Name: Minyatür Doku Kültürü Sistemde Fare Kalp Vanalar Kültürleme (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-10-19T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 47 s
Description: Keşfedin fare kalp kapakçıklarını minyatür doku kültürü sisteminde (MTCS) kültüre alma yöntemini. Histolojik analiz ile kapak canlılığı ve morfolojisini değerlendirin.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Bu çalışma Hollanda Kalp Vakfı ve Hollanda Rejeneratif Tıp Enstitüsü tarafından desteklenmektedir.

Bu protokol, hayvan araştırma etik komitesinin LUMC kuralları izler. Araçların 1. Hazırlık, kültür ortamı ve MTCS Not: laminer akış kaputu tüm hazırlıklarını yapın. MTCS perfüzyon odasına, kabarcık kapanı ve tek Lieber ve diğ., 2010, 11 tarif edilmiştir. <ol><li> % 70 etanol ile forseps ve mikro makas dezenfekte edin. Steril Tyrode tamponu (130 mM NaCI, 5.4 mM KCI, 6.0 mM Hepes ve 1.2 mM MgSO 4, 1.2 ile 21G iğne ile 5 ml şırınga hazırlayın mM KH 2 PO 4, 20 mM Glükoz, 1,5 mM CaCl2 .2H 2, O, pH = 7.2). Steril KCI çözeltisi (100 mM) ile, 21G iğne ile 5 ml şırınga hazırlayın. </li><li> 65 kalp başına ortam ml hazırlayın: (A / A, penisilin 100 birim, 100 ug streptomisin ve amfoterisin B 0.25 ug / ml) DMEM,% 10 fetal dana serumu, antibiyotik / antimikotik ile desteklenmiş İnsülin transferinSelenyum (ITS; / ml insülin 10 ug, 5.5 ug / ml Transferin, 6.7 ng / ml sodyum selenit) ve filtre sterilize. </li><li> % 70 etanol ve kağıt havluyla kurulayın sıkarak perfüzyon odası ve kabarcık tuzak sterilize edin. Başlangıçta perfüzyon odasının olmadan, ancak, MTCS (Şekil 1D) birleştirin. Stand kabarcık tuzak yerleştirin. Kolay yükleme pompası başkanları ile bir peristaltik roller pompa kullanın. <ol><li> Silikon boru rezervuar (50 ml tüp) ve pompa, pompa ve kabarcık kapanı, kabarcık kapanı ve rezervuar arasındaki bağlantıları (Şekil 1D bakınız) yapmak kullanma. Orta gaz geçirgen silikon tüp (1 m) ve mümkün olduğunca kısa inkübatör dışına tüp aracılığıyla inkübatör gazıyla gaz dengeye ulaşması için izin yeterince uzun inkübatör içinde boru yapın. </li></ol></li><li> (Düzgün dolaşım sağlamak için / 1 ml civarında dk akış hızı) pompa açmak,% 70 etanol ile 50 ml tüp doldurun ve etanol CIR izinTüm boru sterilize etmek için 30 dakika boyunca hesaplanmalıdır. Rezervuar boşaltma ve sistemden etanol dışarı pompalama yoluyla etanol çıkarın. </li><li> Steril distile su ile 50 ml tüp doldurun pompa açmak ve 30 dakika boyunca su sirküle etanol kalan kurtulmak için izin verin. Rezervuar boşaltma ve sistemden suyu pompalanarak suyunu çıkartın. </li><li> Orta 45 ml, 50 ml tüp doldurun, inkübatör standı koymak. Pompa (1 ml / dakika akış hızı yaklaşık) açın ve tüm boruların doldurmak için orta sirküle, tüm hava kabarcıklarını çıkarmak ve orta en az 1 saat boyunca kuluçka makinesi içinde, gaz bileşimine uyum sağlar. Standart doku kültürü koşullarında (% 5 CO2 ve 37 ° C) kuluçka tutun. Hiçbir kabarcıklar tüp mevcut olduğundan emin olun. </li></ol> Fare Heart 2. izolasyonu <ol><li> Heparin 500 adet fare ile enjekte edilir. Bu pıhtılaşma kan önlemek ve b kaldırılmasını sağlar olacakkalp LOOD. 10 dakika sonra, hassas bir buharlaştırıcı kullanılarak% 4 izofluran ile bir indüksiyon odasında fare anestezi. Fare ayak tutam tepkisiz olduğunda anestezi yeterlidir. </li><li> Bir diseksiyon kurulu fareyi aktarın ve koaksiyel devresine bağlı bir yüz maskesi vasıtasıyla anestezi korumak. % 70 alkol ile fare kürk dezenfekte edin. Makas karın boşluğuna açılması kullanma vena kava ve diyaframı ortaya çıkarmak. </li><li> , Kalp maruz geçen ilk kaburga başlayan yanal kesiler yapmak ve farenin başının üzerinde göğüs kafesi yansıtacak. Fare artık nefes almıyorsa olarak anestezi durdurun. Kalp atışını gözlemleyin. </li><li> (Diyafram üzerinden) göğüs boşluğuna karın gelen inferior vena kava içine steril Tyrode Tamponu içeren 5 ml şırınga bağlı 21G iğne takın. Kan iğne yerleştirilmesi gelen vena kava kaudal çıkabilirsiniz emin olun. Inci serpmeke Tyrode Tampon nazikçe ve vena kava içine sabit basınç kalp kısmen kırmızı rengini kaybeder kadar. Not: Kalp kalpten kanın çıkarılmasını sağlayan yenerek kalır. </li><li> Steril KCI çözeltisi ihtiva eden bir 5 ml şırıngaya bağlanmış 21G iğne ile iğne değiştirin. Yavaşça kalp atışını durana kadar vena kava içine KCl çözeltisi serpmek ve iğneyi çıkartın. Not: KCl çözümü koroner sistemin daha kolay perfüzyon iğne yerleştirilmesi ve perfüzyon sağlayacak rahat diyastolik aşamasında kalbi korur. </li><li> Hafif kavisli bir forseps kullanarak kalbi kaldırın ve makas kullanarak kalp sağlam ve kalbe bağlı proksimal arter ve venler çevreleyen dokudan serbest kalbini incelemek ama bırakın. Buz soğukluğunda PBS antibiyotik / antimikotik (A / A) ile desteklenmiş ihtiva eden bir 15 ml tüp kalp aktarın. Kadar 3 saat boyunca buz soğukluğunda PBS kalp saklayın. </li></ol> 3. CannulatioPerfüzyon Odası Fare Kalpler n <ol><li> Laminer akış kaputu tüm prosedürleri uygulayın. 10 cm&#39;lik Petri kabı 15 ml tüp izole kalbi aktarın ve eklemek PBS A / A ile desteklenmiş. </li><li> Bir mikroskop altında, tüm non-kardiyak doku kaldırmak için mikro makas ve forseps kullanabilir ancak artan aorta korumak kalbe brakiyosefalik arter ve pulmoner venlerin, 2 mm proksimal en az çatallanma için. Sol ventrikül lümen (tipik olarak 2 mm) erişim temin etmek kalbin üst ucu kesin. Diseksiyon mikroskobu altında akış kaputu perfüzyon odasına yerleştirin. </li><li> Silikon tüp kullanılarak uç iğneye orta ile 5 ml şırınga takın. 20 ml ortam ile perfüzyon odasına doldurun ve perfüzyon odasında 2 körelmiş iğneler (Şekil 1) arasındaki dönme sahneye kalbini koydu. Kalp önüne konumlandırılmış böylece dönme aşamasında yüksekliğini ayarlayıniğne. </li></ol> Mitral Vana Kültürleme 4. ligasyonu (Şekil 1) <ol><li> Sütür (ipek 7.0) ile aort Arter. Sütür ile sol atriyal apendiks Arter. Sol atriyuma pulmoner ven yoluyla (Şekil 1&#39;de. 1 nr) iğne takın ve sol atrium onun giriş sütür proksimal ile Arter. Bu mitral kapak zedeleyecek şekilde iğne sol atrium içine çok uzak değil emin olun. </li><li> Sol ventrikül içine doğrusal hareket ile iğne (Şekil 1 &#39;de No.2) yerleştirin. 50 ml&#39;lik bir tüpe perfüzyon odasından gelen orta aktarın. Biyouyumlu yapıştırıcı ile miyokardiyuma iğne Seal. </li><li> Tutkal kuruduktan sonra dikkatlice nr.1 iğne ve herhangi bir sızıntı olup olmadığını kontrol etmek için bir orta dolu şırıngayı bağlayarak kalp içine orta enjekte. İğne Nr.2 ve son kalan kan kalbin dışına perfüze o orta çıkar olun. </li></ol> 5. LiAort Vana Kültürleme için Navigasyon (Şekil 1) <ol><li> Aort iğne (Şekil 1 &#39;de No.1) takın ve sütür ile ligate. Bu aort kapağını zedeleyecek şekilde iğne aort içine çok uzak değil emin olun. Sol ventrikül içine doğrusal hareket ile iğne (Şekil 1 &#39;de No.2) yerleştirin. 50 ml&#39;lik bir tüpe perfüzyon odasından gelen orta aktarın. Biyouyumlu yapıştırıcı ile miyokardiyuma iğne Seal. </li><li> Tutkal kuruduktan sonra dikkatlice Nr.2 iğne ve herhangi bir sızıntı olup olmadığını kontrol etmek için bir orta dolu şırıngayı bağlayarak kalp içine orta enjekte. İğne nr.1 ve son kalan kan kalbin dışına perfüze o orta çıkar olun. </li></ol> Stand 6. Perfüzyon Odası <ol><li> Orta aktarıldı 20 ml perfüzyon odasına kadar doldurun. Odasının üzerine conta ve kapak yerleştirin ve pul ve vida ile sıkın. </li><li> Incuba monte MTCS kaldırtor. Stand perfüzyon odasına takın. Boru bağlayın (Şekil 1D bakınız). Inkübatör (% 5 CO2 ve 37 ° C) &#39;de standı yerleştirin. Pompanın hortumu bağlayın. 600 ul / dk etrafında akış hızı ile pompa açın. </li><li> Rezervuar ve / veya kabarcık kapanı orta düzey gelen orta damlaların düşerek akışının varlığı görselleştirme izin verdiğinden emin olun. Kültürden sonra, kalp, sistemden çıkarılır fikse edilmiş ve histolojik inceleme için işlenir. </li></ol>

<ol><li>Go, A. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heart+Disease+and+Stroke+Statistics--2014+Update%3A+A+Report+From+the+American+Heart+Association%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Heart Disease and Stroke Statistics--2014 Update: A Report From the American Heart Association.</a> Circulation. 129, e28-e292 (2013).</li>
<li>Gould, S. T., Srigunapalan, S., Simmons, C. A., Anseth, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hemodynamic+and+Cellular+Response+Feedback+in+Calcific+Aortic+Valve+Disease%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">Hemodynamic and Cellular Response Feedback in Calcific Aortic Valve Disease.</a> Circulation Research. 113 (2), 186-197 (2013).</li>
<li>Kruithof, B. P. T., Krawitz, S. A., Gaussin, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atrioventricular+valve+development+during+late+embryonic+and+postnatal+stages+involves+condensation+and+extracellular+matrix+remodeling%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+biology%22%5BJournal%5D)">Atrioventricular valve development during late embryonic and postnatal stages involves condensation and extracellular matrix remodeling.</a> Developmental biology. 302 (1), 208-217 (2007).</li>
<li>Schoen, F. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+valves+and+valvular+pathology%3A+update+on+function%2C+disease%2C+repair%2C+and+replacement%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovascular+pathology%3A+the+official+journal+of+the+Society+for+Cardiovascular+Pathology%22%5BJournal%5D)">Cardiac valves and valvular pathology: update on function, disease, repair, and replacement.</a> Cardiovascular pathology: the official journal of the Society for Cardiovascular Pathology. 14 (4), 189-194 (2005).</li>
<li>Balachandran, K., Sucosky, P., Yoganathan, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hemodynamics+and+mechanobiology+of+aortic+valve+inflammation+and+calcification%5BTitle%5D)+AND+%22International+journal+of+inflammation%22%5BJournal%5D)">Hemodynamics and mechanobiology of aortic valve inflammation and calcification.</a> International journal of inflammation. , 263870(2011).</li>
<li>Butcher, J. T., Simmons, C. A., Warnock, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanobiology+of+the+Aortic+Heart+Valve%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+heart+valve+disease%22%5BJournal%5D)">Mechanobiology of the Aortic Heart Valve.</a> The Journal of heart valve disease. 17 (1), 62-73 (2008).</li>
<li>Balachandran, K., Konduri, S., Sucosky, P., Jo, H., Yoganathan, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+ex+vivo+study+of+the+biological+properties+of+porcine+aortic+valves+in+response+to+circumferential+cyclic+stretch%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+biomedical+engineering%22%5BJournal%5D)">An ex vivo study of the biological properties of porcine aortic valves in response to circumferential cyclic stretch.</a> Annals of biomedical engineering. 34 (11), 1655-1665 (2006).</li>
<li>Weiler, M., Hwai Yap, C., Balachandran, K., Padala, M., Yoganathan, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regional+analysis+of+dynamic+deformation+characteristics+of+native+aortic+valve+leaflets%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomechanics%22%5BJournal%5D)">Regional analysis of dynamic deformation characteristics of native aortic valve leaflets.</a> Journal of Biomechanics. 44, 1459-1465 (2011).</li>
<li>Combs, M. D., Yutzey, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heart+valve+development%3A+Regulatory+networks+in+development+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">Heart valve development: Regulatory networks in development and disease.</a> Circulation Research. 105, 408-421 (2009).</li>
<li>Kruithof, B. P. T., Duim, S. N., Moerkamp, A. T., Goumans, M. -J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TGF%CE%B2+and+BMP+signaling+in+cardiac+cushion+formation%3A+lessons+from+mice+and+chicken%5BTitle%5D)+AND+%22Differentiation%3B+research+in+biological+diversity%22%5BJournal%5D)">TGFβ and BMP signaling in cardiac cushion formation: lessons from mice and chicken.</a> Differentiation; research in biological diversity. 84 (1), 89-102 (2012).</li>
<li>Lieber, S. C., Kruithof, B. P. T., Aubry, N., Vatner, S. F., Gaussin, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Design+of+a+miniature+tissue+culture+system+to+culture+mouse+heart+valves%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+biomedical+engineering%22%5BJournal%5D)">Design of a miniature tissue culture system to culture mouse heart valves.</a> Annals of biomedical engineering. 38 (3), 674-682 (2010).</li>
</ol>

Yazarlar herhangi bir çıkar çatışması beyan etmemektedir.

Kalp fare vanaları kültürleme Kritik adımlar akış yönünü doğru sağlamak için fare kalbin eksizyonu ve vanalar dik iğne canlılığını ve ligasyonu sağlamak mümkün olduğunca kısa perfüzyon odasında ligasyon arasındaki süre yapım dahil . Ayrıca, orta olmadan perfüzyon odasında bağlanmasından sonra akışını kontrol uygun ekleme ve iğneler bağlanmasını sağlar. Bu steril kültür korumak ve potansiyel akış tıkayan kalbinde sıkışıp alabilir boru, hava kabarcıklarını engellemek için kritik öneme sahiptir. <p class="jove_content"...

Kalp kapak hastalığı, Batı dünyasında morbidite ve mortalitenin önemli bir nedenidir; prevalansı yaşla birlikte artar ve nüfus 75 yıldan fazla% 10 ve 1 yaşlı etkiler. Kalbin sistemik kısmının vanalar, aort ve mitral vanalar, en çok etkilenen bulunmaktadır. Kalp kapakçığı hastalığı mekanik özellikleri 2 değişmesi ile sonuçlanır valf yüksek organize yapı kaybıyla karakterizedir. Yapısal bütünlük valfi işlevi açısından kritiktir. Vana bildiriler kapak interstitial hücrelerin (VIC), kapak endotel hücreleri (VEC) ve yüksek bir tabakalı desen 3,4 düzenlenen hücre dışı matris oluşur. Kurbanlar ECM sentezi, yıkımı ve organizasyon sorumludur. Faktörler kan dolaşımına, EC kaynaklanan veya fonksiyonlarını düzenlediğini kurban ECM hareket ikamet eden. Ek olarak,mekanik kuvvetler Laminer veya salınımlı kayma gerilmesi, kurban 5 davranışını etkileyen basınç veya çekme gerilmeleri sonucu kardiyak döngüsü sırasında broşür hareket. Vananın yapısı nasıl düzenlendiği anlamak için, öncelikle kurban kardiyak döngüsü sırasında yaşanan uyaranların farklı setine nasıl yanıt anlaşılması gerekir. In vitro çalışmalar, kapak hücrelerinin özellikleri ve yetenekleri hakkında çok bilgilendirici olmuştur. Bu hücrelerin in vitro yanıtı, ancak, her zaman doğru bir in vivo yanıt 6 taklit olmayabilir; örneğin, uyaranlara VIC tepki EC varlığı ve ECM bileşimin 5 bağlıdır. Ayrıca, uyaranlara kapak hücrelerinin tepki broşürü 7 onların belirli bir konuma bağlıdır. Biyokimyasal uyaranlara ek olarak, kapak hücrelerinin davranışı o hareket mekanik kuvvetlerin belirlenirn valfi 8. Vananın Her bölgenin hemodinamik gerilmelerin kendine özgü kümesine tabi tutulur. Geçerli ex vivo modeller mekanik kuvvetler kapak yapısının 5 önemli belirleyicileri olduğunu göstermiştir rağmen, ilgili mekanizmalar hala belirsiz. In vivo modeller kapak gelişimini 9,10 altında yatan moleküler mekanizmaları içgörü sağladı ederken, yetişkin kapak biyoloji içine anlayışlar hala zor olduğunu. Bu nedenle, bir ex vivo akış modeli olan kalp valfleri zaman 11 arasında bir süre için merkezinde kendi doğal pozisyonunda kültürlenebilir geliştirilmiştir. Bu valfler doğal konfigürasyonda kalır ve kurban mümkün olduğunca doğal uyaranlara karşı yanıt kurban yapım in vivo aynı ortamı deneyim avantajına sahiptir. Buna ek olarak, kalbinde doğal pozisyonda vanaların kültürü her tabi kolaylaştırırİlgili hemodinamik gerilimlere kapak bölgesi. Örneğin, bu ex vivo modelde, Minyatür Doku Kültür Sistemi (MTCS), valfler kalp kapağı yeniden rolleri incelenmesi sağlayan farklı biyokimyasal ve hemodinamik uyaranlara maruz bırakılabilir.

<table><tbody><tr><td>Dulbecco' s Modifiye Eagle Orta Yaşam</td><td>Teknolojileri</td><td>10569-010</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Sığır Serumu Yaşam</td><td>Teknolojileri</td><td>26140</td><td></td></tr><tr><td>İnsülin-Transferrin-Selenyum</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>41400-045</td><td></td></tr><tr><td>Antibiyotik-Antimikotik</td><td>Yaşam Teknolojileri</td><td>15240-06</td><td></td></tr><tr><td>İpek 7-0</td><td>Ethicon</td><td>768G</td><td></td></tr><tr><td>100 mm kültür kabı</td><td>Greiner bio-one</td><td>664160</td><td></td></tr><tr><td>50 ml tüp</td><td>Greiner bio-one</td><td>227261</td><td></td></tr><tr><td>5 ml şırınga</td><td>BD</td><td>309649</td><td></td></tr><tr><td>21 G iğne</td><td>BD</td><td>304432</td><td></td></tr><tr><td>Heparin</td><td>LEO</td><td>012866-08</td><td></td></tr><tr><td>Forseps</td><td>Güzel Bilim Araçları</td><td>11295-00</td><td></td></tr><tr><td>Mikro Makas, Ekonomi, Vannas tipi</td><td>Tedpella</td><td>1346</td><td></td></tr><tr><td>Silikon boru</td><td>Thermo Scientific</td><td>8060-0020</td><td>ID x OD x Duvar: 1.59 x 3.18 x 0.79 mm</td></tr><tr><td>Pompa için silikon boru</td><td>Masterflex</td><td>96400-13</td><td>ID x OD x Duvar: 0.8 x1.59 x 0.40 mm</td></tr><tr><td>Biyouyumlu yapıştırıcı (Histoakrilat)</td><td>B. Braun</td><td>1050071</td><td></td></tr><tr><td>hassas buharlaştırıcı</td><td>Dr&auml; ger</td><td>Vapor 200</td><td></td></tr><tr><td>peristaltik makaralı pompa</td><td>Masterflex</td><td>7521-35</td><td></td></tr><tr><td>Kolay yüklenen pompa kafası</td><td>Masterflex</td><td>7518-00</td><td></td></tr><tr><td>Akış odası</td><td></td><td></td><td>bakınız Lieber et al., 2010</td></tr><tr><td>Kabarcık tuzağı</td><td></td><td></td><td>bakınız Lieber et al., 2010</td></tr></tbody></table>

minyatür doku kültürü sistemde fare kalp vanalar kültürleme

Culturing Mouse Cardiac Valves in the Miniature Tissue Culture System

Kalp kapakçığı hastalığı Batı dünyasında büyük bir yüktür ve etkili bir tedavisi mevcut değildir. Bunun başlıca nedeni, kapak yapısının korunması ve/veya kaybının altında yatan moleküler, hücresel ve mekanik mekanizmaların bilinmemesidir. 
Kapak biyolojisini incelemek için kullanılan mevcut modeller, kapak endotelyal ve interstisyel hücrelerin in vitro kültürlerini içerir. Her ne kadar, in vitro kültür modelleri hem hücresel hem de moleküler mekanizmalar sağlasa da, kapağın 3D organizasyonunda yer alan mekanizmalar belirsizliğini korumaktadır. İn vivo modeller, kapak gelişiminin altında yatan moleküler mekanizmalar hakkında bilgi sağlamış olsa da, yetişkin kapak biyolojisi hakkında bilgi sahibi olmak hala zordur. 
Doku, hücresel ve moleküler düzeylerde kapak 3 boyutlu organizasyonun düzenlenmesini inceleyebilmek için Minyatür Doku Kültür Sistemini geliştirdik. Bu ex vivo akış modelinde, mitral veya aort kapağı kalpteki doğal pozisyonunda kültürlenir. Broşürün doğal konfigürasyonu ve bileşimi korunur ve kapak hücrelerinin uyaranlara en doğal tepkisini verir. Valfler canlı kalır ve değişen çevre koşullarına duyarlıdır. Bu MTCS, 3 boyutlu organizasyonun kapak biyolojisini nasıl etkilediği, valfin 3 boyutlu organizasyonunu hangi faktörlerin etkilediği ve hangi sinyal yolları ağının valfin 3 boyutlu organizasyonunu düzenlediği dahil ancak bunlarla sınırlı olmamak üzere soruların incelenmesinde avantajlar sağlayabilir.

Aort kapak (Şekil 2) ya da mitral kapak 11, en ​​az 3 gün süre ile kültüre edilebilir. (Aort kapağı ve mitral kapağın diyastolik pozisyon için sistolik konumu temsil) açık konumdayken kültürleme yoluyla, kapak hücreleri canlı kalır. TÜNEL-pozitif hücreleri (Şekil 2H, I) veya ayrıldı kaspaz-3 yokluğu ile belirlendiği gibi Resim hücre ölümü gözlenir (gösterilmemiştir olup Lieber ve diğ., 2010 11). (Masson trikrom olarak lekeleme ile görselle...

Burada, murin kalp kapakçıklarının kültürlenebileceği ve kapağın biyolojisinin incelenmesine olanak tanıyan bir ex vivo akış modeli sunuyoruz.

Minyatür Doku Kültürü Sistemde Fare Kalp Vanalar Kültürleme

Heart valve disease is a major burden in the Western world and no effective treatment is available. This is mainly due to a lack of knowledge of the ...

Bu prosedürün genel amacı, minyatür doku kültürü sistemi veya MTCS kullanılarak fare kalp kapakçıklarını kültüre etmektir. Bu işlem, öncelikle profüzyon kamarası olmadan MTCS'nin kurulması ve sistemi ön koşullandırmak için besiyerinin sirküle edilmesiyle gerçekleştirilir. İkinci adımda ise fare kalbi hasat edilir ve kanülasyon için hazırlanır.Ardından, kalp, mitral veya aort kapağı kültürü için kanüllendiği perfüzyon haznesine yerleştirilir. Daha sonra perfüzyon haznesi MTCS'ye yerleştirilir ve pompa çalıştırılır. Son olarak, kapağın canlılığını, morfolojisini ve hücre dışı matris dağılımını değerlendirmek için histolojik analiz kullanılır.Süreci, rezervuar ile pompa, pompa ile hava kabarcığı tutucu ve hava kabarcığı tutucu ile rezervuar arasındaki bağlantıları kurmak için silikon boru parçaları kullanarak başlatın. Tüm borular bağlandığında, rezervuarı %70 etanol ile doldurun.Pompayı dakikada bir mililitre akış hızında çalıştırın ve tüplerin sterilizasyonu için etanolün sirküle olmasını sağlayın. 30 dakika sonra rezervuarı boşaltın ve etanolü sistemden pompalayarak çıkarın. Ardından, rezervuarı steril distile su ile doldurun ve kalıntı alkolü uzaklaştırmak için suyu sistemden pomp

culturing-mouse-cardiac-valves-in-the-miniature-tissue-culture-system

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Bu videoda, aort kapak interstisyel hücrelerinin iki aşamalı bir kollajenaz prosedürü kullanılarak yetişkin bir farenin kalbinden izolasyonunu ve ardından düşük hacimli büyüme ortamında kültürlerini gösteriyoruz.

Fare Valf İnterstisyel Hücrelerinin İzolasyonu: Fare Aort Kapağından VIC'leri İzole Etmek ve Kültürlemek İçin Enzimatik Bir Yöntem

Bu video, aort kapak interstisyel hücrelerinin kalsifikasyonunu in vitro olarak değerlendirmek için bir test tekniğini göstermektedir. Test, mor renkli bir kalsiyum-arsenazo kompleksi oluşturmak için kalsiyum iyonları ile reaksiyona giren kalsiyuma duyarlı bir boya olan arsenazo III reaktifi kullanılarak kalsiyum konsantrasyonunun ölçülmesine yardımcı olur.

Aort Kapak İnterstisyel Hücrelerinde Kalsiyum Konsantrasyonunu Ölçmek için Kalsifikasyon Testi

Burada bir perfüzyon Langendorff sistemi kullanılarak erişkin fare cardiomyoctyes izolasyonunu tarif eder. Elde edilen hücreler, + toleranslı elektriksel olarak hareketsiz Ca2 ve kültürlenmiş ve adeno-veya gen ekspresyonunu değiştirmek için lentivirüsler ile transfekte edilmiş olabilir. Bunların işlevi de MMSYS sistemi ve yama kelepçe teknikler kullanılarak analiz edilebilir.

İzolasyon, Kültür ve Yetişkin Fare Cardiomyoctyes Fonksiyonel Karakterizasyonu

Fare gelişim çalışmaları gebelik sırasında embriyonun erişilememesi tarafından engellenmektedir. Gebeliğin son aşamalarında embriyonik kalbin uzun vadeli bir kültür teşvik etmek için, eksize kalp, yarı-katı, seyreltik Matrigel kültüre edildiği bir protokolü geliştirilmiştir.

Yeni Bir<em&gt; Ex vivo</emEmbriyonik Fare Kalp için&gt; Kültür Yöntemi

Biz yetişkin fare kardiyomiyositlerin izolasyonu için güvenilir bir yöntem açıklanmaktadır. Bu protokol, genetik olarak tadil edilmiş farelerin çeşitli fonksiyonel yetişkin kardiyomiyositlerde kültürü için tutarlı bir sonuç elde edilir.

İzolasyon ve Kültür Yetişkin Fare Hücre Sinyal için kardiyomiyositlerin ve<em&gt; In vitro</em&gt; Kalp hipertrofisi

Doku mühendisliği kalp kapakçıklarında neotissue oluşumu ve darlık gelişimi altında yatan hücresel ve moleküler mekanizmaları anlamak için, heterotopik kalp kapakçığı nakli bir fare modeli geliştirilmiştir. Bir pulmoner kalp kapak heterotopik kalp nakli tekniği kullanılarak alıcıya nakil oldu.

Heterotopik Kalp Nakli bir Fare Modeli Kullanarak Pulmoner Vana Nakli

Kalp kapakçığı endotel hücrelerini (VEC'ler) izole etme yeteneği, kapak gelişimi, bakımı ve hastalık mekanizmalarını anlamak için kritik öneme sahiptir.  Burada, VEC'lerin gelişimsel ve hastalık süreçlerine katkısını belirleyen çalışmalara izin verecek FACS kullanarak embriyonik ve yetişkin Tie2-GFP farelerinden VEC'lerin izolasyonunu açıklıyoruz.

Murin Vana Endotel Hücreleri İzolasyon

Bu protokol, yüksek verim, saflık ve canlılığa sahip yetişkin fare kardiyomiyositlerinin tekrarlanabilir izolasyonu ve uzun süreli kültürü için adım adım bir yöntemi açıklar.

İzolasyon, Kültür ve Yetişkin Fare kardiyomiyositlerde İletimi

Koroner anjiyogenezin in vitro modelleri koroner anjiyogenezin hücresel ve moleküler mekanizmalarının keşfinde kullanılabilir. Sinüs venöz ve endkard dokularının in vitro eksplant kültürleri VEGF-A'ya yanıt olarak sağlam bir büyüme gösterir ve in vivo olarak coup-TFII ekspresyonunun benzer bir modelini gösterir.

Koroner Anjiyogenezin In Vitro Modeli

Burada, yetişkin fare ve sıçan kardiyomiyositlerinin izolasyon, transfeksiyon ve uzun vadeli kültürü için bir protokol sıyoruz.

İzolasyon, Transfeksiyon ve Yetişkin Fare ve Sıçan Kardiyomiyositlerinin Uzun Süreli Kültürü

Bu makalede, fare aort kapak hücrelerinin iki adımlı bir kollajenaz prosedürü ile izolasyonu açıklanmaktadır. İzole fare valf hücreleri, bu in vitro kireçlenme tahlilleri gibi farklı tahlillerin yapılması ve aort kapak mineralizasyonuna yol açan moleküler yolların araştırılması için önemlidir.

Aort Kapak In Vitro Kalsifikasyonu Çalışmak için Fare Interstisyel Kapak Hücrelerinin İzolasyonu

Keşfedin fare kalp kapakçıklarını minyatür doku kültürü sisteminde (MTCS) kültüre alma yöntemini. Histolojik analiz ile kapak canlılığı ve morfolojisini değerlendirin.

Minyatür Doku Kültürü Sistemde Fare Kalp Vanalar Kültürleme

Daha fazla video keşfet