Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Chemistry

بروتوكول الأمثل لRadiolabeling كفاءة من جزيئات الذهب عن طريق استخدام Published: October 10, 2016 doi: 10.3791/54759

Summary

ووصف إجراءات مفصلة لتركيب لأزيد المسمى I-125 وradiolabeling من dibenzocyclooctyne (DBCO) -group مترافق، جزيئات الذهب 13 نانومتر الحجم باستخدام خالية من النحاس فوق رد فعل.

Protocol

تحذير: الشكل المؤكسد من اليود المشع متقلبة جدا ويجب التعامل مع الدروع الرصاص كافية وقارورة الرصاص. ينبغي تنفيذ جميع الخطوات الإشعاعية في غطاء محرك السيارة التي تم تصفيتها الفحم جيد التهوية، وتحتاج إلى مراقبة من قبل أجهزة الكشف الإشعاعي الإجراءات التجريبية.

1. إعداد مواد كيميائية وخرطوشة عكس المرحلة للتحضير لأزيد المسمى I-125

  1. إعداد الكواشف في محلول
    1. حل 1 ملغ من السلائف أزيد (2) في 150 ميكرولتر الايثانول المطلق (الشكل 1).
      ملاحظة: إجراء الاصطناعية مفصل عن مقدمة أزيد (2) ورد في الورقة السابقة 22.
    2. حل 1 ملغ الكلورامين تي في 20 ميكرولتر من 1X المالحة العازلة الفوسفات (الرقم الهيدروجيني = 7.4).
    3. حل 2 ملغ ميتابيسلفيت الصوديوم في 20 ميكرولتر H 2 O.
  2. إعداد وادننشوئها خرطوشة
    1. غسل خرطوشة tC18 مع 10 مل ايثانول المطلق تليها 10 مل H 2 O. لا تجف مصفوفة خرطوشة مع الهواء.

2. Radiosynthesis مجموعة الترقيعي أزيد المسمى I-125

  1. رد فعل Radioiodination من السلائف
    1. إضافة محلول أزيد السلائف (1 ملغ في 150 ميكرولتر من الايثانول المطلق) وحمض الخليك (10 ميكرولتر) إلى أنبوب microcentrifuge 1.5 مل.
    2. إضافة 150 من MBq [125 I] ناي في 0.1 M هيدروكسيد الصوديوم (50 ميكرولتر) إلى خليط التفاعل.
    3. إضافة إلى حل الكلورامين تي (1 ملغ في 20 ميكرولتر من 1X الفوسفات عازلة المالحة) وإغلاق أنبوب microcentrifuge تحتوي على خليط التفاعل.
    4. احتضان خليط التفاعل في درجة حرارة الغرفة لمدة 15 دقيقة حتى يتم الانتهاء من رد فعل radioiodination.
    5. إضافة إلى حل ميتابيسلفيت الصوديوم (2 ملغ في 20 ميكرولتر H 2 O) إلى خليط التفاعللإرواء رد فعل radioiodination.
    6. سحب 0.2 ميكرولتر من الناتج الخام ومن ثم تمييع مع 100 ميكرولتر من محلول (H 2 O / CH 3 CN، 1: 1) للتحليل HPLC.
      ملاحظة: للحصول على جميع التجارب HPLC، واستخدام حمض الفورميك بنسبة 0.1٪ تحتوي على H 2 O (المذيبات أ) و 0.1٪ حمض الفورميك تحتوي على الأسيتونتريل (المذيبات B) كما eluents.
    7. تحليل المنتج الخام المخفف باستخدام عكس المرحلة التحليلية راديو HPLC (C18 عكس المرحلة العمود، معدل التدفق: 1 مل / دقيقة. شاطف التدرج: 20٪ المذيبات B عن 0-2 دقائق، 20-80٪ مذيب ب ل 2-22 دقيقة، 80-100٪ المذيبات B ل22-23 دقيقة، و 100٪ المذيبات B ل23-28 دقيقة، الوقت الاحتفاظ: 16.4 دقيقة) (الشكل 2).
  2. تنقية الناتج الخام مع HPLC إعدادي
    ملاحظة: توفير ما يكفي من التدريع الرصاص حول أجزاء HPLC مثل حاقن، عمود، كاشف، قارورة جمع، والحاويات التي يتم فيها جمع النفايات السائلة.
    1. سحب الالبريد بأكمله خليط التفاعل في قارورة HPLC. شطف أنبوب تفاعل مع الأسيتونتريل (0.5 مل)، وإضافة الشطف في نفس قارورة الحقن. تمييع الحل جمعها مع H 2 O (1 مل).
    2. حقن الناتج الخام في الصعود إلى إعدادي راديو HPLC (C18 عكس المرحلة العمود، معدل التدفق: 10 مل / دقيقة، التدرج شاطف: 20٪ المذيبات B عن 0-2 دقائق، 20-80٪ مذيب ب ل22/02 دقيقة، 80-100٪ B المذيبات ل22-23 دقيقة، و 100٪ المذيبات B ل23-28 دقيقة).
    3. جمع ذروة المشعة التي تمثل أزيد المسمى I-125 (1) R في ظل هذه الظروف HPLC هو 17،8-18،8 دقيقة) في أنبوب الاختبار الزجاجية (الشكل 2).
    4. قياس العائد الإشعاعية الكسر باستخدام تدريج الجرعة الإشعاعية وفقا لبروتوكول الشركة المصنعة.
    5. حقن المنتج المنقى على راديو-HPLC التحليلي باستخدام الظروف HPLC نفسها لتحديد نقاء الإشعاعية للمنتج.
  3. استخراج المرحلة الصلبة المنتج
    1. تخفيف جزء يحتوي على المنتج المطلوب (1) مع 40 مل النقي H 2 O.
    2. إضافة محلول مخفف في خرطوشة tC18 شروطا مسبقة.
    3. غسل خرطوشة مع إضافي 15 مل H 2 O.
    4. أزل المنتج (1) المحاصرين في خرطوشة مع 2 مل الأسيتون في قارورة زجاجية 10 مل محمي بواسطة درع الرصاص. قياس النشاط الإشعاعي من الناتج مزال باستخدام تدريج الجرعة الإشعاعية وفقا لبروتوكول الشركة المصنعة.
      ملاحظة: يمكن أيضا ثنائي ميثيل سلفوكسيد (DMSO) أو الإيثانول المطلق أن تستخدم لشطف المنتج من الخرطوشة. حوالي 5-10٪ من النشاط الإشعاعي العصي عادة إلى خرطوشة، والمنتج رديولبلد المتبقية لا يمكن مزال بالكامل باستخدام الكميات الزائدة من المذيبات العضوية.
    5. يتبخر الأسيتون مع تيار النيتروجين أو غاز الأرجون.
    6. حل إعادةsidue مع DMSO (100-200 ميكرولتر) للخطوة radiolabeling المقبلة.

3. تجميع الذهب النانوية DBCO-مجموعة مترافق

  1. تعديل السطح من الذهب 13 نانومتر الحجم الجسيمات النانوية مع DBCO التي تحتوي على مجموعة البولي اثيلين جليكول
    1. النانوية الذهبية إعداد استقرت الصوديوم سترات (3) (متوسط حجم = 13 نانومتر) وفقا لتقرير سابق 24.
    2. إضافة محلول مائي من توين 20 (1 ملم، 1.5 مل) إلى جزيئات الذهب استقرت سترات (10 نانومتر، 15 مل). يهز الحل لمدة 20 دقيقة على شاكر المداري.
    3. إضافة محلول مائي من DBCO التي تحتوي على مجموعة البولي اثيلين جلايكول ثيول (متوسط ​​الوزن الجزيئي = 5000، 100 ميكرومتر، 1.5 مل). يهز الحل لمدة 2 ساعة على شاكر المداري.
  2. تنقية الذهب النانوية المعدلة DBCO-جماعة
    1. تنقية الذهب النانوية المعدلة DBCO-مجموعة (4) </ قوي> بواسطة الطرد المركزي على التوالي (11400 x ج، 15 دقيقة × 3).
    2. صب طاف وإضافة الماء النقي لإعادة تعليق من الكريات الذهب جسيمات متناهية الصغر.

4. Radiolabeling من DBCO-المعدلة مجموعة الذهب النانوية عبر خالية من النحاس انقر على رد الفعل

  1. تركيب 125 جزيئات الذهب المسمى I-باستخدام أزيد المسمى I-125 (1)
    1. تحضير محلول الذهب النانوية المعدلة DBCO-مجموعة باستخدام الطرد المركزي (11400 x ج، 15 دقيقة)، وضبط تركيز جزيئات الذهب إلى 2 ميكرومتر.
    2. إضافة 4.1 من MBq والمسمى أنا أزيد 125 (1) في DMSO (5 ميكرولتر) الى تعليق جزيئات الذهب (4) (2 ميكرومتر، 50 ميكرولتر).
    3. احتضان ينتج عن ذلك من خليط التفاعل عند 40 درجة مئوية لمدة 60 دقيقة.
    4. سحب قسامة (0.2 ميكرولتر) من الناتج الخام وتطبيقه على السيليكا المشتركATED طبقة رقيقة اللوني (TLC) لوحة.
    5. تطوير لوحة TLC باستخدام خلات الإيثيل كمرحلة النقالة.
    6. وضع لوحة TLC على الماسح الضوئي راديو TLC وتشغيل الماسح الضوئي لمراقبة رد فعل radiolabeling (الشكل 3) وفقا لبروتوكول الشركة المصنعة.
  2. تنقية الناتج الخام
    1. تنقية خليط التفاعل التي تحتوي على 125 النانوية وصفت أنا الذهب (4) عن طريق الطرد المركزي (11400 x ج، 15 دقيقة).
    2. صب طاف وإضافة الماء النقي لإعادة تعليق من الكريات الذهب جسيمات متناهية الصغر.
    3. سحب قسامة (0.2 ميكرولتر) من المنتج المنقى وتطبيقه على طبق من ذهب TLC المغلفة السيليكا.
    4. تطوير لوحة TLC باستخدام خلات الإيثيل كمرحلة النقالة.
    5. وضع لوحة TLC على الماسح الضوئي راديو TLC وتشغيل الماسح الضوئي لتحديد العائد الإشعاعية ونقاء الإشعاعية للغول وصفت لي 125وفقا لبروتوكول الشركة المصنعة د النانوية (4) (الشكل 3).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

تم تنفيذ رد فعل radioiodination من السلائف stannylated (2) خارج باستخدام 150 من MBq [125 I] ناي، حمض الخليك، والكلورامين تي في درجة حرارة الغرفة لمدة 15 دقيقة لتقديم المنتج رديولبلد (1). بعد تنقية HPLC التحضيرية للخليط الخام، تم الحصول على المنتج المطلوب مع 75 ± 10٪ (ن = 8) من العائد الإشعاعية. وكشف التحليل HPLC أن نقاء الإشعاعية المنتج المسمى I-125 وكان أكثر من 99٪ (الشكل 2)، والنشاط الإشعاعي محدد لوحظ من الناتج 1 هو 40.7 من MBq / مكرومول. استخراج المرحلة الصلبة للجزء الذي يحتوي على المنتج النقي باستخدام خرطوشة توفير حل الأسيتون من 1. باستخدام تيار النيتروجين أو غاز الأرجون، والمذيبات العضوية يمكن تبخرت، وبعد ذلك بقايا يمكن حله مرة أخرى في DMSO أو الايثانول المطلق لالظريف المقبلص.

125 I-وسم الذهب النانوية المعدلة والبولي اثيلين جلايكول، وقبل إجراء هو مبين في الشكل 1 إعداد جزيئات الذهب تعديل DBCO-مجموعة. مبلغ فائض من ثيول البولي ايثيلين جلايكول (MW 5000) مع مجموعة DBCO كان رد فعل مع سيتراتي، استقرت جزيئات الذهب 13 نانومتر. بعد خطوة التعديل، تمت تنقية المنتج بواسطة الطرد المركزي على التوالي لإعطاء النانوية الذهب-functionalized DBCO (3). في خطوة radiolabeling، تمت إضافة 3.7 من MBq 1-2 ميكرومتر من 3 (~ 400 ميكرومتر من المجموعات DBCO)، ونفذت رد فعل العلامات من عند 40 درجة مئوية لمدة 1 ساعة. أظهر راديو TLC التحليل أن أكثر من 95٪ من 1 وتفاعلت مع جزيئات الذهب functionalized DBCO-مجموعة (3) في غضون 60 دقيقة. تم اجراء التفاعل لمدة 60 دقيقة، وبعد ذلك كان الناتج الخام بورified بواسطة الطرد المركزي. وقد تم الحصول على 125 جزيئات الذهب المسمى الأول (4) مع> 99٪ (ن = 4) العائد الإشعاعية على النحو الذي تحدده الاذاعة TLC (الشكل 3).

شكل 1
الشكل 1. Radiosynthesis لأزيد المسمى I-125 (1) و 125 النانوية الذهب وصفت لي (4). الكواشف والشروط: (أ) [125 I] ناي، وحامض الخليك، الكلورامين تي، RT، 15 دقيقة، 75 ± 10٪ (ن = 8) العائد الإشعاعية. (ب) DBCO-PEG-SH (MW 5000)، H 2 O، RT، 2 ساعة. ~ 40 درجة مئوية، 60 دقيقة،> 99٪ العائد الإشعاعية. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

ر = "الشكل 2" SRC = "/ ملفات / ftp_upload / 54759 / 54759fig2.jpg" />
الشكل 2. تحليلية HPLC اللوني لأزيد المسمى أنا 125 (1). (أ) Radiochromatogram من الناتج الخام. (ب) Radiochromatogram المنتج المنقى. (ج) اللوني للأشعة فوق البنفسجية (254 نانومتر) من الناتج النقي. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل (3)
الشكل 3. النتائج راديو-TLC من 125 جزيئات الذهب وصفت لي (4) (R و 4 = 0.05، R و 1 = 0.45، شاطف: خلات الإيثيل) (أ) بعد رد فعل 60 دقيقة و (ب) بعد تنقيتها./ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54759/54759fig3large.jpg "الهدف =" _ فارغة "> الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

بشكل عام، كان العائد الإشعاعية لوحظ من المنقى 125 المسمى أنا أزيد (1) 75 ± 10٪ (ن = 8). انجزت radiolabeling مع 50-150 من MBq النشاط الإشعاعي، والنتائج الإشعاعية تتفق تماما. إذا [125 I] ناي 1/2 = 59.4 د) أن خضع التحلل الإشعاعي لأكثر من شهر كان يستخدم في رد فعل radioiodination، وقد لوحظ أن العائد الإشعاعية من 1 أن انخفاضا طفيفا (53-65٪). ولذلك، فمن المستحسن أن [125 I] ناي استخدامها في أقرب وقت يتم إنتاجه أو يتم تسليمها إلى المختبر من أجل الحصول على أقصى حد العائد الإشعاعية. وبالإضافة إلى ذلك، ينبغي أيضا أن تستخدم طازجة حل الكلورامين تي في رد الفعل للحصول على العائد الإشعاعية المطلوبة.

لأن السلائف (2) كان مسعور جدا، وينبغي أن يضاف 150 ميكرولتر الايثانول المطلق إلى حل 1 ملغ من و[125 I] ني. الذوبان انخفضت من السلائف غالبا ما يؤدي إلى انخفاض العائد الإشعاعية من 1. ويمكن أيضا DMSO أن تستخدم لإذابة 2 في خطوة radiolabeling. وبالإضافة إلى ذلك، ينبغي أن يضاف حمض الخليك في حل السلائف للحصول على العائد الإشعاعية العالية في الخطوة radioiodination.

قبل استخدام HPLC إعدادي لتنقية الناتج الخام التي تحتوي على يحتاج العكسي عمود المرحلة HPLC لغسلها مع المذيبات ألف وباء (معدل التدفق: 10 مل / دقيقة. شاطف التدرج: 100٪ المذيبات B ل0-10 دقيقة، و 100 -0٪ المذيبات B ل10-25 دقيقة، و 0٪ المذيبات B لمدة 25-30 دقيقة) لإزالة كمية ضئيلة من الشوائب من النظام. بعد ذلك، يتم معايرتها العكسي عمود المرحلة HPLC مع 20٪ المذيبات B في 80٪ مذيب لمدة 20 دقيقة على الأقل للحصول علىالوقت الاحتفاظ ثابت من 1.

يجب تخفيفه جزء يحتوي على النقى 1 مع أكثر من 4 أضعاف حجم H 2 O في إجراء استخراج المرحلة الصلبة. خلاف ذلك، وبعض من المنتجات النقية لا يمكن المحاصرين في خرطوشة tC18. عند استخدام الأسيتون إلى أزل تنقيته 1 من خرطوشة، والحجم النهائي يمكن الحد من تبخر الأسيتون مع تيار النيتروجين أو غاز الأرجون عند درجة حرارة الغرفة.

من بين العديد من يود المشع، 125 وقد تم اختيار الأول والمستخدمة في البحث الحالي. لا بد من اختبارها باستخدام هذا الأسلوب في الدراسات البيولوجية والطبية الأخرى أنواع مختلفة من النظائر المشعة اليود (على سبيل المثال، 124 I للتصوير PET، 131 أنا لأغراض علاجية).

بقدر ما نفهم، وبروتوكول radiolabeling هو التقرير الأول واصفا syntheti مفصلالخطوات ج لمجموعة أزيد المسمى اليود المشع. في الآونة الأخيرة، نشرنا مجموعة الاصطناعية أزيد آخر، والتي لديها بنية مختلفة 23. ومع ذلك، فإن أزيد رديولبلد (1) في الطريقة الحالية تقدم النتائج الإشعاعية أفضل قليلا من غيرها من حيث radiolabeling كفاءة مع الجزيئات التي تحتوي على جماعة DBCO. مجموعة التعويضية (أي، N -hydroxysuccinimide وmaleimide) لوضع العلامات من اليود المشع الحالية لا يمكن أن توفر-خصوصية الموقع. ومع ذلك، يوضح الأسلوب الحالي كفاءة radiolabeling مباشرة مع bioorthogonality ممتازة. منذ يعرف مجموعة وظيفية أزيد أن تكون مستقرة إلى حد كبير في الظروف الفسيولوجية وفي بيئات الجسم الحي، والمنتج رديولبلد (1) يمكن استخدامها في مرحلة ما قبل المستهدفة في الدراسات المجراة التصوير. نحن نتوقع أن هذا الأسلوب سوف تطبق بكفاءة على حد سواء في التجارب المختبرية والنظائر المشعة اليود في الجسم الحي لاbeling من الجزيئات الحيوية والمواد النانوية التي تحتوي على هيكل cyclooctyne متوترة.

واستنادا إلى النشاط الإشعاعي محدد من نسبة المولي تحسب من 125 النانوية الأول والذهب هو ~ 1: 1 125 جزيئات الذهب وصفت لي (4) يمكن استخدامها في التصوير وbiodistribution الدراسات الجزيئية للمواد متناهية الصغر. ويمكن أيضا أن تطبق الطريقة الحالية لوضع العلامات اليود المشع من مختلف الأحجام والأشكال من المواد النانوية الذهبية.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Chloramine T trihydrate Sigma 402869
[125I]NaI in aq. NaOH Perkin-Elmer NEZ033A010MC
Sodium metabisulfite  Sigma S9000
Formic acid Sigma 251364
Sep-Pak tC18 plus cartridge Waters WAT036800
Dimethyl sulfoxide  Sigma D2650
Acetone Sigma 650501
Ethanol Sigma 459844
Gold(III) chloride trihydrate Sigma 520918
Tween 20  Sigma P1379
DBCO PEG SH (MW 5,000) NANOCS PG2-DBTH-5k
TLC silica gel 60 F254 Merck
Analytical HPLC Agilent 1290 Infinity Model number
Preparative HPLC Agilent 1260 Infinity Model number
Analytical C18 reverse-phase column Agilent Zorbax Eclipse XDB-C18
Preparative C18 reverse-phase column Agilent PrepHT XDB-C18
Radio TLC scanner Bioscan AR-2000 Model number
Radioisotope dose calibrator Capintec, Inc CRC -25R dose calibrator Model number

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Jewett, J. C., Bertozzi, C. R. Cu-free Click Cycloaddition Reactions in Chemical Biology. Chem. Soc. Rev. 39, 1272-1279 (2010).
  2. Debets, M. F., et al. Bioconjugation with Strained Alkenes and Alkyne. Acc. Chem. Res. 44, 805-815 (2011).
  3. Sletten, E. M., Bertozzi, C. R. From Mechanism to Mouse: A Tale of Two Bioorthogonal Reactions. Acc. Chem. Res. 44, 666-676 (2011).
  4. Koo, H., et al. Bioorthogonal Cu-Free Click Chemistry in vivo for Tumor-Targeted Delivery of Nanoparticles. Angew. Chem. Int. Ed. 51, 11836-11840 (2012).
  5. Chang, P. V., et al. Copper-Free Click Chemistry in Living Animals. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 107, 1821-1826 (2010).
  6. Bostic, H. E., Smith, M. D., Poloukhtine, A. A., Popik, V. V., Best, M. D. Membrane Labeling and Immobilization via copper-free Click Chemistry. Chem. Commun. 48, 1431-1433 (2012).
  7. Someya, T., Ando, A., Kimoto, M., Hirao, I. Site-Specific Labeling of RNA by Combining Genetic Alphabet Expansion Transcription and Copper-Free Click Chemistry. Nucl. Acids Res. 43, 6665-6676 (2015).
  8. Lee, S. B., et al. Mesoporous Silica Nanoparticle Pretargeting for PET Imaging Based on a Rapid Bioorthogonal Reaction in a Living Body. Angew. Chem. Int. Ed. 52, 10549-10552 (2013).
  9. Sachin, K., et al. F-18 Labeling Protocol of Peptides Based on Chemically Orthogonal Strain-Promoted Cycloaddition under Physiologically Friendly Reaction Conditions. Bioconjugate Chem. 23, 1680-1686 (2012).
  10. Evans, H. L., et al. Copper-Free Click - A Promising Tool for Pre-targeted PET Imaging. Chem. Commun. 48, 991-993 (2012).
  11. Campbell-Verduyn, L. S., et al. Strain-Promoted Copper-Free "Click" Chemistry for 18F Radiolabeling of Bombesin. Angew. Chem. Int. Ed. 50, 11117-11120 (2011).
  12. Arumugam, S., Chin, J., Schirrmacher, R., Popik, V. V., Kostikov, A. P. 18F]Azadibenzocyclooctyne ([18F]ADIBO): A Biocompatible Radioactive Labeling Synthon for Peptides using Catalyst Free [3+2] Cycloaddition. Bioorg. Med. Chem. Lett. 21, 6987-6991 (2011).
  13. Bouvet, V., Wuest, M., Wuest, F. Copper-Free Click Chemistry with the Short-Lived Positron Emitter Fluorine-18. Org. Biomol. Chem. 9, 7393-7399 (2011).
  14. Satpati, D., Bauer, N., Hausner, S. H., Sutcliffe, J. L. Synthesis of [64Cu]DOTA-ADIBON3-Ala-PEG28-A20FMDV2 via Copper-Free Click Chemistry for PET Imaging of Integrin αvβ6. J. Radioanal. Nucl. Chem. 302, 765-771 (2014).
  15. Lee, D. E., et al. Facile Method To Radiolabel Glycol Chitosan Nanoparticles with 64Cu via Copper-Free Click Chemistry for MicroPET Imaging. Mol. Pharmaceutics. 10, 2190-2198 (2013).
  16. Zeng, D. 64Cu Core-Labeled Nanoparticles with High Specific Activity via Metal-Free Click Chemistry. ACS Nano. 6, 5209-5219 (2012).
  17. Jeon, J., et al. Radiosynthesis and in vivo Evaluation of [125I]2-4(iodophenethyl)-2-Methylmalonic Acid as a Potential Radiotracer for Detection of Apoptosis. J. Radioanal. Nucl. Chem. 308, 23-29 (2016).
  18. Adam, M. J., Wilbur, D. S. Radiohalogens for Imaging and Therapy. Chem. Soc. Rev. 34, 153-163 (2005).
  19. Jeon, J., et al. Radiosynthesis of 123I-Labeld Hesperetin for Biodistribution Study of Orally Administered Hesperetin. J. Radioanal. Nucl. Chem. 306, 437-443 (2015).
  20. Kil, K. E., et al. Development of [123I]IPEB and [123I]IMPEB as SPECT Radioligands for Metabotropic Glutamate Receptor Subtype. ACS Med. Chem. Lett. 5, 652-656 (2014).
  21. Chen, M. K., et al. The Utility of I-123 Pretherapy Scan in I-131 Radioiodine Therapy for Thyroid Cancer. Thyroid. 22, 304-309 (2012).
  22. Jeon, J., et al. Efficient Method for Iodine Radioisotope Labeling of Cyclooctyne-Containing Molecules using Strain-Promoted Copper-Free Click Reaction. Bioorg. Med. Chem. 23, 3303-3308 (2015).
  23. Choi, M. H., et al. Synthesis and Evaluation of an 125I-Labeled Azide Prosthetic Group for Efficient and Bioorthogonal Radiolabeling of Cyclooctyne-Group Containing Molecules using Copper-Free Click Reaction. Bioorg. Med. Chem. Lett. 26, 875-878 (2016).
  24. Kim, Y. H., et al. Tumor Targeting and Imaging Using Cyclic RGD-PEGylated Gold Nanoparticle Probes with Directly Conjugated Iodine-125. Small. 7, 2052-2060 (2011).

Tags

الكيمياء، العدد 116، Radiolabeling، النظائر المشعة، المشع، اليود المشع، رد فعل Bioorthogonal، خالية من النحاس فوق رد فعل، مجموعة الترقيعي، أزيد، جزيئات الذهب
بروتوكول الأمثل لRadiolabeling كفاءة من جزيئات الذهب عن طريق استخدام<sup&gt; 125</sup&gt; أزيد المجموعة الترقيعي المسمى أنا
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Jeon, J., Shim, H. E., Mushtaq, S.,More

Jeon, J., Shim, H. E., Mushtaq, S., Choi, M. H., Park, S. H., Choi, D. S., Jang, B. S. An Optimized Protocol for the Efficient Radiolabeling of Gold Nanoparticles by Using a 125I-labeled Azide Prosthetic Group. J. Vis. Exp. (116), e54759, doi:10.3791/54759 (2016).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter