Summary
A exposição a teratógenos podem causar defeitos de nascimento. Os peixes-zebra são úteis para a determinação do potencial teratogénico de produtos químicos. Nós demonstrar a utilidade de peixe-zebra, expondo embriões para vários teores de nitritos e também em diferentes tempos de exposição. Mostramos que os nitritos podem ser tóxicos e causar graves defeitos do desenvolvimento.
Abstract
Altos níveis de nitrato no ambiente pode resultar em defeitos congênitos ou abortos espontâneos em humanos. Presumivelmente, isto deve-se a conversão de nitrato em nitrito pelas bactérias intestinais e salivares. No entanto, em outros estudos de mamíferos, altos níveis de nitrito não causar defeitos de nascimento, embora possam levar a resultados reprodutivos pobres. Assim, o potencial teratogénico de nitrito não é clara. Seria útil dispor de um sistema de modelo animal vertebrado para avaliar facilmente efeitos teratogénicos de nitrito ou qualquer outro produto químico de interesse. Aqui, nós demonstrar a utilidade de peixe-zebra (Danio rerio) para rastrear compostos para toxicidade e defeitos embrionárias. embriões de peixe-zebra são fertilizados externamente e ter um desenvolvimento rápido, o que os torna um bom modelo para estudos teratogênicos. Nós mostramos que o aumento do tempo de exposição ao nitrito afecta negativamente a sobrevivência. O aumento da concentração de nitrito também afecta adversamente a sobrevivência, enquanto que o nitrato não. Para tha embriõest sobreviver à exposição nitrito, vários defeitos podem ocorrer, incluindo pericárdio e gema de edema sac, nadar noninflation bexiga, e malformação craniofacial. Os nossos resultados indicam que o peixe-zebra é um sistema conveniente para estudar o potencial teratogénico de nitrito. Esta abordagem pode ser facilmente adaptada para testar outros produtos químicos para os seus efeitos sobre o desenvolvimento dos vertebrados precoce.
Introduction
Teratogénese é um processo que interrompe o desenvolvimento normal de um embrião ou feto por determinação de alterações funcionais e estruturais permanentes, retardamento do crescimento, ou aborto em casos graves 1. Ela pode ser causada por certos agentes naturais (teratógenos), os quais interferem com o desenvolvimento embrionário de várias maneiras 2. Durante o desenvolvimento fetal humano, teratogens comum, tais como a radiação, agentes infecciosos, metais tóxicos e químicos orgânicos foram relatados para causar defeitos de dobras epicanthic (a dobra de pele na pálpebra superior) e clinodactilia (dedo curvo ou pés) através de erros morfogenéticos 1.
Compreender o mecanismo molecular de teratogenesis é o primeiro passo para o desenvolvimento de tratamento e prevenção. Vários modelos de vertebrados, tais como o sapo com garras Africano (Xenopus laevis) e peixe-zebra (Danio rerio) têm sido utilizados para determinar as vias moleculares afectadas por TeratOgens. Estudos anteriores têm usado peixe-zebra como um modelo para a epidemiologia, toxicologia e teratogenesis 3-7. Scholz et ai. considerada peixe-zebra como um "padrão ouro" para a avaliação da toxicidade ambiental. Isto é devido, em parte, para a transparência do embrião do peixe-zebra, o que permite aos investigadores visualizar o defeito de desenvolvimento, uma vez que ocorre 8. Aproximadamente 70% dos genes humanos ortólogos tem no peixe-zebra, fazendo com que um modelo de peixe-zebra vertebrado desejável para o estudo de defeitos humanos 9.
Alguns estudos epidemiológicos têm sugerido que o nitrato e nitrito, comumente presente em alimentos agrícolas e água, estão associados a defeitos de nascimento ou abortos espontâneos 10,11, enquanto outros estudos não suportam essa associação 12. Nitrato (NO3 -) e nitrito (NO 2 -) estão naturalmente presentes no solo e na água. Eles são uma fonte de nitrogênio para as plantas e são uma parte do nciclo itrogen 13. Alimentos como feijão verde, cenoura, abóbora, espinafre e beterraba de fazendas que usam fertilizantes ricos em nitrato de ter aumentado significativamente os níveis de nitrato e nitrito 7. Leite de vacas alimentadas com alimentos à base de nitrato altos e peixes em água de alta nitrato (principalmente de escoamento do solo 30) pode levar a seres humanos que consomem grandes quantidades de nitrato e nitrito 14. Nitratos e nitritos são também vulgarmente utilizados na conservação de alimentos, o que aumenta dramaticamente a quantidade ingerida pelo ser humano 12.
Níveis óptimos de nitrato e nitrito desempenham papéis fundamentais em processos fisiológicos como a homeostase vascular e função, neurotransmissão e mecanismos de defesa do hospedeiro imunológicos 13-15. No entanto, a exposição a altos níveis de nitrato e nitrito pode levar a efeitos adversos, especialmente em lactentes e crianças de 16. nitrato ingerido é ainda convertido em nitrito na cavidade oral e pela microflora no the trato gastrointestinal pela microflora intestinal 17.
Nitrato coloca crianças em um alto risco para a síndrome do bebê azul por oxidação da hemoglobina em metemoglobina, prejudicando a hemoglobina a partir do seu transporte de oxigénio capacidade 18. Isto resulta em que a cor azul da pele que se estende para os tecidos periféricos, em casos mais graves. Oxigenação inibido de tecidos resulta em outros sintomas, mais severamente levando a coma e morte 19,20. Sintomas semelhantes são observados em bebés e adultos em concentrações mais altas de nitrato de 21. Níveis elevados de metemoglobina em adultos devido a resultados de intoxicação de nitrito em cianose, dor de cabeça, distúrbios respiratórios 31, e morte se não for tratada devido a complicações relacionadas com a hipóxia tecidual vital 32,33.
Nitrato de ingerido em níveis mais elevados também pode resultar em várias complicações de saúde. diabetes infância, diarreia recorrente e infecções recorrentes do trato respiratórioem crianças têm sido relacionados com alta nitrato 11,17,22 ingestão. A exposição crônica a um elevado nível de nitrato está associado com a micção e hemorragia do baço. Exposição aguda a doses elevadas de nitratos pode levar a um largo espectro de condições médicas tais como dor abdominal, fraqueza muscular, sangue nas fezes e urina, desmaios, e da morte 11. A exposição pré-natal ao nitrato em níveis elevados tem sido associada a defeitos do tubo neural e músculo-esquelético 11.
Um relatório recente mostrou que o tratamento de embriões de peixe-zebra com nitrito levou a gema edema sac, malformações craniofaciais e axiais, e nadar bexiga noninflation 5. No presente estudo, nós demonstramos um método para o tratamento de embriões de peixes-zebra com nitrato e nitrito para determinar o seu potencial teratogénico. Os embriões foram expostos a nitrito em diferentes concentrações e em diferentes períodos de tempo. O etanol foi utilizado como um controlo positivo, uma vez que é um agente teratogénico estabelecido em 23. Our método mostraram que ambas as concentrações elevadas e longos tempos de exposição a nitrito eram prejudiciais à sobrevivência e resultou em vários fenótipos, variando de leve (edema) a graves defeitos de desenvolvimento (bruto). Portanto, o peixe-zebra é um modelo útil para explorar diretamente os potenciais efeitos teratogênicos de nitrato e nitrito em embriões para complementar os estudos epidemiológicos.
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Protocol
Os procedimentos descritos neste protocolo foi aprovado pelo Comitê de Cuidado e Uso Institucional Animal da Universidade Indiana em Pensilvânia.
1. Os embriões de colheita
- Manter peixe-zebra a 28,5 ° C, pH 7, condutividade entre 500-1,500 uS, e um ciclo de luz / escuridão de 14 horas de luz e 10 horas escuro 24. Use estirpes do tipo selvagem, como a Turquia, AB ou TU / AB híbrido. Diferentes estirpes podem responder de forma diferente ao tratamento químico 25.
- Configure o peixe para o acasalamento na noite anterior ovos de colheita por adição de água sistema de peixe em um tanque de acasalamento. Adicione uma peixes machos e fêmeas no tanque e separar os dois peixes com um divisor. Cada par peixe vai produzir uma gama de 50-300 ovos. Para garantir que os ovos suficientes será produzido, criou 30 pares de peixes. Normalmente, cerca de 50% de pares de peixes em idade de acasalamento prime (6-9 meses de idade) vai produzir ovos, resultando até 200 ovos por par e um máximo de até 3, 000 ovos para esta experiência.
- Na manhã seguinte, após a luz acende, remova o divisor para iniciar o acasalamento. Verifique os tanques de acasalamento para os ovos a cada 15 minutos.
- Uma vez que os peixes põem ovos, colher todos os embriões utilizando um coador de chá e combiná-los em um recipiente grande com tampão E3 (NaCl 5 mM, KCl 0,17 mM, CaCl 0,33 2, 0,33 mM MgSO 4). Em 1,5 hpf, remover e descartar ovos não fertilizados com uma pipeta de transferência de plástico sob um microscópio de dissecação. Ovos não fertilizados são opacas, enquanto ovos fertilizados são transparentes 34.
- Transferir 50 embriões numa placa de Petri de 100 x 15 mm de vidro contendo 50 ml de tampão de E3 para cada condição de tratamento. Um total de 33 pratos são necessários 11 para as condições de tratamento e 3 repetições.
2. Os embriões Tratar
- Realizar tratamentos em 2 horas pós-fertilização (hpf) 35. Incubar os embriões / larvas a 28,5 ° C e examinar as larvas em 120 hpf. Realizar pelo least três repetições de cada condição de tratamento para análise estatística.
- Para 3 placas de Petri (cada um contendo 50 embriões) em 2 HPF, remover o tampão de E3 com uma pipeta de transferência e adicionar 50 ml de etanol a 300 mM em tampão diluída E3. Cobrir as placas de Petri com Parafilm para minimizar a evaporação do etanol.
- Continue expondo os embriões em etanol durante 22 h. Em seguida, remover o etanol com uma pipeta de transferência. Adicionar 50 ml de tampão E3 e agite o prato várias vezes para lavar o etanol. Remover este buffer E3 com uma pipeta de transferência e repita o passo de lavagem mais 2 vezes.
- Para 3 placas de Petri (cada um contendo 50 embriões) em 2 HPF, remover o tampão de E3 com uma pipeta de transferência e adicionar 50 ml de tampão de novo E3.
- Para placas de Petri de 9 (cada um contendo 50 embriões) em 2 HPF, remover o tampão de E3 com uma pipeta de transferência e adicionar 50 ml de 1,000 mg / L de nitrito de sódio dissolvido em tampão de E3. Confirmar a concentração da solução de nitrito de antemão usando ummodificação da diazotação (USEPA Método 354.1) método espectrofotométrico 28.
- Continue expondo 3 pratos para 46 hr, 3 pratos para 70 horas e 3 pratos para 94 horas. Substitua a solução de nitrito com uma solução de nitrito acabado de fazer diariamente.
- Depois de cada tempo de exposição, remover o nitrito com uma pipeta de transferência. Adicionar 50 ml de tampão E3 e agite o prato várias vezes para lavar o nitrito. Remover este buffer E3 com uma pipeta de transferência e repita o passo de lavagem mais 2 vezes.
- Para 3 placas de Petri (cada um contendo 50 embriões) em 2 HPF, remover o tampão de E3 com uma pipeta de transferência e adicionar 50 ml de 200 mg / L de nitrito de sódio. Repetir este com 400, 600, 800, e 1000 mg / L de nitrito de sódio.
- Continue expondo os embriões de nitrito por 70 h. Substitua a solução de nitrito com uma solução de nitrito acabado de fazer diariamente.
- Após o tempo de exposição, remover o nitrito com uma pipeta de transferência. Adicionar 50 ml de tampão E3 e agite o prato váriasvezes para lavar o nitrito. Remover este buffer E3 com uma pipeta de transferência e repita o passo de lavagem mais 2 vezes.
- Para 3 placas de Petri (cada um contendo 50 embriões) em 2 HPF, remover o tampão de E3 com uma pipeta de transferência e adicionar 50 ml de 1,000 mg / L de nitrato de sódio dissolvido em tampão de E3. Confirmar a concentração da solução de nitrato de estoque de antemão, utilizando uma modificação da redução de cádmio (Método USEPA 353.3) 28 método espectrofotométrico.
- Continue expondo os embriões em nitrato por 70 hr. Substitua a solução de nitrato com solução de nitrato acabado de fazer diariamente.
- Após o tempo de exposição, remover o nitrato com uma pipeta de transferência. Adicionar 50 ml de tampão E3 e agite o prato várias vezes para lavar o nitrato. Remover este buffer E3 com uma pipeta de transferência e repita o passo de lavagem mais 2 vezes.
- Durante cada dia da exposição, contar o número de mortos embrião / larvas usando um microscópio estereoscópico. Sinais de morteincluem a falta de batimentos cardíacos e a circulação sanguínea, ou falta de motilidade após 1 min de observação. Remover mortos embriões / larvas com uma pipeta de transferência para reduzir a contaminação do tampão E3.
- Quando experimentos acabar a 120 hpf, sacrificar as larvas.
- Remover o tampão de E3 com uma pipeta de transferência. Em seguida, adicione 50 ml de 0,2% MS-222 (tamponada a pH 7) e esperar por 10 min.
- Remover o MS-222 com uma pipeta de transferência. Adicionar 50 ml de tampão E3 e agite para lavar a MS-222.
- Remover o tampão de E3 com uma pipeta de transferência e adicionar 20 ml de 4% de paraformaldeído (PFA) para fixar as larvas. Agitar o prato várias vezes. Usar uma pipeta de transferência para transferir as larvas para um frasco de vidro, juntamente com PFA suficiente para encher o frasco. Armazenar os tubos no frigorífico durante a noite (O / N).
- Tirar fotos de larvas fixo usando um estereoscópio com uma câmera digital. Use 30X ampliação, ISO 200, e 200 tempo de exposição ms. Orientar as larvas de modo que a anterior à lepé e dorsal é para o início do campo.
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Representative Results
A exposição ao etanol de 300 mM durante 22 horas não teve nenhum efeito sobre a sobrevivência (dados não apresentados), consistente com relatos anteriores 5,23,26. Isto é esperado, como o etanol é um agente teratogénico conhecido e serviu como um controlo positivo. Fenótipos observados incluíram edema pericárdico, noninflation bexiga natatória (Figura 1), defeitos craniofaciais, e atraso do desenvolvimento (dados não apresentados).
O tratamento com nitrito resultou em leve a efeitos graves sobre a sobrevivência, dependendo do tempo de exposição. Por exemplo, a exposição a 1,000 mg / L para 94 h sobrevivência severamente afectado em comparação com os tempos de exposição mais curtos (Figura 2).
Nós também avaliou o efeito de diferentes concentrações de nitrito na sobrevivência. Os embriões foram expostos durante 70 h a 200, 400, 600, 800, e 1000 mg / L. As taxas de sobrevivência foram menores quando exposto a altasconcentrações de nitrito, enquanto que o nitrato não têm um efeito sobre a sobrevivência (Figura 3). Os fenótipos de larvas tratadas com nitrito de etanol que se assemelhava a embriões tratados (Figura 4).
Figura 1:. Efeitos no desenvolvimento de etanol Tratamento embriões tratados com etanol mostrou edema pericárdico (seta), nadar noninflation bexiga (linha a tracejado), edema do saco vitelino (ponta de seta), e de defeitos craniofaciais (dados não mostrados). As imagens foram tiradas em 96 hpf. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 2: Survival of 1.000 mg / L Tratamento nitrito após diferentes tempos de Exposure. Os embriões foram expostos a 1000 mg / L de nitrito a 2 HPF. Nitrito foi lavado após 46, 70 e 94 h de exposição e taxa de sobrevida foi calculado. O aumento do tempo de exposição resultou na diminuição da taxa de sobrevivência. desvios-padrão: não tratados = 24; 46 h = 6; 70 hr = 6; 94 hr = 0,9. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 3:. A sobrevivência após exposição a diferentes concentrações de nitrito Os embriões foram expostos durante 70 horas a concentrações crescentes de nitrito. Maiores concentrações de nitrito resultou em menores taxas de sobrevivência. Nitrato não teve nenhum efeito até mesmo na concentração mais elevada de 1000 mg / L, após exposição durante 70 h. desvios-padrão para nitrito: não tratados = 19; 200 mg / L = 16; 400 mg / L = 21; 600 mg / L = 20; 800mg / L = 14; 1.000 mg / L = 12. O desvio padrão para o nitrato é igual a 4. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 4:. Efeitos no desenvolvimento de nitrato e nitrito de embriões tratados com 1000 mg / L de nitrato (painel do meio) não teve nenhum efeito em comparação com o controlo não tratado (painel superior). tratamento de nitrito de 1.000 mg / L resultou em defeitos de desenvolvimento em bruto além de fenótipos semelhantes observadas no tratamento de etanol (painel inferior). As imagens foram tiradas a 120 hpf. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
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Discussion
O método descrito aqui demonstra a utilidade do peixe-zebra na avaliação do potencial teratogênico de nitrito e nitrato. Em comparação com outros vertebrados, zebrafish têm vantagens que incluem alta fecundidade, fecundação externa, transparência óptica e rápido desenvolvimento. Os mutantes que carecem de pigmentação disponíveis (tais como o peixe-zebra) Casper 36 também ajudam a aumentar a visibilidade dos órgãos internos. Também é fácil de gerar peixes-zebra transgénicos com genes repórter para facilitar a análise em peixes vivos 37. Porque o genoma do peixe-zebra é conservada com os seres humanos, as informações obtidas a partir de seus estudos pode levar a resultados translacional em humanos 9. O método pode ser aplicado para a análise da expressão dos genes, tais como hibridação in situ, para obter informação adicional sobre a desregulação dos genes causadas por teratógenos.
exposição ao etanol não afectou significativamente a sobrevivência, mas causou MAdefeitos rked semelhantes a relatórios anteriores 5,23,26. Isto demonstra que o nosso método é fiável em repetir os resultados publicados. Nitrato não teve nenhum efeito sobre a sobrevivência, enquanto que o nitrito não têm um efeito significativo em função da concentração e do tempo de exposição. Uma exposição mais longa e maiores níveis de nitrito teve um efeito negativo sobre a sobrevivência, consistente com resultados anteriores 5. Recentemente, foi demonstrado que a exposição excessiva causada nitrito desenvolvimento válvula cardíaca defeituosa no peixe-zebra 27, validando a utilização de peixes-zebra para o estudo do mecanismo de teratógenos.
É fundamental para confirmar as concentrações de soluções de trabalho depois que eles são feitos. As concentrações de nitrato e nitrito pode ser medida usando modificações da redução de cádmio (USEPA Método 353.3) e de diazotização (USEPA 354.1) Método métodos espectrofotométricos, respectivamente 28. Outro passo fundamental é para cobrir a placa de Petri com Parafilm para minimizar evaporação do etanol se este é usado como um controlo positivo. Se as larvas têm mortalidades inesperadas (muito alta ou muito baixa), verifique os cálculos e as concentrações das soluções.
Recentemente, um método semelhante foi utilizado para determinar os efeitos teratogénicos de etanol 29. Embora este método é semelhante ao nosso método aqui, apenas expõe embriões de etanol durante até 24 horas, presumivelmente devido à toxicidade de expor embriões de etanol durante um longo período de tempo. Em contraste, o nosso método expõe embriões em nitrato e nitrito durante vários dias, com troca da solução de ensaio por dia. Isto é vantajoso para testar produtos químicos menos tóxicos.
Prevemos que o nosso método pode ser aplicado para testar outras drogas ou condições ambientais específicas. No entanto, este método está limitado a apenas a testar moléculas solúveis em água. A sensibilidade à luz de determinados produtos químicos é outro fator a considerar. Se os produtos químicos de teste são SensIT luzive, enrole as placas de Petri em papel de alumínio para proteger da luz. Além disso, o método não é boa para a água de teste feita a partir de um ambiente de laboratório específica porque peixe-zebra requerem condições específicas (tais como o pH e a condutividade) para o desenvolvimento óptimo. Mesmo assim, o peixe-zebra serve como um modelo favorável para determinar rapidamente defeitos de desenvolvimento causados pelo potencial teratogens.
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| DREL/2010 instrument | Hach | 26700-03 | |
| Ethanol | Sigma-Aldrich | E7023 | |
| KIMAX glass Petri Dish | VWR | 89001-244 | |
| MS-222 | Sigma-Aldrich | E10521 | |
| NitraVer 5 Nitrate Reagent | Hach | 14034-46 | |
| NitriVer 3 Nitrite Reagent | Hach | 14065-99 | |
| Parafilm | Fisher Scientific | 3-374-10 | |
| Paraformaldehyde | Sigma-Aldrich | 158127 | |
| S6E stereomicroscope | Leica | 10446294 | |
| Sodium nitrate | Fisher Scientific | S343 | |
| Sodium nitrite | Fisher Scientific | S347 | |
| Transfer pipets | Laboratory Products Sales | L320072 | |
| Glass vials | Fisher Scientific | 03-338B |
References
- Gilbert-Barness, E.
- Brent, R. L. The cause and prevention of human birth defects: What have we learned in the past 50 years. Con Anom. 41 (1), 3-21 (2001).
- Lin, S., Zhao, Y., Nel, A. E. Zebrafish: an in vivo model for nano EHS studies. Small. 9 (9-10), 1608-1618 (2013).
- Pamanji, R., et al. Toxicity effects of profenofos on embryonic and larval development of zebrafish (Danio rerio). Environ Toxicol Pharmacol. 39 (2), 887-897 (2015).
- Simmons, A. E., Karimi, I., Talwar, M., Simmons, T. W. Effects of nitrite on development of embryos and early larval stages of the zebrafish (Danio rerio). Zebrafish. 9 (4), 200-206 (2012).
- Mantecca, P., et al. Toxicity Evaluation of a New Zn-Doped CuO Nanocomposite With Highly Effective Antibacterial Properties. Toxicol Sci. , (2015).
- Jensen, F. B. Nitric oxide formation from nitrite in zebrafish. J Exp Biol. 210, 3387-3394 (2007).
- Scholz, S., et al. The zebrafish embryo model in environmental risk assessment--applications beyond acute toxicity testing). Environ Sci Pollut Res Int. 15 (5), 394-404 (2008).
- Howe, K., et al. The zebrafish reference genome sequence and its relationship to the human genome. Nature. 496 (7446), 498-503 (2013).
- CDC. Spontaneous abortions possibly related to ingestion of nitrate-contaminated well water--LaGrange County, Indiana, 1991-1994. MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 45 (26), 569-572 (1996).
- Brender, J. D., et al. Prenatal nitrate intake from drinking water and selected birth defects in offspring of participants in the national birth defects prevention study. Environ Health Perspect. 121 (9), 1083-1089 (2013).
- Huber, J. C., et al. Maternal dietary intake of nitrates, nitrites and nitrosamines and selected birth defects in offspring: a case-control study. Nutr J. 12, 34 (2013).
- Phillips, W. E. Naturally occurring nitrate and nitrite in foods in relation to infant methaemoglobinaemia. Food Cosmet Toxicol. 9 (2), 219-228 (1971).
- Moncada, S., Palmer, R. M., Higgs, E. A. Nitric oxide: physiology, pathophysiology, and pharmacology. Pharmacol Rev. 43 (2), 109-142 (1991).
- Gladwin, M. T., Crawford, J. H., Patel, R. P. The biochemistry of nitric oxide, nitrite, and hemoglobin: role in blood flow regulation. Free Radic Biol Med. 36 (6), 707-717 (2004).
- Gupta, S. K., et al. Recurrent acute respiratory tract infections in areas with high nitrate concentrations in drinking water. Environ Health Perspect. 108 (4), 363-366 (2000).
- Kross, B. C., Ayebo, A. D., Fuortes, L. J. Methemoglobinemia: nitrate toxicity in rural America. Am Fam Physician. 46 (1), 183-188 (1992).
- Greer, F. R., Shannon, M. Infant methemoglobinemia: the role of dietary nitrate in food and water. Pediatrics. 116 (3), 784-786 (2005).
- Sanchez-Echaniz, J., Benito-Fernandez, J., Mintegui-Raso, S. Methemoglobinemia and consumption of vegetables in infants. Pediatrics. 107 (5), 1024-1028 (2001).
- Reregistration Eligibility Decision: Inorganic Nitrate/Nitrite (Sodium and Potassium Nitrates). , U.S. Environmental Protection Agency. Available from: http://www.epa.gov/oppsrrd1/REDs/old_reds/4052red.pdf (1991).
- Virtanen, S. M., et al. Nitrate and nitrite intake and the risk for type 1 diabetes in Finnish children. Childhood Diabetes in Finland Study Group. Diabet Med. 11 (7), 656-662 (1994).
- Case Studies in Environmental Medicine: Nitrate/Nitrite Toxicity. , U.S. Agency for Toxic Substances and Diseases Registry. Available from: http://www.atsdr.cdc.gov/HEC/CSEM/nitrate/docs/nitrate_nitrite.pdf (2001).
- Reimers, M. J., Flockton, A. R., Tanguay, R. L. Ethanol- and acetaldehyde-mediated developmental toxicity in zebrafish. Neurotoxicol Teratol. 26 (6), 769-781 (2004).
- Westerfield, M. The zebrafish book: A guide for the laboratory use of zebrafish (Danio rerio). , 5th edn, University of Oregon Press. (2007).
- Loucks, E., Carvan, M. J. Strain-dependent effects of developmental ethanol exposure in zebrafish. Neurotoxicol Teratol. 26 (6), 745-755 (2004).
- Bilotta, J., Barnett, J. A., Hancock, L., Saszik, S. Ethanol exposure alters zebrafish development: a novel model of fetal alcohol syndrome. Neurotoxicol Teratol. 26 (2), 737-743 (2004).
- Li, J., Jia, W., Zhao, Q. Excessive nitrite affects zebrafish valvulogenesis through yielding too much NO signaling. PLoS One. 9 (3), e92728 (2014).
- Methods for chemical analysis of water and wastes. , United States Environmental Protection Agency. Cincinnati, OH. Environmental Monitoring and Support Laboratory, Office of Research and Development (1983).
- Loucks, E., Ahlgren, S. Assessing teratogenic changes in a zebrafish model of fetal alcohol exposure. J Vis Exp. (61), (2012).
- Addiscott, T. M. Fertilizers and nitrate leaching. Agricultural Chemicals and the Environment, Issues in Environmental Science and Technology. , book 5 1-26 (1996).
- Su, Y. F., Lu, L. H., Hsu, T. H., Chang, S. L., Lin, R. T. Successful treatment of methemoglobinemia in an elderly couple with severe cyanosis: two case reports. Journal of Medical Case Reports. 6 (290), (2012).
- Harvey, M., Cave, G., Chanwai, G. Fatal methaemoglobinaemia induced by self-poisoning with sodium nitrite. Emergency Medicine Australasia. 22, 463-465 (2010).
- Nishiguchi, M., Nushida, H., Okudaira, N., Nishio, H. An autopsy case of fatal methemoglobinemia due to ingestion of sodium. Forensic Research. 6, (2015).
- Avdesh, A., Chen, M., Martin-Iverson, M. T., Mondal, A., Ong, D., Rainey-Smith, S., et al. Regular Care and Maintenance of a Zebrafish (Danio rerio) Laboratory: An Introduction. J. Vis. Exp. (69), (2012).
- Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F.
- White, R. M., et al. Transparent adult zebrafish as a tool for in vivo transplantation analysis. Cell Stem Cell. 2 (2), 183-189 (2008).
- Tsang, M. Zebrafish: A tool for chemical screens. Birth Defects Res C Embryo Today. 90 (3), 185-192 (2010).
