Name: Restrição manual e rotas de Administração composto comum em camundongos e ratos (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-09-26T12:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 10 s
Description: Aprenda técnicas de contenção manual e administração de compostos em camundongos e ratos. Este método demonstra injeções intraperitoneais, subcutâneas e gavagem oral para pesquisa com animais.

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A pesquisa apresentada aqui foi apoiado por Charles River.

<ol><li>Turner, P. V., Brabb, T., Pekow, C., Vasbinder, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Administration+of+substances+to+laboratory+animals%3A+routes+of+administration+and+factors+to+consider%5BTitle%5D)+AND+%22JAALAS%22%5BJournal%5D)">Administration of substances to laboratory animals: routes of administration and factors to consider.</a> JAALAS. 50, 600-613 (2011).</li>
<li>Diehl, K. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+good+practice+guide+to+the+administration+of+substances+and+removal+of+blood%2C+including+routes+and+volumes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Toxicol%22%5BJournal%5D)">A good practice guide to the administration of substances and removal of blood, including routes and volumes.</a> J. Appl. Toxicol. 21, 15-23 (2001).</li>
<li>Hurst, J. L., West, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Taming+anxiety+in+laboratory+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">Taming anxiety in laboratory mice.</a> Nat. Methods. 7, 825-826 (2010).</li>
<li>Maurer, B. M., Döring, D., Scheipl, F., Küchenhoff, H., Erhard, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+a+gentling+programme+on+the+behaviour+of+laboratory+rats+towards+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Anim.+Behav.+Sci%22%5BJournal%5D)">Effects of a gentling programme on the behaviour of laboratory rats towards humans.</a> Appl. Anim. Behav. Sci. 111, 329-341 (2008).</li>
<li>Cloutier, S., Newberry, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+a+conditioning+technique+to+reduce+stress+associated+with+repeated+intra-peritoneal+injections+in+laboratory+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Anim.+Behav.+Sci%22%5BJournal%5D)">Use of a conditioning technique to reduce stress associated with repeated intra-peritoneal injections in laboratory rats.</a> Appl. Anim. Behav. Sci. 112, 158-173 (2008).</li>
<li>Romanovsky, A. A., Kulchitsky, V. A., Simons, C. T., Sugimoto, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methodology+of+fever+research%3A+why+are+polyphasic+fevers+often+thought+to+be+biphasic%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Methodology of fever research: why are polyphasic fevers often thought to be biphasic.</a> Am. J. Physiol. 275, 332-338 (1998).</li>
<li>Turner, P. V., Pekow, C., Vasbinder, M. A., Brabb, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Administration+of+substances+to+laboratory+animals%3A+equipment+considerations%2C+vehicle+selection%2C+and+solute+preparation%5BTitle%5D)+AND+%22JAALAS%22%5BJournal%5D)">Administration of substances to laboratory animals: equipment considerations, vehicle selection, and solute preparation.</a> JAALAS. 50, 614-627 (2011).</li>
<li>Lukas, G., Brindle, S. D., Greengard, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+route+of+absorption+of+intraperitoneally+administered+compounds%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pharmacol.+Exp.+Ther%22%5BJournal%5D)">The route of absorption of intraperitoneally administered compounds.</a> J. Pharmacol. Exp. Ther. 178, 562-564 (1971).</li>
<li>AALAS. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Laboratory+Mouse+Handbook%22">Laboratory Mouse Handbook</a>. , AALAS. (2009).</li>
<li>AALAS. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22LAT+Training+Manual%22">LAT Training Manual</a>. , AALAS. (2009).</li>
<li>AALAS. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22LATg+Training+Manual%22">LATg Training Manual</a>. , AALAS. (2009).</li>
<li>Barnett, S. W. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBarnett%2C+SW+%22Manual+of+Animal+Technology%22">Manual of Animal Technology</a>. , Wiley-Blackwell. 440(2007).</li>
<li>Baumans, V., Pekow, C. A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBaumans%2C+V+%22Handbook+of+Laboratory+Animal+Science%22">Handbook of Laboratory Animal Science</a>. Hau, J., Schapiro, S. J. 1, CRC Press. 401-446 (2010).</li>
<li>Bogdanske, J. J., Hubbard-Van Stelle, S., Riley, M. R., Schiffman, B. M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBogdanske%2C+JJ+%22Laboratory+Mouse+Procedural+Techniques%22">Laboratory Mouse Procedural Techniques</a>. , CRC Press. (2011).</li>
<li>Danneman, P., Suckow, M. A., Brayton, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDanneman%2C+P+%22The+Laboratory+Mouse%22">The Laboratory Mouse</a>. , CRC Press. (2000).</li>
<li>Sharp, P. E., La Regina, M. C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSharp%2C+PE+%22The+Laboratory+Rat%22">The Laboratory Rat</a>. , CRC Press. (1998).</li>
</ol>

Os autores são funcionários da Charles River.

Este protocolo deve ser visto como uma introdução ao manejo dos animais e administração substância destina a complementar o treinamento prático desde a instalação do pesquisador. Os meios de contenção que será utilizado e as vias de administração substância deve ser considerada no planejamento experimental e quando o protocolo de pesquisa ou da comissão de ética está escrito. Treinamento em procedimentos relacionados a animais é vital para o sucesso da pesquisa. Para executar a maioria dos experimentos, os animais devem ser manuseados por pessoal de investigação, eo melhor manuseio do animal, a menos estressado o animal 3. Acostumar os animais ao contato humano gentil pode reduzir o estresse e fazer os animais sujeitos de pesquisa mais tratáveis ​​4,5. Estresse manuseamento tem sido demonstrado que afecta alguns tipos de pesquisa e 6, é possível que possa afectar outros. Contenção de roedores deve ser feito com cuidado, mas a manipulação de empresa (uma tentativaaderência é provável que resulte em prejuízo para roedores e manipulador) e deve ser para o menor período de tempo prático. Métodos de retenção são geralmente escolhidos com base no tamanho do animal ou o acesso requerido. Por exemplo, a manipulação ratos adultos pela nuca, embora possível, é muitas vezes encontrou-se com forte resistência dos ratos, especialmente se o manipulador é inexperiente. Segurando um rato ou o rato com a mão pode fazer o acesso às veias da cauda difícil e um dispositivo de retenção é geralmente escolhido para manter o animal como ainda possível. Quando os investigadores tratar animais, eles são muitas vezes pretende administrar um composto biológico ou para estudo posterior. A via de administração das substâncias podem afectar a absorção, biodisponibilidade, e uma aptidão para a experiência em particular. Familiaridade com várias rotas devem fornecer aos pesquisadores a capacidade de administrar os seus bens da melhor maneira possível para a sua pesquisa. Por exemplo, um percurso que promove a rápida absorção de uma substância, Tal como por via intravenosa ou intraperitoneal, não deve ser utilizado se o pesquisador deseja administrar a substância de uma forma mais lenta prolongada. Revisões recentes de algumas destas técnicas e considerações de volume, equipamento, e de solutos pode ser encontrada em dois artigos por Turner et al. 1,7 Sempre que as substâncias devem ser administradas a roedores de laboratório, deve considerar-se que o tamanho adequado do equipamento e o volume de substância (descritas no Quadro 1). Indevidamente equipamento de tamanho ou de grandes volumes pode resultar em desconforto, lesão ou morte do animal. Geralmente, substâncias administradas por via parentérica são estéreis, salvo os objetivos da pesquisa tornaria isso impossível (ou seja, estudos de bactérias). Compostos biológicos e deve estar em um soluto ou veículo que terá o menor efeito sobre o animal. Um pH fisiológico (7,3 -7,4) é geralmente bem aceite, especialmente para administração subcutânea, intramuscular, e intraperitoneal rotas. Níveis não fisiológicos de pH em substâncias administradas por estas vias pode resultar em dor ou necrose e danos nos tecidos. Faixas mais amplas de pH são tolerados com rotas intragástrica e intravenosa 7. Em roedores, uma outra consideração importante é a possibilidade de refrigeração, se grandes volumes de fluidos a temperatura ambiente são dados. Se os fluidos estão a ser administrados por via intravenosa ou intraperitoneal, em especial no apoio de um animal doente, que deve ser aquecida à temperatura corporal (37 ° C). As vias de administração discutidos neste protocolo são os mais utilizados em muitos programas de pesquisa, são simples de dominar, e geralmente não requer anestesia. Uma quase infinita variedade de vias de administração é possível, no entanto, incluindo intracraniana, intratecal, epidural, intratraqueal, intra-e intra-articular, para citar apenas alguns. Formação nestas rotas especializadas de administração deve ser procurado por pessoas who tem uma vasta experiência com a rota e bons resultados. Em roedores, a via intranasal é geralmente utilizada para estudar as substâncias introduzidas para os pulmões por meio de uma forma mais &quot;natural&quot;; método de instilação intratraqueal. Os ratinhos e ratos são obrigatórios nariz respiradores, assim induzindo-os a inalar quantidades muito pequenas de fluido não é difícil, até mesmo em animais conscientes. Uma vez que a mucosa nasal é bem suprida de vasos sanguíneos, a administração intranasal de algumas substâncias podem ser semelhantes aos da administração intravenosa. Esta via não é recomendado em animais com rinite, no entanto, uma vez que podem comprometer a absorção. As tentativas para administrar grandes volumes por via intranasal poderá resultar em dispneia ou afogamento do animal. Injecções intramusculares fornecer uma absorção rápida de substâncias. As injeções intramusculares pode ser um desafio em ratos e camundongos, devido ao seu pequeno tamanho e músculos correspondentemente pequenas. Elas são realizadas na pata traseiras. Devido ao potencial de danos do nervo ciático, femoral é o músculo quadriceps de escolha. Embora tanto a subcutânea e intradérmica envolvem a pele, existem diferenças entre a biodisponibilidade de substâncias colocadas na pele contra o subcutâneo. A administração subcutânea é frequentemente considerado como um &quot;depósito&quot; percurso, com absorção mais lenta do que as outras vias, tais como por via intravenosa ou intraperitoneal. A administração intradérmica é usado para volumes muito pequenos de substâncias, normalmente substâncias imunoestimulantes, tais como adjuvante de antigénio-misturas. Em ambos os casos, as substâncias devem ser administradas de pH fisiológico e não irritante. Intradérmica ou subcutânea injecções não deve ser realizada na nuca, uma vez que este é um local de restrição de uso geral para o roedor. A administração intravenosa e intraperitoneal são muitas vezes consideradas equivalentes em roedores. Intravenosa de dosagem proporcionam mais rAPID absorção de compostos, no entanto, ao passo que a administração intraperitoneal deve ser considerado equivalente a administração oral 8. Cuidados devem ser tomados com os compostos por via intraperitoneal, pois podem causar dor se indevidamente de buffer. A via comum de administração de bolus intravenoso, em roedores é através das veias da cauda. Se a administração intravenosa de uma substância crónica é desejada, a implantação de cânulas venosa ou arterial deve ser considerada. Substâncias administradas por via intravenosa deverá ser entregue de forma asséptica e deve ser mostrado para ser seguro para administrar por via intravenosa. Por exemplo, as substâncias que podem induzir a hemólise, trombose, ou vasculite não são apropriados para a administração intravenosa. A via de administração por sonda intragástrica ou por via oral é muitas vezes usado para imitar um percurso de dosagem comum nos seres humanos. Além disso, permite a dosagem exacta de substâncias em comparação com a administração oral, através de alimentos ou da água. A biodisponibilidade de compostosadministrado por gavagem irá variar com base no estado alimentado / jejum do animal, assim como o soluto ou o veículo ou do composto biológico. Agulhas gavage ou a alimentação deve ser de tamanho adequado para o animal a ser utilizado, e deve ser limpo entre os animais, se as agulhas descartáveis ​​gavage não são práticos. Lesões provocadas por gavagem não são incomuns e incluem a deposição da substância no pulmão ou ruptura do estômago ou do esófago. O treinamento deve ser supervisionado por um grupo experiente e realizado em animais sacrificados primeiro, então os animais anestesiados (que serão sacrificados) antes de gavagem em animais acordados é tentada. Primeiras tentativas gavage em animais acordados devem envolver animais de tamanho médio e pequenos volumes de uma substância, como o soro fisiológico, que não irá causar ferimentos se o processo der errado. Os animais devem ser cuidadosamente avaliados para sinais de sofrimento, como ofegante, virando sangramento, azul ou excesso de salivação, após gavagem e sacrificados, se necessário. Se euthanasia for necessário, o animal deve ser necropsiados para determinar por que o procedimento de gavagem falhou.

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome do reagente </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentários </td></tr><tr><td> Agulhas </td><td> Vário </td><td> Vário </td><td> As agulhas são vendidos por ambos calibre e comprimento. Verifique tanto antes de encomendar. </td></tr><tr><td> Seringas </td><td> Vário </td><td> Vário </td><td> Sempre escolher um tamanho adequado para o volume a ser administrado. </td></tr><tr><td> DecapiCones </td><td> Braintree Científica </td><td> DC-200, DCL-120, MDC-200 </td><td> Disponível em mouse e tamanhos de ratos. </td></tr><tr><td> Limitador de roedores </td><td> Harvard Apparatus, Braintree Científica, Plas-Labs, outros </td><td></td><td> Disponível em vidro acrílico, plástico ajustável, e dimensionados para camundongos e ratos. </td></tr><tr><td> 50 ml tubo cónico </td><td> Vário </td><td> &amp; Nbsp; </td><td></td></tr><tr><td> Agulhas alimentação </td><td> VWR, Popper e Filhos </td><td> Vário </td><td> Ajustar o calibre e comprimento da agulha para os animais, tal como descrito acima. Ambas as agulhas descartáveis ​​e reutilizáveis ​​de alimentação estão disponíveis. </td></tr></tbody></table>

restrição manual e rotas de administração composto comum em camundongos e ratos

Manual Restraint and Common Compound Administration Routes in Mice and Rats

Ser capaz de forma segura e eficaz conter camundongos e ratos é uma parte importante da realização de pesquisas. Trabalhando com confiança e de forma humana com camundongos e ratos requer uma competência básica em métodos de manipulação e contenção. Este artigo irá apresentar os princípios básicos necessários para lidar com segurança com animais. Uma mão, de duas mãos, contenção e com objetos de retenção especialmente concebidos será ilustrado. Muitas vezes, uma outra parte da investigação ou utilização de animais de teste é a administração eficaz dos compostos a ratinhos e ratos. Embora haja um grande número de vias de administração possíveis (limitado apenas pelo tamanho e órgãos do animal), a maioria não são usadas regularmente em pesquisa. Este vídeo irá ilustrar várias das vias mais comuns, incluindo intravenosa, intramuscular, subcutânea, e por gavagem oral. O objetivo deste artigo é expor um espectador familiarizado com estas técnicas para contenção básico e vias de administração de substâncias. Este vídeonão substitui as mãos sobre a formação exigidos em suas instalações, mas destina-se a aumentar e completar o treinamento.

Trabalhar com segurança e de forma humana com roedores de investigação exige uma competência central em métodos de manipulação e contenção. Este artigo irá apresentar os princípios básicos necessários para lidar com segurança e efetivamente administrar compostos para camundongos e ratos.

Restrição manual e rotas de Administração composto comum em camundongos e ratos

Ser capaz de conter camundongos e ratos de forma segura e eficaz é uma parte importante da condução de pesquisas. Trabalhar com confiança e humanidade com camundongos e...

O objetivo geral do seguinte vídeo é familiarizar o espectador com diversas técnicas utilizadas para contenção manual e administração de compostos em camundongos e ratos. Camundongos e ratos podem ser contidos por meio de várias técnicas com uma ou duas mãos ou com o uso de dispositivos plásticos de contenção. As técnicas para administração de compostos, como via intraperitoneal, subcutânea, intravascular e intradérmica, são apresentadas neste vídeo, assim como os métodos de injeção, gavagem oral e administração intranasal.Aprender a manipular animais com confiança, gentileza e segurança é uma parte importante da pesquisa in vivo. Os animais devem sempre ser manipulados de maneira segura tanto para o animal quanto para o pesquisador. Geralmente, as pessoas novas nesses métodos podem ter dificuldades, pois leva tempo para se tornar confortável trabalhar com roedores.Roedores também podem intimidar ou assustar pessoas novas no trabalho com eles. A demonstração visual da administração da dose e das técnicas de contenção é fundamental tanto para a administração bem-sucedida do composto quanto para prevenir estresse ou lesões ao animal e ao operador. Camundongos podem ser contidos manualmente utilizando-se uma técnica com uma ou duas mãos.O primeiro passo de qualquer método é levantar suavemente o camundongo pela base da cauda e colocá-lo sobre a grade de arame da tampa da gaiola ou sobre uma superfície áspera semelhante. Para a técnica com uma mão, encaixe a base da cauda entre o terceiro e o quarto dedo enquanto puxa suavemente a cauda para trás. Isso fará com que o camundongo segure a superfície e puxe-se para frente.Em seguida, segure firmemente o camundongo pela nuca com a mesma mão que está segurando a cauda. Segure com o indicador e o polegar próximos à base da cabeça e prolongue o segure ao longo das costas incorporando o dedo médio e o anelar.Certifique-se de aplicar pressão suficiente na pele ao redor do pescoço para impedir que o camundongo gire ou se torça, mas não tanta que o animal não consiga respirar. A técnica com as duas mãos é semelhante, exceto pelo fato de que, enquanto uma das mãos puxa suavemente a cauda para trás, a outra mão segura rapidamente e com firmeza o camundongo pela nuca, com a cauda em uma mão e a nuca na outra. Levante o camundongo e encaixe a base da cauda entre a palma da mão e o terceiro ou quarto dedo da mão que segura a nuca.Como antes, certifique-se de que o aperto está firme, mas ainda permite que o animal respire. O procedimento de segurar a nuca da rata é geralmente realizado com as duas mãos. Primeiro, retire a rata de sua gaiola e coloque-a sobre uma superfície áspera.Em seguida, segure o rato pela cauda com a mão não dominante e puxe suavemente para trás. Segure firmemente a cauda com uma das mãos e, com a outra, aproxime-se da nuca do rato vindo de trás. Aplique pressão suave sobre a parte dorsal do rato enquanto se desloca em direção às escápulas.E, finalmente, segure a pele do pescoço entre os dedos e a palma da mão. Os ratos podem vocalizar quando contidos dessa maneira. Ao usar o aperto por cima do ombro, segure o rato pela cauda com a mão dominante e puxe suavemente para trás.Em seguida, coloque a mão não dominante sobre as costas da rata, aproximando-se por trás. Segure a rata ao redor do tórax com o dedo anelar, mindinho e polegar. A cabeça da rata deve ficar entre o indicador e o dedo médio.Outro método de contenção é o seguramento sob os ombros. Segure a cauda com a mão dominante, como visto anteriormente, e coloque a mão não dominante sobre as costas da rata, aproximando-se por trás. Em seguida, segure o rato ao redor do tórax logo abaixo das escápulas.Os antebraços da rata devem ser suavemente empurrados para cima com o polegar e o indicador. Os antebraços devem cruzar-se sob o queixo da rata, impedindo-a de morder. A rata pode ser segurada dessa maneira com uma mão, desde que o corpo seja estabilizado contra o manipulador.Um cone flexível em forma de funil feito de plástico fino, chamado cone de decapic, também pode ser usado para contenção. Empurre o animal para a frente até que seu focinho saia pelo orifício na extremidade do cone de decapic; segure a abertura fechada ao redor da cauda ou use um elástico ou prendedor para fixar o animal no lugar. Uma vez contido, as injeções podem ser administradas através do material plástico; um recipiente rígido de plástico é útil quando é necessário ter acesso à cauda.Insira a rata conforme descrito pelo fabricante do dispositivo. Com este tipo de contenção, a rata é suavemente puxada para trás para dentro do dispositivo pela cauda. Coloque o fechamento na parte frontal do dispositivo e ajuste-o para limitar os movimentos do animal.Se os animais parecerem agitados, pode-se utilizar o contenção com toalha ao colocá-la sobre o animal; a escuridão e a contenção suave proporcionadas pela toalha podem acalmar uma ratazana agitada. Coloque a toalha suavemente sobre a ratazana e, em seguida, segure-a cuidadosamente ao redor do corpo. Enrole a toalha ao redor da ratazana, certificando-se de não cobrir o nariz do animal.Mova a toalha para que a parte do corpo destinada à injeção fique exposta. Antes de realizar qualquer uma das técnicas de administração a seguir, é benéfico praticar o manuseio da seringa. Idealmente, uma das mãos manipulará a seringa enquanto a outra imobiliza o animal. As agulhas devem ser inseridas no animal com o bisel voltado para cima, especialmente para injeções intravenosas.Agulhas de calibre fino são facilmente danificadas ao serem inseridas nas tampas de frascos. Utilize um calibre maior para retirar os materiais e depois substitua por um calibre menor para a injeção. A administração intranasal é usada para alguns tipos de agentes infecciosos em estudos de alergia e asma, e em algumas pesquisas envolvendo os pulmões.A administração intranasal não exige anestesia nem cirurgia, como ocorre com a instilação intra-traqueal. Para a administração intranasal, imobilize o animal conforme descrito anteriormente e, com uma seringa ou pipetador, coloque uma pequena quantidade do material a ser inalado nas narinas do animal. Observe se o material desaparece nas narinas e repita conforme necessário.Os compostos são administrados por via intramuscular se exigirem absorção rápida e puderem ser administrados em volumes muito pequenos. A contenção para injeções intramusculares pode exigir duas pessoas, já que uma das patas traseiras deve ficar livre e estabilizada para a injeção. Insira a agulha perpendicularmente à pele sobre o músculo quadríceps ou a região lateral da coxa do animal.Tenha cuidado para não injetar na massa muscular posterior, pois é possível danificar o nervo ciático. A administração intraperitoneal é escolhida quando há um grande volume de composto a ser administrado e quando é aceitável a taxa de absorção, aproximando-se à da administração oral.Para realizar uma injeção intraperitoneal, imobilize o animal e oriente a ponta do nariz dele em direção ao chão. Para expor o abdômen, localize a linha média do animal e mentalmente divida o abdômen em quadrantes.Escolha um local de injeção nos quadrantes inferiores, especialmente no quadrante inferior direito do animal. Utilize uma seringa e agulha de tamanho apropriado para injetar o material no animal. A administração subcutânea de uma substância é utilizada quando se deseja uma absorção lenta.Camundongos e ratos possuem grande quantidade de pele solta, de modo que volumes relativamente maiores podem ser administrados por via subcutânea em comparação com humanos. Para injeções subcutâneas, imobilize levemente o animal conforme mostrado anteriormente. Segure a pele e puxe-a suavemente para cima.Fazendo uma prega com uma seringa e agulha de tamanho apropriado, insira a agulha num ângulo de 30 a 45 graus na pele pregada e injete o material. Um pequeno inchaço sob a pele é o indicativo de uma injeção bem-sucedida. Se os animais forem manuseados rotineiramente após a injeção subcutânea, não utilize a nuca.Em vez disso, utilize a pele na região dorsal do dorso. Se os animais devem receber múltiplas injeções subcutâneas, os locais de injeção devem ser alternados. A contenção dos animais durante a administração intradérmica pode ser difícil e exigir o uso de sedação química. Se um anestésico for utilizado, certifique-se de que ele não interfira com os objetivos da pesquisa.Ao realizar uma injeção intradérmica, primeiro, remova os pelos do local da injeção para que a pele fique claramente visível no sítio de injeção. Insira uma agulha de tamanho apropriado na pele em um ângulo de 15 a 30 graus. Não insira a agulha muito profundamente.Se inserida corretamente, a injeção deve encontrar resistência. Uma pequena bolha, que será mais pálida do que a pele ao redor, será visível caso a injeção tenha sido bem-sucedida. Aplique pressão suave para evitar o refluxo do material.A administração intravascular é utilizada para uma grande variedade de compostos e é a via ideal quando o composto pode ser adequadamente formulado e quando se deseja um efeito muito rápido. Para uma injeção intravascular na veia lateral da cauda, imobilize o animal em um cone de decapitação ou em um dispositivo de contenção para roedores. Como demonstrado anteriormente, segure a cauda do animal pela ponta com a mão não dominante para esticar e girar. Um quarto de volta para posicionar as veias da cauda dorsalmente.Identifique uma das duas veias laterais da cauda para a injeção, evitando a artéria ventral da cauda. Aproxime-se da porção distal da cauda com a agulha em um ângulo de 15 a 20 graus e injete o material. Uma injeção bem-sucedida fará com que o material entre na veia sem resistência e cause o embranquecimento da veia da cauda durante toda a duração da injeção.Posicionar a injeção mais distalmente preserva uma porção intacta da veia que pode ser utilizada caso a primeira tentativa não seja bem-sucedida. A administração intragástrica ou por gavagem oral é realizada apenas em animais acordados e contidos, pois a anestesia ou sedação aumenta o risco de aspiração. Compostos cuja segurança está sendo testada para administração oral humana são frequentemente administrados dessa forma. Comece selecionando uma agulha de alimentação oral de tamanho apropriado.O comprimento é determinado segurando o animal imobilizado em posição vertical e medindo a partir do canto da boca. A ponta esférica da agulha de alimentação deve alcançar a última costela do animal; imobilize o animal de modo que sua cabeça e seu corpo fiquem em uma linha reta vertical.Isso alinha o esôfago, permitindo uma passagem mais fácil da agulha de alimentação. Insira a ponta esférica da agulha na boca do animal, posicionando-a sobre a língua. Uma vez que a agulha esteja no lugar, levante a agulha e a seringa suavemente, pressionando contra o palato, de modo que o nariz do animal fique voltado para o teto.Pode ser necessário redirecionar ligeiramente a agulha ao passar pela parte posterior da garganta. Qualquer tensão na agulha indica a necessidade de ajustar a posição; continue avançando a agulha até alcançar a distância predeterminada. A agulha deve avançar com facilidade e o animal não deve ofegar nem engasgar ao administrar a substância.Se houver resistência ou se o animal ofegar, engasgar ou ficar azul, pare imediatamente e remova a agulha. Uma vez dominadas, essas técnicas permitirão administrar doses com segurança tanto em ratos quanto em camundongos e contê-los eficazmente. Ao tentar esses procedimentos, é importante lembrar que um animal corretamente contido torna o procedimento seguro tanto para o animal quanto para o manipulador.Não se esqueça de que trabalhar com animais na ciência é um privilégio e uma responsabilidade. Escolher o método correto de contenção e as vias apropriadas de administração é boa ciência e boa prática de bem-estar animal.

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As análises de expressão do promotor são cruciais para melhorar a compreensão da regulação gênica e a spatiotemporal expressão de genes-alvo. Aqui apresentamos um protocolo para identificar, isolar e clonar um promotor da planta. Além disso, descrevemos a caracterização do promotor nódulo específicos nas raízes peludo feijão comum.

Análise do promotor de planta: Identificação e caracterização de raiz nódulo promotor específico no feijão comum

Este artigo demonstra os princípios de uma injeção rápida, minimamente invasiva de micropartículas fluorescentes para a circulatory system de peixes pequenos e a visualização na vivo das micropartículas em sangue de peixe.

Administração simples e eficaz e visualização de micropartículas no sistema circulatório de peixes pequenos usando injeção de rim

Aprenda técnicas de contenção manual e administração de compostos em camundongos e ratos. Este método demonstra injeções intraperitoneais, subcutâneas e gavagem oral para pesquisa com animais.

Restrição manual e rotas de Administração composto comum em camundongos e ratos

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