Klonlama için Nükleer Donör olarak Kryokonserif At Sperminden Somatik Hücreleri İzole Etmek İçin Basit Bir Mikroaspirasyon Tekniği
December 19th, 2025
Bu protokol, kriyokonsertif at menisinden canlı somatik hücreleri (SC'ler) izole etmek için basit bir mikroaspirasyon tekniği sunar. Geleneksel yaklaşımların aksine, bu teknik uzun in vitro kültürlerden kaçınır ve sperm kontaminasyonunu engeller; böylece somatik hücre klonlamasında hemen kullanılmasını sağlar.
Kriyokonsertif at menisinden elde edilen somatik hücrelerin, yüksek genetik değere sahip bireyleri kurtarmak için faydalı olabileceğini göstermeyi hedefliyoruz. Mevcut zorlukumuz, sağlam diploid DNA'ya sahip somatik hücreleri nükleer donör olarak seçebilmek. Başlamak için, sıvı azot tankından at spermi pipetlerini çıkarın.
Onları 10 saniye havaya maruz bırakın ve 37 derece Celsius'ta su banyosunda 30 saniye eritin. Eritilmiş meniden 250 mikrolitre bir numune alın. Bir mililitre takviyeli DMEM-F12 ortamıyla seyreltin.
Sperm karışımını 37 derece Celsius'ta 30 dakika kuluçka yapın. İnkübe edilmiş seyreltmeden 25 mikrolitre pipetle bir tüpe alın ve 975 mikrolitre DPBS ile seyreltin, buna mililitrede 0,1 miligram polivinil alkol veya polivinil pirolidon eklenerek incelendirin. Süspansiyonu nazikçe karıştırın.
Sulandırılmış meninin karışımını tüm hücre toplama süreci boyunca 37 derece Celsius sıcaklığında tutun. Somatik hücre toplama için hazırlanmak için seyreltilmiş at menisi içeren Petri kabı kapağını mikroskop aşamasına yerleştirin. Somatik hücre toplama için uygun çapta bir mikropipet seçin ve mekanik aspirasyon sistemine bağlayın.
Mikropipeti dikkatlice mikro damlaya yerleştirin ve bulag kapağının tabanıyla hizalayın. Pipet kültür ortamını aspire ettikten sonra, somatik hücrelerin bireysel olarak ele geçirilmesine başlanır. Mikro damlanın alt kısmına odaklanın, burada çeşitli hücre morfolojileri görülebilir.
Mikropipet ucunu her somatik hücrenin yanına yerleştirin ve negatif basınç altında aspirasyon yapın. Boyut ne olursa olsun yuvarlak ve uzun hücreleri toplayın. 10 hücre toplandıktan sonra, onları kapağın üst yüzeyinde bulunan 10 mikrolitrelik mikro damlaya bırakın.
Toplanan tüm somatik hücreleri bu mikro damla içinde tüm toplama süreci boyunca tutun. İstenilen somatik hücre sayısı toplandıktan sonra, sperm, kalıntı ve mikrobiyal kirleticileri çıkarmak için mikro damlalarla basit bir yıkama işlemi uygulanır. İkinci bir kapağı kullanarak, somatik hücrelerin ardışık üç aşamalı yıkamasını gerçekleştirin.
Mikropipet kullanarak somatik hücreleri ilk damlaya aktarın ve üç ila beş dakika boyunca yerleşmelerine izin verin. Aynı prosedürle hücreleri ilk damladan ikinci damlaya aktarın. Transferi bir kez daha tekrarlayın ve somatik hücreleri üçüncü damlaya yerleştirin.
Son olarak, izole somatik hücreler, somatik hücre nükleer transferi için hazırlanmış bir mikro damlaya yatırılır. Mikro aspirasyon tekniği, üç aygırda saatte 317,7 ila 424,7 hücre yakalama oranlarıyla kriyokonserif edilmiş at menisinden somatik hücreleri başarıyla geri kazandı. En yüksek verimli 3 aygır gösteriyor.
Boyut ve morfolojiye göre beş farklı somatik hücre tipi tanımlandı. Kriyokonserif at meninde morfoloji ve yaşamlılık açısından farklılık gösteren, nükleer donör olarak faydalı olabilecek bir somatik hücre popülasyonunu tespit ettik. Hücreler morfolojilerine göre seçilebilir ve prosedür birincil kültür oluşturulmasını gerektirmez.
At menisini bulklaştırdıktan sonra bu hücrelerin canlılığını artırmaya odaklanacağız.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Genel Bakış
Bu protokol, kriyoprezerve edilmiş at menisinden canlı somatik hücreleri izole etmek için bir mikroaspirasyon tekniği sunar. Bu yöntem, uzun in vitro kültürler ve sperm kontaminasyonunu önleyerek, somatik hücre klonlamada hemen kullanılmasını sağlar.
Çalışmanın Temel Bileşenleri
Bilim Alanı
- Sinirbilim
- Hücre Biyolojisi
- Üreme Biyolojisi
Arka Plan
- Kriyoprezerve edilmiş at menisinden somatik hücreler türetilebilir.
- Canlı somatik hücrelerin izolasyonu, klonlama amaçları için kritik öneme sahiptir.
- Geleneksel yöntemler genellikle uzun kültür sürelerini içerir.
- Sperm kaynaklı kontaminasyon, klonlama sürecini engelleyebilir.
Çalışmanın Amacı
- At menisinden somatik hücrelerin izole edilmesi için bir tekniği göstermek.
- Bu hücrelerin yüksek genetik değere sahip bireylerin klonlanmasında kullanılmasını sağlamak.
- Seçilen somatik hücrelerin diploid DNA'larının bozulmamış olduğundan emin olmak.
Kullanılan Yöntemler
- Sıvı nitrojenden at menisi çubuklarının çözülmesi.
- Çözülme için 37 derece Celsius'ta su banyosu kullanılması.
- Çözülmüş meninin DMEM-F12 ortamı ile seyreltilmesi ve örneklemesi.
- Hücre izolasyonu için mikroaspirasyon tekniğinin uygulanması.
Ana Sonuçlar
- Canlı somatik hücrelerin başarılı bir şekilde izole edilmesi.
- İşlemde sperm kontaminasyonunun azaltılması.
- İzole edilen hücrelerin klonlama için hemen kullanılabilirliği.
- Seçilen hücrelerde diploid DNA bütünlüğünün korunması.
Sonuçlar
- Mikroaspirasyon tekniği somatik hücre izole edilmesi için etkilidir.
- Bu yöntem, atlarda somatik hücre klonlama potansiyelini artırır.
- Gelecekteki uygulamalar, at yetiştiriciliğinde genetik geri kazanımın iyileştirilmesine yol açabilir.
Sıkça Sorulan Sorular
Executive Industry Relevance
Efficient recovery of viable somatic cells from cryopreserved equine semen addresses a critical bottleneck in genetic resource utilization for advanced reproductive technologies. This microaspiration technique enables immediate access to diploid donor cells for somatic cell nuclear transfer (SCNT), bypassing the need for prolonged culture and mitigating sperm contamination. The approach expands the potential for genetic rescue and portfolio diversification in animal biotechnology pipelines.
Strategic Applications in Biopharma R&D
Early Discovery & Target Validation
- Enables direct interrogation of somatic cell viability and diploid status from cryopreserved samples.
- Supports functional validation of nuclear donor suitability for SCNT workflows.
- Facilitates mechanistic de-risking by allowing morphological selection of donor cells.
Screening & Assay Development
- Provides a rapid, reproducible method for isolating somatic cells free from sperm interference.
- Delivers standardized cell populations for downstream cloning assays without primary culture establishment.
- Enables quantitative assessment of cell yield and morphology for process optimization.
Translational & Preclinical Research
- Improves continuity from genetic resource banking to preclinical cloning applications.
- Aligns with translational objectives by enabling recovery of high-value genotypes from archived material.
- Reduces biological risk by ensuring donor cell integrity prior to embryo generation.
Pipeline & Workflow Integration
This microaspiration method integrates at the interface of genetic resource recovery and SCNT-based cloning, bridging cryopreservation banking with immediate nuclear donor preparation.
- Discovery Biology: Supports hypothesis testing on donor cell viability and genetic integrity from cryopreserved sources.
- Screening: Standardizes somatic cell isolation for reproducible SCNT input.
- Analytics: Enables quantitative measurement of cell yield and morphological diversity.
- Translational Research: Connects biobanked semen to actionable cloning workflows for genetic rescue.
- Enterprise Reuse: Establishes a reusable protocol for diverse genetic backgrounds and archived samples.
Operational & Enterprise Impact
- Scientific Value: Increases predictive confidence in donor cell suitability and reduces mechanistic ambiguity in SCNT.
- Operational Value: Streamlines cell isolation, enhances reproducibility, and eliminates lengthy culture steps.
- Strategic Value: Enables rapid go/no-go decisions for genetic recovery projects and optimizes resource allocation.
- Portfolio Impact: Expands the range of viable genetic material for cloning and risk-adjusted breeding strategies.
Implementation Considerations
- Requires expertise in micromanipulation and cell morphology assessment.
- Needs access to mechanical aspiration systems and microscopy infrastructure.
- Demands cross-team standardization for cell selection and washing procedures.
- Adaptable to various semen samples but may require optimization for different species or preservation conditions.
- Cell viability post-isolation may vary and should be monitored for SCNT readiness.
