27 Aralık 2024
Burada, temel ışığa duyarlı rodopsin kromoforu 11-cis-retinal'i oluşturmak için sistemik A vitamini kaynağı bağlamında, hem oküler hem de sistemik dokuda görme fonksiyonunun kolaylaştırılmasında rol oynayan kritik retinoidleri tespit etmek ve miktarını belirlemek için normal fazlı, yüksek performanslı bir sıvı kromatografisi yöntemi açıklanmaktadır.
Laboratuvarımız iki kritik A vitamini taşıyıcısı olan STRA6 ve Rbpr2'yi araştırıyor. Bu zar proteinleri, kandaki A vitamininin göz ve karaciğer gibi dokulara alımını kolaylaştırır. HPLC sayesinde, transgenik farelerde sistemik bir A vitamini profili oluşturarak bu taşıyıcıların fizyolojik fonksiyonlarını araştırabiliriz.
Alanımızda kullanılan bir diğer teknik, bir proteinin kendi beğenisine göre bağlanma afinitelerini ve kinetiğini inceleyen Yüzey Plazmon Rezonansı, SPR'dir ve RBP4 retinol bağlanma kompleksi olan STRA6 veya Rbpr2 arasındaki bağlanmayı araştırmak için SPR uyguladık. Bu yöntemin mevcut zorluklarından biri numune verimidir. Solvent buharlaştırma adımı, bu protokol içinde önemli bir darboğazdır ve gelecekteki araştırmacılar, vakumlu buharlaştırmaya kıyasla çok daha yüksek bir verime sahip olan nitrojen üfleme buharlaştırma gibi kurutma yöntemlerini denemelidir.
Rbpr2'nin karaciğerdeki fonksiyonu ile sistemik A vitamini homeostazının sürdürülmesinde önemli bir kolaylaştırıcı olarak rolünü belirledik. Transgenik farelerde Rbpr2 ekspresyonunun bozulması, HPLC ile ölçülen tüm incelenen sistemik dokularda A vitamini seviyelerinde önemli bir bozulmaya yol açmıştır. HPLC bazlı A vitamini tespitindeki diğer protokollerin çoğu, ters yüz yöntemlerini kullanır ve tipik olarak retinoid izomerlerinin ayrı ayrı çözülmesine izin vermez.
Normal yüz protokolümüz, hem retinaldehit hem de retinal izomerlerin çözünürlüğüne izin vererek, fototransdüksiyon kaskadında A vitamini fotoizomerizasyonunun önemi göz önüne alındığında kritik olan ayrıntılı bir A vitamini profili oluşturmamıza olanak tanır.
Bu çalışma, A vitamini taşıyıcıları STRA6 ve RBPR2'nin, A vitamininin oküler ve sistemik dokulara alımındaki rolünü araştırmaktadır. Yüksek performanslı sıvı kromatografisi (HPLC) kullanılarak, bu taşıyıcıların fizyolojik fonksiyonları transgenik farelerde incelenmiştir.
Quantitative profiling of vitamin A metabolites in murine tissues using HPLC enables precise assessment of systemic and ocular vitamin A supply, directly informing target validation for GPCR-mediated visual pathways. This analytical capability supports mechanistic de-risking at the discovery stage, particularly for transporter biology and metabolic flux in preclinical models. Reliable metabolite quantification underpins predictive confidence for translational research in vision and metabolic disorders.
This HPLC-based method integrates from early discovery through preclinical research, supporting lead identification and mechanistic studies of vitamin A transporters.