Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Immunology and Infection
Click here for the English version

Immunology and Infection

Gelen Yumurta kullanma Published: June 5, 2012 doi: 10.3791/3905
Automatic Translation
1, 2, 2, 1
1Institute of Immunology, Department of Microbiology, Perelman School of Medicine, University of Pennsylvania, 2Pathobiology, School of Veterinary Medicine, University of Pennsylvania

Summary

Schistosoma mansoni yumurta T hücre tip 2 (Th2) immün yanıt, parazit enfeksiyonu karakteristik, astım ve allerjik inflamasyonun güçlü uyarıcılar vardır. Bu protokol S. kullanır CD4 Th2 sitokin bağlı inflamatuar yumurtanın etrafında akciğer granülom oluşumu ile karakterize, akciğerin yanıt, eozinofili ve makrofaj aktivasyonu alternatif oluşturmak için mansoni yumurta enjeksiyon.

Abstract

Schistosoma parazitleri dünyada tahminen 200 milyon kişi 1 enfekte kan kurtları vardır. Schistosoma, karaciğer fibroz ve splenomegali de dahil olmak üzere ciddi patoloji, kronik enfeksiyon oldukça parazitin kendisini 2 den parazit yumurtaları için bağışıklık yanıtı kaynaklanır. Parazit yumurtaları, IL-4 üretimini, IL-5, IL-13, makrofaj alternatif aktivasyonu ve eozinofillerin alımı ile karakterize edilen, Th2 tepkisinin uyarılmasından. Burada, parazit özgü akciğer Th2 sitokin yanıtları ve lenf düğümleri, yumurta çevreleyen pulmoner granuloma oluşumu ve hava yolu inflamasyonu incelemek için bir model olarak Schistosoma mansoni yumurta enjeksiyonu açıklar.

Intraperitoneal hassasiyete ve intravenöz meydan, S. ardından mansoni yumurta onlar akciğer parankimi içinde sıkışıp kalırlar pulmoner arterler yoluyla akciğere taşınırlenfositler, eozinofiller ve alternatif aktive makrofajlar 3-6 oluşan granülomlarlakarakterize. Bronko-alveolar alanlarda granülom oluşumu, inflamasyon ile ilişkili, lenf düğümleri ve CD4 genişleme T hücre aktivasyonu görülebilir. Burada ayrıntı, enfekte ciğeri (7 değiştirilerek) den Schistosoma mansoni yumurta tecrit fareler hassasiyet ve zorlu ve analizi için organların (bronko-alveolar lavaj (BAL), akciğer ve lenf düğümleri) kurtarmak için protokol. Biz de temsilcisi histolojik ve ek immünolojik analizi için immünolojik veriler ve öneriler içerir.

Genel olarak, bu yöntem, in vivo modelde, bir parazit enfeksiyonu, fibrotik hastalıkları, alerjik enflamasyon ve astım da dahil olmak üzere Th2 enflamatuar hastalıkların çalışması için genel olarak uygulanabilir olan, akciğer parazit kaynaklı immünolojik yanıtları araştırmak için sağlamaktadır. Tipik bir çalışma için, bu modelde avantajlarıAkciğer e 2 iltihabı akciğer güçlü bir Th2 inflamatuvar yanıt tekrarlanabilirlik ve lenf düğümleri, yumurta çevreleyen granülomların histolojik inceleme ile inflamasyonun değerlendirilmesi kolaylığı ve parazit uzun süreli depolama için potansiyel bulunmaktadır yumurta.

Protocol

1. Schistosoma mansoni Yumurta Arındırıcı

  1. Schistosoma yaşam döngüsü 8 bulaşıcı aşamasıdır şiştozom cercariae ile İsviçre-Webster fareler bulaştırmak. Alternatif olarak, NIAID Schistosomiasis Kaynak Merkezi (gelen şiştozom bulaşmış farelerde elde http://www.schisto-resource.org/~~V ). Olduğu zaman noktası tarafından, yumurta karaciğer mevcut olan ve aşağıda açıklandığı gibi (bakınız Şek. 1) elde edilebilir, enfeksiyon sonrası 6-7 hafta boyunca fareler bırakın.
  2. CO 2 fareler Euthanize, ve% 70 etanol ile ıslatın. Arka fare yerleştirin. Deri ve altındaki periton kesip künt forseps ve makas kullanın. Göğüs kafesi ve diyafram altında yer alan Özel Tüketim karaciğer,.
  3. Ince karaciğerler kıyma ve kolajenaz / dispase (0.5 mg / mL), penisilin (100 U / ml) ve PBS içinde streptomisin (100 ug / ml) oluşan sindirim karışımının karaciğer başına 20 mL, ekleyin. Mikst koyun50 ml Falcon tüp ure ve 37 ° C shaker'da gece inkübe edin.
  4. 400 xg / 3 dakika / 20 ° C'de karışım santrifüjleyin Nazikçe aşırı sıvı kapalı dökün ve PBS ile tüp doldurun. Tekrar santrifüj ve PBS yıkama tekrarlayın. Pastör pipetiyle pelet 25 ml PBS içinde, son santrifüj ardından.
  5. Ince bir elekten (ince elekten karışımı itmek için 10 ml şırınga kullanmak yoluyla karışımı geçirerek takip standart bir mutfak metalik süzgeç (bir cam behere aracılığıyla lapa karaciğer parçaları için 50 ml şırınga pistonu kullanın) aracılığıyla yeniden süspanse pelet Gerinim İkinci bir cam behere).
  6. 50 ml Falcon tüp içinde gergin karışımı koyun. 400 xg / 5 at Santrifüj min / 20 ° C Pelet kaybetmeden süpernatant dikkatlice dökmek. 3 ml PBS içinde Pastör pipetiyle pelet.
  7. Bindirme% 20 Percoll üzerine nazikçe karıştırarak, 8 mL Percoll ve 32 mL 0.25M sukroz (FW = 342,3 böylece 8,56 g sucrose/100 mL H 2 0), 40 mL gradyanı.
  8. 10 dakika / 800 xg / 20 ° C Santrifüj Bir off Pipetid karaciğer hücrelerinin jelatinimsi üst kat atın. Bir transfer pipetle altındaki yumurta pelet çıkarın ve 15 ml Falcon tüp içine yerleştirilmiş.
  9. 10 ml PBS / 1 mM EDTA / 1 mM EGTA kullanılarak santrifüj ayarlarda yıkama pelet 3X: 3 dakika / xg 30/20 ° C. 500 uL PBS içinde süspanse edin.
  10. 10 dakika / 800 xg / 20 ° C: yeni bir% 25 Percoll, santrifüj ayarları kullanarak 10 ml degrade (2.5 mL Percoll ve 7.5 mL 0.25M sakkaroz) üzerinde Yerleşimi mix
  11. Santrifüj ayarları kullanarak 10 ml PBS içinde 3X yıkayın: 3 dak / 30 xg / 20 ° C
  12. Son 10 ml yıkama olarak, yumurta saymak için 100 uL kaldırın. Yumurta hızlı bir şekilde çözmek, Falcon tüp örnek çıkarmadan önce iyice karıştırılmalıdır yüzden. 900 uL PBS ile 100 uL örnek sulandırınız. Karışımı 100 uL bir diseksiyon mikroskobu (1:10 seyreltme) kullanarak bir mikroskop lamı üzerine damlacıklar olarak sayılmalıdır. Geniş çaplı iğne ucu kullanılmalıdır.
  13. 50.000 yumurta / mL PBS içinde yumurta süspanse edin. Yumurta -80 ° C'de birkaç ay depolanır ve bir veya TWIC çözülmüş olabilirkullanımı için e. Kullanmadan önce, yumurta (bkz. Şekil 1). Hala sağlam olduğundan emin olmak için mikroskop altında incelemek.

2. S. ile intraperitoneal Duyarlılık mansoni Yumurta: Günlük 0

  1. 5 ml snapcap tüp içinde 5,000 eggs/100 uL PBS yumurta hazırlayın. Enjeksiyon için gerekli% 50 daha fazla yumurta tahmin ediyoruz.
  2. Bir 23 gauge 3/4inch iğne ve fare başına yumurta süspansiyon 100 mcL ile 1 ml şırınga yükleyin. Yumurta kullanımdan hemen önce yumurta ile, bu nedenle yük iğne yerleşirler.
  3. Önce her enjeksiyon için yumurtayı karıştırın ve fare başına süspansiyon intraperitoneal 100 uL enjekte etmek için ileri geri Kaya şırınga.

3. S. ile retroorbital İntravenöz Mücadelesi mansoni Yumurta: 14. Gün

  1. 5000 eggs/100 uL itibariyle yukarıda yumurta hazırlayın.
  2. Ksilazin (10 mg / kg) ve ketamin (120 mg / kg) ile (% 4) izofluran veya intraperitonal olarak uzman odacık içinde farelerin uyuşturmak. Anest Derinliğihesia ayak yastığı çimdirilmesine ve herhangi bir fiziksel tepki sağlanması ile belirlenir.
  3. Yumurta ile 1 ml şırınga ve 23 gauge 3/4inch iğne yüklemesini takiben, açı içine aşağı bakacak şekilde konik ile 90 ° açı ile iğne bükmek için forseps kullanabilir. Hiçbir kabarcıkları olduğundan emin olun.
  4. Bir tarafta fare yerleştirin. Göz çıkıntı ve burun 45 ° açıyla gözün arkasındaki damarların içine 100 uL enjekte böylece cildin geri çekin.
  5. Iğneyi çıkartınız ve kanama kontrolü için hafif basınç uygulayın.

Tüm bu prosedürlerde dikkatli yapılmalıdır ve bunlar anestezi kurtarmak kadar farelerin izlenmesi gerekir. Bu protokoller Pennsylvania Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi (IACUC) Üniversitesi tarafından onaylanmıştır.

4. Deneysel Hasat: 22 Gün

  1. CO 2 ile fareler Euthanize.
  2. Arka% 70 etanol ve yerine ıslak fare.
  3. Künt Forc kullanmaeps, fare karın kavramak ve deride küçük bir kesi yapmak. Dikkatle makasla cilt kaldırmak ve göğüs kafesi ve karın zarı ortaya.
  4. Periton açın kesin. Bir Pasteur pipeti ile kan kurtarmak için abdominal aort kesin. Buz üzerinde saklayın.
  5. Diyafram maruz karaciğer aşağı hareket ettirin. Diyafram kesmek için ince makas kullanın. Dikkatle akciğer dokusunun açığa göğüs kafesinin açık kesti.
  6. Ince forseps ile akciğer drenaj parathymic lenf düğümleri kurtarın. Bunlar timus 9 her iki tarafında, göğüs kafesinin altında sıkışmış vardır. 1mL steril ortam içinde buz üzerinde deposu (DMEM Invitrogen tüm% 10 ısı-inaktive edilmiş fetal buzağı serumu, 100 U / ml penisilin, 100 ug / ml streptomisin, 2 mM L-glutamin, 50 uM 2-merkaptoetanol, takviye).
  7. BAL kurtarmak ve histolojik analiz için akciğerlerini şişirmek için, zor entübasyon yapılmalıdır. Tarafına tükürük bezlerinin hareket ettirerek trakea Açığa ve placitrakea altında ng ince forseps. Ince makas kullanarak, trakeanın ortasında bir delik ve ciğerlerine tüp yerleştirin. Cerrahi iplik ile bağlayarak boru sabitleyin.
  8. Boru için PBS dolu 1 ml şırınga takın ve 1 mL PBS ile akciğerlerini şişirmek. Dikkatle şırınga ile BAL yıkama almak. Buz üzerinde saklayın.
  9. Boru için PBS dolu 1 ml şırınga içinde% 4 paraformaldehit (PFA) takın ve akciğerleri şişirmek.
  10. Tüp çıkarın ve PFA sızmasını önlemek için cerrahi iplik sıkın.
  11. Dikkatle 5 ml% 4 PFA ile 50 ml Falcon tüp akciğer dokusu ve yerde dışarı incelemek.

5.. Kurtarılan Dokular hazırlanması

  1. Serum: Kan pıhtılaşma için 30 dakika için 2 saat süreyle buz üzerinde aşağıdaki depolama, serumu (13000 x g / dak 10/4 ° C) santrifüjle kandan geri kazanılır. Serum -20 ° C'de muhafaza edilir ve sitokin ELISA'lar ya S. için kullanılabilir mansoni yumurta antijen spesifik IgG izotip ELISA'larla
  2. Lenf düğümleri: Tek hücre süspansiyonları hazırlandı ve hücre sayımı, bağışıklık cevabı büyüklüğü değerlendirmek için kullanılmıştır. Th2'nin kutuplaşma incelemek için, hücrelerin S. ile tekrar uyarılır 72 saat mansoni yumurta antijen. Intracellar sitokin boyama akış sitometresi ile incelendi edilebilir, ve süpernatanlar Th2 sitokinlerin ELISA (IL-4, IL-5, IL-13) 6 kurtarılmış ve -20 ° C'de saklanabilir.
  3. BAL: Hücreler (400 xg / 5 dak / 4 ° C) pelet vardır. BAL sıvısı ELISA ile Th2 sitokin analizi için iyileşti ve -20 ° C'de saklanır. BAL hücre sayımı hava yolu iltihabı için bir gösterge olarak kullanılır. 10,000-100,000 hücreleri (500 devir / dk 5/4 ° C) arasında Cytocentrifuge preparatlar, Diffquik boyama takiben inflamatuar sayımı 4, 6 infiltrasyonu izin verir. Alternatif olarak, BAL hücreler flow sitometri 6 tarafından muayene edilebilir.
  4. Akciğer dokusunun: Akciğer dokusunun stor olduğunu4 'de bir gece ed ° C. Sabit doku parafine gömülü, kesitli ve histolojik ve immünfloresan analiz için kızaklar üzerinde monte edilebilir.

6. Temsilcisi Sonuçlar

Bu protokol detayları (i) in vivo kullanımı için Schistosoma mansoni yumurta (Şekil 1), (ii) duyarlı ve bu yumurta ile farelerin meydan saflaştırılmış ve (iii) akciğer inflamatuar yanıtın incelenmesi için organlarını kurtarmak hazırlamak için gerekli tüm adımları. Bu in vivo modelde tekrarlanabilir güçlü bir Th2 akciğer enflamatuvar yanıt yönlendirir. Bu gibi BAL hücre sayımı ve cytocentrifuge preparatları (Şekil 2) görselleştirilmiş hava yolu inflamasyonu ve eozinofili ile gösterilir. H & E boyalı akciğer bölümleri yumurta bağlı granülomlar (Şekil 3a) için muayene ve akciğer bölümlerinin immünofloresan boyama alternatif aktive makrofajlar ve bu tür dirençler gibi Th2 sitokin kaynaklı genlerin görselleştirme sağlar edilebilirkalay gibi molekülü (AHLAK) α (Şekil 3b). Antijene spesifik CD4 Th2 sitokin yanıtı, IL-5 ELISA'lar tarafından incelenmiştir, IL-4 ve antijen-uyarılmış parathymic lenf düğümü hücreleri IL-13 (Şekil 4). Edilir

Şekil 1
Şekil 1 Schistosoma mansoni yumurta enjeksiyon modeli Temsilcisi yüksek S.mansoni-yumurta yüklerin karakteristik granülomatöz karaciğerinin resim, ve S.mansoni yumurta gösterilir -.. Ortalama büyüklüğü (L) (W) 50 mikron ile 120 mikron.

Şekil 2
Şekil 2. S. mansoni yumurta enjeksiyon hava yolu inflamasyonu sürücüler. A. Naif (N) veya S.mansoni (Sm) yumurta enjekte edilen farelerin BAL hücre sayıları (x10 5). * P <0.05. BAL hücrelerinin B. Cytocentrifuge hazırlanması. Mac, MAKROFAJ; Eos, eozinofil; LENF, lenfosit. Bar, 10 mikron.

Şekil 3
Şekil 3. Pulmoner granülomlar ve S.mansoni yumurta çevresindeki alternatif aktive makrofajların görselleştirilmesi. A. Sm yumurta (siyah ok) çevreleyen Pulmoner granülom H & E boyalı akciğer bölümlerde görüntülendi. RELMα B. immünofloresan boyaması (yeşil), mannoz reseptörü (kırmızı) ve DAPI (mavi) autofluorescent Sm yumurta (siyah ok) çevreleyen granüloma alternatif aktive makrofajlar (beyaz ok) açığa çıkarır. Bar, 50 mikron.

Şekil 4
Şekil 4. S.mansoni yumurta antijen spesifik Th2 sitokin yanıtı. Yumurta enjekte naif (N) veya Sm farelerden parathymic lenf hücrelerinin boşaltılması Sm ile uyarıldı </ Em IL-4, IL-5, IL-13 için süpernatan ELISA ardından 72 saat boyunca> yumurta antijeni,. Ölçek, ng / ml. * P <0.05.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Burada, tip 2 akciğer iltihabı teşvik için Schistosoma mansoni yumurta kullanan bir model açıklanmıştır. Bu modelin karakteristik özellikleri güçlü Th2 immün yanıt, hava yolu inflamasyonu ve pulmoner granülom oluşumu vardır. Bu parametreler CD4 Th2 hücre yanıtlarının 11 bağımlı olmaları nedeniyle, bu Th2 hücre yanıtları protein özgü veya soy-spesifik delesyonlar etkilerini araştırmak için yararlı bir modeldir. Burada okuma antijen spesifik Th2 sitokinlerin ölçümü, hava yollarında hücre infiltrasyonu analizi ve pulmoner granülomların boyutunu içerir. Ölçülebilir ek bir parametre yumurta indüklenen fibroz 12'dir. Bu gemiler, hava yolları ve granülom içinde (6 gösterilmiştir) çevreleyen oluşur kollajen depolanması görselleştirme sağlar Masson'un trikrom, yumurta enjeksiyonlu akciğer bölümleri boyama ile ölçülür.

Olmasına rağmen, bu protocol S. istihdam mansoni yumurta, bu modelin bir sınırlama bunu S. yeniden olmamasıdır Bulaşıcı cercariae sahip farelere nüfuz ederek gerçekleştirilir mansoni enfeksiyonu,. Ancak, bu modelin avantajları kurmak için kolaylık olduğunu ve araştırmacının enfeksiyon riski yoktur ki. Saflaştırma takiben, yumurtalar uygun dondurulur ve birkaç ay sonra da kullanılabilir. Sonra çözülen yumurta bulaşıcı değildir ve bu nedenle daha kolay canlı yumurta veya bulaşıcı cercariae daha işlenebilir. Enjeksiyon için yumurta hazırlarken, tek bir yumurta mikroskop altında incelenmesi ile sağlam olduğundan emin olmak gerekir. Taşıma ve yumurta sadece gerektiğinde Flüorosferlerinin zaman yumurta bozulması, geniş delik pipet uçları ve iğneler en aza indirmek için kullanılmalıdır. Yumurta hızla çöken bu yana, sayma veya enjekte önce hafif sallanan tarafından yeniden askıya da önemlidir.

Saflaştırılmış yumurta dondurulabilir edilebilir olmasına rağmen, enfekte karaciğerler işlenmelidirhemen yumurta saflandırılmasında için. Enfeksiyon şiddeti ve karaciğer mevcut yumurta sayısı fare suşu-bağımlı olduğu, yumurta geri kazanım ve yumurta verimleri için zaman noktaları kullanılan fareleri bağlı olarak değişebilir. İşte İsviçre-Webster kadın 10,000-30,000 yumurta / karaciğer üretimi için 6-7 hafta sonrası enfeksiyon kullanılan ve öldürüldü. Yararlı bir referans olarak, Cheever ve ark. Birkaç fare suşlarının 13 ayrıntılı karaciğer yumurta yükünü.

Yumurta enjeksiyon ölüm yol açmaz. Ancak, yumurta hazırlama (as protokolü ayrıntılı) iyice yıkanmış değilse fareler üzerinde anestezisiz eğer yenik olabilir, veya yumurta enjeksiyon şiddetli kanama neden olursa. Retroorbital enjeksiyon için alternatif bir yumurta kuyruk damarından enjeksiyon. A potent yumurta kaynaklı akciğer enflamatuvar yanıt 3 Bu sonuçlar, aynı zamanda. Tüm bu prosedürlerde dikkatli yapılmalıdır ve bunlar anestezi kurtarmak kadar farelerin izlenmesi gerekir.

S. Sonuç olarak, bu protokol detayları enjeksiyonu mansoni akciğer enflamasyon ve Th2 hücresi yanıtlarını indüksiyonu için yumurta ve parazit kaynaklı iltihabı, astım, alerjik hastalıklar ve fibrotik çalışma için de geçerlidir.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Çıkar çatışması ilan etti.

Acknowledgments

Bu çalışma Sağlık (NIH) AI091759 ve Crohn ve Amerika'nın William ve Shelby Modell Aile Vakfı Araştırma Ödülü (MN) arasında Kolit Vakfı Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından desteklenmiştir. Şiştozom-enfekte farelerde NIAID şiştozom Kaynak Merkezi (NIAID Sözleşme N01 A130026) tarafından sağlandı.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Collagenase/Dispase Roche Applied Science 11 097 113 001 (500mg)
Diff Quik Hema 3 Stain Pack Fisher Scientific Co. LLC 122-911
DMEM Liquid Gibco 11965
Falcon 50mL Pack Falcon 352070
Intramedic PE Tubing Becton Dickinson and Co. 427410 (0.58mm)
Isoflurane Abbot Animal Health 52600405 (250mL)
Ketamine Fort Dodge, Animal Health 100mg/mL
Mannose receptor antibody Biotin AbD Serotec MCA2235B
Metallic Strainer Standard kitchen strainer Target Laurentiis
Paraformaldehyde Electron Microsc. Sciences 15710 (16%)
Penicillin/ Streptomycin Gibco 15070 (100x)
Percoll GE Healthcare Biosciences 17 0891 01 (1 Liter)
RELMα antibody Peprotech 500-P214 (50μg)
Surgical Thread Surgical Specialties Corp. SP118 (2.0 USP 100yds)
Syringe Needle BD Vacutainer Lab. Med. 305143 (23g, 3/4 inch)
USA Standard Testing Sieve W.S. Tyler, Inc. 150μm, 0.0059"
ASTME-11, Spec. No. 100
Xylazine Butler 20mg/mL

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. World Health Organization. Prevention and control of schistosomiasis and soil-transmitted helminthiasis: report of a WHO expert committee. WHO Technical Report Series 912. , Geneva. (2002).
  2. Pearce, E. J., MacDonald, A. S. The immunobiology of schistosomiasis. Nat. Rev. Immunol. 2, 499-511 (2002).
  3. Sandler, N. G. Global gene expression profiles during acute pathogen-induced pulmonary inflammation reveal divergent roles for Th1 and th2 responses in tissue repair. J. Immunol. 171, 3655-3667 (2003).
  4. Perrigoue, J. G. IL-31-IL-31R interactions negatively regulate type 2 inflammation in the lung. J. Exp. Med. 204, 481-487 (2007).
  5. Sandor, M., Weinstock, J. V., Wynn, T. A. Granulomas in schistosome and mycobacterial infections: a model of local immune responses. Trends Immunol. 24, 44-52 (2003).
  6. Nair, M. G. Alternatively activated macrophage-derived RELM-{alpha} is a negative regulator of type 2 inflammation in the lung. J. Exp. Med. 206, 937-952 (2009).
  7. Dalton, J. P. A method for the isolation of schistosome eggs and miracidia free of contaminating host tissues. Parasitology. 115, 29-32 (1997).
  8. Lewis, F. A. Large-scale laboratory maintenance of Schistosoma mansoni, with observations on three schistosome/snail host combinations. J. Parasitol. 72, 813-829 (1986).
  9. Tilney, N. L. Patterns of lymphatic drainage in the adult laboratory rat. J. Anat. 109 (Pt. 3), 369-383 (1971).
  10. Lewis, F. Schistosomiasis. Current protocols in immunology. Coligan, J. E. Chapter 19, Unit 19 (2001).
  11. Kaplan, M. H. Th2 cells are required for the Schistosoma mansoni egg-induced granulomatous response. J. Immunol. 160, 1850-1856 (1998).
  12. Wynn, T. A. Fibrotic disease and the T(H)1/T(H)2 paradigm. Nat. Rev. Immunol. 4, 583-594 (2004).
  13. Cheever, A. W. Variation of hepatic fibrosis and granuloma size among mouse strains infected with Schistosoma mansoni. Am. J. Trop. Med. Hyg. 37, 85-97 (1987).

Tags

İmmünoloji Sayı 64 Enfeksiyon Mikrobiyoloji parazit parazit fare Th2 akciğer inflamasyon granülom alternatif aktivasyonu makrofaj
Gelen Yumurta kullanma<em&gt; Schistosoma mansoni</em&gt; Bir şekilde<em&gt; In vivo</emHelmint bağlı Akciğer iltihabı ve&gt; Model
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Joyce, K. L., Morgan, W., Greenberg, … More

Joyce, K. L., Morgan, W., Greenberg, R., Nair, M. G. Using Eggs from Schistosoma mansoni as an In vivo Model of Helminth-induced Lung Inflammation. J. Vis. Exp. (64), e3905, doi:10.3791/3905 (2012).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter