5 Aralık 2025
Bu protokol, aynı örnekte bitki iyon sızıntısı, peroksidaz aktivitesi ve kallos üretimini değerlendirmek için yüksek verimli bir yaklaşımı tanımlar.
Laboratuvarım, genetik kullanarak fok bitkilerinin direncini artırmak amacıyla bitki mikrobları etkileşimleri üzerinde çalışıyor. Son gelişmeler, mikrobiyal ikincil metabolitlerin bitki hassasiyetini veya direncini teşvik etmede kilit bir rol oynadığını göstermiştir. Başlamak için, her bitkiden üç yaprak diski toplamak için dört milimetre çapında mantar deliği kullanın, orta damardan kaçının.
Keskin uçla dokunun macerasyonunu önlemek için bir bükülme hareketi uygulayın. 96 kuyruklu bir plakanın bireysel kuyruklarına istenen konsantrasyonda ikincil metabolitler veya çözücü tedavileri ekleyerek nihai hacmi 200 mikrolitre ulaşın. Yaprak disklerini nazikçe kuyulara yerleştirin.
Kapağı çıkarılmış 96 kuyu plakayı, vakum nozulu bulunan bir çan kavanozuna yerleştirin. Sonra, vakum hortumunu çan kavanozunun nozuluna takın ve vakum basıncını 10 saniye boyunca inç kare başına 9,8 pound olarak açın. Vakumu kapatın ve 10 saniye boyunca yavaşça basıncı bırakın, ardından vakum döngüsünü tekrarlayın.
Şimdi kapağı tekrar 96 kuyu tabakta yerleştirin ve bir ışık kaynağı altında yörünge sallayıcısında kuluçka yapın. Dört saat boyunca sallayıcının 23 santimetre üzerinde konumlanın. Probu ultra saf suyla yıkayın ve tüy içermeyen bir mendil ile hafifçe sökün ve kurusun.
Gelecekte referans almak için suyun iletkenlik ölçümünü not edin. İşlemden dört ila altı saat sonra, probu yaprak diskinin çevresindeki sıvıya daldırarak bireysel kuyulardan iletkenliği ölçüp kaydedin. Probun tamamen suya battığından emin olmak için plakayı 45 derece açıyla tutun.
Durulama sonrası prob daha önce gösterilir, ara sıra suyun iletkenliği test edilir ve prob stabilitesi doğrulanır. Sonra, 96 kuyu plakasının üzerine plastik bir tavan filmi yerleştirin ve gece boyunca kuluçka için yörünge sallayıcısına geri gönderin. Peroksidaz substratını hazırlamak için, 40 mililitre distile steril suyu bir kabada karıştırma çubuğu ile 70 derece Celsius'a ısıtın.
50 miligram beş amino salisilik asit ısıtılmış suda çözün. Sonra, toplam hacmi 50 mililitre çıkarmak için ek su ekleyin ve sodyum hidroksit kullanarak pH seviyesini altıya ayarlayın. Işığa duyarlı çözeltiyi kapı alüminyum folyo ile kaplayarak koruyun.
50 mililitrelik kehribar konik bir tüpte, ultrasaf suda %1 hidrojen peroksit çözeltisi hazırlayın. Sonra, analiz ortamı oluşturmak için gereken beş amino salisilik asit çözeltisi mililitresine 10 mikrolitre %1 hidrojen peroksit çözeltisi ekleyin. İstenilen zaman noktasında, beş kez karıştırın ve ardından örnek plakasının her kuyudan 50 mikrolitre yeni bir plakaya aktarın.
50 mikrolitre test ortamı ekleyin ve oda sıcaklığında üç dakika kuluçka yapın. Reaksiyonu durdurmak için, her kuyuya 20 mikrolitre normal sodyum hidroksit ekleyin ve her kuyunun emilimini 595 nanometrede ölçmek için bir plaka okuyucu kullanın. Su ve %0,1 dimetil sülfoksit, benzer iyon sızıntısı ve peroksidaz aktivite seviyeleri üreterek kullanımlarını negatif kontrol olarak doğruladı.
Bir mikromolar FLG 22 ile yapılan tedavi, iyon sızıntısını, peroksidaz aktivitesini ve kallos üretimini anlamlı şekilde tetikledi ve bunun sağlam bir pozitif kontrol olduğunu doğruladı. Gramillin tedavisi önemli iyon sızıntısı ve kallos üretimi yarattı, ancak peroksidaz aktivitesi üzerinde değişken etkiler yarattı. 10 mikromolar noktada surfaktin hem peroksidaz aktivitesini hem kallos üretimini indükte ederken, iyon sızıntısı değişmemiştir.
T-2 toksin tedavisi, peroksidaz aktivitesini bastırırken, kallos üretimini tetikledi ve iyon sızıntısını etkilemedi. Hidro testimiz, araştırmacıların aynı örnekte üç farklı stres yanıtı örneklemesini sağlar ve bu da araştırmacıların sınırlı miktarda mikrobiyal ikincil metabolitlerden en iyi şekilde yararlanmasını sağlar. Aynı plakadaki 96 örneği karşılaştırma yeteneği, araştırmacıların bitki mikrobları etkileşimlerini anlamak için popülasyon genetiği düzeyinde taramalar veya sistem biyolojisi yapmasına olanak tanır.
Araştırmalarım, tahıl ürünlerinde hastalık direnci geliştirmek için kullanabileceğimiz bitki genlerini tanımlamaya ve bitki mikrobları etkileşimlerine odaklanmaya devam edecek.
Bu protokol, aynı örnek üzerinde bitki iyon sızıntısını, peroksidaz aktivitesini ve kalloz üretimini değerlendirmek için yüksek kapasiteli bir yaklaşımı tanımlamaktadır. Bu yöntem, araştırmacıların birden fazla stres yanıtını eş zamanlı olarak değerlendirmesine olanak tanıyarak, mikrobiyal sekonder metabolitleri içeren deneylerin verimliliğini artırır.
Bitki stres tepkilerinin mikrobiyal sekonder metabolitlere karşı yüksek verimli nicelleştirilmesi, bitki-mikrop etkileşimlerinin ölçekli bir şekilde sistematik olarak sorgulanmasına olanak tanır. Bu çoklu yaklaşım, genotipler ve uygulamalar arasında hızlı karşılaştırmalı analizi destekleyerek bitki koruma Ar-Ge çalışmalarındaki erken keşif ve hedef doğrulamalarına bilgi sağlar. Yöntemin birden fazla stres markerını paralel olarak çözümleme yeteneği, sonraki biyoprotektan ve özellik geliştirme süreçleri için öngörü güvenilirliğini artırır.
Bu yüksek verimli analiz, ürün özelliklerinin ve biyoprotektanların geliştirilmesine yönelik keşiften preklinik aşamaya kadar uzanan sürekliliğe entegre edilmiştir.