Name: Euglena gracilisin heterotrofik yetiştiricilik için manyok bazlı substratlara uyarlanması için bir yöntem (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2026-06-12T14:40:00.000+00:00
Duration: 12 min 37 s
Description: Öğrenin, Euglena gracilis'in manyok bazlı substratlara adaptasyonu için çok aşamalı bir yetiştirme protokolü. Bu yöntem, siyanojenik bileşikler ve değişken besin içeriği gibi zorlukların üstesinden gelerek biyoprocess uygulamaları için güçlü alg büyümesini sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

<table><tbody><tr><td>Otoklaf - 533LS Buhar Sterilizatörü</td><td>Getinge</td><td>533LS</td><td>Kasanye medyası için buhar sterilizasyonu. Sıvı döngü kullanarak medyayı sterilize edin.</td></tr><tr><td>Bright-Line&trade; Hemasitometre yedek kapaklı cam</td><td>Millipore Sigma</td><td>BR723015- 100EA</td><td>Hemasitometre kullanımı için tasarlanmış özel kalın kapaklar.</td></tr><tr><td>Kuru kasanya özü</td><td>Psaltry International</td><td>N/A</td><td>Sağlanan kasanya substratı</td></tr><tr><td>Kasanye peletleri</td><td>Psaltry International</td><td>N/A</td><td>Sağlanan kasanya substratı</td></tr><tr><td>Kasanye kabukları</td><td>Psaltry International</td><td>N/A</td><td>Sağlanan kasanya substratı</td></tr><tr><td>Kasanye substratı (garri)</td><td>Yerel tedarikçi</td><td>N/A</td><td>Karbon kaynağı olarak kullanılan, kasanyadan üretilen garri besleme; deiyonizasyon yapılmış su ile hazırlanmıştır.</td></tr><tr><td>Santrifüj Thermo Scientific Sorvall ST16 Santrifüj</td><td>Thermo Scientific Sorvall ST16 Santrifüj</td><td>75004241</td><td>>3.500 x g yeteneğine sahip, biyokütle hasadı için kullanılır.</td></tr><tr><td>Santrifüj tüpleri Örneğin Axygen (A Corning Markası)</td><td>Corning</td><td>MCT-150-C-S</td><td>Steril, minimum 1.5 mL hacim</td></tr><tr><td>Temiz su Örneğin UltraPure&trade; DNase/RNase- Ücretsiz Damıtılmış Su</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>10977035</td><td>Deiyonizasyon yapılmış veya damıtılmış. Medya hazırlanmasında kullanılır</td></tr><tr><td>Kompozit ışık mikroskop</td><td>Olympus</td><td>N/A</td><td>Rutin hücre gözlemlemesi ve sayımı için uygun standart kompozit mikroskop.</td></tr><tr><td>Siyanat Testi Şerit, kolorimetrik. CN- 10-30 mg/L</td><td>MQuant</td><td>110044</td><td>Yarı nicel siyanat tespiti. Zararlı atık olarak bertaraf edin</td></tr><tr><td>Steril Standart Tartım Kabı</td><td>Fisher Scientific</td><td>01-549-750</td><td>Kasanye substratlarını ve kuru biyokütle ağırlığının ölçülmesi için kullanılır.</td></tr><tr><td>Euglena gracilis (adapte edilmiş soy)</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>Bu çalışmada üretilen, kasanyaya adapte edilmiş soy</td></tr><tr><td>Euglena gracilis (Yabani tip)</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>Adapte edilmemiş referans soy. Aynı standart koşulları koruyun.</td></tr><tr><td>Euglena büyüme medyası bileşenleri</td><td>Çeşitli</td><td>N/A</td><td>Laboratuvar standart formülasyonlarına göre hazırlanmış temel Euglena medyası.</td></tr><tr><td>FreeZone 6 Litre Konsol Donma Kurutucu</td><td>Labconco</td><td>70061xxxx</td><td>Biyokütle kurutma için kullanılır</td></tr><tr><td>Standart Çizgili Hemasitometre</td><td>Weber Scientific</td><td>NC1587539</td><td>Manuel hücre sayımı için kullanılır.</td></tr><tr><td>Hot plate ile Manyetik karıştırıcı</td><td>IKA</td><td>N/A</td><td>Opsiyonel; medya hazırlama ve substrat süspansiyonu sırasında tutarlılığı artırır.</td></tr><tr><td>Mikropipetler (P20, P200, P1000)</td><td>Eppendorf</td><td>N/A</td><td>Aseptik sıvı transferleri için kullanılan ayarlanabilir hacimli pipetler.</td></tr><tr><td>Mini-santrifüj</td><td>Eppendorf</td><td>N/A</td><td>Opsiyonel; biyokütle hasadı sırasında hızlı peletlemeyi kolaylaştırır.</td></tr><tr><td>Parafilm</td><td>Bemis</td><td>PM996</td><td>Kapatılmış kapaklar bulunmadığında, şişelerin veya plakaların geçici sızdırmazlığı için kullanılır.</td></tr><tr><td>pH gösterge şeritleri</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-640-520</td><td>Kültür medyası için hızlı nitel değerlendirme yapmak için pH metre alternatifi.</td></tr><tr><td>Problu pH metre Thermo Scientific Orion Star A211 Tezgah Üstü pH Metre</td><td>Thermo Scientific Orion Star A211 Tezgah Üstü pH Metre</td><td>13-645-519</td><td>Kullanmadan önce kalibre edilmiştir. Kültür süpernatantının pH'ını ölçmek için kullanılır</td></tr><tr><td>Soğutmalı depolama (4&deg;C)</td><td>Frigidaire</td><td>FRT18S6JW7</td><td>Medyanın kısa süreli depolanması</td></tr><tr><td>Salınımlı inkübatör (karanlık)</td><td>Thermolyne</td><td>M49235</td><td>100-150 RPM yeteneğine sahip yörüngesel salınımlı inkübatör, 24-28 &deg;C sıcaklık aralığı; heterotrofik Euglena büyümesini desteklemek için karanlık koşullar altında kullanılır.</td></tr><tr><td>Püskürtme şişesi (32oz)</td><td>Boardwalk</td><td>BWK03010</td><td>Masa üstü sterilizasyon ve rutin aseptik işleme için kullanılır (%70 etanol çözeltisi)</td></tr><tr><td>Yayın yazılımı</td><td>Microsoft Excel</td><td>N/A</td><td>Veri toplama, organizasyon ve analiz</td></tr><tr><td>Steril pipet uçları</td><td>Eppendorf</td><td>N/A</td><td>P20, P200 ve P1000 pipetlerle uyumlu steril, tek kullanımlık uçlar.</td></tr><tr><td>Steril serolojik pipetler (5, 10, 25 mL)</td><td>Corning</td><td>N/A</td><td>Kültür transferleri ve numune alma için tek tek sarılmış steril pipetler.</td></tr><tr><td>Trypan Mavi çözeltisi 0.4%, sıvı, steril filtrelenmiş, hücre

euglena gracilis'in heterotrofik yetiştiricilik için manyok bazlı substratlara uyarlanması için bir yöntem

A Method for Adapting Euglena gracilis to Cassava-Based Substrates for Heterotrophic Cultivation

Aşağıdaki temsil edici sonuçlar, tanımlanan protokol başarılı bir şekilde uygulandığında beklenen sonuçları ve optimal olmayan koşullarda gözlemlenen sonuçlar aralığını göstermektedir. Bu sonuçlara karşılık gelen temsil veriler Şekil 1, Şekil 2, Şekil 3, Şekil 4, Şekil 5, Şekil 6, Şekil 7 olarak gösterilmiştir. Bu sonuçlar birlikte, E. gracilis'in heterotrofik, tamamen karanlık yetiştirme koşullarında manyok bazlı substratlara uyarlanırken büyüme dinamiklerini, canlılığını, morfolojisini ve protein sonuçlarını yorumlamak için pratik rehberlik sağlar. Ayrıca, bu sonuçlar protokolün başarılı adaptasyon, sürdürülebilir büyüme, yüksek canlılık, kararlı morfoloji, substratlar arasında tutarlı performans ve ölçülebilir protein üretimi gibi temel biyolojik sonuçları doğrulamaktadır.
Deneyler boyunca, her işlem başına üç replika (tüm manyok türleri) kullanıldı. Çoğaltma sayısının, yukarıdaki protokolleri takip eden herhangi bir grubun takdir yetkisi ve lojistik sınırlamalarına bağlı olduğunu kabul ediyoruz. Bu protokolün başarılı uygulanması, tamamen karanlık koşullarda garri bazlı ortamda E. gracilis'in sürekli heterotrofik büyümesini sağlar. Olumlu sonuçlar, düzgün, sigmoidal büyüme yörüngeleri, replikasyonlar arasında sınırlı ayrışma ve stabil geç faz hücre yoğunluklarıyla karakterize edilir. Olumlu sonuçları gösteren ve uyarlanmış popülasyonlarda tutarlı olarak gözlemlenen morfolojik özellikler arasında hücre yuvarlaklığı ve kalın hücre zarları yer almaktadır. Buna karşılık, sağlıksız çökmüş hücreler genellikle düzensiz, parçalanmış veya yapısal olarak zayıf görünür ve azalmış canlılıkla ilişkilidir; bu da onları adapte edilmiş kültürlerde gözlemlenen sağlam yuvarlak veya yarı kistli formlardan ayırır. Referans olarak, karakteristik uzun morfolojiye sahip yabani tip E. gracilis'in temsil eden görüntüleri dahil edilmiştir (Şekil 8), bu da temel hücresel yapıyı adapte edilmiş veya değiştirilmiş formlardan ayırt etmek içindir. 30 g L-1 garri'de yetiştirilen kültürler, büyüme eğrisinin altındaki alana (AUC) göre ölçülende daha yüksek entegre büyüme göstermiştir; bu da manyok substratının daha verimli kullanımı ve başarılı fizyolojik adaptasyonun işaretidir (Şekil 1).
Düşük garri konsantrasyonlarında (10–20 g L-1) optimal olmayan sonuçlar genellikle gözlemlenir; burada büyüme tespit edilebilir ancak büyüklüğü azalır ve çoğaltıcılar arasında daha değişkendir. Daha yüksek konsantrasyonlarda (40–50 g L-1), kültürler yüksek zirve hücre yoğunluklarına ulaşabilir; ancak bu koşullar sıklıkla gecikmeli stabilizasyon veya artan zaman değişkenliği gösterir (Şekil 2).
Başarılı deneylerde, kültür dönemi boyunca hücre canlılığı yüksek kalır; sadece orta deney dönemlerinde küçük dalgalanmalar yaşanır. Trypan Blue dışlama testleri, 30 g L-1 garri'de tutulan kültürlerin, örneklenen zaman noktalarında canlı olmayan (mavi boyalı) hücrelere kıyasla yüksek oranda canlı (lekelenmemiş) hücreleri tuttuğunu göstermektedir (Şekil 3). Bu desenden sapmalar, boyalı hücrelerin oranının artması, hareketliliğin azalması veya yuvarlak veya çökmüş morfolojilere kaymalar gibi nedenler, optimal olmayan koşulları gösterebilir ve sorun giderme için erken tetikleyiciler olabilir. Yaşamlılık ve morfolojik değerlendirmeler, hücre bütünlüğü, yönsel hareketlilik ve uzun ile yuvarlak veya çökmüş formların göreli yaygınlığı gibi tutarlı gözlem kriterlerine dayandı.
Optimal olmayan sonuçlar, en yaygın olarak daha yüksek garri konsantrasyonlarında gözlemlenen geçici yaşama azalmalarıyla karakterize edilir. Kısmi iyileşme daha sonraki zaman noktalarında gözlemlenebilir; ancak bu koşullar, kültür dönemi boyunca yaşamlılıkta artan değişkenlik gösterir (Şekil 4). Bu büyüme desenleri, ara substrat konsantrasyonlarının (örneğin 30 g L-1) besin bulunabilirliği ile stres arasında bir denge sağladığını ve bunun sonucunda daha istikrarlı büyüme sağladığını gösterir. Bu eğilimler, ön işleme koşullarının ve aşamalı adaptasyonun kültür performansı üzerindeki etkisini yansıtır; çünkü artan substrat karmaşıklığına kademli maruz kalma, gelişmiş fizyolojik kararlılık ve tekrarlanabilir büyüme davranışını destekler. Daha düşük konsantrasyonlar biyokütle üretimini sınırlarken, yüksek konsantrasyonlar daha fazla değişkenlik ve gecikmeli stabilizasyona yol açar.
Morfolojik değerlendirme, adaptasyon durumunun niteliksel bir göstergesi sağlar. Olumlu sonuçlar arasında, tekrarlanan alt kültürleşme sırasında sabit kalan yuvarlak veya yarı enkistli hücrelerin ortaya çıkışı ve kalıcılığı yer alır (Şekil 5).
Buna karşılık, çoğu vahşi tip suşlar veya erken evre adaptasyonla ilişkilendirilen optimal olmayan kültürler, uzun, hareketli hücrelerden düzensiz veya çökmüş morfolojilere ani geçişler gösterir ve bu morfolojiler azalmış büyüme stabilitesiyle örtüşür.
Protokol, hamur (pulpa, pelet ve kabuk) dahil olmak üzere ek manyoktan türetilen substratlara uygulandığında, uyarlanmış E. gracilis kültürleri birden fazla substrat türünde tekrarlanabilir büyüme gösterir. Olumlu sonuçlar, büyüme eğrilerinin daha erken stabilizasyonu ve vahşi tip kültürlere göre geç evre azalmasının azalmasıyla karakterize edilir (Şekil 6).
Optimal olmayan sonuçlar arasında, özellikle daha yüksek fiziksel heterojenliğe sahip substratlarda büyümenin gecikmeli başlanması veya artan çoğaltma değişkenliği yer alır.
Protokolün başarılı uygulanması, Yanma (Dumas) yöntemiyle harici laboratuvar analiziyle ölçülebilir ham protein içeriğine sahip E. gracilis biyokütlesi elde edilir. Uyarlanmış kültürlerde gözlemlenen protein yüzdeleri, vahşi tip kültürlerde ölçülenlerle karşılaştırılabilir; daha yüksek toplam protein çıkışı artan biyokütle birikimine karşılık gelir (Şekil 7).
Ortam kimyasının izlenmesi, adaptasyon sırasında kültür-substrat etkileşimlerini destekledi ve protokole pH ve siyanür ölçümlerinin dahil edilmesini doğruladı. pH değerleri zamanla kademeli değişimler gösterdi; bu da metabolik aktivite ve substrat kullanımını gösteriyor; adapte edilmiş kültürlerde daha kararlı eğilimler vardı. Siyanir ölçümleri bunu daha da destekledi; uyarlanmış kültürler tespit edilebilir seviyelerde azalma gösterirken, vahşi tip kültürler daha değişken kaldı. Bu sonuçlar birlikte, bu izleme adımlarının uyum ile ilişkili medya kimyasında etkili bir şekilde değişiklikleri yakaladığını ve kültür performansının yorumlanmasını desteklediğini göstermektedir. Temel mekanizmalar araştırılmasa da, bu özellikle endüstriyel ölçekli uygulamalar için gelecekteki araştırmalar için önemli bir alanı temsil etmektedir.
Uzun vadeli bakım ve konsolide iş akışı, uyarlanmış Euglena gracilis soyunun uzun kültür dönemleri boyunca sürdürülebilirliğini desteklemiştir. Tekrarlayan geçişle sürdürülen kültürler, bakım döngüleri boyunca hareketliliği, karakteristik morfolojiyi ve stabil büyüme davranışını tutarlı şekilde korur. Uzun vadeli performans nicel olarak değerlendirilmemiş olsa da, bu gözlemler, uyarlanmış soy hattının belirlenen koşullar altında güvenilir şekilde sürdürülebileceğine dair temsilli kanıtlar sunmaktadır.
Bu sonuçlar birlikte, adaptasyon protokolünün manyok bazlı substratlar boyunca E. gracilis'in sağlam büyümesi, canlılığı ve biyokütle üretimini desteklediğini, tutarlı performans ve zamanla siyanür seviyelerinin azaldığını doğrulamaktadır.
Tüm şekiller ve tablolar ayrı dosyalar olarak sunulur ve el yazması belgesine gömülü değildir. Şekil ve tablo yerleştirme tercihleri, el yazması metinde parantez içindeki notlarla gösterilir (örneğin, (Şekil 1)). Aksi belirtilmedikçe, tüm şekiller ve tablolar nihai yayında Temsilci Sonuçlar bölümünün altında yer alması amaçlanmıştır.
Tüm şekiller bireysel dosyalar olarak sunulur, çok panelli şekiller tek bir birleşik görüntü olarak sunulur. Mikroskopik görüntülerde her panelde ölçek çubukları bulunur. Veri rakamları, tanımlanmış ölçüm birimlerine sahip etiketlenmiş eksenleri içerir ve hata çubukları ilgili şekil efsanelerinde belirtilir.
Tüm tablolar bireysel .xls veya .xlsx dosyası olarak sunulur ve dekoratif biçimlendirme olmadan ham veya özet sayısal veriler içerir.
<img alt="Şekil 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/70741/70741fig1.jpg" data-altupdatedat="1783400419000" data-alt="Figure 1"> 
Şekil 1: Tam karanlık koşullarda 10, 20 ve 30 gL-1 garri'de kültürlenen E. gracilis'in büyüme dinamikleri. Her substrat konsantrasyonu için ortalama hücre yoğunlukları zaman içinde gösterilir. Hata çubukları, biyolojik kopyalar arasında SEM'i temsil eder. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/70741/70741fig1large.jpg" target="_blank">Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Şekil 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/70741/70741fig2.jpg" data-altupdatedat="1783400419000" data-alt="Figure 2"> 
Şekil 2: E. gracilis'in yüksek garri konsantrasyonlarında (30–50 g L-1) büyüme performansı. Hücre yoğunluğu yörüngeleri, zirve yoğunluğu, stabilizasyon zamanlaması ve daha yüksek alt konsantrasyonlarında değişkenlik farklılıklarını gösterir. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/70741/70741fig2large.jpg" target="_blank">Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Şekil 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/70741/70741fig3.jpg" data-altupdatedat="1783400419000" data-alt="Figure 3"> 
Şekil 3: Trypan Blue dışlanması ile ölçülen 30 gL-1 garri ile kültürlenen E. gracilis'in hücre canlılık eğilimleri. Canlı hücrelerin oranı, örneklenmiş zaman noktaları arasında gösterilir. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/70741/70741fig3large.jpg" target="_blank">Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Şekil 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/70741/70741fig4.jpg" data-altupdatedat="1783400419000" data-alt="Figure 4"> 
Şekil 4: Daha yüksek garri konsantrasyonlarında kültürlenen E. gracilis'in canlılık dalgalanmaları. Hücre yaşamında geçici değişiklikler deneysel dönem boyunca gösterilmiştir. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/70741/70741fig4large.jpg" target="_blank">Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Şekil 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/70741/70741fig5.jpg" data-altupdatedat="1783400419000" data-alt="Figure 5"> 
Şekil 5: Adapte olmuş E. gracilis popülasyonlarının temsilci morfolojisi. Temsil etkileyici ters ışık mikroskopisi görüntüleri, adaptasyon sonrası gözlemlenen yuvarlak ve yarı enkistli hücreleri göstermektedir. Ölçek çubuğu = XX μm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/70741/70741fig5large.jpg" target="_blank">Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Şekil 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/70741/70741fig6.jpg" data-altupdatedat="1783400419000" data-alt="Figure 6"> 
Şekil 6: Adapte olmuş ve yabani tip E. gracilis'in manyoktan türetilen substratlar boyunca büyüme performansı. Birden fazla manyok ürününde yetiştirilen uyarlanmış ve vahşi tip kültürler için büyüme yörüngeleri gösterilmiştir. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/70741/70741fig6large.jpg" target="_blank">Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Şekil 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/70741/70741fig7.jpg" data-altupdatedat="1783400419000" data-alt="Figure 7"> 
Şekil 7: Manyok yetiştirilen E. gracilis biyokütlesinin ham protein içeriği ve toplam protein çıkışı. Protein içeriği, SGS Yanma (Dumas) yöntemiyle harici analizle nicelendirilmiştir. Toplam protein üretimi, biyokütle birikimiyle birlikte gösterilir. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/70741/70741fig7large.jpg" target="_blank">Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Şekil 8" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/70741/70741fig8.jpg" data-altupdatedat="1783400419000" data-alt="Figure 8"> 
Şekil 8: Vahşi tip E. gracilis'in temsil morfolojisi standart koşullarda (40X büyütme). Sağlıklı, uyum sağlamamış Euglena gracilis'in ışık mikroskopisiyle karakteristik uzun morfolojisini gösteren temsil edici görüntüsü. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/70741/70741fig8large.jpg" target="_blank">Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.</a>

Euglena gracilis'in heterotrofik yetiştiricilik için manyok bazlı substratlara uyarlanması için bir yöntem

Cassava processing generates nutrient-rich by-products that remain underutilized due to variable composition, cyanogenic compounds, and active microbial ...

a-method-for-adapting-euglena-gracilis-to-cassava-based-substrates

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Bu videoda, embriyonik C. elegans hücrelerinin in vitro olarak izole edilmesi ve steril olarak kültürlenmesi için bir yöntem tanıtılmaktadır.

Enzimatik Sindirim ve Elle Ayrışma: C. elegans Embriyolarını Hücre Kültürüne Hazırlamak İçin Bir Yöntem

Biz embriyonik C. büyük ölçekli kültür için burada bir revize protokol açıklar hücreleri elegans. Embriyonik C. elegans Bu yöntemi kullanarak, in vitro olarak kültürlenmiş hücreler, bir hücre özel bir şekilde genlerin ekspresyonunu ayırt ve özetlemek için görünür. Doğrudan hücrelere erişimi ya da diğer dokulardan özel hücre tiplerinin izolasyonu gerektiren C teknikleri uygulanabilir kültür hücreleri elegans.

Kültürleme Embriyonik için bir yöntem<em&gt; C. elegans</em&gt; Hücreler

C. elegans genellikle katı agar plakaları üzerinde büyütülmüş ve sıvı kültürlerde E ile tohumlanır coli. Toksikolojik ve beslenme çalışmaları karıştırıcı bakteriyel yan ürünleri önlemek için, biz aşağı bir uygulama yelpazesi için solucanlar çok sayıda büyümeye ve senkronize etmek için, bir aksenik sıvı ortam, CeHR kullanılmaktadır.

Kültürleme Caenorhabditis elegans Mikroparçacık bombardımanı ile aksenik Sıvı Medya ve Transgenik Worms Yaratılış

Burada, mikrobiyal etkileşim çalışmaya çok yönlü ana model olarak Caenorhabditis elegans Yuvarlak solucanlar mevcut.

Nematot Caenorhabditis Elegans - konak-mikrop etkileşimleri çalışmaya çok yönlü Vivo içinde manken

Burada biz hızla nematodunun büyüme medya agar, yüzlerce Caenorhhabditis elegans tutarlı numaraları iyi başına 96-şey kültür plakaların üretimi için basit bir protokol tanımlamak. Bu kültürler tüm canlıların fenotipik tarama için yararlıdır. Yanlısı uzun ömürlü efektleri için ekran kimyasallara bu kültürler kullanarak üzerinde odaklanabilir.

Yüksek işlem hacmi Caenorhabditis Elegans kimyasal tarama için basit bir yöntem

Bu iletişim kuralı bir yöntem Caenorhabditis elegans büyük ölçekli ekimi için katı medyada açıklar. Sıvı kültür alternatif, bu protokol parametreleri farklı ölçeklerde plaka tabanlı ekilen almak sağlanır. Bu sonuçlar karşılaştırılabilir sıvı ve katı Medya kültürü arasındaki morfolojik ve metabolik farklar ihmal olarak artırır.

Large-scale tarımı plaka tabanlı Caenorhabditis elegans: diyabet metabolik değişiklikler çalışma için numune hazırlama

Genetik olarak çekilebilir nematod Caenorhabditis elegans, ilaç keşfi için basit ve ucuz bir model olarak kullanılabilir. Burada, RAS ve EGFR proteinlerinin aşağı akış sinyalini engelleyen antikanser terapötiklerini tanımlamak için bir protokol açıklanmıştır.

Caenorhabditis elegans kullanılarak EGFR ve RAS inhibitörlerinin tanımlanması

Bu protokol, ilgilenilen gen(ler)i yeşil mikroalgler Chlorella vulgaris'in nükleer genomuna entegre etmek için Agrobacterium tumefaciens aracılı dönüşümün (AMT) kullanımını ana hatlarıyla belirtir ve kararlı dönüştürücülerin üretimine yol açar.

Yeşil Mikroalglerin Agrobacterium tumefaciens Aracılı Genetik Mühendisliği ( Chlorella vulgaris)

Burada, büyük boyutlu bitkilerin genetik dönüşümünün in vivo çalışmaları için lokalize vakum infiltrasyonu için ilk protokolü sunuyoruz. Bu metodolojiyi kullanarak, ilk kez kakaonun planta geçici dönüşümünde Agrobacterium aracılı hale getirdik.

İnatçı Bitkilerin Planta Dönüşümü için Vakumla Zorla Agroinfiltrasyon: Bir Vaka Çalışması Olarak Kakao

Kök hücre tanımlama önemli atılımlar sürekli yapılmaktadır. Ancak bu keşifler çevirmek için, hücresel teslimat için yeni yöntemler icat olmalıdır. İşte ben, hava yolları, kök hücre nakli için akciğerlere için güvenli bir rota verdiğiniz rapor.

Trakeotomi: Akciğer Kök Hücre Nakli Bir Yöntem

Öğrenin, Euglena gracilis'in manyok bazlı substratlara adaptasyonu için çok aşamalı bir yetiştirme protokolü. Bu yöntem, siyanojenik bileşikler ve değişken besin içeriği gibi zorlukların üstesinden gelerek biyoprocess uygulamaları için güçlü alg büyümesini sağlar.

Euglena gracilis'in heterotrofik yetiştiricilik için manyok bazlı substratlara uyarlanması için bir yöntem

Daha fazla video keşfet