Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Bioengineering

Создание двумерных рисунком Подложки для конфайнмента белков и клеточных

Published: September 6, 2011 doi: 10.3791/3164

Summary

Самоорганизующихся монослоев (ЗРК), составленный из длинной цепи алканов тиолов на золото обеспечивают четко определенные субстраты для образования белка моделей и камеру. Микроконтактной печати hexadecanethiol использованием полидиметилсилоксан (PDMS) штамп следует засыпка с гликоля прекращено алканов тиоловых мономера производит шаблон, в котором белки и клетки адсорбировать только штамп hexadecanethiol регионе.

Abstract

Микроконтактной печати обеспечивает быстрое, очень воспроизводимый метод для создания четко определенных субстратов узорной. Микроконтактной 1 Во время печати можно использовать для непосредственно печатать большое число молекул, включая белки, ДНК, 2, 3 и силанов, 4 формирование собственного монослоев (ЗРК) с длинной цепочкой алкан тиолов на золото обеспечивает простой способ ограничить белки и клетки для конкретных моделей содержащих клей и устойчивые регионы. Это заключение может быть использован для контроля морфологии клеток и используется для изучения различных вопросов в белке и клеточной биологии. Здесь мы опишем общий метод создания четко определенных белков модели для сотовых исследования 5 Этот процесс включает в себя три этапа:. Производство мастер узорной использованием фотолитографии, создание штампа PDMS, и микроконтактной печать золотом покрытие подложки. Как только рисунком, эти субстраты культуры клеток способны ограничиваясь белков и / или клетки (первичные клетки или клеточные линии), чтобы узор.

Использование самоорганизующихся монослоя химии позволяет точный контроль над узорной белок / клетка клей регионов и неклейкой регионах; это не может быть достигнута с использованием прямого штамповки белка. Hexadecanethiol, длинной цепи алканов тиоловых используются на этапе печати микроконтакта производит гидрофобной поверхности, которая легко адсорбирует белка из раствора. Гликоля прекращено тиол, используемый для засыпки непечатные регионов подложке, создается монослой, которая устойчива к адсорбции белка и, следовательно, роста клеток. Шесть Эти тиоловых мономеров производят хорошо структурированный монослоев, что точно определить регионы субстрат, который может поддерживать адсорбции белка и роста клеток. В результате этих субстратов полезны для широкого круга приложений от изучения межклеточных поведения 7 до создания микроэлектроники 8.

Хотя другие виды монослоя химии были использованы для исследования клеточных культур, в том числе работы из нашей группы, используя trichlorosilanes для создания шаблонов непосредственно на стеклянных подложках, 9 узорной монослоев формируется из алкан тиолов на золото являются прямыми, чтобы подготовиться. Более того, мономеров, используемых для подготовки монослоя имеются в продаже, стабильной, и не требуют хранения или обработки в инертной атмосфере. Узорные субстратов приготовленный из тиолов алканов также могут быть переработаны и использованы повторно несколько раз, сохраняя камеру 10.

Protocol

1. Подготовка рисунком Master (рис. 1)

  1. Центр кремниевой пластины на спин-для нанесения покрытий и промойте пластину с ацетоном на первоначальном этапе, из двух циклов спин программы в таблице 1. Ацетон испаряется во время второго этапа программы спина оставляя чистую, сухую подложку.
  2. Применить примерно 1 мл AZ9245 фоторезистом / в (в диаметре), чтобы пластины и спин-слой, используя условия, описанные в таблице 1.
  3. Soft-печь фоторезиста покрытием пластин при 110 ° С в течение 2 м с использованием высокой однородностью плитой.
  4. Photopattern подложке, используя либо прямой записи системы фотолитографии или система маски Aligner и соответствующую маску. Маски можно приобрести у ряда коммерческих источников. Кроме того, прозрачные пленки печатается с УФ-абсорбирующие чернила, приклеенный к оптическим квартиру, могут быть использованы для производства моделей с большими возможностями.
  5. Разработка узорной пластины в 1:02 400K Разработчик: полупроводниковые класса деионизированной воды на 1 м 45 с при легком помешивании. Тщательно промойте полупроводниковых класса деионизированной водой и насухо потока азота (N 2) газа. План развития можно проверить с помощью микроскопа с УФ-фильтром. Если картина не полностью разработана, пластины могут быть возвращены в разработке решения для дополнительного времени.

Примечание: Для достижения наилучших результатов photopatterning должны проводиться в чистом помещении окружающей среды.

2. Подготовка PDMS Stamp (рис. 2)

  1. Подготовка 10:01 по весу смолы: отвердителя смесь Sylgard 182 (PDMS) и полностью покрывают мастер (photopatterned пластины) с смеси в одноразовых чашках Петри.
  2. Де-газ PDMS покрытые мастером в вакуум эксикаторе до исчезновения пузырей видны и позволяют вылечить штамп в духовке при температуре 65 ° С в течение 1,5 ч. До лечения, важно убедиться, что мастер в нижней части блюда, как это может подниматься на поверхность во время дегазации шаг.
  3. Вырезать PDMS штамп из мастера и отделки для соответствующего размера. Магазин штамп в закрытой емкости (функция стороной вверх), чтобы защитить его от пыли и мусора.

3. Подготовка основания Золотой рисунком (рис. 3)

  1. Подготовка 25 мм нет. 1 раунд покровные стекла для осаждения металлов, рассматривая их с кислородной плазмы на 10 м. Промыть два раза с 18,2 МОм деионизированной водой, а затем два раза с этанолом, сушка с потоком газа N 2 после каждого шага.
  2. Использование нескольких карманных электронно-лучевого напыления системы, депозит 50 титановой затем 150 золотых. Не выход испарителя между осаждением слоя титана и золота слоя. Кроме того, с золотым покрытием покровные могут быть приобретены у различных поставщиков, однако, важно, чтобы слои металла получают путем электронно-лучевого испарения и не термическое испарение. Если купить у внешнего источника, золото подложки могут быть очищены путем окисления плазмы или "пираньи" (7:3 Конц H 2 SO 4. 30% H 2 O 2) 11 перед использованием.

Примечание: "Пиранья" Решение взрывчатого вещества в присутствии органических соединений.

  1. Подготовка штамповки раствор, 10 мМ hexadecanethiol в абсолютном этаноле, и засыпка решение, 1 мМ гликоля прекращено тиоловых в абсолютном этаноле.
  2. Промыть штамп с этанолом и тщательно высушите с N 2 газа. Применение штамповки решение по каплям штамп PDMS до полного покрытия. Сухой штамп тщательно N 2 газа. Приступить к 5a или 5b по мере необходимости на основе особенностей штамп PDMS.
    1. Осторожно надавите на печать золотой подложке и позволяют формировать монослой в течение 15 сек
    2. Место золотой подложки в чашке Петри содержащего 18,2 МОм деионизированной воды, обеспечивая субстрат водой. Осторожно надавите на печать золотой подложке и позволяют формировать монослой в течение 15 сек
  3. Промыть штамп подложки в два раза с этанолом, сушка с N 2 газа после каждого полоскания и место субстрата в чашке Петри.
  4. Обложка подложки с обратной засыпки решение и печатью блюдо с парафильмом для предотвращения испарения.
  5. Разрешить фоном для формирования монослоя в темноте в течение 12-14 ч.
  6. Удалить узорной покровное от засыпки раствора и прополоскать в два раза с этанолом, сушка с N 2 газа после каждого полоскания.

4. Применение белков и клеток на рисунке субстрат

  1. Место узорной покровное в маленькой чашке Петри или в камере культуре клеток и покрытие с 500 мкл в 1 мл фосфатного Дульбеко буферного раствора (DPBS). DPBS должна полностью покрывать субстрат во время инкубации белка для обеспечения равномерного покрытия белка.
  2. Добавить концентрированный раствор белка DPBS и перемешать раствор трубыTing в несколько раз. Инкубируйте белковая смесь с подложкой при температуре 37 ° С в течение 1 ч. Заключительные концентраций ламинина и фибронектина, как правило, 12 мкг / мл и 20 мкг / мл, соответственно. Белки могут быть помечены амин реактивной флуоресцентного красителя, что обеспечивает удобство визуализации картины. Тем не менее, меченого белка следует смешивать 1:1 с немеченого белка, как белка маркировки может повлиять на биологическую активность.
  3. После инкубации промыть субстрат тщательно DPBS (4-5x) для удаления несвязанных белков, осторожно, чтобы не сухой субстрат или привести его в воздух-вода. После первых трех полосканий, добавить примерно 500 мкл полной СМИ рост клеток для поддержания мокрой поверхности.
  4. Замените питательной среды использовали для полоскания подложки со свежей информации.
  5. Диссоциируют и посчитать клетки для нанесения покрытий на подложку. Либо диссоциированных первичные элементы, такие как нейроны гиппокампа, или увековечены клеточные линии, например, СНО-К1 клетки, могут быть использованы.
  6. Пластина диссоциированных клеток на подложке. Обычно от 30 до 200 клеток / мм 2 используются.

5. Представитель Результаты:

Рисунок 1
Рисунок 1. Общая схема для фотолитографии подготовке мастер узорные. В этом процессе, кремниевой пластины очищают ацетоном, покрытых фоторезистом, подвергается картина интересов, а также картины развивается.

Рисунок 2
Рисунок 2. Общая схема подготовки штамп PDMS. В этом процессе, мастер узорной покрыта Sylgard (10:1 смола: отвердитель), де-газом в вакуум-эксикаторе, вылечить в духовке при температуре 60 ° С, а нарезанная по размеру.

Рисунок 3
Рисунок 3. Общая схема для подложки рисунка. В этом процессе, стеклянные подложки покрывают титана (50а) и золота (150A) с помощью электронного пучка испарителя, узорчатое по микроконтактной печати hexadecanethiol использованием штампа PDMS, засыпаны гликоль прекращено тиолов алкана, и покрыты флуоресцентно меченых белков.

Рисунок 4
Рисунок 4. Рисунком мастера () и PDMS штамп (B) подготовлен с использованием описанных методов. Шкала бары 100 мкм.

Рисунок 5
Рисунок 5. Рисунком ЗРК визуализированы с AlexaFluor 647-меченый фибронектин (А) и СНО-К1 камеру (В). Шкала бары 100 мкм.

Рисунок 6
Рисунок 6. Рисунком ламинин засеяно E18 мыши нейронов гиппокампа на 4 дня в пробирке. AlexaFluor 350-сопряженных анти-ламинин антител Образец используется для визуализации () и E18 мыши нейронов гиппокампа окрашиваются с MitoTracker Красная 580 (В). Шкала бары 100 мкм.

Рисунок 7
Рисунок 7. Потенциальные ловушки в узорной подготовки субстрата визуализируется AlexaFluor 647-сопряженных фибронектина адсорбции. () Недостаточное перемешивание приводит к неравномерному адсорбции белка. (B) Неравномерное применение давления во время штамповки приводит к частичной передаче Паттен. (C) Избыточное давление во время штамповки может привести к краху штамп. (D) Воздействие на узорной поверхности воды интерфейс воздуха во время промывки может привести в фоновом режиме адсорбции белка. Шкала бары 100 мкм.

Рисунок 8
Рисунок 8. Подводная структурирование может производить модели с мелкими чертами, которые трудно печатать обычными печати микроконтактной в воздухе. Изображения () и (Б) показывают, различных регионов по той же схеме, напечатанной с тем же штампом PDMS в воздухе () или деионизированной воды (B). 10 мкм всей линии поддержки, которые окружают картины (добавлено, чтобы предотвратить крах штамп) рассматриваются в (), однако, меньше точки функции, как показано в (Б) не видно. Это свидетельствует о том, что печать в воздухе хорошо работает для больших возможностей, но печать в воде может быть необходимо для моделей с меньшими возможностями. Шкала баров 20 мкм.

Цикл Ускорение скорости (об / сек) Конечная скорость (оборотов в минуту) Раз (а)
1 500 1000 5
2 3800 3800 30

Таблица 1.Два цикла спин Программа использовалась для создания 4,5 мкм покрытия AZ9245 на кремниевой пластине.

Для подготовки PDMS штампов для образования узорной субстратов, мастер в фоторезист первой сфабрикованы (рис. 1, 4А). Мастер обратная печать и создается с помощью либо прямой записи системы литографии или маски Aligner. При положительном фоторезиста, например, AZ9245, используется для производства мастер, сопротивляться покрытием пластины под действием света с той же схеме, которая появится на окончательный субстрат. Хотя это не всегда возможно, было сообщено, что идеальным соотношением сторон (функция размера, чтобы противостоять толщины) для мастеров штамп PDMS 1:2. 13 Мы обнаружили, что пропорции 1:40 возможны, в зависимости от характера узора. AZ9245 покрытием пластин кремния в условиях, описанных здесь дают фоторезиста с номинальной толщиной 4,5 мкм. Мы обнаружили, что эта толщина AZ9245 может быть использована для производства PDMS мастеров с функциями, начиная от> 100 мкм до 2 мкм.

PDMS марки отлиты из Sylgard 182 (или Sylgard 184) с помощью мастера изготавливают из фоторезиста (рис. 2). Фоторезист мастера могут быть использованы несколько раз, чтобы создать много копий одного и того же штампа. После затвердевания PDMS, штампы удаляются из мастер использованием лезвия бритвы и в результате штамп может быть визуализированы под микроскопом, поставив штамп стороне особенность вниз на стекло покровное (рисунок 4B)

Правильное штамповки приводит к резкому, четкой закономерности белок, который может быть визуализированы с применением флуоресцентно меченых белков (рис. 3 и 5). Кроме того, иммуногистохимии могут быть использованы для визуализации белка картина после фиксации клеток (рис. 6). Рост клеток хорошо ограничивается белка шаблон для увековечены клеточных линий и первичных элементов (рис. 5 и 6).

Хотя этот метод легко освоить, несколько общих проблем может возникнуть. Применение белка без достаточного перемешивания концентрированного раствора белка в DPBS может привести к неравномерному модели белка (рис. 7а). Неправильное штамповки может привести к частичной передаче шаблон или штамп распада (рис. 7B-C). Кроме того, выставляя узорной субстрата, содержащего адсорбированные белки в воздухе может привести к нарушению монослоя вызывая уменьшилось сопротивление в фоновом режиме (рис. 7D). Шаблоны состоят из очень маленьких особенностей (<5 мкм) и высокой пропорции часто требуют использования подводных микроконтактной печати. В этой процедуре (3.5b) вода используется в качестве барьера для предотвращения hexadecanethiol от сдачи на подложку за пределами шаблона (рис. 8). 14

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Ряд вопросов может возникнуть в литографических производство мастер использовал для создания штампа PDMS. Недодержка из сопротивляться покрытием пластин приводит туманные и нечеткие модели и переоблучения противостоять покрытие пластин приводит к увеличении или отсутствие возможностей. В общем, мастера с большим числом функций (> 10 мкм) могут быть сравнительно легко картины и развиваться, в то время как мастера с меньшими функциями может потребовать обширных оптимизации photopatterning и развития параметров (за параметрами, рекомендованными производителем фоторезиста). Самых сложных мастеров по производству сочетать оба больших и малых возможностей.

Изготовление штампа PDMS от мастера прост используя процедуру, описанную в разделе 2. Тем не менее, необходимо соблюдать осторожность, чтобы полностью смесь двух компонентов Sylgard 182. Неспособность добиться полного смешения компонентов приведет к невозможности для упрочнения штамп и, вероятно, уничтожение хозяина. Кроме того, мастер может разбиться, когда отделяя ее от штампа PDMS при чрезмерной силы используется или скручивание происходит во время разлуки. Если мастер делает перерыв в процессе удаления штамп, он все еще может быть возможность использовать штамп после очистки с этанолом. Однако, эта марка может привести к модели с дефектом сайтов.

Хотя микроконтактной печати ЗРК использованием штампа PDMS является универсальным и может быть полезна во многих приложениях, ряд важных шагов должно следовать для достижения успешных белка и камеру. Для получения хороших белков и камеру, золото основания должны быть подготовлены с помощью электронно-лучевого напыления, так как термическое испарение приводит к шероховатой поверхности золота, которые не поддерживают правильного формирования монослоя. Более того, мы обнаружили, что как стеклянная подложка готова для нанесения титан и золото также влияет на качество подложки монослоя золота и стабильности. Хотя стеклянные подложки могут быть очищены для осаждения, используя различные методы, в том числе кипения метанола, "пираньи", 11 и "Стервятник" решение, 12 в наших руках покровные подготовленных плазмы окисления намного превосходят покровные чистить с помощью других методов. Мы заметили, что растворитель, кислота и основание основе методов очистки дать монослоев со снижением временной стабильности и увеличение числа дефектов сайтов.

Точной техникой тиснения, необходимых для производства оптимального белков и клеточных моделей варьируется в зависимости от размера и формы функций, которые будут с печатью и соотношением сторон штампа. Как правило, точные штамповки технику для каждой новой марки должны быть оптимизированы и штамповки техника улучшает после нескольких судебных разбирательств. Применение слишком большого давления во время тиснения приведет к краху штамп, который склонен к случиться с марками, содержащих большие пропорции (рис. 7). Кроме того, применение слишком мало давление приводит к частичной передаче картина (рис. 7б). Кроме того, можно воспользоваться техникой тиснения, чтобы слегка изменить особенности картины. Например, мы обнаружили, что функции могут быть слегка увеличился в размерах путем штамповки на более длительные периоды времени и другие сообщили, что размеры некоторых функций можно уменьшить, используя методы погружения микроконтактной печати. ​​15 Часто пузырьки воздуха попасть в ловушку под штампом, когда выполнение погруженной штамповки, однако, этот метод может дать наилучшие результаты при малых объектов в сочетании с большими пропорциями желательны.

Есть много преимуществ в использовании микроконтактной печати в сочетании с самоорганизующихся монослоя химии. При прямой печати белков на подложки, конформационные изменения, как было показано, происходят 16 относится к этапу, на котором белки сушат в течение процесса штамповки. Это стадии сушки, как полагают, приводит к агрегации белков и денатурации, которая, в свою очередь влияет на функции белка. В ЗРК, белки адсорбируются на подложке из буфера водного раствора, идентичны как субстраты, как правило, готовы к культуре клеток. Кроме того, микроконтактной печати белков не достигает камеру в течение длительного периода времени, в связи с отсутствием устойчивых молекул белка фоне. 17 В противоположность этому, использование однослойных фоне гликоля обеспечивает отличную камеру. 5 В тех случаях, когда использование золотой подложке либо невозможно, либо нежелательно, трихлорсилана мономеры могут быть использованы вместо того, чтобы разрешить для удержания белков и клеток. 9 Хотя Есть методы для удержания белков и клеток, которые не полагаются на микроконтактной печати, эти методы, как правило, более трудоемкий и не поддаются производства большого количества одинаковых субстратов обычно требуются для биологических исследований. 18,19

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Нет конфликта интересов объявлены.

Acknowledgments

Мы хотели бы выразить признательность всей группы Maurer в Вашингтонском университете, чье совокупное знание сделало этого протокола возможно. Финансирование этих работ осуществляется Национальным институтом психического здоровья (1R01MH085495).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Silicon wafer Wafer Reclaim Services 2 inch
Spin coater/hot plate Brewer Science, Inc. Cee 200CB Spin-Bake System
AZ9245 Photoresist Mays Chemical Company 105880034-1160
Direct-write photolithography system Microtech s.r.l. LW325 LaserWriter System
Mask Aligner HTG 3HR
AZ 400K Developer Mays Chemical Company 105880018-1160
Sylgard 182 Silicone Elastomer Kit Dow Corning
25 mm no. 1 round glass coverslips VWR international 16004-310
Plasma Oxidizer Diener Femto
Titanium piecesKamis Incorporated 99.95% pure
Gold pellets Kamis Incorporated 99.999% pure
Electron-beam evaporator Kurt J. Lesker PVD 75 Thin Film Deposition System with electron-beam accessory
Hexadecanethiol Alfa Aesar A11362
1-mercaptoundec-11-yl)tetra(ethyleneglycol) Sigma-Aldrich 674508
Ethanol Pharmco-AAPER 111000200 200 proof, absolute
Parafilm VWR international 52858-000
DPBS VWR international 4500-434 Without calcium and magnesium
Mouse Laminin I VWR international 95036-762
Human Plasma Fibronectin Invitrogen 33016-015
AlexaFluor® 647 carboxylic acid, succinimidyl ester Invitrogen A-20006
MitoTracker Red 580 Invitrogen M22425
AlexaFluor® 350 carboxylic acid, succinimidyl ester Invitrogen A-10168
Anti-laminin antibody Fisher Scientific AB2034MI

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Wilbur, J., Kumar, A., Biebuyck, H., Kim, E., Whitesides, G. Microcontact printing of self-assembled monolayers: Applications in microfabrication. Nanotechnology. 7, 452-457 (1996).
  2. Chang, J., Brewer, G., Wheeler, B. A modified microstamping technique enhances polylysine transfer and neuronal cell patterning. Biomaterials. 24, 2863-2870 (2003).
  3. Lange, S., Benes, V., Kern, D., Horber, J., Bernard, A. Microcontact printing of DNA molecules. Analytical Chemistry. , 1641-1647 (2004).
  4. Xia, Y., Mrksich, M., Kim, E., Whitesides, G. Microcontact printing of octadecylsiloxane on the surface of silicon dioxide and its application in microfabrication. J. Am. Chem. Soc. , 9576-9577 (1995).
  5. Mrksich, M., Dike, L., Tien, J., Ingber, D., Whitesides, G. Using microcontact printing to pattern the attachment of mammalian cells to self-assembled monolayers of alkanethiolates on transparent films of gold and silver. Experimental Cell Research. , 305-313 (1997).
  6. Prime, K. L., Whitesides, G. M. Adsorption of proteins onto surfaces containing end-attached oligo(ethylene oxide) - a model system using self-assembled monolayers. J. Am. Chem. Soc. 115, 10714-10721 (1993).
  7. Raghavan, S., Desai, R., Kwon, Y., Mrksich, M., Chen, C. Micropatterned Dynamically Adhesive Substrates for Cell Migration. Langmuir. , 17733-17738 (2010).
  8. Rogers, J., Bao, Z., Baldwin, K., Dodabalapur, A., Crone, B., Raju, V. R., Kuck, V., Katz, H., Amundson, K., Ewing, J. Paper-like electronic displays: Large-area rubber-stamped plastic sheets of electronics and microencapsulated electrophoretic inks. Proc Natl Acad Sci U S A. 98, 4835-4840 (2001).
  9. Yanker, D., Maurer, J. Direct printing of trichlorosilanes on glass for selective protein adsorption and cell growth. Molecular Biosystems. 4, 502-504 (2008).
  10. Johnson, D., Maurer, J. Recycling and reusing patterned self-assembled monolayers for cell culture. Chemical Communications. , 520-522 (2011).
  11. Herne, T., Tarlov, M. Characterization of DNA probes immobilized on gold surfaces. J. Am. Chem. Soc. , 8916-8920 (1997).
  12. Hanson, E., Schwartz, J., Nickel, B., Koch, N., Danisman, M. Bonding self-assembled, compact organophosphonate monolayers to the native oxide surface of silicon. J. Am. Chem. Soc. , 16074-16080 (2003).
  13. Johannes, M., Cole, D., Clark, R. Atomic force microscope based nanofabrication of master pattern molds for use in soft lithography. Applied Physics Letters. , (2007).
  14. Bessueille, F., Pla-Roca, M., Mills, C. A., Martinez, E., Samitier, J., Errachid, A. Submerged microcontact printing (SμCP): An unconventional printing technique of thiols using high aspect ratio, elastomeric stamps. Langmuir. , 12060-12063 (2005).
  15. Xia, Y., Whitesides, G. Extending microcontact printing as a microlithographic technique. Langmuir. , 2059-2067 (1997).
  16. Biasco, A., Pisignano, D., Krebs, B., Pompa, P. P., Persano, L., Cingolani, R., Rinaldi, R. Conformation of microcontact-printed proteins by atomic force miroscopy molecular sizing. Langmuir. , 5154-5158 (2005).
  17. Shen, K., Qi, J., Kam, L. C. Microcontact printing of proteins for cell biology. J Vis Exp. (22), e1065-e1065 (2008).
  18. Piner, R., Zhu, J., Xu, F., Hong, S., Mirkin, C. "Dip-pen" nanolithography. Science. 283, 661-663 (1999).
  19. Ryan, D., Parviz, B. A., Linder, V., Semetey, V., Sia, S. K., Su, J., Mrksich, M., Whitesides, G. M. Patterning multiple aligned self-assembled monolayers using light. Langmuir. , 9080-9088 (2004).

Tags

Биоинженерия выпуск 55 самоорганизующихся монослоя (SAM) микроконтактной печати белок рисунка узорные рост клеток
Создание двумерных рисунком Подложки для конфайнмента белков и клеточных
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Johnson, D. M., LaFranzo, N. A.,More

Johnson, D. M., LaFranzo, N. A., Maurer, J. A. Creating Two-Dimensional Patterned Substrates for Protein and Cell Confinement. J. Vis. Exp. (55), e3164, doi:10.3791/3164 (2011).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter