Name: Patlamaya Bağlı Koklear Yaralanmayı İncelemek için Lazer Kaynaklı Şok Dalgasının Araştırma Uygulaması (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-03-01T14:20:00.000+00:00
Duration: 5 min 44 s
Description: Öğrenin, patlamaya bağlı koklear yaralanma için lazer kaynaklı şok dalgası kullanarak hayvan modeli geliştirme yöntemini. Bu teknik, tympanic membran perforasyonu olmadan işitme kaybı mekanizmalarını incelemeye olanak tanır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

<meta charset="utf8"></head><body>Farelerde LISW Koklear Patofizyoloji Üzerine Etkilerinin Karakterizasyonu

<ol><li>Arun, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blast+exposure+causes+long-term+degeneration+of+neuronal+cytoskeletal+elements+in+the+cochlear+nucleus%3A+A+potential+mechanism+for+chronic+auditory+dysfunctions%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Neurol%22%5BJournal%5D)">Blast exposure causes long-term degeneration of neuronal cytoskeletal elements in the cochlear nucleus: A potential mechanism for chronic auditory dysfunctions.</a> Front Neurol. 12, 652190(2021).</li>
<li>Kurioka, T., Mizutari, K., Satoh, Y., Shiotani, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Correlation+of+blast-induced+tympanic+membrane+perforation+with+peripheral+cochlear+synaptopathy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Correlation of blast-induced tympanic membrane perforation with peripheral cochlear synaptopathy.</a> J Neurotrauma. 39 (13-14), 999-1009 (2022).</li>
<li>Liberman, M. C., Epstein, M. J., Cleveland, S. S., Wang, H., Maison, S. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toward+a+differential+diagnosis+of+hidden+hearing+loss+in+humans%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Toward a differential diagnosis of hidden hearing loss in humans.</a> PLoS One. 11 (9), e0162726(2016).</li>
<li>Koizumi, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Y-27632%2C+a+rock+inhibitor%2C+improved+laser-induced+shock+wave+%28lisw%29-induced+cochlear+synaptopathy+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Brain%22%5BJournal%5D)">Y-27632, a rock inhibitor, improved laser-induced shock wave (lisw)-induced cochlear synaptopathy in mice.</a> Mol Brain. 14 (1), 105(2021).</li>
<li>Parthasarathy, A., Kujawa, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synaptopathy+in+the+aging+cochlea%3A+Characterizing+early-neural+deficits+in+auditory+temporal+envelope+processing%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Synaptopathy in the aging cochlea: Characterizing early-neural deficits in auditory temporal envelope processing.</a> J Neurosci. 38 (32), 7108-7119 (2018).</li>
<li>Kurioka, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characteristics+of+laser-induced+shock+wave+injury+to+the+inner+ear+of+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Opt%22%5BJournal%5D)">Characteristics of laser-induced shock wave injury to the inner ear of rats.</a> J Biomed Opt. 19 (12), 125001(2014).</li>
<li>Paik, C. B., Pei, M., Oghalai, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Review+of+blast+noise+and+the+auditory+system%5BTitle%5D)+AND+%22Hear+Res%22%5BJournal%5D)">Review of blast noise and the auditory system.</a> Hear Res. 425, 108459(2022).</li>
<li>Bryden, D. W., Tilghman, J. I., Hinds, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blast-related+traumatic+brain+injury%3A+Current+concepts+and+research+considerations%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Blast-related traumatic brain injury: Current concepts and research considerations.</a> J Exp Neurosci. 13, 1179069519872213(2019).</li>
<li>Ma, X., Aravind, A., Pfister, B. J., Chandra, N., Haorah, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+traumatic+brain+injury+and+assessment+of+injury+severity%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Animal models of traumatic brain injury and assessment of injury severity.</a> Mol Neurobiol. 56 (8), 5332-5345 (2019).</li>
<li>Shao, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Central+and+peripheral+auditory+abnormalities+in+chinchilla+animal+model+of+blast-injury%5BTitle%5D)+AND+%22Hear+Res%22%5BJournal%5D)">Central and peripheral auditory abnormalities in chinchilla animal model of blast-injury.</a> Hear Res. 407, 108273(2021).</li>
<li>Ou, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Traumatic+brain+injury+induced+by+exposure+to+blast+overpressure+via+ear+canal%5BTitle%5D)+AND+%22Neural+Regen+Res%22%5BJournal%5D)">Traumatic brain injury induced by exposure to blast overpressure via ear canal.</a> Neural Regen Res. 17 (1), 115-121 (2022).</li>
<li>Cho, S. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+hearing+loss+after+blast+injury+to+the+ear%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of hearing loss after blast injury to the ear.</a> PLoS One. 8 (7), e67618(2013).</li>
<li>Kurioka, T., Mizutari, K., Satoh, Y., Kobayashi, Y., Shiotani, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blast-induced+central+auditory+neurodegeneration+affects+tinnitus+development+regardless+of+peripheral+cochlear+damage%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Blast-induced central auditory neurodegeneration affects tinnitus development regardless of peripheral cochlear damage.</a> J Neurotrauma. , (2023).</li>
<li>Niwa, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathophysiology+of+the+inner+ear+after+blast+injury+caused+by+laser-induced+shock+wave%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Pathophysiology of the inner ear after blast injury caused by laser-induced shock wave.</a> Sci Rep. 6, 31754(2016).</li>
<li>Kimura, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+shock+wave+power+spectrum+on+the+inner+ear+pathophysiology+in+blast-induced+hearing+loss%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Effect of shock wave power spectrum on the inner ear pathophysiology in blast-induced hearing loss.</a> Sci Rep. 11 (1), 14704(2021).</li>
<li>Satoh, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pulmonary+blast+injury+in+mice%3A+A+novel+model+for+studying+blast+injury+in+the+laboratory+using+laser-induced+stress+waves%5BTitle%5D)+AND+%22Lasers+Surg+Med%22%5BJournal%5D)">Pulmonary blast injury in mice: A novel model for studying blast injury in the laboratory using laser-induced stress waves.</a> Lasers Surg Med. 42 (4), 313-318 (2010).</li>
<li>Kawauchi, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+isolated+and+combined+exposure+of+the+brain+and+lungs+to+a+laser-induced+shock+wave%28s%29+on+physiological+and+neurological+responses+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Effects of isolated and combined exposure of the brain and lungs to a laser-induced shock wave(s) on physiological and neurological responses in rats.</a> J Neurotrauma. 39 (21-22), 1533-1546 (2022).</li>
<li>Cassinotti, L. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cochlear+neurotrophin-3+overexpression+at+mid-life+prevents+age-related+inner+hair+cell+synaptopathy+and+slows+age-related+hearing+loss%5BTitle%5D)+AND+%22Aging+Cell%22%5BJournal%5D)">Cochlear neurotrophin-3 overexpression at mid-life prevents age-related inner hair cell synaptopathy and slows age-related hearing loss.</a> Aging Cell. 21 (10), e13708(2022).</li>
<li>Kujawa, S. G., Liberman, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adding+insult+to+injury%3A+Cochlear+nerve+degeneration+after+%26%2334%3Btemporary%26%2334%3B+noise-induced+hearing+loss%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Adding insult to injury: Cochlear nerve degeneration after &#34;temporary&#34; noise-induced hearing loss.</a> J Neurosci. 29 (45), 14077-14085 (2009).</li>
<li>Hickman, T. T., Smalt, C., Bobrow, J., Quatieri, T., Liberman, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blast-induced+cochlear+synaptopathy+in+chinchillas%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Blast-induced cochlear synaptopathy in chinchillas.</a> Sci Rep. 8 (1), 10740(2018).</li>
<li>Jiang, S., Sanders, S., Gan, R. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hearing+protection+and+damage+mitigation+in+chinchillas+exposed+to+repeated+low-intensity+blasts%5BTitle%5D)+AND+%22Hear+Res%22%5BJournal%5D)">Hearing protection and damage mitigation in chinchillas exposed to repeated low-intensity blasts.</a> Hear Res. 429, 108703(2023).</li>
<li>Nakagawa, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+primary+blast-induced+traumatic+brain+injury%3A+Insights+from+shock-wave+research%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of primary blast-induced traumatic brain injury: Insights from shock-wave research.</a> J Neurotrauma. 28 (6), 1101-1119 (2011).</li>
<li>Wu, P. Z., Liberman, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Age-related+stereocilia+pathology+in+the+human+cochlea%5BTitle%5D)+AND+%22Hear+Res%22%5BJournal%5D)">Age-related stereocilia pathology in the human cochlea.</a> Hear Res. 422, 108551(2022).</li>
<li>Kurabi, A., Keithley, E. M., Housley, G. D., Ryan, A. F., Wong, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+mechanisms+of+noise-induced+hearing+loss%5BTitle%5D)+AND+%22Hear+Res%22%5BJournal%5D)">Cellular mechanisms of noise-induced hearing loss.</a> Hear Res. 349, 129-137 (2017).</li>
<li>Kim, J., Xia, A., Grillet, N., Applegate, B. E., Oghalai, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Osmotic+stabilization+prevents+cochlear+synaptopathy+after+blast+trauma%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Osmotic stabilization prevents cochlear synaptopathy after blast trauma.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 115 (21), E4853-E4860 (2018).</li>
<li>Hu, N., Rutherford, M. A., Green, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protection+of+cochlear+synapses+from+noise-induced+excitotoxic+trauma+by+blockade+of+ca%282%2B%29-permeable+ampa+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Protection of cochlear synapses from noise-induced excitotoxic trauma by blockade of ca(2+)-permeable ampa receptors.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 117 (7), 3828-3838 (2020).</li>
<li>Wan, G., Gomez-Casati, M. E., Gigliello, A. R., Liberman, M. C., Corfas, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurotrophin-3+regulates+ribbon+synapse+density+in+the+cochlea+and+induces+synapse+regeneration+after+acoustic+trauma%5BTitle%5D)+AND+%22Elife%22%5BJournal%5D)">Neurotrophin-3 regulates ribbon synapse density in the cochlea and induces synapse regeneration after acoustic trauma.</a> Elife. 3, e03564(2014).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>532 nm Q-anahtarlı Nd:YAG lazer&nbsp;</td><td>Quantel</td><td>Brilliant b</td><td></td></tr><tr><td>ABR tepe analiz yazılımı</td><td>Kütle Göz ve Kulak</td><td>N/A</td><td>EPL Koklear Fonksiyon Test Paketi</td></tr><tr><td>Akrilik reçine kaynak yapıştırıcısı ve nbsp;</td><td>Acrysunday Co., Ltd</td><td>N / A</td><td></td></tr><tr><td>konfokal floresan mikroskobu</td><td>Leica</td><td>TCS SP8</td><td></td></tr><tr><td>kriyoseksiyon bileşiği</td><td>Sakura</td><td>Tissue-Tek OCT</td><td></td></tr><tr><td>CtBP2 antikoru</td><td>BD İletimi</td> <td># 612044</td><td></td></tr><tr><td>Dielektrik çok katmanlı aynalar</td><td>SIGMAKOKI CO., LTD</td><td>TFMHP-50C08-532</td><td>M1-M3</td></tr><tr><td>Dijital osiloskop</td><td>Tektronix</td><td>DPO4104B</td><td></td></tr><tr><td>Kulaklık</td><td>CUI</td><td>CDMG15008-03A</td><td></td></tr><tr><td>Hidrofon</td><td>RP akustiği e.K.</td><td></td><td></td>FOPH2000</tr><tr><td>Image J yazılım eklentisi</td><td>NIH</td><td>ölçüm hattı</td><td>https://myfiles.meei.harvard.edu/xythoswfs/webui/_xy-e693768_1-t_wC4oKeBD</td></tr><tr><td>Işık mikroskobu</td><td>Keyence Corporation</td><td>BZ-X700</td><td></td></tr><tr><td>Miyozin 7A antikoru</td><td>Proteus Biosciences</td><td>#25&ndash; 6790&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Nörofilament antikor</td><td>Sigma</td><td>#AB5539</td><td></td></tr><tr><td>Plano-dışbükey lens</td><td>SIGMAKOKI CO.,LTD</td><td>SLSQ-30-200PM</td><td></td></tr><tr><td>Prizma yazılımı</td><td>GraphPad</td><td>N/A</td><td>ver.8.2.1</td></tr><tr><td>Taramalı elektron mikroskobu</td><td>JEOL Ltd</td><td>JSM-6340F</td><td></td></tr><tr><td>Küçük dijital endoskop</td><td>AVS Co., Ltd,</td><td>AE-C1</td><td></td></tr><tr><td>Ultrasonik jöle</td><td>Hitachi Aloka Medical</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Değişken zayıflatıcı</td><td>Showa Optronics Co.</td><td>Yok</td><td>Şu anda mevcut halefi: KYOCERA SOC Corporation, RWH-532HP II</td></tr><tr><td>Suda çözünür kapsülleyici ve nbsp;</td><td>Dako</td><td>#S1964</td><td></td></tr></tbody></table>

patlamaya bağlı koklear yaralanmayı İncelemek için lazer kaynaklı Şok dalgasının araştırma uygulaması

Research Application of Laser-Induced Shock Wave for Studying Blast-Induced Cochlear Injury

LISW dalga formu LISW basınç dalga formunun tekrarlanabilirliği 2.0 J/cm2'de 5x olarak aşağıdaki gibi ölçüldü. Dalga formları genellikle benzer ve kararlıydı ve zaman genişliği, tepe basıncı ve 0.43±0.4 μs, 92.1 ± 6.8 MPa ve 14.1 ± 1.9 Pa (medyan ± SD) darbe ile keskin bir artış gösterdi, bu da SW özelliklerine karşılık gelir (Şekil 1B). LISW'ler hızlı yükselme süresi, yüksek tepe basıncı, kısa süre ve pozitif basınç baskınlığı ile karakterize edilir. Biyolojik dokuya uygulandığında, hedef jöle yoluyla doğrudan canlı doku üzerine yerleştirilir ve SW'nin dokuya uygulanan ölçülen SW ile hemen hemen aynı özelliklere sahip olduğu düşünülebilir. LISW'ye maruz kaldıktan sonra, TMP oluşumu küçük bir dijital endoskop kullanılarak değerlendirildi. LISW enerji grubundaki farelerin hiçbiri maruziyetten sonra TMP sergilemedi (Şekil 1C).
İşitsel değerlendirme İşitsel fonksiyonu belirlemek için ABR muayenesi yapıldı. ABR, işitsel yoldaki sesle uyarılan potansiyelin bir ölçümüdür ve ABR P1, koklear sinirde birikmiş nöral aktiviteyi temsil eder. LISW maruziyetinden bir gün sonra, maruz kalan kulak, farklı LISW grupları arasında ABR eşik kaymasında önemli bir fark gösterdi (iki yönlü ANOVA, p &lt; 0.0001; Şekil 2A). ABR eşik kaymasındaki bu artış, 2.25 ve 2.5 J /cm2 gruplarında LISW maruziyetinden sonra 1 aya kadar devam etti (iki yönlü ANOVA, 2.25 J / cm2, p &lt; 0.0001; 2.5 J / cm2, p &lt; 0.0001). Özellikle, yüksek frekanslı bölge, ABR eşik kaymasında kayda değer bir artış sergiledi. Bununla birlikte, ABR eşikleri, 2.0 J grubundaki ön ışınlamadan önemli ölçüde farklı olmayan bir seviyeye geri döndü (iki yönlü ANOVA, 2.0 J / cm2, p = 0.76), bu da eşik yükselmesinin enerjiye bağlı olduğunu gösterdi. ABR P1 genlikleri ile ilgili olarak, LISW ile ışınlanmış tüm gruplar, LISW maruziyetinden 1 gün ve 1 ay sonra tüm frekanslarda ABR P1 genliklerinde önemli bir azalma gösterdi (iki yönlü ANOVA, p &lt; 0.0001; Şekil 2B). Maruz kalmamış kulak (kontrol; sol kulak), LISW maruziyetini takiben ABR işitme eşiğinde gözle görülür bir değişiklik göstermedi (veriler gösterilmemiştir).
HC'lerin ve SGN'nin Sağkalımı LISW'ye maruz kalan kulakların mikroskobik gözlemi, LISW maruziyetini takiben koklealarda kırık ve çıkık, yuvarlak pencere zarı yırtılması veya intrakoklear kanama gibi mekanik bir hasar ortaya çıkarmadı (veriler gösterilmemiştir), bu da önceki bulgularla tutarlıdır 6,14.
Myo7A ile HC'lerin, CtBP2 ile sinaptik şeritlerin ve NF ile koklear sinirin floresan immün boyaması Şekil 3A'da gösterilmiştir. Grupların hiçbirinde HC veya sinir liflerinin kaybı gibi ciddi koklear hasar gözlenmedi. Bununla birlikte, Myo7A pozitif OHC sağkalımının kantitatif değerlendirmesi gruplar arasında anlamlı farklılık gösterdi (iki yönlü ANOVA, p = 0.002; Şekil 3B). 2.5 J /cm2 grubu, özellikle yüksek frekans bölgesinde, kontrol grubuna göre önemli ölçüde daha düşük OHC sağkalım oranları gösterdi (iki yönlü ANOVA, 2.5 J / cm2, p = 0.0002). Bununla birlikte, IHC'lerin sağkalım oranları gruplar arasında karşılaştırılabilirdi, bu da OHC'lerin yüksek enerjili LISW'ye karşı savunmasız olduğunu gösteriyor (iki yönlü ANOVA, p = 0.76). Sinaptik şerit sağkalımının kantitatif bir değerlendirmesi Şekil 3C'de gösterilmiştir. Sinaptik ribonlar hem 2.25 hem de 2.5 J /cm2 gruplarında kontrole kıyasla önemli ölçüde azaldı (iki yönlü ANOVA, 2.25 J / cm2, p &lt; 0.0001; 2.5 J / cm2, p &lt; 0.0001) ve daha yüksek frekanslar, ABR eşik kayması ve OHC sağkalımına benzer şekilde daha güçlü bir azalma eğilimi sergiledi.
Daha sonra, Şekil 3D'de gösterildiği gibi SGN yoğunluğu değerlendirildi. Gruplar arasında SGN yoğunluğu açısından anlamlı bir fark vardı (iki yönlü ANOVA, p = 0.76) ve 2.5 J / cm2 grubu, kontrol gruplarına kıyasla anlamlı derecede düşük SGN sağkalım oranları gösterdi (iki yönlü ANOVA, 2.5 J / cm2, p = 0.007). Bununla birlikte, 2.0 ve 2.25 J/cm2 grupları, kontrollere kıyasla karşılaştırılabilir SGN sağkalımı gösterdi. Bu sonuç, koklear dejenerasyon ve işitme disfonksiyonunun şiddetinin, ABR ve HC sağkalım sonuçlarıyla tutarlı olan LISW enerji maruziyetine bağlı olduğunu göstermektedir.
Stereosiliyer demeti 20 kHz'in üzerindeki frekanslarda hem 2.25 hem de 2.5 J /cm2 gruplarında ABR eşiğinde yaklaşık 30 dB olan kayda değer bir artış gözlemledik ve bu da LISW maruziyetini takiben 1 aya kadar devam etti ( Şekil 2A'da gösterildiği gibi). Bununla birlikte, gözlemlediğimiz 30 dB'lik eşik kayması, yalnızca OHC'lerin kaybına, koklear sinapsların dejenerasyonuna veya azalmış SGC sayısına atfedilemez (Şekil 3). Önceki bir çalışma, sinaptik ribbon sayısı P oranında azaldığında ABR eşik kaymalarının minimum olduğunu göstermiştir19. Bu nedenle, ABR eşik yükselmesinin nedenini araştırmak için SEM yaptık. 2.5 J /cm2'lik bir yoğunlukta LISW maruziyetini takiben, özellikle yüksek frekanslı bölgelerde bazı stereosiliyer OHC demetlerinin bozulduğu görülmüştür (Şekil 4A), bu da LISW maruziyetini takiben artmış ABR eşiğinin nedenlerinden biri olabilir. Stereosiliyer bozulmanın kantitatif değerlendirmesi, bozulma oranının enerjiye bağlı bir şekilde daha yüksek frekans bölgesinde daha yüksek olma eğiliminde olduğunu ortaya koymuştur (Şekil 4B).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66396/66396fig01.jpg"> Şekil 1: LISW'nin deneysel ayarları ve basınç profili. (A) Hayvanlarda LISW oluşturmak için deney düzeneği. (B) 2.0 J/cm2 olarak ayarlanan LISW basınç dalga formlarının özellikleri. (C) Kulak zarının temsili görüntüleri. LISW'ye maruz kalan kulakların hiçbirinde TMP'ler gözlenmedi. Referans olarak, temsili patlama kaynaklı TMP (sarı ok uçları) bir kumlama tüpü kullanılarak gösterilmiştir. Kısaltmalar: LISW = lazer kaynaklı şok dalgası; PET = polietilen tereftalat; TMP = timpanik membran perforasyonu; YAG = itriyum alüminyum granat; SHG = ikinci harmonik üretimi. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66396/66396fig01large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66396/66396fig02.jpg"> Şekil 2: LISW'ye maruz kaldıktan sonra ABR sonuçları. (A) LISW'ye maruz kaldıktan 1 gün sonra tüm gruplarda önemli ABR eşik kaymaları gözlenmiştir. 2.25 ve 2.5 J /cm2 gruplarındaki ABR eşik kaymaları, LISW'ye maruz kaldıktan sonra 1 aya kadar önemli ölçüde yüksek kalmıştır. (B) LISW'ye maruz kaldıktan 1 gün ve 1 ay sonra ABR P1 genliği tüm gruplarda önemli ölçüde azalmıştır. Yıldız işaretleri, maruziyet öncesi değerlere kıyasla gruplar arasında önemli farklılıklar göstermektedir (**p &lt; 0.001, ****p &lt; 0.0001). Hata çubukları, ortalamanın standart hatasını gösterir. Kısaltmalar: ABR = işitsel beyin sapı tepkisi; LISW = lazer kaynaklı şok dalgası; P1 = tepe 1; SPL = ses basıncı seviyesi. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66396/66396fig02large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66396/66396fig03.jpg"> Şekil 3: LISW'ye maruz kaldıktan sonra koklear patoloji. (A) LISW'ye maruz kaldıktan sonra Myo7A (mavi), CtBP2 (kırmızı) ve NF (yeşil) ile boyanmış 20 kHz bölgesindeki Corti organının konfokal floresan görüntüleri. (B) Hayatta kalan HC'lerin ortalama yüzdeleri sitokokleogramlarda gösterilir. Kantitatif değerlendirme, 2.5 J /cm2'de önemli bir OHC kaybı olduğunu ortaya koydu, ancak gruplar arasında IHC sağkalımı açısından anlamlı bir fark yoktu. (C) Presinaptik şeritlerin maruziyet öncesi değerlere kıyasla hayatta kalma oranı 2.25 ve 2.5 J /cm2 gruplarında önemli ölçüde azalmıştır. (D) LISW'ye maruz kaldıktan 1 ay sonra tüm gruplardaki SGN'lerin temsili fotomikrografları. SGN sağkalım oranı 2.5 J /cm2'de önemli ölçüde azaldı. Yıldız işaretleri, maruziyet öncesi değerlere kıyasla önemli farklılıklar gösterir (**p &lt; 0.001, ****p &lt; 0.0001). Hata çubukları, ortalamanın standart hatasını gösterir. Ölçek çubukları = 5 μm (A), 100 μm (D). Kısaltmalar: LISW = lazer kaynaklı şok dalgası; IHC = iç saç hücresi; NF = nörofilament; OHC = dış saç hücresi; SGN = spiral ganglion nöronu. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66396/66396fig03large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66396/66396fig04.jpg"> Şekil 4: OHC'lerin yüzey yapıları. (A) LISW'ye maruz kaldıktan bir ay sonra Corti organının 16 kHz ve 24 kHz bölgelerinde OHC stereocilia'nın temsili taramalı elektron mikroskobu görüntüleri. 2.5 J/cm2 (24 kHz alan) grubundaki kutulu alanın büyütülmüş görüntülerinde stereosiliyer bozulma görülür. Ölçek çubuğu -= 2 μm. (B) Stereosiliyer bozulma oranı, LISW aşırı basıncındaki artışla daha yüksekti. Kısaltmalar: LISW = lazer kaynaklı şok dalgası; OHC = dış saç hücreleri. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66396/66396fig04large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>

Patlamaya Bağlı Koklear Yaralanmayı İncelemek için Lazer Kaynaklı Şok Dalgasının Araştırma Uygulaması

The ear is the organ most susceptible to explosion overpressure, and cochlear injuries frequently occur after blast exposure. Blast exposure can lead to ...

research-application-laser-induced-shock-wave-for-studying-blast

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

Bu video, bir lazer kullanarak sıçan motor korteksinde hassas, kontrollü beyin hasarı oluşturmak için bir prosedürü göstermektedir.

Bir Sıçan Modelinde Lazer Kaynaklı Beyin Hasarı Gerçekleştirme

Şok dalgaları günümüzde de kendi rejeneratif etkileri bilinmektedir. Bu nedenle in vitro deneyler, giderek artan ilgi çekmektedir. Bu nedenle, böylece rahatsız edici fiziksel etkilerini önlemek vivo koşullarda taklit bize sağlayan in vitro şok dalgası çalışmalarda (IVSWT) için bir model geliştirmiştir.

Kültürler Hücre Şok Dalga Uygulama

Koklear implantlar (CI) işitme siniri doğrudan elektriksel stimülasyon ile işitme sağlarlar. Bununla birlikte, kötü sıklığı ve yoğunluğu çözünürlüğü CI ile işitme kalitesini sınırlar. Burada işitsel araştırma ve gelecekteki CI'ler geliştirmek için alternatif bir strateji olarak farelerde işitme sinirinin Optogenetic uyarılmasını açıklamaktadır.

İşitsel Sinir optogenetic uyarılması

Hayvan modellerinin koklealarına ototoksik ajanlar eklemek için çeşitli yöntemler mevcuttur. Sunulan, ototoksik ajanların yuvarlak pencere nişine verilmesi için cerrahi bir protokoldür. Prosedür güvenilirdir, hedefe yönelik intra-koklear lezyonlar oluşturur ve mikromimaride mekanik hasarı önler. Koklear kendi kendine onarım/rejenerasyon muayenesi mümkündür.

Koklear Hücre Dejenerasyonu Inducing için hızlı ve Güvenilir Teknik: Ototoksik Ajan Teslimat için Fare Yuvarlak pencere Yaklaşımı

Nasıl hücreleri tarafından şok dalgalarıyla modüle anlama gelen patlama olayları tetikleyen yaralanmaları arkasında mekanizmaları belirlemenize yardımcı olabilir. Bu iletişim kuralı özel olarak oluşturulmuş şok tüpü ekipman hücre monolayers için şok dalgaları baskıların bir mesafeden uygulamak ve hücre canlılığı üzerinde sonraki etkileri tanımlamak için kullanır.

Değerlendirirken birincil patlama efektleri Vitro

Burada lazer Doppler perfüzyon görüntüleme (LDPI) bir arada sunmak ve lazer Doppler perfüzyon (LDPM) spinal ölçmek için izleme kordon yerel kan akışı ve oksijen doygunluğu (SO2), omurilik tanıtmak için standart bir prosedür yanı sıra sıçan travmada.

Lazer Doppler görüntüleme ve izleme sıçan Spinal kord mikro analiz etmek için kullanma

Bu kağıt birincil patlama travmatik beyin hasarı roman modeli açıklar. Sıkıştırılmış hava tahrikli şok tüpü vitro fare hipokampal dilim kültürler için tek bir şok dalgası ortaya çıkarmak için kullanılır. Bu tekrarlanabilir beyin doku hasarı ile yüksek üretilen iş üreten bir basit ve hızlı bir protokoldür.

Patlama travmatik beyin hasarı roman Vitro modeli

Burada kornea endotel hücrelerinin (MSK) neodimyum kullanarak Descemet zarından (DM) ayrılması için bir protokol sunuyoruz:YAG (Nd:YAG) lazer, büllöz keratopati (BK) için eksvivo hastalık modeli olarak.

Kornea Endotel Hücre Kaybının Noninvaziv, Lazer Destekli Deneysel Modelinin Geliştirilmesi

Burada sunulan protokol beyin hasarı bir kemirgen modeli oluşturmak için bir teknik gösterir. Burada açıklanan yöntem lazer ışınlama kullanır ve motor korteks hedefler.

Farelerin Motor Korteksinde LazerE Bağlı Beyin Hasarı

Burada, hafif ila orta dereceli travmatik beyin hasarının nörobiyolojik ve patofizyolojik etkilerini araştırmak için kemirgenler için bir patlama dalgası modeli protokolü sunuyoruz. Patlamaya bağlı hafif ila orta dereceli travmatik beyin hasarının güvenilir ve tekrarlanabilir bir şekilde üretilmesini sağlayan basınç sensörleriyle donatılmış, gazla çalışan, tezgah üstü bir kurulum kurduk.

Kemirgenlerde Kapalı Başlı Hafif Travmatik Beyin Hasarının Preklinik Değerlendirmesi için Düşük Yoğunluklu Patlama Dalgası Modeli

Öğrenin, patlamaya bağlı koklear yaralanma için lazer kaynaklı şok dalgası kullanarak hayvan modeli geliştirme yöntemini. Bu teknik, tympanic membran perforasyonu olmadan işitme kaybı mekanizmalarını incelemeye olanak tanır.

Patlamaya Bağlı Koklear Yaralanmayı İncelemek için Lazer Kaynaklı Şok Dalgasının Araştırma Uygulaması

Daha fazla video keşfet