı yüklemeden 30 dakika önce cihaz analizörünü kalibre edin. Kuyuları etiketleyin ve yazılım sistemindeki enjeksiyon şemasını gözden geçirin.
Ardından kalibrasyon sırasında sensör kartuşunu cihaza yükleyin. Tahlili yazılım aracılığıyla çalıştırın. Ek enjeksiyonlar için, enjeksiyon için ek odayı kullanarak enjeksiyon şemalarını değiştirin.
Anti-CD3 ve anti-CD28'i sensör kartuşunun Bağlantı Noktası A'ya yükleyin. Oligomisin'i Port B'ye, FCCP'yi Port C'ye ve Rotenone ve Antimisin A'yı Port D'ye yükleyin.Bireysel anti-CD3 ve anti-CD28 stimülasyonu için, mililitre başına 10 mikrogramda 20 mikrolitre biyotinile anti-CD3 pipetleyin. Belirlenen kuyucuklara 20 mikrolitre anti-CD28 ve streptavidin pipetleyin.
Anti-CD3 veya CD28 stimülasyonu için, 20 mikrolitre biyotinile anti-CD3, anti-CD28 ve streptavidini belirtilen kuyucuklara birleştirin ve pipetleyin. Ortam enjekte ederek kontrol kuyularını hazırlayın. Kombine anti-CD3 ve CD-28 stimülasyonu için, bire bir boncuk / hücre oranı kullanın ve beş mikrolitre anti-CD3 CD-28 manyetik boncukları, oyuk başına 200.000 hücre içeren belirlenmiş kuyucuklara pipetleyin.
Kontrol kuyularını sadece enjeksiyon için ortamla hazırlayın. Enjeksiyon sonrası son konsantrasyonları elde etmek için her porttaki zehirleri ayarlayın. Mikroplakayı cihaza yüklemeden önce enjeksiyon şemasının güncellenmiş zaman noktalarını yansıttığından emin olun.
Yazılımı, akut TCR stimülasyon testini toplam 140 dakika boyunca çalıştıracak şekilde programlayın. Oligomisin enjeksiyonundan önce 10 zaman noktası ölçümünü içerecek şekilde şemayı değiştirin. Streptavidin ve anti-CD3 ve/veya CD-28 manyetik boncuk stimülasyonu ile biyotinile anti-CD3 ve/veya anti-CD28 kullanılarak yapılan akut TCR stimülasyonu, sadece besiyeri kontrollere kıyasla oksijen tüketim oranının ve hücre dışı asitlenme oranının artmasına neden oldu.
Anti-CD3 ve CD-28 manyetik boncuk stimülasyonu, oksijen tüketim hızı ve hücre dışı asitlenme hızında benzer artışlarla biyotinile anti-CD3 ve CD-28 enjeksiyonlarına benzer metabolik yanıtlar gösterdi.
Tam transkripti görüntüleyin ve binlerce bilimsel videoya erişin
Bu çalışma, lizofosfatidik asidin CD8 T hücresi sitotoksisitesi ve metabolik esnekliği üzerindeki etkisini incelemektedir. Metodoloji, T hücresi biyonerjetiğini ve reseptör sinyallemesini analiz etmek için Mito Stres Testi'ni içermektedir.
Naif ve efektör CD8 T hücrelerinde mitokondriyal fonksiyonun kantitatif değerlendirmesi, erken keşif aşamasında immünmetabolik hedeflerin mekanistik olarak riskten arındırılmasını sağlar. Gerçek zamanlı biyoenerjetik profil çıkarma, T hücresi fonksiyonel durumlarına ilişkin öngörüsel güveni destekleyerek hedef doğrulaması ve translasyonel sürekliliğe bilgi sağlar. Bu iş akışı, immünmetabolizmayı portföy seçimi ve immün modülasyon stratejileri için kritik bir eksen olarak konumlandırmaktadır.
Bu biyoenerjetik analiz yöntemi, erken keşif aşamasından aday bileşik belirleme ve preklinik immün modülasyon çalışmalarına kadar olan süreçleri entegre eder.